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Cromatografia su colonna

Panoramica

Fonte: Laboratorio del Dr. Jimmy Franco - Merrimack College

La cromatografia su colonna è una delle tecniche più utili per purificare i composti. Questa tecnica utilizza una fase stazionaria, che è impacchettata in una colonna, e una fase mobile che passa attraverso la colonna. Questa tecnica sfrutta le differenze di polarità tra i composti, permettendo alle molecole di essere facilmente separate. 1 Le due fasi stazionarie più comuni per la cromatografia su colonna sono il gel di silice (SiO2) e l'allumina (Al2O3), con le fasi mobili più comunemente utilizzate come solventi organici. 2 Il solvente o i solventi scelti per la fase mobile dipendono dalla polarità delle molecole da purificare. Tipicamente più composti polari richiedono più solventi polari per facilitare il passaggio delle molecole attraverso la fase stazionaria. Una volta completato il processo di purificazione, il solvente può essere rimosso dalle frazioni raccolte utilizzando un evaporatore rotante per produrre il materiale isolato.

Principi

La miscela campione viene posizionata sulla parte superiore della colonna e assorbita sulla parte superiore della fase stazionaria. Successivamente, la fase mobile viene applicata alla colonna e utilizzata per eluire la miscela attraverso la fase stazionaria. La cromatografia su colonna sfrutta la polarità di una molecola per separare i composti. La differenza di polarità porta a variazioni nella velocità con cui le molecole viaggiano attraverso la colonna, che separa efficacemente i composti l'uno dall'altro. La fase mobile viene raccolta in piccole frazioni in provette mentre eluisce dalla colonna, consentendo così l'isolamento e la purificazione dei composti. Infine, il solvente viene rimosso utilizzando un evaporatore rotativo per produrre il composto o i composti isolati.

La versatilità e la praticità della cromatografia a colonna l'hanno resa una delle tecniche più utilizzate per purificare i composti. A differenza della ricristallizzazione (un'altra tecnica di purificazione comunemente usata) i composti purificati con cromatografia su colonna non devono essere solidi. La cromatografia su colonna è anche in grado di isolare un numero di composti da una miscela. Un altro vantaggio del cromatografo a colonna è che si sa molto poco sulle proprietà fisiche del composto per utilizzare questo metodo di purificazione, rendendo questa tecnica molto preziosa quando si sintetizzano o isolano nuovi composti, in cui si sa poco sui composti.

Solvente

La velocità con cui un composto attraversa la colonna dipende fortemente dalla fase mobile utilizzata. In genere, più polare è il solvente, più velocemente i composti passeranno attraverso la colonna. I solventi polari hanno una maggiore affinità per la fase solida, limitando le interazioni tra il composto o i composti e la fase solida, consentendo ai composti di eluire più rapidamente. Occorre prestare attenzione per garantire che il sistema solvente scelto per la cromatografia su colonna abbia la polarità appropriata per creare separazione tra i composti nella miscela. La scelta del solvente è fondamentale per una separazione di successo utilizzando la cromatografia su colonna. Per identificare un sistema solvente ottimale, è necessario condurre una serie di esperimenti di cromatografia su strato sottile (TLC) prima di eseguire l'esperimento di cromatografia su colonna. In alcuni casi potrebbe essere necessario utilizzare un sistema binario a solvente.

Selezione di un sistema a solvente

  1. Identificare un sistema solvente che produce un fattore di ritardo (Rf ) compreso tra 0,2-0,3 per il composto desiderato su una piastra TLC.
  2. Inizia con acetato di etile o diclorometano come fase mobile per l'esperimento TLC.
    1. Se R f è maggiore di 0,3, provare meno solvente polare, come l'esano. Se la Rf è inferiore a 0,2, provare ad aggiungere una piccola quantità di un solvente polare come il metanolo.
    2. Il sistema di solventi ottimale può richiedere una miscela di due solventi.
    3. Fare attenzione a non utilizzare più del 10% di metanolo come fase mobile per una colonna di silice.

Procedura

1. Liquame di gel di silice

  1. Versare il gel di silice in un matraccio Erlenmeyer. Il peso del materiale d'imballaggio deve essere circa 50 volte quello del campione da separare. Se i composti separati hanno valori Rf molto simili, potrebbe essere necessario utilizzare una maggiore quantità di silice per campione, come nel caso di questo esempio.
    1. Posizionare 10 g di silice nel matraccio Erlenmeyer, poiché 50 mg di campione (45 mg di fluorenone e 5 mg di tetrafenilporfirina) vengono isolati.
  2. Aggiungere il sistema solvente (esano/diclorometano, 70%: 30%) al matraccio Erlenmeyer contenente il gel di silice. Aggiungere abbastanza solvente per garantire che tutto il gel di silice sia ben solvatato. La silice non si dissolverà, ma la miscela sarà visivamente evidente quando viene solvata. Una volta aggiunto il solvente, ruotare il matraccio Erlenmeyer per garantire che tutta la silice sia ben solvata.

2. Preparazione della colonna

  1. Selezionare la colonna di dimensioni appropriate. In genere la colonna deve essere riempita circa a metà strada con liquame di gel di silice. Più grande è il campione da purificare, maggiore è la colonna richiesta.
  2. Tappare il fondo della colonna con un pezzo di lana di vetro. Usando un'asta lunga, assicurati che la lana sia saldamente alloggiata nella parte inferiore della colonna appena sopra il rubinetto.
  3. Una volta che la lana è saldamente in posizione, applicare un sottile strato di sabbia sulla lana di vetro.
    Nota: Se la colonna è dotata di una fritta di vetro sopra il rubinetto, questo passaggio dovrebbe essere omesso.
  4. Bloccare la colonna in posizione verticale a un supporto ad anello.
  5. Usando un imbuto, versare delicatamente il liquame preparato di gel di silice nella colonna. Potrebbe essere necessario aggiungere ulteriore solvente per trasferire il liquame dal matraccio Erlenmeyer alla colonna. Usando una pipetta, lavare qualsiasi gel di silice che si attacca ai lati della colonna.
    1. Mentre il gel di silice si deposita nella colonna, picchiettare delicatamente i lati della colonna per assicurarsi che il gel di silice si impacchetta strettamente ed escluda eventuali bolle d'aria.
  6. Aprire il rubinetto e lasciare che il solvente si scarichi in un matraccio Erlenmeyer pulito fino a poco prima che il gel di silice e il fronte del solvente si incontrino. Il gel di silice non dovrebbe mai asciugarsi fino al completamento della procedura.
  7. Posizionare un sottile strato di sabbia sopra il gel di silice (Figura 1). Usando una pipetta, lavare via tutta la sabbia che potrebbe essersi attaccata ai lati della colonna.
  8. Scolare qualsiasi solvente aggiuntivo fino a quando la sabbia non è asciutta, ma non fino allo strato di gel di silice.

Figure 1
Figura 1. La configurazione corretta per un esperimento di cromatografia su colonna prima dell'aggiunta del campione.

3. Aggiunta dell'esempio alla colonna

  1. Sciogliere il campione nella minor quantità possibile di solvente (utilizzando lo stesso solvente utilizzato per produrre il liquame di gel di silice).
  2. Utilizzando una pipetta, aggiungere delicatamente il campione nella parte superiore della colonna.
  3. Una volta che il campione è stato applicato sulla parte superiore della colonna, aprire il rubinetto e lasciare che il solvente dreni attraverso lo strato di sabbia ma non lo strato di gel di silice. Utilizzare una quantità molto piccola di solvente per lavare qualsiasi campione che potrebbe essersi aggrappato ai lati della colonna. Scolare questo solvente aggiuntivo anche attraverso lo strato di sabbia.

4. Eluire il campione attraverso la colonna

  1. Usando una pipetta, aggiungere molto delicatamente 4-5 ml di solvente in modo tale da non disturbare lo strato di sabbia.
  2. Posizionare un imbuto nella parte superiore della colonna e riempire molto lentamente e delicatamente il resto della colonna con solvente.
  3. Aprire il rubinetto e lasciare che il solvente scarichi attraverso la colonna.
  4. Inizia a raccogliere la fase mobile mentre drena dalla colonna in provette.
    1. Le provette devono essere collocate in una griglia per provette in modo sequenziale.
  5. Aggiungere ulteriore solvente nella parte superiore della colonna secondo necessità fino a quando tutti i composti desiderati non sono stati eluiti dalla colonna.

5. Recupero dei costituenti

  1. Se i composti sono colorati, possono essere identificati visivamente. Tuttavia, se i composti sono incolori, dovranno essere identificati utilizzando la luce ulta-visibile (UV) (se i composti contengono coniugazione) o con la macchia appropriata. La purezza dei composti può essere verificata utilizzando la cromatografia a strato sottile.
  2. Identificare le provette che contengono i composti desiderati.
  3. Unire tutte le frazioni che contengono il composto o i composti isolati desiderati in un matraccio a fondo tondo (RB) prepesato. Fallo per ogni composto isolato.
  4. Evaporare il solvente posizionando il pallone RB sull'evaporatore rotante.
  5. Una volta rimosso tutto il solvente, pesare il RB con il prodotto essiccato e sottrarre il peso iniziale del RB per ottenere una resa.

Risultati

Il campione contenente una miscela di tetrafenilporfirina (TPP, 5 mg) e fluorenone (45 mg) è stato separato con successo e ciascun composto è stato isolato. Il TPP eluiva prima la colonna come una banda viola-rossastra scura e il fluorenone successivamente eluiva dalla colonna come una banda gialla (Figura 2). Le frazioni eluite sono state raccolte in provette e identificate dai loro colori distintivi (Figura 3). Le frazioni contenenti i composti isolati sono state fuse in RB separati e il solvente è stato rimosso utilizzando un evaporatore rotativo per consentire TPP e fluorenone altamente puri. La purezza dei composti cromatografati è stata convalidata mediante spettroscopia di risonanza magnetica nucleare (NMR). I composti possono inoltre essere verificati dal punto di fusione, ma solo se il punto di fusione per il composto o i composti desiderati è stato precedentemente determinato.

Figure 2
Figura 2. Man mano che i composti attraversano la fase stazionaria, iniziano a separarsi. In questo esperimento il TPP (banda viola-rossastro scuro) viaggia attraverso la colonna leggermente più velocemente del fluorenone (banda gialla).

Figure 3
Figura 3. Man mano che i composti eluiscono dalla colonna, vengono raccolti in provette. I composti separati in questo esperimento sono colorati, in modo che possano essere identificati visivamente.

Riferimenti

  1. Mayo, D. W.; Pike, R. M.; Forbes, D. C., Microscale organic laboratory : with multistep and multiscale syntheses. 5th ed.; J. Wiley & Sons: Hoboken, NJ; p xxi, 681 p (2011).
  2. Armarego, W. L. F.; Chai, C. L. L., Purification of laboratory chemicals. 5th ed.; Butterworth-Heinemann: Amsterdam; Boston; p xv, 609 p (2003).
  3. Silverman, R. B.; Holladay, M. W., The organic chemistry of drug design and drug action. Third edition / ed.; Elsevier/AP, Academic Press, is an imprint of Elsevier: Amsterdam ; Boston; p xviii, 517 pages (2014).
  4. Mortensen, D. S.; Perrin-Ninkovic, S. M.; Shevlin, G.; Elsner, J.; Zhao, J.; Whitefield, B. et. al. Optimization of a Series of Triazole Containing Mammalian Target of Rapamycin (mTOR) Kinase Inhibitors and the Discovery of CC-115. Journal of Medicinal Chemistry (2015).
  5. Davies, D. R.; Johnson, T. M., Isolation of Three Components from Spearmint Oil: An Exercise in Column and Thin-Layer Chromatography. Journal of Chemical Education,84 (2), 318 (2007).
  6. Taber, D. F.; Hoerrner, R. S., Column chromatography: Isolation of caffeine. Journal of Chemical Education, 68 (1), 73 (1991).

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Overview

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Principles of Column Chromatography

3:06

Column and Sample Preparation

5:23

Separation of Compounds

6:24

Results

7:10

Applications

8:58

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