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Coltura e conta di batteri da campioni di suolo

Panoramica

Fonte: Laboratori del Dr. Ian Pepper e del Dr. Charles Gerba - Università dell'Arizona
Autori dimostrativi: Bradley Schmitz e Luisa Ikner

I terreni superficiali sono una miscela eterogenea di particelle inorganiche e organiche che si combinano insieme per formare aggregati secondari. All'interno e tra gli aggregati ci sono vuoti o pori che contengono visivamente sia aria che acqua. Queste condizioni creano un ecosistema ideale per i batteri, quindi tutti i terreni contengono vaste popolazioni di batteri, di solito oltre 1 milione per grammo di suolo.

I batteri sono il più semplice dei microrganismi, noti come procarioti. All'interno di questo gruppo procariotico, ci sono i microbi filamentosi noti come actinomiceti. Gli actinomiceti sono in realtà batteri, ma sono spesso considerati un gruppo unico all'interno della classificazione dei batteri a causa della loro struttura filamentosa, che consiste in più cellule infilate insieme per formare ife. Questo esperimento utilizza i mezzi del glicerolo che selezionano le colonie di actinomiceti, durante la diluizione e la placcatura. Tipicamente, gli actinomiceti sono circa il 10% della popolazione batterica totale. Batteri e actinomiceti si trovano in ogni ambiente sulla Terra, ma l'abbondanza e la diversità di questi microbi nel suolo non ha eguali. Questi microbi sono anche essenziali per la vita umana e influenzano ciò che le persone mangiano, bevono, respirano o toccano. Inoltre, ci sono specie batteriche che possono infettare le persone e causare malattie, e ci sono batteri che possono produrre prodotti naturali in grado di guarire le persone. Gli actinomiceti sono particolarmente importanti per la produzione di antibiotici, come la streptomicina. I batteri sono fondamentali per il ciclo dei nutrienti, la crescita delle piante e la degradazione dei contaminanti organici.

I batteri sono molto diversi in termini di numero di specie che si possono trovare nel suolo, in parte perché sono fisiologicamente e metabolicamente diversi. I batteri possono essere eterotrofici, il che significa che utilizzano composti organici, come il glucosio, per il cibo e l'energia, o autotrofici, il che significa che utilizzano composti inorganici, come lo zolfo elementare, per il cibo e l'energia. Possono anche essere aerobici, utilizzando ossigeno per la respirazione, o anaerobici, utilizzando forme combinate di ossigeno, come nitrato o solfato, per respirare. Alcuni batteri possono utilizzare ossigeno o forme combinate di ossigeno e sono noti come anaerobi facoltativi.

Principi

Un modo per enumerare il numero di batteri presenti in un campione di terreno è utilizzare la metodologia di diluizione e placcatura. Questa metodologia utilizza l'agar come mezzo per la crescita batterica, un processo definito "tecnologia coltivabile". A causa del gran numero di batteri presenti all'interno dei terreni, un piccolo campione di terreno viene diluito in serie in acqua, prima di essere placcato su agar all'interno di una piastra di Petri. Tipicamente, una piccola quantità di terreno contenuta entro 0,1 a 1 mL della sospensione del suolo diluito viene "distribuita" sulla superficie della piastra di agar. Le piastre contengono agar, che è fuso quando è caldo, ma solido quando è freddo. Oltre all'agar, i nutrienti, come il lievito peptone o un prodotto disponibile in commercio come R2A, vengono aggiunti al mezzo per consentire la crescita di batteri eterotrofi.

La diluizione e la placcatura sono una tecnologia economica e relativamente semplice per l'enumerazione dei batteri del suolo. Tuttavia, ci sono diversi inconvenienti alla tecnica. Alcuni errori e ipotesi comuni associati ai saggi di diluizione e placcatura sono i seguenti: si presume che ogni singolo batterio del suolo dia origine a una colonia, ma in realtà una colonia può derivare da un grumo di cellule, con conseguente sottovalutazione del vero conteggio coltivabile. Durante la diluizione seriale del terreno, le particelle di terreno possono depositarsi (cadere sul fondo), quindi la vera aliquota del suolo non viene trasmessa nella diluizione successiva. Molti microbi del suolo sono vitali ma non coltivabili. I batteri a crescita lenta potrebbero non provocare colonie visibili entro un lasso di tempo ragionevole (1-2 settimane).

Inoltre, i batteri anaerobici non crescono in condizioni aerobiche e i batteri che crescono sono selezionati dai nutrienti aggiunti al mezzo. Così R2A seleziona per i batteri eterotrofi, mentre lo zolfo elementare seleziona per gli ossidanti autotrofici dello zolfo. Nel complesso, si stima che solo lo 0,1-1% di tutti i batteri del suolo possa essere coltivato. Pertanto, la diluizione e la placcatura dei batteri del suolo rappresentano solo i batteri coltivabili e sottovalutano la vera popolazione vitale del suolo di uno o due ordini di grandezza. Un esempio di colonie batteriche eterotrofiche risultanti dalla diluizione e dalla placcatura del suolo è mostrato nella Figura 1. Si noti che circa 1 milione di cellule batteriche sono necessarie affinché una colonia sia visibile ad occhio nudo.

Questo esperimento dimostra la metodologia di diluizione e diffusione della placcatura utilizzata per enumerare il numero di batteri all'interno di un campione di terreno. In particolare, vengono utilizzati due mezzi: uno progettato per tutti i batteri e l'altro che seleziona per gli actinomiceti. Una volta che le colonie batteriche sono cresciute sulle piastre di agar, isolare le colture pure di colonie selezionate utilizzando una tecnica a piastra striata. Tali culture pure possono quindi essere ulteriormente analizzate e caratterizzate per tratti e funzioni specifici.

Figure 1
Figura 1. Colonie eterotrofiche su una piastra di agar R2A. Un certo numero di colonie discrete con morfologia diversa sorgono dopo la diluizione e la placcatura dal suolo. Autorizzazione all'uso concessa da Academic Press.

Procedura

1. Preparazione delle diluizioni del suolo

  1. Per iniziare la procedura, pesare 10 g di campione di terreno e aggiungere a 95 ml di acqua deionizzata. Agitare bene la sospensione ed etichettare come "A".
  2. Prima che il terreno si depositi, rimuovere 1 mL della sospensione con una pipetta sterile e trasferirla in un bianco d'acqua deionizzata da 9 mL. Vortice completo, ed etichetta come "B".
  3. Ripetere questa fase di diluizione tre volte, ogni volta con 1 mL della sospensione precedente e uno spazio vuoto d'acqua deionizzato da 9 mL. Etichettali in sequenza come tubi C, D ed E. Ciò si traduce in diluizioni seriali da 10-1 a 10-5 grammi di terreno per mL

2. Realizzazione di piastre diffuse per la coltura batterica

  1. Per far crescere le colonie batteriche, prendere tre piastre di agar peptone-lievito pre-preparate ed etichettarle come C, D ed E. Campioni di vortice C, D ed E e pipetta 0,1 ml su ciascun piatto. Questo aumenta ulteriormente il valore di diluizione, di un fattore dieci (C = 10-3, D = 10-4, E = 10-5).
  2. Quindi, immergere uno spandi bicchiere nell'etanolo. Mettere lo spargitore in una fiamma per alcuni secondi per accendere e bruciare l'etanolo. Questo sterilizzerà lo spargitore.
  3. Tenere lo spargitore sopra la prima piastra fino a quando la fiamma non si spegne. Aprire rapidamente la piastra, tenendo il coperchio vicino. Toccare lo spargitore all'agar lontano dall'inoculo (Inoculum = cellule utilizzate per iniziare una coltura) per raffreddare, quindi diffondere la goccia di inoculo intorno alla superficie dell'agar fino a quando le tracce di liquido libero scompaiono. Sostituire il coperchio della piastra.
  4. Riafirgire lo spargitore e ripetere il processo con la piastra successiva, lavorando rapidamente in modo da non contaminare l'agar con organismi presenti nell'aria
  5. Incubare le piastre batteriche a temperatura ambiente per 1 settimana. Assicurarsi che le piastre siano invertite durante l'incubazione per evitare che gocce di umidità dovute alla condensa cadano sulla superficie dell'agar.

3. Fare piastre di diffusione per Actinomiceti

  1. Per coltivare actinomiceti, prendere tre piastre di glicerolo-caseina pre-preparate ed etichettarle come B, C e D. Usando le tecniche mostrate in precedenza, distribuire la piastra 0,1 ml dalle sospensioni B, C e D. Le diluizioni inferiori sono utilizzate perché gli actinomiceti sono tipicamente presenti come 1/10 ° della popolazione batterica (B = 10-2, C = 10-3, D = 10-4).
  2. Incubare le piastre di actinomicete (invertite) a temperatura ambiente per 2 settimane.

4. Conteggi batterici e actinomiceti

  1. Dopo l'incubazione, esaminare attentamente tutte le piastre batteriche e notare le differenze nelle dimensioni e nella forma della colonia. Quando vengono coltivati su agar, i batteri producono colonie viscide che vanno dall'incolore all'arancione brillante, al giallo o al rosa. Al contrario, le colonie di actinomiceti sono gessose, sode, coriacee e si rompono sotto pressione, dove altre colonie batteriche si spalmano. Ciò consente alle colonie di essere distinte dal tocco con un anello sterile.
  2. Contare e registrare il numero di colonie batteriche, compresi eventuali actinomiceti. Conta solo le piastre con 30-200 colonie per piatto.

5. Isolamento delle culture pure

  1. Selezionare le singole colonie batteriche da una qualsiasi delle piastre. Più colonie possono essere selezionate se c'è particolare interesse per il suolo. Utilizzare una piastra ad alta diluizione, in quanto tende ad avere colonie pure che sono ben separate. Scegli solo colonie che sono ben separate dalle colonie vicine e sembrano morfologicamente distinte l'una dall'altra.
  2. Sterilizzare il cappio immergendolo nell'alcool e infiammandolo. Apri rapidamente la capsula di Petri di interesse e tocca il cappio in un punto nudo nell'agar per raffreddarlo. Quindi, rimuovi una piccola quantità di una colonia di interesse sul loop.
  3. Prendendo un piatto di lievito peptone fresco, fai una striscia lunga pochi centimetri su un lato. Sterilizzare e raffreddare di nuovo, quindi fare una striscia che attraversa la striscia iniziale solo al primo passaggio. Ripeti questo processo altre due volte nello stesso modo. Questa "diluizione" striata fa in modo che le cellule sul loop vengano separate l'una dall'altra. Posizionare la piastra in una zona buia per incubare a temperatura ambiente per due settimane.

Risultati

Un campione di terreno di 10 g con un contenuto di umidità del 20% su base di peso secco viene analizzato per batteri coltivabili vitali tramite tecniche di diluizione e placcatura. Le diluizioni sono state effettuate come indicato nella Tabella 1. 1 mL di soluzione E viene versato su un mezzo appropriato e si traduce in 200 colonie batteriche.

Equation 1

Ma, per 10 g di terreno umido,

Equation 2

Pertanto

Equation 3

Passo Diluizione
10 g di terreno (peso/volume) 95 mL di soluzione salina (soluzione A) 10-1
1 mL di soluzione A (volume/volume) 9 mL di soluzione salina (soluzione B) 10-2
1 mL di soluzione B (volume/volume) 9 mL di soluzione salina (soluzione C) 10-3
1 mL di soluzione C (volume/volume) 9 mL di soluzione salina (soluzione D) 10-4
1 mL di soluzione D (volume/volume) 9 mL di soluzione salina (soluzione E) 10-5

Tabella 1: Diluizione e placcatura dei campioni.

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Overview

1:25

Principles of Culturing and Enumerating Soil Bacteria

3:33

Preparation of Soil Dilutions

4:29

Making Spread Plates for Bacterial Culture

6:20

Bacterial and Actinomycetes Counts

7:09

Isolation of Pure Cultures

8:41

Applications

10:31

Summary

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