הערכת פנוטיפים מישורים-Cell-קוטביות ב Ciliopathy עכבר Mutant שבלול

Primary cilia influence various signaling pathways. The mammalian cochlea is ideal for examining planar cell polarity (PCP) signaling. Cilia dysfunction affects cochlear outgrowth, cellular patterning and hair cell orientation, readouts of PCP. Our goal is to analyze PCP signaling in mouse cochlea via phenotypic analysis, immunohistochemistry and scanning electron microscopy.

In recent years, primary cilia have emerged as key regulators in development and disease by influencing numerous signaling pathways. One of the earliest signaling pathways shown to be associated with ciliary function was the non-canonical Wnt signaling pathway, also referred to as planar cell polarity (PCP) signaling. One of the best places in which to study the effects of planar cell polarity (PCP) signaling during vertebrate development is the mammalian cochlea. PCP signaling disruption in the mouse cochlea disrupts cochlear outgrowth, cellular patterning and hair cell orientation, all of which are affected by cilia dysfunction. The goal of this protocol is to describe the analysis of PCP signaling in the developing mammalian cochlea via phenotypic analysis, immunohistochemistry and scanning electron microscopy. Defects in convergence and extension are manifested as a shortening of the cochlear duct and/or changes in cellular patterning, which can be quantified following dissection from developing mouse mutants. Changes in stereociliary bundle orientation and kinocilia length or positioning can be observed and quantitated using either immunofluorescence or scanning electron microscopy (SEM). A deeper insight into the role of ciliary proteins in cellular signaling pathways and other biological phenomena is crucial for our understanding of cellular and developmental biology, as well as for the development of targeted treatment strategies.

cilia ראשי הם נספחי microtubule מבוסס ארוכים שמרחיבים מפני שטח של רוב בתאי יונקים. cilia הראשי מבולבלים לעתים קרובות עם cilia ניע, אשר יש תמיד מרובים לכל תא, ואשר מטרתו הוא להעביר נוזל על פני משטחים הממברנה. cilia היסודי, לעומת זאת, לאמץ תפקידים חושיים ובשל כך הן גם התייחסו cilia החושית כמו. לאחר שאבד עליהם כלח, אברון זה כבר "מחדש" לאחרונה כתוצאה ההתאגדות שלה עם שפע של מחלות גנטיות האדם ^1. באופן אידיאלי מיקומו בתור אברון איתות, את cilium העיקרי הוכח לווסת מסלולים רבים איתות, שרבים מהם חשובים לא רק הומאוסטזיס רקמה ומחלות, אלא גם במהלך הפיתוח ^2.

אחד מסלולי איתות הראשונה הראו להיות הקשורות בתפקוד cilia היה מסלול איתות Wnt קאנונית, הידוע גם בשם הקוטביות בתא מישוריים (PCP) מסלול > 3. מפל איתות זה בתחילה זיהה תסיסנית, הוא קריטי עבור עובר; בפרט עבור תהליכי התכנסות ארכה את הכיוון הנכון של תאי המטוס של אפיתלים ^4. את האיתות הרציפה של גרעין המוגדר של חלבונים רגולטוריים מתרגם רמזים כיוונית אשר בסופו של הדבר להוביל rearrangements cytoskeletal ולגרום הקיטוב המתואם של תאי אפיתל במטוס ^5. תהליך ההתכנסות והסיומת הוא דרוש לחלוטין את צינור השבלול להאריך ועבור דפוסים הסלולר נכונים ^6. כמו זה מוסדר באמצעות שפעול מסלול PCP, אחד פנוטיפים הבולטים ביותר של מוטציות שבלול PCP הוא צינור שבלול יקוצר epithelia החושית מאורגנת ^7. באופן דומה, מוטנטים עכבר, אשר חסר cilia, גם תערוכה כגון פנוטיפ התכנסות ורחב ^8,9, למרות בדיוק איך זה מוסדר נותר הובהר.

אובדן מוחלט של השיער בתוצאות שבלול המתפתח צינוריות שבלול מקוצר קשות, יצרו אי ו MIS מוכווני חבילות stereociliary, וכן גופים הבסיס ממוקם mis ^8,9. Cilium תפקודית אינה מורכבת רק של axoneme ריסי. חלבונים רבים הקשורים ciliaפונקציה להתרחש מתחמים מקומיים תחומיים משנה הקשורות cilia כמו גוף בסיסי, אזור מעבר, או ריסי axoneme ^15. הגוף הבסיסי, נגזר אמא צנטריול של centrosome, היא גם המרכז מתארגן microtubule עבור microtubules הארכה הרחק cilium לתוך גוף תא יכול לווסת סחר תאי וכן סחר ריסים. אזור מעבר הריסים הוא אזור אחר שבו פונקצית ריסי מוסדר מבחינת ארגון יבוא ויצוא של תרכובות ריסי ^16.

מחקרים רבים זיהו קשר בין הריסים ו קאנונית Wnt (איתות PCP), אם כי המנגנון המדויק אינו ברור ^17. יתירות של גני ריסים ו PCP ואת הרגישות של קוטביות בתא לאי תקינות הסלולר כללית, להקשות לקשר מוטציה ישירות גירעונות ספציפיים PCP. אחד פסקי לקריאה של איתות PCP הוא המיקום של הגוף הבסיסי ו primarcilium y, ולכן ההפרדה העיקרית מן הפגמים המשניים הם מאתגר. כמה מחקרים מוטנטים דג הזברה והעכבר הציעו שום קשר בין הריסים ו Wnt איתות ^18-20. אי-התאמות בנתונים עשויות לשקף מינים, רקמות, או בדלים זמניים תלויים תרומות ריסים לקראת איתות Wnt. יתר על כן, היענות Wnt רגיל עלולים להיעזר במידת גופים הבזליים להישאר פונקציונליים. תובנה עמוקה יותר לתוך התפקיד של חלבונים ריסי במסלולי איתות הסלולר תופעות ביולוגיות אחרות חיונית להבנת ביולוגיה תאית והתפתחותית, וכן לפיתוח אסטרטגיות טיפול ממוקד.

לשימוש להרדים כל החיות בהתאם להנחיות מוסדיים הממשלתיות והתקנות, לרוב באמצעות שאיפת CO ₂ ו נקע בצוואר הרחם.

1. הכנת ריאגנטים

הערה: לפני תחילת, להכין את כל ריאגנטים באמצעות כימיקלים כיתה אנליטי. הפוך פתרונות באמצעות מולקולרית כיתה מזוקקים מים ללא יונים אלא אם צוין אחרת.

1. בופר פוספט (1x PBS): הפוך 1 ליטר של 1x PBS על ידי המסת 8g NaCl, KCl 0.2g, 1.44g Na ₂ HPO _{4 ו} 0.24g KH ₂ PO ₄ ב 1 ליטר של H _{2 O.} התאם את ה- pH ל -7.4 עם HCl. PBS לא צריך להיות סטרילי ניתן לאחסן ב RT. שים לב החיץ זה נעשה ללא CaCl ₂ או MgCl _2.
2. Paraformaldehyde (4% PFA): כן פתרון 4% PFA ב 1x PBS במנדף מאוורר. להוסיף 40g של אבקת paraformaldehyde 1 ליטר של 1x PBS. כדי לפזר, מערבבים ומחממים כ 60 מעלות צלזיוס,ולאט לאט מוסיפים NaOH טיפה חכם להעלות את רמת החומציות. לאחר האבקה נמסה, להתקין מחדש את ה- pH 7.4 עם HCl. סינון דרך מסנן 0.45 מיקרומטר ולהקפיא aliquots. להפשיר aliquot טרי עבור כל ניסוי.
3. חיץ טריטון: כן פתרון 0.1 M Tris-HCl (pH 7.5), 0.15 M NaCl, 0.1% Triton X-100 על ידי המסת 8.77 גרם NaCl ב 1 ליטר של 0.1 M Tris-HCl (pH 7.5). הוסף 1 מ"ל טריטון X-100. מערבבים לפזר. חיץ חנות טריטון ב RT.
4. בלוק טריטון: הכן 10% נסיוב עז במאגר טריטון על ידי הוספת 1 מ"ל של סרום עיזים 9 מ"ל של חיץ טריטון. חנות ב 4 מעלות צלזיוס. אם באמצעות נוגדנים ראשוניים וגדלו עכבר, להוסיף עז נגד העכבר IgG Fab שברי בדילול של 1 ל -200 לבלוק טריטון עבור שלב החסימה.
   הערה: במידה ואתם מתכננים להשתמש דגימות עבור במיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM), להכין חומרים כימיים נוספים, כמפורט להלן.
5. תמיסת מלח מאוזן "הנקס (HBSS) עם סידן ומגנזיום: בצע פתרון 1x של HBSS על ידי דילול מפתרון המניותב H _{2 O.} מזוקקים סטריליים כפי חיץ HBSS מסובך לעשות ויש סיכונים כרוכים בכך, רצוי להזמין פתרון premade 10x מניות. הריכוז הסופי של HBBS חיץ בשימוש שגרתי הוא: 1.26 מ"מ CaCl _2, 0.49 מ"מ MgCl ₂ -6H2O, 0.41 מ"מ MgSO ₄ -7H2O, 5.33 מ"מ KCl, 0.44 מ"מ KH _{2 4} PO, 4.17 מ"מ NaHCO _3, 137.93 מ"מ NaCl , 0.34 מ"מ Na _{2 4} HPO, 5.56 מ"מ דקסטרוז.
6. חיץ Hepes: הכן פתרון 0.1 M Hepes ב 1x HBSS, על ידי המסת HEPES 23.8 גרם 1 חיץ L 1x HBSS.
7. מקבע מיקרוסקופיית אלקטרונים (תקן SEM): הכן מקבע עבור SEM ידי דילול glutaraldehyde כיתה במיקרוסקופ אלקטרונים (2.5%) ו paraformaldehyde (4%) במאגר Hepes. להוסיף CaCl ₂ לריכוז סופי של 10 מ"מ.
8. Tetroxide 1% אוסמיום (OSO ₄₎ במאגר Hepes; tetroxide 1% אוסמיום במים: מדולל פתרון המניות של tetroxide אוסמיום במאגר Hepes, ו separately ב סטרילית מזוקק H _{2 O,} לריכוז סופי של 1%. tetroxide אוסמיום הוא רעיל מאוד והוא נמכר לרוב כפתרון 4%.
9. 1% (w / v) חומצה טאנית: ממיסים 0.5 גרם חומצה טאני ב 50 מ"ל מזוקקים סטריליים H _{2 O.} סנן לעקר ידי סינון דרך מסנן גודל נקבובי 0.45.
10. סדרת פתרון אתנול מדורגים: לדלל 200 אתנול הוכחה עם H מזוקקים סטריליים _{2 O} לעשות 30, 50, 70, 90 ו פתרונות אתנול 95%. עבור שטיפות אתנול הסופיות, 100% הוכחת אתנול 200 נדרשה. השתמש בקבוק טרי פתח של 200 אתנול הוכחה עבור השטיפות הסופיות.

בחירת 2. של רקמות

1. באופן אידיאלי, לבחון עוברים או גורים צעירים בגילאי עובריים יום 16.5 (E16.5) ואת יום לאחר הלידה 3 (P3).
   הערה: התאבנות של המבוך הגרמי ועצמות זמני עושה דיסקציה יותר ויותר מאתגר כמו עכברים בוגרים. כמו כן kinocilia, את cilium נכון microtubule מבוסס היחיד שנמצא על תאי שיער שבלול,חזר בו במהלך הפיתוח הוא כבר לא קיים בעכברים בוגרים.
2. לאחר קיבוע, decalcify cochleae המבוגר. מקום גזור (ראו סעיף 3) מבוכים גרמיים, לתוך 2 מיליליטר EDTA (4.13% ב PBS), pH 7.3, בצינור microcentrifuge עבור 3 - 4 ימים עם רוטציה. לחדש EDTA יומי. לאחר רקמות התרככו, לשטוף 1.5 מ"ל או פעמים PBS 3 יותר במשך 5 דקות על nutator עם תסיסה מוגברת.

3. שבלול Dissection

1. Euthanization הודעה דרך נקע בצוואר הרחם או שאיפת _{CO 2 (100%} CO _2), להסיר את הראש. השתמש בלהב סכין מנתחים או מספריים קטנים, תלוי בגודל של חיה, כדי לנתח את הראש לאורך אמצע קו sagittal החל האף והארכת caudally. הסר את המוח מכל מחצית הגולגולת עם זוג מלקחיים. זהה את העצמות הזמניות, אשר מכיל את המבוכים גרמיים בפיתוח של אוזן פנימית (ראה חץ באיור 1 א).
2. השתמש זוג עבורפטריות לבנות לבודד את המבוכים הגרמיים בזהירות מהגולגולת (עצמות הזמניות). האם זה תחת מיקרוסקופ לנתח. Prise את הרקמה הגרמית מהגולגולת על ידי הפעלת המלקחיים בעדינות מתחת במבוכים הגרמיים. אצל בעלי החיים עד P4 במבוכים הגרמיים עדיין סחוסים וניתן להסירו בקלות בלי לשבור.
3. בעקבות לנתיחה, להשתמש קצה המלקחיים לנתח כדי לנקות את סגלגלים חלונות עגולים ולעשות חור קטן הקודקוד של ספירלת השבלול. תקן את המבוכים הגרמיים לפני לנתיחה נוספת של צינור השבלול. כדי לאפשר הסרה קלה של קרום tectorial (ראה 3.7), לתקן את המבוכים הגרמיים ב 1.5 מיליליטר PFA 4% במשך 5 דקות על קרח.
   הערה: אם הסרת קרום tectorial אינה נדרשת, קיבעון עוד מומלץ (ראה 4.1 - 4.3). קיבוע קצר של העצמות זמניות לפני לנתיחה של צינור השבלול מסייע בתהליך לנתיחה והסרה של קרום tectorial. לנתיחה לאחר החשיפה של האיבר של קורטי, furtהקיבעון שלה נדרש.
4. לנתח עוד במבוכים הגרמיים לחשוף את האפיתל חושי שבלול כדלקמן. מניח את המבוכים הגרמיים בצלחת לנתח סיליקון שחור מצופה אלסטומריים המכילה PBS כדי להקל לנתיחה. השתמש סיכות minutien כדי לשתק את הרקמות במידת הצורך. כדי להשתמש סיכות minutien, למקם אותם דרך חלק שיווי המשקל של המבוכים הגרמיים עם היבט הגחון של ספירלת השבלול כלפי מעלה.
   הערה: צלחת אלסטומריים סיליקון שחור: מערבבים רכיב בסיס סיליקון אלסטומריים עם אבקת פחם כדי לקבל צבע שחור אטום. מוסיפים את הסוכן ריפוי ויוצקים לתוך צלחות פטרי אחד או יותר (זכוכית או פלסטיק). ניקוי תחת ואקום כדי להסיר בועות אוויר שנלכדו. מנות יבשות לחלוטין לפני שימוש.
5. שימוש במלקחיים בסדר (# 5) להסיר את הסחוס החיצוני חשיפת צינור השבלול. התחל החלון הסגלגל; להכניס את הקצה התחתון של המלקחיים לתוך החלון הסגלגל בעדינות לפרוץ את הסחוס, נעו באיטיות כלפי מעלה לכיווןשִׂיא.
6. לאחר חשיפה של צינור שבלול, הזז את משטח הגחון, הממברנה של רייסנר. השתמש זוג נאה של מלקחיים לצבוט את הממברנה של רייסנר בבסיס צינור שבלול לקלף אותו בתנועה כלפי מעלה. דמיין בהיבט הגבי של צינור השבלול, כולל האפיתל החושי.
7. הסר את קרום tectorial כמתואר להלן (לא חובה). עבור SEM או אימונוהיסטוכימיה של kinocilium או צרורות stereociliary להסיר את הקרום tectorial.
8. השתמש זוג יפה מאוד של מלקחיים (# 55 או עדינה) לצבוט את קרום tectorial בבסיס של שבלול לקלף כלפי מעלה לכיוון הקודקוד.
   הערה: קרום tectorial ברור אופטי אשר מקשה לזהות. לעתים קרובות יותר מאשר לא הממברנה יורד בחתיכה אחת ולמרות שזה לא דמיינו בקלות, אפשר לחוש התנגדות כפי שהוא הוריד מן האיבר החשוף של קורטי.
9. לאחר חשיפת האיבר של קורטי, עוד לתקן את הרקמה כפי דescribed להלן. שמור באזור שיווי המשקל כדי לסייע להכנות נוספות של רקמות.

קיבוע 4.

1. אימונוהיסטוכימיה רגיל לתקן את מבוכים גרמי גזור 1.5 מ"ל PFA 4% ב 4 ° C על nutator עבור שעה 2.
   הערה: בגלל הרגישות שונה נוגדנים לאנטיגנים, וריאציות באורך והרכב הקיבעון שיידרש צריך להיות מותאם עבור כל נוגדן.
2. לאחר קיבוע, לשטוף את הדגימות על ידי שטיפה ב 1.5 מ"ל או פעמים PBS 3 יותר במשך 5 דקות על nutator עם תסיסה מוגברת. דוגמאות ניתן לאחסן PBS ב 4 מעלות צלזיוס במשך כמה שבועות לפני העיבוד.
3. אם הכין דגימות עבור SEM, לתקן גזור עצמות זמניים לתקן SEM (ראה 1.7) עבור שעה 2 ב RT. שטפו ידי שטיפה ב 1.5 מ"ל או יותר פעמים Hepes חיץ 3 דקות 5 על nutator עם תסיסה מוגברת. חנות במאגר Hepes ב 4 ° C עד לעיבוד נוסף. אחסון עבור יותר מכמה שבועהים אינו מומלץ.

5. אימונוהיסטוכימיה

1. בצע אימונוהיסטוכימיה על דגימות גזורות אחד טוב של צלחת גם 96 תחתית שטוחה. לחלופין, להשתמש בצינור PCR או microcentrifuge. רצוי לשמור על חלק שיווי המשקל של המבוך הגרמי כדי להקל על עיבוד.
2. Permeabilize הרקמה על ידי דוגרים ב 1.5 מ"ל חיץ טריטון עבור שעה 1 ב RT על nutator עם תסיסה עדינה.
3. חסום את הרקמה על ידי דוגרים ב 0.5 מ"ל טריטון לחסום למשך תקופה מינימלית של שעה 1 ב RT. אם באמצעות נוגדנים ראשוניים וגדלו עכבר, להוסיף שברים אנטי עכבר IgG Fab לבלוק בדילול של 1 ל -200 (ראו סעיף 1.4). זה מקטין באופן משמעותי שאינו ספציפי מחייב של IgG אנטי עכבר לרקמות עכבר.
4. דגירת רקמה עם נוגדנים עיקריים מדוללים בבלוק טריטון / N ב 4 ° C עם תסיסה עדינה. דילול נוגדן תלוי נוגדנים בשימוש (ראה סעיף 6.1). לחלופין דגירה antibodie העיקריים עבור שעה 2 ב RT. אידיאלי לשימוש נפח מינימלי של 0.5 דילול נוגדן ראשוני מ"ל. אם הנוגדן מוגבל, השתמש הנפח הקטן של דילול נוגדן לחלוטין עוטף את הרקמה.
5. שטפו את הרקמה על ידי שטיפה ב 1.5 מ"ל או יותר חיץ טריטון, מינימום של 3 פעמים במשך 15 דקות, על nutator עם תסיסה מוגברת.
6. דגירה הרקמה עם נוגדנים צבען מצומדות פלורסנט מדולל ב יצרני מומלץ ריכוז (בדרך כלל 1: 200-1: 1,000) בבלוק טריטון עבור שעה 1 ב RT על nutator. השתמש נפח מינימלי של דילול נוגדנים משני מ"ל 0.5.
   1. צנטריפוגה נוגדנים משני מדולל ב 13,000 XG במשך 3 דקות לפני השימוש כדי למזער מחייב הלא ספציפית של אגרגטים נוגדנים משני. להגן על הרקמות מפני אור משלב זה ואילך, כדי למנוע photobleaching צבעי הניאון.
7. כמו בשלב 5.5, לשטוף את הרקמה על ידי שטיפה ב 1.5 מ"ל או יותר חיץ טריטון, מינימום של 3 פעמים במשך 15 דקות, עלnutator עם תסיסה מוגברת. חנות דגימות PBS ב 4 ° C עד מוכן לעלות.

6. בחירת נוגדן

הערה: מקור נוגדנים מומלצים הדילולים שלהם מפורטות בטבלה של חומרים וציוד ספציפיים. בצע incubations נוגדן כמתואר בסעיף 5.

1. כדי להמחיש את kinocilium מבוססי microtubule, להשתמש ריסי axoneme סמן כגון Arl13b אנטי (1: 1,000) או-acetylated-α-טובולין אנטי (1: 800). דמיין את הגוף הבסיסי באמצעות נוגדן נגד γ טובולין (1: 200) או כל סמן centrosomal אחר.
2. כדי להמחיש את חבילות stereociliary נימה עשירה יקטין, להוסיף phalloidin (1: 300 - 1,000) מצומדות לאחד כמה fluorophores השונה דגירת הנוגדנים משני. Phalloidin גם תוויות מבנים אקטין פילמנטיות אחרים לרבות סיבי אקטין קליפת המוח שמסביב בפריפריה של כל תא שיער אפיתל. זה מסייע בקביעתאת קווי המתאר של כל תא שיער. השתמש סמן קרום חלופיים כגון אנטי-Zo-1 (1: 500) במידת הצורך.
3. תווית תאי שיער שבלול באמצעות נוגדנים נגד שרירן VI (1: 1,000) או שרירן VIIa (1: 1,000). אלה יכולים לשמש אם הערכת אורך שבלול.

הערה: צבען מצומדות פלורסנט מתאים השתמש נוגדנים משני המותאמים לדרישות מיקרוסקופ.

שמה והדמיה 7.

1. מניחים את המדגם בצלחת אלסטומריים סיליקון שחור המכיל PBS. בעזרת מלקחיים בסדר, להסיר את האזור שיווי המשקל מן מפותל בצורת שבלול.
2. בזהירות רבה להסיר את סחוס mesenchyme הבסיסי מן מפותל בצורת השבלול. ספירלת שבלול הנותרים מכילה מענית הפנימית, איבר של קורטי ו מענית חיצונית.
3. מעבירים את הספירלה שבלול לתוך ירידה של PBS להציב בשקופית מיקרוסקופ. אם תרצה, להפריד הספירלה שבלול לחתיכות שווה סיבוב אחד. שלב זה אינו הכרחי עם זאת, ויכול להוביל loss של רקמה. למשטח הפסגה (צד stereocilia) של תאי שיער שבלול צריך להיות פונה כלפי מעלה לכיוון coverslip.
4. וויק משם את PBS עם רקמות בעלי כושר ספיגה או פיסת נייר סינון ובעדינות למקם הספירלה שבלול אם האפיטל השתנה ו חופף על עצמה.
5. הוסף ירידה של התקשורת הרכבה ישירות על מדגם שבלול ומניחים בעדינות coverslip על גבי, מקפיד להימנע בועות אוויר. אין מפרידי נדרשים; המקום coverslip ישירות על המדגם. מסיסים במים, שאינם fluorescing, הרכבה בינונית חצי קבוע אשר אינו מחייב צעדים נוספים כדי להחזיק את coverslip במקום מומלץ. תקשורת coverslip שמת עובי צריך להיות מתאים מיקרוסקופ מפרטים.
6. שימוש במיקרוסקופ confocal epifluorescent או ליזר הסריקה מאובזר עם הגדלה גבוהה (63 - 100X), צמצם מספרי גבוה (1.2 - 1.4) מטרות כדי ללכוד תמונות של למשטח הפסגה של תא שיער השבלול. השתמש loמטרות wer (5 - 20X) לקחת חופפי תמונות של ספירלת השבלול לכמת את האורך של צינור השבלול. לייזרי עירור התאמה ומסנני פליטה כדי fluorophores המשמש נוגדנים משני.

8. במיקרוסקופ אלקטרונים סורק

1. המשך ממקטע 4.3. לאחר שטיפת דגימות קבועות SEM במאגר Hepes, בצע את הפעולות הבאות תחת אוורור. הפרוטוקול הבא עובד היטב עבור רקמות שבלול ואינו עושה שימוש של ציפוי גמגום עם מוליך מתכת.
2. פוסט לתקן ב 1% OSO ₄ במאגר Hepes עבור שעה 1, ואחריו 3 שוטף עם 1 מ"ל מים מזוקקים במשך 5 דקות כל אחד. הנפח הקטן של OSO ₄ לחלוטין עוטף את הרקמה צריכה לשמש כדי למזער פסולת רעילה. אין תסיסה נדרשה.
3. דגירה דגימות ב RT כל אחד מהפתרונות הבאים עבור שעה 1 עם 3 שוטף עם מים מזוקקים 1 מ"ל במשך 5 דקות כל אחד בין שלבים: חומצה טאנית 1% טריים במים filאפריקניות לפני שימוש; 1% OSO ₄ במים, 1% חומצה טאנית במים, 1% OSO ₄ במים.
4. מייבשי דגימות באמצעות סדרת אתנול מדורג על ידי דגירה במשך 10 דקות בכל אחד הדילולים הבאים: 30, 50, 70, 90, ו -95%. אין תסיסה נדרשה.
5. העברת דגימות באמצעות שלושה שינויים, 5 דקות כל אחד, של 100% אתנול (מבקבוק שנפתח לאחרונה של 200 אתנול הוכחה).
6. הפעל את הדגימות למרות יבשי נקודה קריטיות הבאות הוראות יצרן.
7. הר דגימות באמצעות דבק פחמן מוליך על גבי תלוש SEM לפני הדמיה על מיקרוסקופ אלקטרונים. תחת סטראו, להשתמש זוג מלקחיים בסדר ומכחול כדי למקם את המדגם בעדינות עם האפיטל שבלול פונה כלפי מעלה. השתמש חלק שיווי המשקל של הדוגמית 'עוגן' הרקמה אל הבדל. חנות דגימות ייבוש עד הדמיה. בצע הדמיה SEM כמתואר ג'ונס (2012) ^21.

9.קְבִיעַת כָּמוּת

1. לאחר הכנה אימונוהיסטוכימיה, לרכוש תמונות באמצעות מיקרוסקופ confocal epifluorescent או לייזר סריקה. לאחר הכנת SEM, השתמשו במיקרוסקופ אלקטרונים סורקים כדי שזה יקלוט את הדגימות. תמונה למשטח הפסגה של האיבר של קורטי עם תאי שיער שבלול חשוף ותאי תמיכה intercalated.
2. גדר בתפקידים השונים לאורך צינור השבלול, כגון 25, 50, ו -75% מהבסיס ולהשתמש אלה כדי להשוות אזורי שבלול בין דגימות מוטציה ושליטה. לנתח ולהשוות מוטציות cilia עם הפקדים להמלטה שלהם, כמו בדלי רקע גנטי יכולים לשנות את הפנוטיפ השבלול.
   הערה: האיבר של קורטי מתפתח שיפוע המשתרע מאמצע הבסיס הוא כלפי הקודקוד ואת הבסיס. בשנת עכבר, פיתוח אינו שלם עד P14, ולכן חשוב להשוות אזורים בשלבים ועמדות התפתחותי דומים.
3. תמונות קח באמצעות בתוכנה הנלווית המיקרוסקופ כי Allow כימות של פנוטיפ מסוים כנדרש (ראה להלן). השתמש בתוכנת ניתוח תמונה כגון J תמונה או בתוכנה נלווית המיקרוסקופ למדידת אורכים, לספור תאים ולקבוע לוקליזציה חלבון כמתואר להלן. גרף נתונים אלה כתרשים בר, עלילת פיזור, כתם תיבה או היסטוגרמה, השוואת שליטה מול מוטציה.
4. אורך כולל של צינור השבלול (איור 3 א):
   1. באמצעות סמן שיער תא או phalloidin, (אשר מסמן את חבילות stereociliary), לקבוע ולמדוד איפה האפיתל חושית מתחיל ונגמר. אורכו של צינור שבלול מתקצר לעתים קרובות מוטנטים cilia.
5. ליקויים צרורים Stereociliary (איור 3 ב, ד, ה, ז):
   1. מדוד קמירות צרורה (גובה) כמו המרחק קצר בין הקודקוד של הצרור והקו משתרע דרך בשני קצוות של 'נשק' הצרורה כמוצג 3G האיור, עזב. לחלופין, לכמת את האזורמוקפת בזרועות הצרורה stereociliary תא שיער חיצוני כפי שמוצג 3G האיור, נכון. אם תאי שיער עם צרורות stereociliary עגולות ניתן לזהות ולמנות אותן כאחוז בתאים השיער הכולל.
      הערה: ריסי מוטציות רבות ליקויים צרורים ניתן לצפות ללא קשר האורינטציה צרורה. קשה לכמת מומים צרורים stereociliary במדויק.
6. כיווניות של חבילות stereociliary (איור 3B, C, G):
   1. להעריך את הכיוון של כל יחסי צרור פרט קו הארכת בניצב בשורה של תאי עמוד שמפרידה בין תאי שיער הפנימיים והחיצוניים. תאים עם אורינטציה נורמלית מיושרים לאורך ציר בניצב זה ולכן יש רוטציה של 0 °. לקבוע זוויות סיבוב או באמצעות סימון 360 ° או סטיות מוחלטות החל מיום 0 °.
7. מיצוב Kinocilia או מיצוב צרור stereociliary (איור3B, F, H):
   1. הרוזן באחוז התאים בהם kinocilia חסרים. מדדו את המרחק בין kinocilium אל 'קודקוד' או מרכז של צרור. ה 'הקודקוד' של צרור לא יהיה קל להגדיר אם צרורות הם לא נורמלים, וכן הלאה במרכז הצרור יכול לשמש במקום.
8. לכמת את עמדת kinocilia וצרורות stereociliary על פני התא שיער הפסגה, על ידי יצירת שכבת רשת מיקומית על כל תא שיער וסימון המיקום של כל אחד בבסיס kinocilium או במרכז הקודקוד / של צרור stereociliary. הצגת נתונים כאחוז בכל קטגוריה שנמצאת בתוך אזור מסוים של הרשת, ועל ידי שכיסה את מיקומם של כל סימון על גבי רשת מיקומית אחד.
   הערה: ברקמות שליטה, kinocilia תמיד מחוברים הקודקוד של צרור stereociliary. מוטנטים cilia, kinocilia לעתים קרובות חסר, mislocalized עדיין מחובר עדיין, או אפילו מנותק לחלוטין מן sצרור tereociliary.
9. אורך Kinocilia (איור 3I):
   1. מדוד את האורך של kinocilium ידי תיוג בטוש axoneme ריסי. רק למדוד kinocilia כי שטוח בתוך מטוס confocal 1.5 מיקרומטר. ודא cilia משקר שטוח ידי התבוננות נוף חתך של רקמות סרק. השוואת דגימות מתאימות בגיל מאותו אזור של שבלול מאז kinocilium חזר בו במהלך הפיתוח.
10. Mislocalization של חלבונים קוטביים:
    1. בעקבות אימונוהיסטוכימיה באמצעות נוגדנים כנגד חלבונים קוטביים כגון Vangl2 ו Gαi3, לקבוע את הלוקליזציה באמצעות הדמיה.

הערה: בחלק מוטציות cilia, לוקליזציה של חלבונים קוטביים מופרת. אלה כוללים Vangl2 ו Gαi3, אשר הוכחו משתבש Ift20, Bbs8 ו Bbs6 מוטציה שבלול.

הערה: דוגמאות נוספות עבור איך לכמת polarit תא תצוגת שיערy ניתן למצוא בעיתונים הבאים. קרטין, et al. (2003) ²² העת Current Biology, Montcouquiol, et al. (2003) טבע ^7, וואנג, et al (2006) The Journal of Neuroscience ^23, Montcouquiol, et al. (2008) שיטות בביולוגיה מולקולרית ^24, מאי-Simera, et al. (2012) שיטות בביולוגיה מולקולרית ^25, Yin ואח '(2012) PLoS ONE ^26.

שבלול Dissection והכן רקמות

לאחר הסרת המוח, דיסקציה sagittal באמצע הקו לתפקיד ראש עכבר P0, המבוך הגרמי, במבט מאחור, ניתן דמיינו (איור 1A, חץ לבן) והוסר. איור 1B מציגה את המבוכים גרמיים המבודדים עם שיער השבלול כלפי מעלה, גחון, (מהשמאל) מאחור, הגבה (מימין). נקודות חץ הלבנות אל החלון הסגלגל שממנו אפשר להתחיל הסרת הסחוס החיצוני. לאחר הסחוס החיצוני הוסר לחלוטין, את צינור השבלול החשוף, עדיין שלם, ניתן לצפות (איור 1 ג). מיצוב של סיכה דרך אזור שיווי המשקל כדי לסייע לנתיחה מוצגת. שתי סיכות, הניח בזוויות שונות יכול לשמש גם כדי לעגן את הרקמה. 1D איור מראה את צינור שבלול לאחר הסרת רייסנר 'הממברנה של הממברנה tectorial (משמאל) הספירלה אפיתל השבלול המבודדת פעם אחת זה כבר מבודדת באזור שיווי המשקל לקראת הרכבת אימונוהיסטוכימיה (מימין);. כדי לתת מושג כללי על מה את שיער השבלול החשוף נראה כמו, הכנת שלמי SEM מוצגת באיור 1E.

מורפולוגיה Immunofluorescence בבקרת שבלול

לאחר הכנה של רקמת השבלול, המשטח הגבי של צינור השבלול המכיל את האיבר של קורטי חשוף ויכול נצפה באמצעות SEM או מכתים immunofluorescent. נצפה כהכנה כל הר, ארבעת שורות של תאי שיער mechanosensory (שורה אחת של תאי שיער פנימיים ושלוש שורות של תאי שיער חיצוניים) ניתן להבחין. איור 2 א מראה נוף בהגדלה נמוכה של בתורו הבסיסי מתוך שבלול עכבר עוברי f, הכיןאו SEM. הערת האורינטציה והיישור האחידה של חבילות stereociliary מבוססות תקטנה. בנוסף המורפולוגיה של חבילות stereociliary עולה בקנה אחד, בכל אחת מהחבילות יש מקלאסיקות ")" (על תאי שיער פנימיים) או "W" (על תאי שיער חיצוניים) צורה. עם הגדלה קרובה בגיל הזה microvilli נוסף ניתן לראות לא רק על פני שטח הפסגה של התאים שיער, אלא גם-בין תאי השיער על ותאי התומכים (איור 2 ב). אלה יהיה לסגת ומשאיר רק שלוש שורות של חבילות stereociliary על תאי השיער החיצוניים ושני על תאי השיער הפנימיים אצל מבוגרים. כפי שניתן לראות בתרשים 2C (חץ לבן) חברת kinocilium microtubule מבוסס יחיד (א cilium עיקרי אמיתי) ממוקמת בסמוך לשורת stereocilia הגבוהה על הקודקוד של כל צרור stereociliary. אלה מחוברים הצרור דרך קישורי kinocilia.

תיוג פלורסנט עם phalloidin, אשר מעבדהאלס יקטין, מדגיש את הכיוון וצורה האחידות של החבילות ברקמת ביקורת (איור 2 ד). תקטין קורטיקלי מסומן גם, וזה שימושי כדי לקבוע את היקף הפסגה של כל תא שיער בודד. Co-תיוג עם phalloidin ו נוגדן כנגד 7 א שרירן (איור 2E), סמן תא השיער, גם עוזר להבדיל בין תאי השיער ותאי תמיכה. 7 א שרירן הוא גם סמן שימושי למדידת הארכת צינור שבלול (ראה איור 3 א). נוגדן נגד acetylated-α-טובולין משמש בדרך כלל כדי לזהות את kinocilium microtubule מבוססי (איור 2F). ככל שהתאים תמיכה גם הנמל cilia העיקרי, חשוב להבחין בין השערות האלה שמקורם בתאי השיער לעומת intercalating תאי תמיכה. סמנו קרום נוסף כגון נוגדנים נגד ZO-1 (Zona Occludens 1), אשר בבירור מתאר דפוסי הפסיפס של קרום apical של צינור השבלול, ולכן מועיל ( איור 2F). מתוך תמורה נוספת היא כי נוגדנים נגד acetylated-α-טובולין גם תווית microtubules פנימי ולכן יש להיזהר כאשר הדמיה להתמקד למשטח הפסגה תא השיער. Microtubules בתאי העמוד במיוחד צפוף (איור 2G, כוכבית לבנה). שילוב של phalloidin וסימון אנטי acetylated-α-טובולין משמש לעתים קרובות לזהות חבילות stereociliary בו זמנית kinocilia השכנות (2G איור, חץ לבן).

הפנוטיפ שבלול ב צילה מוטאנטים

התארכות של צינור השבלול היא אחד פסקים לקרוא הטוב ביותר של פגמי התכנסות ורחבים, ותעלות שבלול קצרו הם נצפו בדרך כלל מוטציות PCP קלסיות. שבלול מוטנטים ריסי לעתים קרובות שהתקצר צינוריות שבלול ולהראות רחבה ניכרת של epithe החושיתליה על השיא, כפי שניתן היה לראות Ift20 ^{cko / cko} עכברים (איור 3 א). עוד פגם PCP הקלאסית היא הפרעה לאוריינטציה אחידה של תאים שיער שבלול, כפי שניתן לראות ב Bbs8 ^{- / -} עכברים שניהם עם אימונוהיסטוכימיה (איור 3B, ימינה) ועם SEM (איור 3 ג). בנוסף חבילות מוכווני mis, שטוח חבילות מעוות גם הם נצפו בדרך כלל (איור 3B, באמצע החץ; איור 3D). פעמים רבות חוזר צרורות, כפי שניתן היה לראות באיור 3E, נוכחים, במיוחד בתאי השיער לחלוטין נטול kinocilia. Mis-לוקליזציה של kinocilium מקובלת גם.

Kinocilium-מקומי mis יכול או לא יכול להיות קשור אליה צרור stereociliary (איור 3B, חץ שמאלה; איור 3F). דוגמאות כיצד לכמת buהתמצאות kinocilia ndle או מיצוב צרור מוצגים באיור 3G ו 3H. האורינטציה של כל צרור בודד אז יכולה להיות מוערכת על ידי קביעת הסיבוב של של יחסי צרור קו הארכת בניצב בשורה של תאי עמוד שמפרידה בין תאי שיער הפנימיים והחיצוניים. תאים עם אורינטציה נורמלית מיושרים לאורך ציר בניצב זה ולכן יש רוטציה של 0 ° (איור 3G). עמדת kinocilium, או במרכז צרור stereociliary, ניתן להתוות ידי שכיסה רשת מיקומית על פני השטח lumenal של תאי השיער ולאחר מכן לקבוע את מיקומו של kinocilia או צרור בתוך הרשת (איור 3I). מוטציות בגנים cilia לעתים קרובות להשפיע אורך הריסים, ולכן אורך kinocilium ניתן להעריך. בשנת Cep290 מוטציות ^{rd16 / rd16,} kinocilia ארוכים מאשר בקבוצת הביקורת (איור 3J). כמו חזר בו cilium,זה קריטי יש זוג המלטה גילאים וכדי לקחת מידות מאותו אזור של שבלול. כדי לקבל תמונות טובות לניתוח וכימות, היא אימונוהיסטוכימיה ו SEM, הוא קריטי כדי להסיר את קרום tectorial. איור 3F מראה מיקרוסקופ SEM שבו הקרום tectorial לא הוסר לחלוטין.

באיור 1. Dissection של שבלול העכבר המתפתח (P0). (א) אמצע קו לנתיחה sagittal של ראש P0 עכבר עם מוח מוסר. נקודות חץ הלבנות לעמדת המבוך הגרמי. (ב) גחון (משמאל) הגבה (מימין) נופים של מבוכים גרמיים גזור. שבלול ממוקם לכיוון החלק העליון עם חלק שיווי המשקל בנקודות החץ הלבן התחתון אל החלון הסגלגל. (ג) ומאחור המבוך הגרמיהסרת אה של הסחוס החיצוני של שבלול. סיכה הושמה באמצעות מערכת שיווי משקל. (ד) שמאל, אותה השקפה כמו C לאחר הסרת קרום קרום tectorial של רייסנר. נכון, צינור שבלול מבודד מוכן גובר. (ה) מיקרוסקופ אלקטרונים סורק של ספירלת שבלול ללא פגע, חשופי חשיפת רצפת צינור השבלול, כולל האפיתל החושי. בר סולם הוא 100 מיקרומטר. . (א - ד) מותאם ממאי-Simera ואח ', ²⁰¹² 25 אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2. מורפולוגיה Immunofluorescence בבקרת השבלול (A - C). סריקת micrographs אלקטרונים של הטור הבזלייםn ב עוברי (E18.5) cochleae הסוג בר. שורה אחת של תאי שיער פנימיים (למטה) ושלוש שורות של תאי שיער חיצוניים (למעלה) מופרדת intercalated ידי תאי תמיכה. שברון בצורת חבילות stereociliary לכוון באופן אחיד כלפי לקצה הלטרלי של כל תא שיער (בקצה העליון של התמונה). בשעת E18.5 microvilli הנוסף לכיסוי משטחי הפסגה של תאי שיער, מתחת צרורות stereociliary, ותאי תמיכת intercalated (B). (ג) kinocilium microtubule מבוסס יחיד (חץ לבן), ממוקם בקצה הקודקוד של הצרור, המוצג כאן מהקצה לרוחב. (D - G) מכתים Immunofluorescent של יום הלידה פוסט בתורו הבזליים 1 (P1) cochleae סוג בר. Phalloidin תוויות יקטינו פילמנטיות ב stereocilia יקטין קליפת המוח בשולי התא (D, E, G). שרירן 7 א הוא סמן בתאי שיער פנימיים וחיצוניים (E). Zo_1 תוויות צומת החזקים-בין תאים, מה שהופך אותו סמן מצוין להבחין תא boundaריס (F). Acetylated טובולין α משמש כסמן עבור kinocilium על קודקוד של צרור (F, G חץ לבן). Microtubules פנימי מסומנים גם על ידי טובולין-α acetylated, אשר בפרט בשפע בתאי העמוד (אסטריקס לבן G). סולם bars ת: 10 מיקרומטר, B: 5 מיקרומטר, C: 1 מיקרומטר, DG:. 5 מיקרומטר אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 3. שבלול הפנוטיפ ב צילה מוטאנטים. (א) קיצור מסומן של Ift20 ^{cko / cko} צינוריות שבלול לעומת קבוצת ביקורת. צינוריות שבלול גזורות ב E18.5 מוכתמות טובולין acetylated. (B ) הר שלם של בתורו שבלול הבסיס ב Bbs8 ^{- / -} מוטציה (P0). Phalloidin שכותרתו אקטין פילמנטיות, stereocilia (אדום), טובולין acetylated, kinocilia (ירוק). חבילות Stereociliary ב Bbs8 ^{- / -} cochleae הם מסובבים variably (חץ ימינה), שטוח / או mislocalized (חץ באמצע). Kinocilia הוא mislocalized או axonemes חסר (חץ שמאלה). (C - F) גבוהה ההגדלה SEM של צרורות kinocilia stereociliary ב Bbs8 ^{- / -} OHCs. ב C, לסובב צרורות, ברה, בברוטליות צרורה, במי, חבילות מעגליות בפה mislocalized kinocilia. (G - I) ייצוגים סכמטי של כימות נורמליות צרורות. (G) שמאל, צרור קמירות (גובה); המרחק קצר בין הקודקוד של הצרור והקו משתרע דרך שני קצוות של הצרור 'הנשק'. כמו דepicted ידי הקו השחור המוצק. באזור, ממש מתחת צרור; האזור. (H) ייצוגים סכמטי של הקריטריונים המשמשים לכמת את הכיוון של חבילות stereociliary. זווית סיבוב של הצרור מחושבת ביחס קו הארכת בניצב בשורה של תאי עמוד. (I) ייצוג סכמטי של הקריטריונים לניתוח מיקומית של kinocilia וצרורות stereociliary. רשת מפולחת מונחת על ההיקף של תא שיער ואת המיקום ציין. (י) תמונת-הגדלה גבוהה של חבילות stereocilia שכותרתו phalloidin (אדום) ו acetylated kinocilia שכותרתו טובולין (ירוק) של תאי השיער החיצוניים ב שבלול P0. בחלונית מונוכרומטי הסמוך, קווים אדומים לזהות את kinocilia, שהן כבר מוטנטים ^{rd16 /} Cep29 ^rd16 לעומת קבוצת ביקורת (חצים לבנים). (K) SEM מיקרוסקופ של השבלול עוברי עם הסרה חלקית של קרום tectorial. סוּלָםbars ת: 100 מיקרומטר, B: 5 מיקרומטר, C - F: 2.5 מיקרומטר, אני: 5 מיקרומטר, J: 50 מיקרומטר. (A - F)... שונה ממאי-Simera ואח 2015 ^8, J הדפס באישור רחל ואח ', ²⁰¹² 27 אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

בעת הכנת רקמת שבלול לניתוח, יש כמה נקודות מפתח כדי לזכור. ראשית, בדלי רקע גנטי יכולים לשנות את הפנוטיפ השבלול, מה שהופך אותו הצורך לנתח ולהשוות שולט להמלטה בלבד. שנית, הסרה מלאה של קרום tectorial נדרש לקבל את התמונות הטובות ביותר עם אימונוהיסטוכימיה והוא חיוני SEM. קרום tectorial הוא מבנה אטום יכול לטשטש את תאי האפיתל חושית ישירות מתחתיו, מה שהופך הדמיה יותר מאתגר. לפעמים במהלך עיבוד, קרום tectorial עלול להתכווץ בחזרה, לחשוף את תאי השיער. גם במקרים אלה הסרה מומלצת בחום. שלב זה דורש סבלנות ותרגול. שלישית, אימונוהיסטוכימיה באמצעות נוגדנים כנגד חלבונים ריסי, במיוחד אלה למקם את הגוף הבסיסי הדחוס מאוד, יכולה להיות מאתגרת ודורשת אופטימיזציה. שקול ביצוע אחזור אנטיגן, תוך הגברת permeabilization צעדים, או להקטין את הריכוז או הזמן של קיבעון. לבסוף, כאשר הדמית kinocilium (להלן cilium העיקרי שנמצא על תאי שיער שבלול) יש לזכור כי הוא מתחיל לחזור בו P0 - P1 ואילך שיפוע base-to-איפקס. לכן, כאשר מודדים את אורך kinocilium חשוב להשוות תאי שיער מאותו אזור של שבלול ובחיות גיל בהתאמה. תאי תמיכת intercalated גם cilia העיקרי, אשר לא חוזר בי. יש להקפיד להבחין בין תמיכה cilia התא kinocilia תא השיער.

כמו עכברים בוגרים, הוא הופך להיות יותר ויותר קשה לבודד את epithelia חושי השבלול למשעי, בשל ההסתיידות של עצמות הזמניות מבוכים גרמיים. Decalcification של הרקמות נדרשת, וזה תמיד לא תואם עם טכניקות immunolocalization נוספות אבל אין מאפשר לבחון את הפנוטיפ הברוטו, והוא גם תואם עם הכנת SEM. str העכבר המולדains מפגין לעתים קרובות פגמי שמיעה כגון אובדן תא שיער או בדיקה ABR הגבוהה (ABRs), בשל מוטציות בגני שמיעה ידועות או גנים משנים. לכן זה חיוני כדי להשוות שולטת להמלטה גילאים או להתרבות על רקע גנטי חלופי.

אחת המגבלות של ניתוח זה היא כי, שנעשו בעכברים, kinocilium מתחיל לחזור הלידה פוסט והוא כבר לא קיים על תאי השיער הבוגרים. מסיבה זו מדידות kinocilia יכולות להיעשות רק בפיתוח רקמות. כמו כן יש צורך לבחור בקפידה שולטת לפי גילאים להשוואות בין דגימות מוטציה ושליטה. מגבלה נוספת הוא כי עכברים מוטנטים ריסי נתחו עד כה אינו מציגים תפקוד לקוי שמיעה חמור (כלומר., בדיקה ABR, ABRs או פליטת otoacoustic, OAEs) גם כאשר פיתוח שבלול נפגע. בקנה אחד עם זו, פגמים שמיעה אינם פנוטיפ ciliopathy אנושית נפוצה. באופן יוצא דופן, אובדן שומעG הוא אחד המאפיינים העיקריים של תסמונת Alstrom, נגרמת על ידי מוטציות בחלבון הגוף הבסיסי ALMS1 ^28,29. הדבר מצביע על כך מורפולוגיה צרור stereociliary אינו קשור בהכרח תפקוד לקוי השמיעה מוטנטים cilia, סביר בגלל ארגון מחדש מתקנת של צרורות בהמשך הפיתוח כפי דווחה עבור מוטציות Vangl2 CKO ^30. אם קשת ciliopathy הוא התרחב לכלול תסמונת, הגורם המולד השכיח ביותר של חירש-עיוורון, אז תפקוד לקוי שמיעה הופך רלוונטי ביותר. נתונים אחרונים הראו כי מספר חלבונים הקשורים תסמונת גם למקם את cilium ומעורבים בתהליכים הקשורים ריסי ^31, אבל אם חלבונים אלה מתייחסים איתות PCP לא נבחנה עדיין.

עד עכשיו רוב מוטנטים עכבר ריסי נתחו עבור פגמי PCP שבלול כבר רק בדקו במעורפל. הטכניקות המתוארות בכתב היד הזה לאפשר נרחב המפרט שלפנוטיפ שבלול, אשר ללא ספק להוביל להבנה מדויקת יותר של מעורבות ריסים בהקמת איתות PCP חוליות. למרות מספר גדול של מודלי עכבר ciliopathy זמינים, כמה מפתיע כבר נותחו מבחינת פגמי PCP שבלול. נופל בפח הקשורים המודלים האלה הוא קטלני עובריים. עם זאת, מאז שבלול המתפתח יכול להיבחן embryonically את התפקיד של הריסים ב PCP באוזן בפיתוח ניתן עדיין להיחקר. יתר על כן, הקטלניות עובריים בשלב מוקדם מאוד ניתן לעקוף באמצעות knockouts מותנה. Foxg1 ^{Cre 32} עכברים, זמינים JacksonLaboratories, משמשים בדרך כלל כדי inactivategenes של עניין thedeveloping האוזן הפנימית ממועד E8.To, המאמצים התמקדו בעיקר על בחינת גנים ciliopathy גורמי מחלות חקר חלבונים הקשורים cilia אחרים וכיצד אלה משפיעים איתות PCP במהלך הפיתוח, אולם עשויה לספק תובנה רבה יותר CILביולוגיה ותפקוד IA.

אם פנוטיפ שמיעה חשוד במודלי העכבר להיות מנותח, ניתוחים נוספים אפשריים כוללים בדיקות audiometric של ABRs ³³ או OAEs ^34. מבחני רחבת explant שבלול (כמתואר מאי-Simera et al., ²⁰¹² 25), יכולים גם להתבצע ולאפשר זיהוי פגמים רחבים מתכנסים בנקודות זמן התפתחותי מוקדם יותר. Culturing של explants שבלול גם מאפשר טיפול activators או מעכבי איתות שונים, אשר יכול לשנות סיומת explant, ובכך תורם להבנה מכניסטית של תהליכים התפתחותיים מעורב. למרות זאת ידוע כי kinocilium חזר בו לאחר לידת ^11,13,14, הכחשה זו לא טופלה ביסודיות בהקשר של מוטציות ריסים. זה יהיה עניין לקחת מדידות ספציפיות בזמן של הופעתה kinocilia ו הכחשה ב cilia mutants.Considering כי תפקיד עיקרי עבור פרו ריסיםחלבונים הם תנועה של מטענים לאורך microtubules, סביר מאוד כי חלבונים אלה עשויים גם להסדיר היבטים של סחר תאי לאורך ^35-37 שלד התא. תת-קבוצה קטנה של חלבונים cilia הוכחו להשפיע סחר ולוקליזציה סימטרית של מולקולות PCP ^8. לוקליזציה על ידי אימונוהיסטוכימיה של מולקולות PCP, במיוחד הקשורים חלבונים בממברנה כגון Vangl2, Frz3 ו DSH, ולכן מומלץ לקבוע אם מולקולות PCP הם mislocalized. הקמת הקוטביות שנראית בפרשה רבה פנים, ויש עדויות שהלכו והצטברו מסלול אוטונומי תא נוסף, אשר נדרשו גם עבור PCP הנכון בתאי שיער חושי ^38. נייר לאחרונה הראה כי איתות חלבון תלוי G שולטת ההגירה של cilium באופן תא אוטונומי ^39. עולה בקנה אחד עם תפקיד עבור חלבונים ריסי בלוקליזציה של מולקולות קוטביות, אלפא-i G-חלבון heterotrimeric למקטע 3 (Gαi3) localization מופרת ב Bbs8 ו Bbs6 בנוקאאוט שבלול ^8,39.

הבחן את התפקיד של רכיבי ריסי פרט ואפקטים השונים שלהם על איתות PCP ייתן לנו להבין טוב יותר את תפקידו של cilium בהקמת קוטביות נכונה. חשיבות מיוחדת הוא להבחין בין חלבונים ריסי מתפקדים בהקשר ריסים, לעומת פונקציות שאינם ריסי חלבונים ריסי נחשבים באופן מסורתי, כגון תפקידם ויסות ריסים שאינם קשורים סחר תאי. רמה גבוהה של סדירות בהיבטים רבים של מבנה השבלול, כולל דפוסים הסלולר והכיוון צרור stereociliary, מאפשרת לזהות שינויים עדינים בפיתוח PCP בתגובה או להפרעות גנטיות או מולקולרי בחלבונים הקשורים cilia. בהתחשב בכך שיש הרבה מודלי עכבר ריסים זמינים וכי שבלול העכבר המתפתח הוא אחד המקומות הטובים ביותר כדי לבחון PCPאיתות, זה עניין רב ללמוד מה מוטציות חלבון פרט במידה מפריעות להתפתחות שבלול.

The author declares no competing financial interests.

המחבר מבקש להודות מתיו קלי, Tiziana Cogliati, ג'סיקה Gumerson, Uwe Wolfrum, רבקה לברון, ויולה קרצ'מר וזואי מאן להערכה ביקורתית שלהם של כתב היד. עבודה זו מומנה על ידי בפרס Sofja Kovalevskaya (קרן Humbodlt) ואת יוהנס-גוטנברג אוניברסיטת מיינץ, גרמניה.