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在这里,我们提出了一种简单的方法,用于直接观察和自动测量 拟南芥对细菌入侵的气孔反应。该方法利用便携式气孔成像设备,以及专为设备捕获的叶片图像而设计的图像分析管道。
气孔是在植物叶片表皮中发现的微小孔隙。气孔的调节不仅对于平衡光合作用和蒸腾水分损失的二氧化碳吸收至关重要,而且对于限制细菌入侵也至关重要。当植物在识别微生物时关闭气孔,致病细菌,如 丁香假单胞菌 pv。 番茄 DC3000 (Pto),重新打开闭合的气孔以进入叶片内部。在评估气孔对细菌入侵反应的常规测定中,将叶表皮皮、叶盘或分离的叶漂浮在细菌悬浮液上,然后在显微镜下观察气孔,然后手动测量气孔孔径。然而,这些测定很麻烦,可能无法反映附着在植物上的叶子对自然细菌入侵的气孔反应。最近,开发了一种便携式成像设备,可以通过捏住叶子而不将其从植物上分离来观察气孔,以及基于深度学习的图像分析管道,旨在从设备捕获的叶子图像中自动测量气孔孔径。在这里,在这些技术进步的基础上,介绍了一种评估 拟南芥 细菌入侵的气孔反应的新方法。该方法包括三个简单的步骤:模拟自然感染过程的 Pto 喷雾接种,使用便携式成像设备直接观察 Pto接种植物叶子上的气孔,以及通过图像分析管道自动测量气孔径。该方法成功地用于在 Pto 侵袭期间在密切模拟天然植物-细菌相互作用的条件下气孔关闭和重新开放。
气孔是植物叶子和其他地上部分表面被一对保卫细胞包围的微观孔隙。在不断变化的环境中,气孔的调节是植物控制光合作用所需的二氧化碳吸收的核心,而代价是通过蒸腾作用流失水分。因此,气孔孔径的量化有助于了解植物的环境适应性。然而,量化气孔本质上是耗时和繁琐的,因为它需要人工来发现和测量显微镜捕获的叶片图像中的气孔。为了规避这些限制,已经开发了各种方法来促进拟南芥气孔的量化,拟南芥是一种广泛用于研究气孔生物学的模式植物1,2,3,4,5,6。例如,孔径计可用于测量蒸腾速率,作为气孔导度的指标。然而,该方法不能提供关于确定气孔导率的气孔数和孔径的直接信息。一些研究使用共聚焦显微镜技术,使用荧光肌动蛋白标记物、荧光染料或细胞壁自发荧光1、2、3、4、5 突出气孔。虽然这些方法有助于气孔的检测,但操作共聚焦显微镜设施和制备显微镜样品的成本可能会成为常规应用的障碍。在Sai等人的一项开创性工作中,开发了一种深度神经网络模型,用于从拟南芥表皮剥离的明场显微图像中自动测量气孔孔径6。然而,这项创新并没有免除研究人员为显微镜观察准备表皮剥离的任务。最近,通过开发一种便携式成像设备克服了这一障碍,该设备可以通过捏住拟南芥的叶子来观察气孔,以及基于深度学习的图像分析管道,该管道可以从设备捕获的叶子图像中自动测量气孔孔径7。
气孔有助于植物对细菌病原体的先天免疫力。这种免疫反应的关键是气孔闭合,它限制细菌通过微观孔进入叶片内部,细菌病原体在那里增殖并引起疾病8.通过质膜定位模式识别受体 (PRR) 识别微生物相关分子模式 (MAMP) 时,诱导气孔闭合,MAMP 是一类微生物通常共有的免疫原性分子9。细菌鞭毛蛋白的 22 个氨基酸表位称为 flg22,是一种典型的 MAMP,它通过被 PRR FLS210 识别来诱导气孔闭合。作为对策,细菌病原体如丁香假单胞菌pv。番茄DC3000 (Pto) 和 Xanthomonas campestris pv.囊泡已经进化出毒力机制来重新打开气孔 9,11,12。这些对细菌病原体的气孔反应已在测定中进行了常规分析,其中叶表皮皮、叶盘或分离的叶子漂浮在细菌悬浮液上,然后在显微镜下观察气孔,然后手动测量气孔孔径。然而,这些测定很麻烦,可能无法反映附着在植物上的叶子中发生的对自然细菌入侵的气孔反应。
在这里,提出了一种简单的方法,用于在密切模拟自然植物-细菌相互作用的条件下研究 Pto 入侵期间的气孔关闭和重新开放。该方法利用便携式成像设备直接观察附着在接种Pto的植物上的叶片上的拟南芥气孔,以及用于自动测量气孔孔径的图像分析管道。
1. 种植植物
2.制备细菌接种物
3.喷雾接种细菌
4.使用便携式成像设备直接观察气孔
注意:便携式气孔成像设备配备 LED 灯和摄像头模块,可以采集 2,592 × 1,944(高×宽;像素)图像,分辨率约为 0.5 μm/像素。
5.气孔孔径的手动测量
注意:ImageJ 软件可在 https://imagej.nih.gov/ij/download.html 下载
6. 气孔孔径自动测量
注意:图像分析管道在 Google Colaboratory 中运行,这是一个云 Python 编程语言可执行环境。用户必须拥有有效的 Google 帐户,并且必须拥有有效的 Google Drive、Google Chrome 浏览器和稳定的互联网连接作为先决条件。
喷洒接种Pto后,通过便携式气孔成像设备直接观察附着在接种植物上的叶子上的气孔。使用手动和自动测量,使用相同的叶片图像通过获取大约 60 个气孔的宽度与长度之比来计算气孔孔径。手动和自动测量一致表明,在接种后 1 小时 (hpi) 时,与模拟接种的植物相比,Pto 接种植物的气孔孔径减小(图 3A,B),表明拟南芥植物在响应 Pto 入侵时关闭气孔。在3 hpi时,Pto接种的植物和模拟接种的植物的气孔孔径几乎相同(图3C,D),让人想起Pto重新开放的气孔。值得注意的是,气孔孔径的自动测量仅需约5秒即可处理一张图像(表1),与手动测量相比,测量时间缩短了95%以上。因此,该协议提供了一种操作简单且省力的方法来跟踪拟南芥对细菌病原体的动态气孔反应。
图 1:便携式成像设备。 描绘便携式成像设备的图片,舞台上有一片叶子(左),顶盖关闭(右)。 请点击这里查看此图的较大版本.
图2:气孔孔径测量示意图。 (A) 气孔孔径是通过计算造口的宽度与长度之比来确定的,如白色箭头所示。(B) 早产和 (C) 模糊的气孔应排除在测量之外。 请点击这里查看此图的较大版本.
图3:完整整株植物中气孔对Pto的反应。 用模拟或Pto喷洒接种拟南芥植株,通过便携式气孔成像装置在(A,B)1 hpi和(C,D)3 hpi直接观察附着在接种植株上的叶片上的气孔。气孔孔径(比率)通过(A,C)手动和(B,D)自动测量计算。P 值通过双尾 t 检验计算。请点击这里查看此图的较大版本.
处理时间 (s) | ||
方法 | 意味 着 | 标清 |
手动 | 130.1 | 48.8 |
自动化 | 4.7 | 0.8 |
表 1:手动和自动测量每张图像气孔径的处理时间。 处理时间的平均值和标准差 (SD) 是根据 9 张代表性图像的测量值计算得出的。
以前的研究使用表皮剥离、叶盘或分离的叶子来研究气孔对细菌入侵的反应 9,11,12。相比之下,本研究提出的方法利用便携式气孔成像设备直接观察喷洒接种Pto后附着在植物上的叶子上的气孔,模拟细菌入侵的自然条件。此外,由于该方法不涉及破坏性的样品制备过程,例如叶片脱落、叶盘切除和表皮剥离,因此可以避免与这些样品制备过程相关的伤口和水分损失。这些影响不应掉以轻心,因为受伤和水分流失不可避免地会产生植物衍生的信号,例如影响气孔运动的植物激素茉莉酸酯和脱落酸13,14。
对于便携式气孔成像设备的最佳使用,有几项指南。首先,彻底去除叶片表面的水滴对于获得最佳清晰度和焦点的图像至关重要。其次,建议通过操纵调节螺钉来微调焦距,从相同的叶片区域拍摄多张图像。预计这种做法将增加每个叶面积的可分析气孔数量,从而减轻潜在的采样偏差。最后,用设备捏叶子时,需要小心处理,以免损坏叶子。这很关键,因为受伤是引起气孔闭合的线索之一14.
与手动测量相比,自动测量中的气孔孔径往往变化更大(图3)。这有几个可能的原因。先前有报道称,通过图像分析管道推断的气孔通常包括气孔7周围的细胞壁和/或保卫细胞的阴影,这在人眼手动测量中并非如此。具有异常形状的气孔也可能影响手动和自动测量之间的变化,尽管气孔检测模型经过训练以从分析中排除此类气孔7。在自动测量中,一些气孔的气孔孔径值为零,但在手动测量中则没有,原因不明。为了解决这些问题,未来可能需要对模型进行更新。然而,由于自动气孔孔径测量与手动测量基本匹配,因此当前版本的图像分析管道具有实际用途。
本研究中描述的对拟南芥气孔径的直接观察和自动测量有望为阐明气孔在植物环境适应中的作用提供各种应用。例如,所提出的方法应广泛适用于在暴露于生物胁迫(如MAMPs和微生物病原体)以及非生物胁迫(如干旱)后快速量化完整整个植物系统中的气孔孔径。为了支持这一点,之前的一项研究成功地应用了图像分析管道来准确量化用诱导气孔张开的真菌毒素梭菌素或诱导气孔闭合的应激激素脱落酸处理的“叶盘”的气孔孔径7。此外,原则上,便携式成像设备允许对附着在植物上的单个相同叶子上的气孔进行长期时程分析。这可能会揭示植物-微生物相互作用的新方面,因为大多数研究都集中在相互作用的最初几个小时内对细菌病原体的气孔反应9,10,11。使用和修改所提出的方法来探索各种环境条件下对细菌入侵的气孔反应也将很有趣。这对于了解环境因素(如温度、湿度和土壤水分可用性)的影响特别相关,这些因素会影响细菌病原体的气孔运动和疾病发展 8,15。总之,所提出的方法将被设想为在迄今为止无法实现的实验环境中加速植物-微生物相互作用内外的气孔功能研究。
作者没有利益冲突需要声明。
我们感谢研究项目“通过组装植物-微生物全息生物共同创造植物适应性状”的所有成员进行了富有成效的讨论。这项工作得到了变革性研究领域的补助金(21H05151 和 21H05149 到 A.M. 和 21H05152 到 Y.T.)和挑战性探索性研究的补助金(22K19178 到 A.M.)的支持。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Agar | Nakarai tesque | 01028-85 | |
Airbrush kits | ANEST IWATA | MX2900 | Accessory kits for SPRINT JET |
Biotron | Nippon Medical & Chemical Instruments | LPH-411S | Plant Growth Chamber with white fluorescent light |
Glycerol | Wako | 072-00626 | |
Half tray | Sakata | 72000113 | A set of tray and lid |
Hyponex | Hyponex | No catalogue number available | Dilute the solution of Hyponex at a ratio of 1:2000 in deionized water for watering plants |
Image J | Natinal Institute of Health | Download at https://imagej.nih.gov/ij/download.html | Used for manual measurement of stomatal aperture |
K2HPO4 | Wako | 164-04295 | |
KCl | Wako | 163-03545 | |
KOH | Wako | 168-21815 | For MES-KOH |
MES | Wako | 343-01621 | For MES-KOH |
Portable stomatal imaging device | Phytometrics | Order at https://www.phytometrics.jp/ | Takagi et al.(2023) doi: 10.1093/pcp/pcad018. |
Rifampicin | Wako | 185-01003 | Dissolve in DMSO |
Silwet-L77 | Bio medical science | BMS-SL7755 | silicone surfactant used in spray inoculation |
SPRINT JET | ANEST IWATA | IS-800 | Airbrush used for spray inoculation |
SuperMix A | Sakata seed | 72000083 | Mix with Vermiculite G20 in equal proportions for preparing soil |
Tryptone | Nakarai tesque | 35640-95 | |
Vermiculite G20 | Nittai | No catalogue number available | Mix with Super Mix A in equal proportions for preparing soil |
White fluorescent light | NEC | FHF32EX-N-HX-S | Used for Biotron |
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