İndüklenebilir T7 RNA Polimeraz aracılı Çok Boylu İfade Sistemi, pMGX

Bu çalışma, pMGX plazmid sistemini kullanarak Escherichia coli'de tek bir plasmidden çoklu genlerin T7 aracılı co-ekspresyonu için yöntemleri açıklamaktadır.

Birden fazla proteinin birlikte ekspresyonu, sentetik biyoloji, protein-protein kompleksleri ve biyosentetik yolların belirlenmesi ve işlenmesi için gittikçe zorunludur. Bu yazıda, indiglenebilir bir T7 RNA polimerazın kontrolü altında multigen sentetik operonların oluşturulması için oldukça etkili bir sistemin kullanımı anlatılmıştır. Bu sistem birçok genin aynı anda bir plazmitten eksprese edilmesini sağlar. Burada, hem ampisilin hem de kanamisin direnci seçilebilir markeri (A ve K) olan ve ya bir N-terminal hekzahistidin'e sahip olan ya da olmayan bir dizi dört ilgili vektör, pMGX-A, pMGX-hisA, pMGX-K ve pMGX-his Etiket (onun) ifşa edilmektedir. Bu vektör sistemi kullanılarak sentetik operonların inşası için ayrıntılı protokoller, beş gen ihtiva eden bir pMGX tabanlı sistemin Escherichia coli'de beş şifrelenmiş proteinin her birinin üretilmesi için kolayca oluşturulabileceğini ve kullanılan olabileceğini gösteren karşılık gelen verilerle birlikte sağlanmaktadır. Bu sistEm ve protokolü, araştırmacıların E. coli'deki karmaşık çok bileşenli modülleri ve yolakları rutin olarak ifade etmelerini sağlar.

Birden fazla proteinin birlikte ekspresyonu, özellikle sentetik biyoloji uygulamalarında, birden fazla fonksiyonel modülün ifade edilmesi gerektiği durumlarda giderek önemlidir; Protein-protein kompleksleri üzerinde çalışırken, ekspresyon ve fonksiyonun sık sık birlikte ifade etmesini gerektirir ^{2 , 3} ; Ve patolojideki her bir genin ^{4 , 5 , 6 , 7 , 8} olarak ifade edilmesi gereken biyosentetik yolları karakterize etme ve harekete geçirme. Özellikle konakçı organizma Escherichia coli , laboratuvar rekombinant protein ekspresyonu için çalışma atında, birlikte ifade için bir takım sistemler geliştirilmiştir. Örneğin, farklı seçilebilir işaretleyicilere sahip birden fazla plazmid, farklı ex miktarları kullanılarak bireysel proteinleri ifade etmek için kullanılabilir Baskı vektörleri ^{10 , 11} . Çoklu protein ekspresyonu için tekli plazmid sistemleri, her bir gen ^{10 , 12'nin} ekspresyonunu kontrol etmek için çoklu promotörleri kullandı; Sentetik operanlar, burada birden fazla gen tek bir kopyada kodlanmıştır ^{2 , 13} ; Veya, bazı durumlarda, nihai olarak proteolitik olarak işlenmiş, ilgilenilen istenen proteinleri üreten bir polipeptidi kodlayan tek bir gen.

Şekil 1: Bir polisistronik vektörün yapımını gösteren pMGX iş akışı. PMGX sistemi, indüklenebilir bir T7 promoterinin kontrolü altındaki sentetik operonların oluşturulması için esnek ve kullanımı kolay bir strateji sağlar.E-posta: e.com/files/ftp_upload/55187/55187fig1large.jpg "target =" _ blank "> Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Bu yazıda, indiglenebilir bir T7 RNA polimeraz ( Şekil 1 ) kontrolü altında multijene sentetik operonların inşası için oldukça etkili bir sistemin kullanımı açıklanmaktadır. Bu sistem birçok genin aynı anda bir plazmitten eksprese edilmesini sağlar. Başlangıçta pKH22 olarak adlandırılan, ^{6 , 7 , 8} numaralı farklı uygulamalar için başarıyla kullanılan bir plazmid sistemini temel alır. Burada, bu plazmid seti, dört ilgili vektörü içerecek şekilde genişletilir: pMGX-A, herhangi bir C veya N-terminal etiketi içermeyen bir ifade vektörü ve ampisilin direnci markörü; PMGX-hisA, bir N-terminal hekzahistidin etiketini kodlayan bir ifade vektörü ve ampisilin direnci markörü; PMGX-K, bir ifade vektörüC veya N-terminal etiketlerini ve kanamisin direnç işaretleyicisini ölçmek; Ve bir N-terminal hekzahistidin etiketini kodlayan bir ifade vektörü ve kanamisin dirençli markör olan pMGX-hisK. Bu çalışmada, pMGX sistemi, özellikle pMGX-A kullanılarak beş gen ihtiva eden bir polisistronik vektör üretme yöntemi, her bir proteinin Escherichia coli'de başarılı bir şekilde üretilmesi ile birlikte gösterilmiştir.

1. İlgi Genleri Almak

1. Sentetik genleri tasarla.
   1. E. coli ekspresyonu için bir gen dizilimi optimize edin.
   2. Seksten herhangi bir problemli kısıtlama yerini (AvrII, NdeI, EcoRI ve XbaI) çıkarın.
   3. Klonlama için kısıtlama alanlarını ekleyin; Bir 5'-NdeI bölgesi ve bir 3'-EcoRI bölgesi önerilmektedir. Gerekirse başka siteler de kullanılabilir; Seçilen plazmitin çoklu klonlama bölgesine ( Şekil S1- S4 ) bakın. İsterseniz, Western blot algılaması için 5 'veya 3' kodlama etiketi ekleyin.
   4. Tasarlanan geni ticari olarak sipariş edin.
   5. Ya üreticinin talimatlarına göre geni kör bir klonlama kiti kullanarak künt bir vektöre köreltin; Geni yükseltmek için primerleri tasarımlayın (ardından Adım 1.2.2'ye geçin); Veya bir pMGX plazmidine direkt klonlama için ek 5 've 3' uçları ekleyin ve Adım 2'ye geçin.Temsilci sonuçlar ilgi genlerini kör bir klonlamaya dayanır.
2. İstenilen geni (tasarımlanmış ve optimize edilmiş sentetik gen veya istenen geni içeren şablon DNA'dan) amplifiye edin ¹⁵ .
   1. Klonlama için kısıtlama alanları olan tasarım primerleri; Bir 5'-NdeI bölgesi ve bir 3'-EcoRI bölgesi önerilmektedir. Gerekirse başka siteler de kullanılabilir; Seçilen plazmitin çoklu klonlama bölgesine ( Şekil S1- S4 ) bakın. İsterseniz, Western blot algılaması için 5 'veya 3' kodlama etiketi ekleyin.
   2. PCR istenen geni çoğaltın ¹⁵ .
   3. PCR'ı agaroz jel elektroforezi ile analiz edin ¹⁶ .
   4. Belirgin olmayan bir amplifikasyon varsa, genleştirilen geni jel özütleme ile temizleyin. Değilse, bir enzim temizleme kiti kullanın.
   5. Bir spektrofotometre kullanarak DNA'yı absorbanc'ı kontrol ederek ölçünE 260 nm'de; Elüsyon tamponlu boş ¹⁷ .

2. İlgi Genleri Bir Multigen Ekspresyon Sistemi Vektörüne Klonlama, pMGX ¹⁸

1. Kısıtlama, elde edilen geni ve istenen vektör olan pMGX'yi NdeI ve EcoRI ile sindirir.
   NOT: Çok miktarda tekrar sirkülale edilmiş plazmid elde edilirse, EcoRI eklemeden önce NdeI reaksiyonunun 1 saat devam etmesine izin verin.
   1. 0.5-1.5 μg DNA ve uygun olan 10x tamponun 4 μL'si ile her bir enzimden 1 uL içeren 40 uL'lik bir sindirim reaksiyonu kullanın.
   2. NdeI ve EcoRI sindirimi için EcoRI tamponu kullanın ve önce NdeI endonükleaz ekleyin. 37 ° C'de 1 saat boyunca özümleyin. Ardından EcoRI endonükleaz ekleyin ve sindirimin bir saat daha ilerlemesine izin verin. NdeI, DNA'nın sonuna yakın bölünmelere duyarlıdır, bu yüzden EcoRI'nin ilk sindirimi NdeI'nin etkili sindirimini önleyebilir.
2. ElektrOphorese agaroz jel üzerindeki kısıtlama sindirimini (1 kb'lik bir gen için, 55 dakika için 110 V'da% 0,7 agaroz jel kullanın; farklı gen boyutları için agaroz jel yüzdesini seçmek için, referans ^16'ya bakın.
3. Temiz bir neşter veya bıçak bıçağı kullanarak ek parça ve vektör bantları tüketim yapın ve kesilen jel segmanını 1.5 mL tüp içine yerleştirin.
4. Üreticinin protokolüne göre bir jel özütleme kiti kullanarak DNA'yı agaroz jelden ayıklayın.
5. İlgili geni pMGX vektörüne, 3: 1 insert-vektör oranı kullanarak ligate edin; Eklemesiz sindirilmiş pMGX negatif bir ligasyon ayarlayın.
   1. 1 μL T4 DNA ligaz, 0.15-0.5 μg vektör DNA'sı (~ 5 μL) ve insertin uygun bir miktarda 3: 1 insert-to-vektör oranına ve boyutuna dayalı 20 μL ligasyon reaksiyonu oluşturun Gen eklenir; PMGX omurgaları boyutu 5,312 ile 5,504 bp arasındadır. Her şeyi içeren olumsuz bir kontrol reaksiyonu ekleyin.Gen eklendi. Vektör DNA miktarının negatif kontrol ligasyonunda ve vektör artı ligasyon reaksiyonlarında eşdeğer olduğundan emin olun.
6. Ligasyon reaksiyonlarını, XL1-Blue kimyasal olarak yetkili E. coli hücrelerine ve ligandlı plazmidler pMGX- yfg1 (ilgi geni içeren), pMGX- yfg2 (ilgi geni içeren) ... pMGX- yfgn (ilgilenilen geni içeren n). Aseptik tekniği kullanın (biyogüvenlik kabininde veya alev altında).
   1. 5 dakika boyunca buz üzerinde kimyasal olarak yetkili XL1-Blue E. coli 100 mcL alikotları çözülmüş ve sonra ligasyon reaksiyonları 5 mcL ekleyin. Buz üzerinde 30 dakika inkübe edin.
   2. 42 ° C'de tutulan su banyosunda 45 saniye boyunca hücrelere ısı ile çarpın ve daha sonra 200 μL soğuk LB ekleyin. 2 dk buzda inkübe edin.
   3. Hücreleri 1 saat boyunca 37 ° C, 220 rpm'de çalkalayın ve daha sonra bir plakayı içeren bir LB-agar plakasına 100 ulPriate seçilebilir markeri (ya ampisilin ya da kanamisin).
7. Pozitif transformantlar için klonları tarayın.
   1. Negatif kontrol ve ligasyon plakaları üzerindeki koloni sayılarını karşılaştırın. 1: 2'den büyük bir koloni sayımı aralığı istenir. Negatif kontrol plakasında çok sayıda koloni varsa, Adım 2.1'e dönün ve notu gözden geçirin.
   2. Tarama için eklenen farklı genlerin (1 n) her ligasyon tepkimesinden 4-8 bireysel koloni (negatif kontrol bağlı olarak: ligasyon oranı) seçin ve 4 mL LB ve uygun antibiyotik gece kültür / bireysel koloni inoküle edin. Gece boyunca 37 ° C'de ve 220 rpm'de sallayarak kültürleri büyütün.
   3. Üreticinin protokolüne göre bir plazmid DNA izolasyon kiti kullanarak plazmid DNA'yı izole edin.
   4. 150-500 ng DNA ve her bir enzimden 1 uL uygun 10x tampon ile 2 μL içeren 20 uL NdeI + EcoRI sindirim reaksiyonu oluşturun. InciDurumda, ilgili genin sınırlama siteleri arasında olması için NdeI ve EcoRI'yi ekleyin. Boş pMGX vektörü ile negatif bir kontrol önerilir. 37 ° C'de 2 saat su banyosunda sindirin.

3. Gen 2'yi Gen 1 içeren pMGX Vektörüne Ekleme , pMGX- yfg1

1. Restriksiyon, pMGX-yfg1'i AvrII ile sindirecek ve buzağı bağırsak fosfatazı (CIP) ile muamele edecektir .
   1. 0.5-1.5 μg vektör DNA'sını (izole edilmiş DNA ~ 5-10 uL) ve uygun 10x tampon maddenin 4 uL'si ile 1 μL AvrII içeren bir 40 μL sindirim reaksiyonu kullanın. 37 ° C'de 1.5 saat sindirin ve sonra 1.5 μL CIP ekleyin. 30 dakika daha 37 ° C'de bırakın.
2. İlgili geni serbest bırakmak için AvrII ve Xbal ile kısıtlama pMGX-yfg2 sindirin .
   1. 0.5-1.5 μg DNA ve 1 μ içeren bir 40 μL sindirim reaksiyonu kullanın; Her bir enzimin L'si, uygun 10x tamponun 4 uL'si ile. 37 ° C'de 2 saat boyunca özümleyin.
3. Uygun bir yüzde (% 0.7) agaroz jeli üzerinde elektroforez kısıtlaması sindirilir ve temiz bir neşter / bıçak bıçağı kullanarak ekleme ve vektör bantlarını çıkarır (bkz. Adımlar 2.2-2.3).
4. Üreticinin protokolüne göre bir jel özütleme kiti kullanarak DNA'yı ayıklayın ve DNA ^17'yi ölçün.
5. 3: 1 insert-vektör oranı kullanarak gen 2'yi pMGX- yfgl'e ligate edin . Sindirilmiş pMGX- yfg1'in negatif bir bağlanmasını ilave ek olmadan yapın. Yukarıdaki gibi Adım 2.5'te ayarlayın.
6. Bağlama reaksiyonlarının 5 μL'sini XL1-Blue kimyasal olarak yetkili E. coli hücrelerine, ligandlı plazmidler pMGX- yfg1,2'ye (ilgilenilen geni içeren 1 ve 2 geni) ve negatif pMGX- yfg1 kontrolüne, Adım 2.6'da görüldüğü gibi çevirin .
7. Negatif kontrol ve ligasyon plakaları üzerindeki koloni sayısını karşılaştırın. Bir koloni sayı oranı gReaktan 1: 2'den daha arzu edilir. Negatif kontrol plakasında çok sayıda koloni varsa, Adım 3.1'e dönün ve CIP tedavisini gözden geçirin.
8. Ligasyon reaksiyonundan 4-8 bireysel koloniyi (negatif kontrol: bağlanma oranına bağlı olarak) seçin ve bireysel koloni başına 4 mL LB artı uygun antibiyotik aşılayın ve gece boyunca 37 ° C ve 220 rpm'de büyütün.
9. Üreticinin protokolüne göre bir plazmid DNA izolasyon kiti kullanarak plazmid DNA'yı izole edin ve DNA ^17'yi ölçün.
10. EcoRI ile pMGX- yfg1,2'nin bir kısıtlama sindirimini uygulayarak ikinci genin etkili bir şekilde eklenmesini ekranlayın .
    1. 150-500 ng DNA ve 1 μL EcoRI enzim içeren 2 uL EcoRI 10x tampon içeren 20 uL sindirim reaksiyonu kullanın. 37 ° C'de 2 saat boyunca özümleyin.
11. Uygun bir yüzde agaroz jel üzerinde elektronforasyon kısıtlama sindirimi; Karşılık gelen bir grup arayınS gen 2 boyutuna (bkz. Adım 2.2). Bir gen vektör içine istenmeyen ters yönde yerleştirilebilir.

4. Genler 1 ve 2'yi içeren pMGX Vektörüne Üçüncü Bir Genin Eklenmesi, pMGX- yfg1,2

1. Restriksiyon sindirimi pMGX- yfg1,2 , AvrII ile gerçekleştirin ve Adım 3.1'de görüldüğü gibi CIP ile işleme sokun .
2. Adım 3.2'de görüldüğü gibi AvrII ve XbaI ile kısıtlama sindirimi pMGX- yfg3 .
3. Elektroforez, uygun bir yüzde agaroz jelinde kısıtlama sindirerek temiz bir neşter / bıçak bıçağı kullanarak ekleme ve vektör bantları tüketmek; Adımlar 2.2-2.3'e bakın.
4. Jel özütleme kiti kullanarak DNA'yı agaroz jelden ayıklayın ve DNA'yı nicelleştirin ¹⁷ .
5. 3: 1 insert-vektör oranı kullanılarak gen 3'ü pMGX-yfgl.2'ye bağlayın ve Adım 3.5'te görüldüğü gibi ilave bir ekleme olmadan sindirilmiş pMGX- yfg1,2'nin negatif bir ligasyonu oluşturun.
6. Ligasyon reaksiyonlarının 5 μL'sini XL'ye çevirinAdım 2.6'da görüldüğü gibi, 1-Mavi kimyasal olarak yetkili E. coli hücreleri, ligand plasmid pMGX- yfg1,2,3 (1, 2 ve 3 ilgi genleri içerir) ve negatif pMGX- yfg1,2 kontrolü.
7. Negatif kontrol ve ligasyon plakaları üzerindeki koloni sayısını karşılaştırın. Negatif kontrol plakasında çok sayıda koloni varsa, Adım 4.1'e dönün ve CIP tedavisini gözden geçirin.
8. Ligasyon reaksiyonundan 4-8 bireysel koloni seçin (negatif kontrol: bağlanma oranına bağlı olarak) ve her koloni için uygun antibiyotik artı 4 mL LB'yi inoküle edin; Gece boyunca 37 ° C'de ve 220 rpm'de büyür.
9. Üreticinin protokolüne göre bir plazmid DNA izolasyon kiti kullanarak plazmid DNA'yı izole edin.
10. Adım 3.10'da görüldüğü gibi EcoRI ile pMGX- yfg1,2,3'ün bir kısıtlama sindirimini uygulayarak üçüncü genin etkin şekilde eklenmesini ekranlayın .
11. Uygun bir yüzde agaroz jel üzerinde elektronforasyon kısıtlama sindirimi; bakGen 2 ve gen 3 boyutlarına karşılık gelen bantlar için (bkz. Adım 2.2). Not: gen 3 vektör içine istenmeyen, ters yönde yerleştirilebilir. Genler 2 ve 3 aynı büyüklükte ise, tarama için başka bir uygun kısıtlama sindirim bölgesi seçilmelidir.
    NOT: Her bir yeni gen için gerektiği gibi tekrarlayın.

5. Çok Boyutlu Bir İfade Sistemi Kullanarak Proteinlerin Üretilmesi ve Üretimin Batı Lekeleme ile Değerlendirilmesi

1. İlgili tüm genleri içeren pozitif klon, kimyasal olarak yetkin, protein üreten E. coli'ye , örneğin BL21- (λDE3) dönüştürülür.
   1. 5 dakika süreyle kimyasal olarak yetkili BL21- (λDE3) E. coli'nin 100 uL'lik kısımlarını çözündükten sonra pozitif klonlanmış plazmid DNA'sının 1 uL'ini ekleyin; Buz üzerinde 30 dakika inkübe edin.
   2. Isı hücrelerini, 42 ° C'de tutulan bir su banyosu içinde 45 s boyunca şoklayın ve daha sonra 200 μL soğuk LB'yi ekleyin. Buz üzerinde 2 dakika inkübe edin.
   3. Hücreleri 37 ° C'de ve 220 rpm'de 1 saat boyunca çalkalayın ve daha sonra uygun seçilebilir işaretleyiciyi (ya ampisilin ya da kanamisin) içeren bir LB agar plakasına 100 ul plakaya yayın.
2. Proteini, izopropil-β-D-l-tiogalaktopiranosid (IPTG) indüksiyonu ile ifade edin.
   1. B21- (λDE3) transformasyon plakasından izole edilmiş bir koloni seçin ve 4 mL LB ve uygun antibiyotiği inoküle edin; Gece boyunca büyür, 37 ° C'de ve 220 rpm'de çalkalama.
   2. 100 mL'lik bir LB'yi ve 1 mL'lik gece kültürü kullanılarak uygun antibiyotik kültürü inoküle edin.
   3. 37 ° C'de büyütün ve 220 rpm'de çalkalayarak OD _600'ü 0.6'ya getirin.
   4. Kültürü 100 uM IPTG ile indükleyin ve 25 ° C'de ve 220 rpm'de 15 saat büyütün.
   5. Kültür 1 ml çıkarın ve 1 dakika için 13.000 xg de santrifüj; Süpernatanı atın.
3. Üreticinin talimatlarına göre lizis çözeltisini kullanarak hücreleri LyseVe tüm proteinlerin başarılı bir şekilde üretilip üretilmediğini belirlemek için çözünebilir hücre lizatı için bir Western leke hazırlayın ¹⁹ .

Bu çalışmada, amaç, tek bir plazmitten beş proteinin birlikte ekspresyonu yapmaktı. N-veya C-terminalli hekzahistidin etiketlerini kodlayan beş kodon optimize edilmiş sentetik gen fragmanları ticari olarak satın alınmıştır. Sentetik genler PCR ile amplifiye edildi ve ayrı ayrı bir PCR-künt vektör içine klonlandı ve sekanslandı. Polisistronik plasmid üretmek için, ilgilenilen beş gen uygun bir pMGX plazmidi, pMGX-A'ya klonlandı. Şekil 2 , NdeI + EcoRI ile sindirilmiş pMGX-A'ya ek olarak PCRBlunt- yfgl ve PCRBlunt- yfg2'yi göstermektedir (bkz. Adım 2). İlk iki geni pMGX-A'ya klonlamak için plazmid NdeI + EcoRI ile sindirildi ( Şekil 2 ). İlgilenen genlerin pMGX-A'ya klonlanmasından sonra, pMGX- yfgl ve pMGX- yfg2 olarak adlandırılan yeni oluşturulmuş plasmidler, başarılı klonların elde edildiğini teyit etmek için AvrII + Xbal ile sindirilmiştir;Şekil 3'te elde edilen 1.1-kb ve 1.3-kb bantlarında gösterilmiştir.

Şekil 2: pMGX plazmidlerinin klonlanması. NdeI + EcoRI ile sindirildikten sonra yfgl ve yfg2'yi içeren PCR-blunt plazmidlerin beklenen sonuçları,% 0.7 agaroz jelinde (110 V, 55 dak.) Gösterilmektedir. Lane 1, 1 kb DNA merdiveni; Şerit 2, PCRBlunt- yfgl ; Şerit 3, PCRBlunt- yfg2 ; Şerit 4, pMGX-A kontrolü. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Şekil 3: pMGX- yfgl ve pMGX- yfg2'nin taranması. % 0.7 agaroz jeli (110 V, 55 dak.) Gösterir AvrII + XbaI ile sindirim yapıldıktan sonra hem pMGX- yfgl hem de pMGX- yfg2 tarafından üretilen iki bant. Şerit 1, 1 kb DNA merdiveni; Şerit 2, pMGX- yfgl ; Şerit 3, pMGX- yfg2 ; Şerit 4, pMGX-A kontrolü. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Her iki gen de uygun pMGX vektöründe polisistronik plazmid oluşturuldu. PMGX- yfgl.2 plasmidini üretmek için, pMGX- yfgl , Şekil 4'te gösterildiği gibi AvrII ile sindirildi. PMGX- yfg2 , AvrII + XbaI ile sindirildi ve fragmanı içeren 1.3 kb geni, pMGX- yfgl , 2 üreten doğrusallaştırılmış pMGX- yfgl'in AvrII bölgesine bağlandı . PMGX- yfgl'in , EcoRI ile sindirimi, istenen plazmitin başarılı bir şekilde klonlanmasını doğruladı ve> Şekil 5.

Şekil 4: Biistronik plazmid pMGX- yfg1,2'nin üretilmesi. % 0.7 agaroz jel elektroforezi, AvrII ile sindirilmiş pMGX- yfgl ve AvrII + Xbal ile sindirilmiş pMGX- yfg2'yi (110 V, 55 dakika) verir. Şerit 1, 1 kb DNA merdiveni; Şerit 2, AvrII ile sindirilmiş pMGX- yfg1 ; Şerit 3, AvrII + Xbal ile sindirilmiş pMGX- yfg2 ; Şerit 4, pMGX-A kontrolü. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Şekil 5: pMGX- yfg1,2 klonlarının taranması . Ortaya çıkan% 0.7 agaroz jeli (110 V, 55 dakika) pMGX- yfEcoRI ile sindirilmiş g1,2 klon gösterilmiştir. Başarılı klonlar, biri takılmış gen yfg2 ve diğeri omurgaya + yfg1 ( pMGX-yfg1 ) karşılık gelen iki bant oluşturur. Lane 1, 1 kb DNA merdiveni; Şerit 2, EcoRI, klon 1 ile sindirilmiş pMGX- yfgl.2 ; Şerit 3, EcoRI, klon 2 ile sindirilmiş pMGX- yfgl.2 ; Şerit 4, pMGX-A kontrolü. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

İki veya daha fazla gen içeren bir polisistronik plazmid üretilirken, AvrII bölgesine klonlanmış genin istenmeyen bir ters yerleştirilmesi ile karşılaşılabilir. Şekil 6 , ters yönde yerleştirilen bir gene kıyasla, doğru yönde yerleştirilmiş bir gen ile sindirilmiş bir plazmidin sonuçları arasındaki farkı vurgulayan bir jeldir. Eğer genBağlanmamış ve istenmeyen oryantasyonda klonlanmışsa, genin sonundaki EcoRI bölgesi, önceki genin EcoRI sitesinin hemen yanına eklenecektir. Bu, DNA jel elektroforezi (50 bp'den daha düşük) tarafından neredeyse saptanamayan bir parçacık boyutu elde eder. Ek olarak, son yerleştirilen gen, omurga boyutunda beklenenden daha büyük olduğu için kolaylıkla tanımlanabilen omurgada görülecektir. Omurga boyutunun beklenen boyuttan farkı, son eklenen genin boyutunu gösterecektir.

Şekil 6: pMGX- yfgl-5 klonlarının taranması . EcoRI ile sindirilmiş pMGX- yfgl-1'in sonuçlarını gösteren bir% 1.3 agaroz jeli (110 V, 65 dakika) gösterilmektedir. Başarılı klonlar (şerit 2) en son girilen gene karşılık gelen bir bant oluşturur (bu durumda yfg5 , 1.1 kb). Lan1, 1-kb DNA merdiveni; Şerit 2, EcoRI ile sindirilmiş pMGX- yfgl-5'in pozitif klonu; Şerit 3, EcoRI ile sindirilmiş pMGX- yfgl-5'in negatif klonu; Şerit 4, pMGX- yfgl- 4 kontrolü. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Beş genli polisistronik ifade vektörünü tamamlamak için geri kalan üç gen, pMGX- yfgl -5 oluşturmak için birbiri ardınca pMGX- yfg1,2'ye klonlandı (bkz. Adım 5). Bu plazmid daha sonra BL21- (λDE3) 'e dönüştürüldü ve proteinlerin ekspresyonu, log-orta faz kültüründe IPTG eklenerek indüklendi. Şekil 7 , tek bir operanda çoklu gen içeren tek bir plazmitten beş proteinin tümünün eksprese edilebildiğini teyit eden hücre lizatlarının bir Batı lekesi olduğunu gösterir. PMGX- yfgl'in (1 gen ihtiva eden) ekspresyonu,PMGX- yfgl , 2 (2 gen içeren) ve pMGX- yfgl- 5 (5 gen içeren) gösterilmektedir.

Şekil 7: pMGX sistemi kullanılarak çoklu gen ekspresyonunun Western blot analizi. Hem N- hem de C-terminal hekzahistidin etiketlerinin birleştirilmesi, protein ifadesinin Western leke bulgulamasını sağladı. Numuneler, önceden döküm% 4-20 gradyan gerilimsiz akrilamid jelleri (200 V, 35 dak, 10 cm x 8.5 cm) ve daha sonra bir nitroselüloz zara (0.45 um, 10 cm x 7 cm) uygulanmıştır. İkincil bir antikor gerektirmeyen HRP-eşlenimli anti-His monoklonal antikoru kullanıldı. Engelleme, transfer ve antikor seyreltme tamponları, antikor üreticisi tarafından tavsiye edildiği gibi hazırlandı. Tespit, Western Chemiluminescent HRP substratı ile imalatçının insleri izleyerektalimatların. Nihai membran, bir filtre olmadan bir görüntüleyiciyi kullanarak görselleştirildi. Şerit 1, ikili renk standardı zar üzerine aktarılır (kimyasal parlak değil); Şerit 2, His6pMGX- yfgl ; Şerit 3, His6pMGX- yfgl, 2 ; Şerit 4, His6pMGX- yfgl-5. Not: Yfg5 tarafından üretilen protein, yfgl tarafından üretilen (her ikisi de 36 kDa) protein ile aynı boyuttadır ve jel üzerinde ayrıştırılamaz. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Ek Göstergeler: Bu dosyayı indirmek için tıklayınız.

Birden fazla genin ortak ekspresyonu, özellikle karmaşık, multigenik metabolik yolları karakterize etme ve yeniden yapılandırmada ^{3 , 4 , 5} için giderek daha fazla önemlidir. PMGX sistemi E. coli rutininde ^{6 , 7 , 8} randevularında multijen ortak ekspresyonu yapar ve çeşitli araştırmacılar tarafından erişilebilir durumdadır. Bu çalışmada, ilgilenilen beş proteinin aynı anda pMGX-A kullanılarak tek bir plasmid sisteminden üretildiği gösterilmiştir. Halihazırda bulunan bir çok ekspresyon sistemi, pET Duet vektörleri ¹² gibi bisistronik plazmidleri üreten iki genin eklenmesine izin verir. Biri daha fazla gen eklenmesini gerektiriyorsa, farklı seçilebilir markerlere sahip birden çok bicistronic vektör gerekir. Diğer multigen sentezleme sistemlerinin aksine, pMGX sistemi kolay klonlamaya izin verirBirden fazla genin bir plasmid içine yerleştirilmesi, farklı verici plazmidlere ihtiyaç duyulmaksızın kısıtlama bölgelerinin yeniden kullanılması veya genlerden alınan çoklu restriksiyon enzim yerlerinin çıkarılması için ^{13 , 14} . Bu protokolün kritik adımları, gen tasarımı, tekli sindirilmiş pMGX vektörlerinin arka plan sirkülerleşmesini önleme ve eklenen genin doğru yönlendirilmesi için polisistronik vektörlerin ekranlarını içerir.

Bir polisistronik sistem oluşturmak için klonlama stratejisini planlarken, ilgilenilen genlerin aşağı doğru klonlama için gerekli kısıtlama alanlarını içermediğinden emin olmanız önemlidir. Özellikle, bunlara, ilgi konusu ilk geni içeren pMGX vektörüne ikinci ve sonraki genlerin eklenmesi için gereken XbaI ve AvrII dahildir (3. ve 4. Adımlar). Ek olarak, g'nin ilk klonlanması için kullanılacak olan kısıtlama alanlarının ortadan kaldırılması esastırPMGX'ye ilgi (Adım 2). Tipik olarak bunlar, genin 5 'ucunda NdeI veya NheI'i ve genin 3' ucunda BamHI veya EcoRI'yi içerir, ancak gerektiğinde diğer kısıtlama alanları bu adım için de kullanılabilir. Fazla, istenmeyen kısıtlama alanlarının elimine edilmesi, gen sentezi aşamasında veya başka kaynaklardan klonlanmış genlerde, alan yönelimli mutajenez yoluyla eşanlamlı nükleotid ikameleri ile kolaylıkla gerçekleştirilebilir ²⁰ .

İlgi konusu geni içeren pMGX'e sonraki ilgi genlerinin ilavesi, pMGX-yfgl'in AvrII ile doğrusallaştırılmasını gerektirir (Adım 3.1; XbaI ile de lineerleştirilebilir). Bu doğrusallaştırılmış vektör, ikinci genin eklenmesi sırasında (Adım 3.5) hızlı bir şekilde religate olur ve bu da son derece yüksek sayıda arka plan klonuna yol açar. Bunu önlemek için doğrusallaştırılmış vektörü bir fosfataz ile işleme tabi tutarak 5'in fosforilatlanması gereklidir2; Doğrusallaştırılmış vektörün uçları. Diğerleri mevcut olmasına rağmen, tipik olarak CIP kullanılır. Fosfataz ünitelerinin ve kuluçka süresinin optimizasyonu, sonraki genlerin doğrusal vektör içine bağlanmasını optimize etmek için gerekebilir.

Son olarak, bir polisistronik sistem üretirken, ilgilenilen gen başlangıçta XbaI ve AvrII ile sindirim yoluyla eksize edilir ve genin 5 've 3' uçlarında tamamlayıcı kohezif uçlar oluşur (Adım 3.2 ve 4.2). Bu insert ileriye veya ters yönde doğrusal vektör içine bağlanabilir. Bütün kohezif uçlar aynı olduğu için, kohezif uçların tamamlayıcı tavlaması yoluyla herhangi bir yönelim uygulanmaz. Bu nedenle, sonuçta bulunan klonların ilgi geninin doğru ekleme yönü için taranması gereklidir. Bu, orijinal geni pMGX'e klonlamak için kullanılan kısıtlama sitelerinden biriyle klonların taranmasıyla kolaylıkla yapılabilir (Adım 2). Tipik,EcoRI, kısıtlama alanı genin 3 'ucunda olduğu için kullanılır ve dolayısıyla Şekil 6'da gösterildiği gibi yönlilik için tarama yapılması uygundur. Çoğu durumda, ilgilenilen geni içeren klonların% 50'si doğru oryantasyona sahiptir ve% 50'sinin zıt yöndeki geni vardır.

Seyrek olarak (ligasyonların ~% 10'u), belirli bir ligasyondaki tüm klonların ilgi geni tek yönde eklenebilir. Bu sonuç, sekansa bağımlıdır, çünkü bu belirli durumlarda çoğaltılabilir. Eğer bu olur ve ilgilenilen gen sürekli olarak ters yönde yerleştirilirse, istenen vektöre klonlama yönü değiştirilerek erişilebilir. Örneğin, yfg2'yi pMGX- yfgl'in AvrII sitesine klonlamak yerine, yfgl , pMGX-yfg2'nin XbaI bölgesine klonlanabilir. Bunun, aynı son vektörü verdiğini unutmayınsistemi. Farklı klonlama stratejilerinden aynı sisteme erişimi sağlayan bu ek esneklik son derece avantajlıdır.

Bu metodolojinin önemli bir kısıtlaması, polisistronik transkriptin 3 'ucunda kodlanan proteinlerin, tipik olarak, transkriptin 5' ucunda kodlanan proteinlerden daha düşük seviyelerde eksprese edilmesidir ve bu etki, transkriptin uzun süreyle . Bu, sentetik operonda ilgi konusu genlerin sırasının değiştirilmesinin, kodladığı proteinlerin göreceli ekspresyon seviyelerini etkileyebileceği ve göreli ekspresyon seviyelerinin hassas ayarlanmasına yönelik bir mekanizma sağladığı anlamına gelir.

Özetle, pMGX sistemi, çeşitli sentetik biyoloji uygulamaları için ve biyokimyasal yol karakterizasyonu için kullanılabilen, E. coli'deki tek bir plazmitten çoklu proteinlerin birlikte ekspresyonu için güvenilir bir yöntem sağlar.

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Bu çalışma Kanada Doğa Bilimleri ve Mühendislik Araştırma Konseyi tarafından desteklendi.