Method Article
כאן, אנו מציגים טכניקה פשוטה להערכת עמידות אנטי-מיקרוביאלית סביבתית (AMR) על-ידי שיפור שיעור הדנ"א החוץ תאי בעל משקל מולקולרי נמוך. טיפול קודם עם 20%-30% PEG ו-1.2 M NaCl מאפשר זיהוי של גנים AMR גנומיים ואופקיים. הפרוטוקול משאיל את עצמו לתהליך ללא ערכה עם אופטימיזציה נוספת.
מעקב סביבתי מוכר ככלי חשוב להערכת בריאות הציבור בעידן שלאחר המגפה. מים, במיוחד שפכים, התגלו כמקור הבחירה לדגום עומסים פתוגניים בסביבה. שפכים מנקז פתוח וממתקני טיהור מים קהילתיים הם מאגר של פתוגנים וגנים של עמידות מיקרוביאלית (AMR), ולעתים קרובות באים במגע עם בני אדם. בעוד שישנן שיטות רבות למעקב אחר AMR ממים, בידוד DNA באיכות טובה בתפוקות גבוהות מדגימות הטרוגניות נותר אתגר. כדי לפצות, נפחי הדגימה צריכים לעתים קרובות להיות גבוהים, מה שיוצר אילוצים מעשיים. בנוסף, דנ"א סביבתי הוא לעתים קרובות מקוטע, והמקורות של AMR (פלסמידים, פאגים, דנ"א ליניארי) מורכבים מדנ"א במשקל מולקולרי נמוך. עם זאת, תהליכי מיצוי מעטים התמקדו בשיטות למיצוי בתפוקה גבוהה של DNA ליניארי ובעל משקל מולקולרי נמוך. כאן, שיטה פשוטה למיצוי DNA ליניארי בעל תפוקה גבוהה מכמויות קטנות של שפכים באמצעות תכונות המשקעים של פוליאתילן גליקול (PEG) מדווחת. מחקר זה מציג טיעון להגדלת תפוקת הדנ"א הכוללת מדגימות מים שנאספו לצורך ניתוח מטאגנומי על ידי העשרת שיעור הדנ"א הלינארי. בנוסף, שיפור DNA במשקל מולקולרי נמוך מתגבר על הבעיה הנוכחית של תת-דגימה של AMR סביבתי עקב התמקדות בדנ"א בעל משקל מולקולרי גבוה ותוך תאי. שיטה זו צפויה להיות שימושית במיוחד כאשר קיים דנ"א חוץ-תאי אך בריכוזים נמוכים, כגון עם קולחים ממתקני טיהור. זה אמור גם לשפר את הדגימה הסביבתית של מקטעי גנים AMR המתפשטים באמצעות העברת גנים אופקית.
SARS-CoV-2 ותוצאותיו הדגישו את חשיבות המעקב הסביבתי בניטור וחיזוי התפרצויות מחלות זיהומיות 1,2. בעוד שמגפות ויראליות ניכרות, עליית העמידות האנטי-מיקרוביאלית (AMR) מתוארת לעתים קרובות כמגיפה חתרנית וכזו המהווה דאגה מובילה לבריאות הציבור ברחבי העולם 3,4. כתוצאה מכך, יש צורך דחוף באסטרטגיות מתואמות כדי להבין את האבולוציה וההתפשטות של AMR. גופי מים, כמו גם שפכים, יכולים לשמש כמאגרים הן לפתוגנים והן ל- AMR 5,6,7,8. מקורות מים משותפים הם, אם כן, מקור רב עוצמה להעברת מחלות בקרב בני אדם, במיוחד במדינות בעלות הכנסה נמוכה ובינונית (LMIC) שבהן היגיינה ירודה והתפוצצות אוכלוסין הולכות יד ביד 9,10,11. בדיקות של מקורות מים כבר זמן רב משמש כדי להעריך את בריאות הקהילה 12,13,14. לאחרונה, שפכים ממתקני טיהור שפכים עירוניים הוכיחו את עצמם כאינדיקטור מתקדם טוב למקרי COVID במרפאה 1,2,15,16,17,18.
בהשוואה לניטור מחלות ספציפיות, איתור ומעקב אחר AMR בסביבה מהווה בעיה מורכבת יותר. המספר הגדול של אנטיביוטיקה בשימוש, גנים מגוונים של עמידות, לחצי ברירה מקומיים שונים והעברת גנים אופקית בין חיידקים מקשים על הערכת נטל AMR אמיתי, ולאחר ההערכה, לקשר אותו עם תצפיות קליניות 19,20,21,22. כתוצאה מכך, בעוד מעקב מרוכז אחר AMR קליני מתבצע על ידי מספר ארגונים ברחבי העולם 3,23,24, ניטור AMR סביבתי עדיין בחיתוליו, נסקר ב 19,25,26.
בשנים האחרונות דווח על שיטות שונות למעקב אחר AMR סביבתי 5,27, שנבדקוב-28,29. נקודת המוצא של רוב אלה היא הפקת DNA באיכות טובה מדגימות סביבתיות הטרוגניות, אתגר בפני עצמו. בנוסף, דנ"א סביבתי הוא בדרך כלל מקוטע בגלל חשיפה לסביבה עוינת. דנ"א חוץ-תאי מקוטע מוכר זה מכבר כמאגר חשוב של גני AMR (נסקר ב-30,31,32), עם פוטנציאל נוסף להיכנס ולצאת מחיידקים באמצעות העברת גנים אופקית. לכן, חשוב שכל פרוטוקול שמטרתו למדוד את עומס AMR בסביבה ידגום DNA ליניארי ובעל משקל מולקולרי נמוך בצורה הטובה ביותר האפשרית. באופן מפתיע, התמקד מעט בפיתוח שיטות ספציפיות למיצוי בעל תפוקה גבוהה של דנ"א ליניארי ובעל משקל מולקולרי נמוך: עבודה זו מתמקדת בטיפול בפער.
שיטה נפוצה ופשוטה לזירוז דנ"א היא שילוב פוליאתילן גליקול (PEG) ומלחים כגון נתרן כלורי (NaCl)33. PEG הוא חומר צפיפות מקרומולקולרי המשמש להשגת משקעים ספציפיים לגודל של מקטעי DNA34,35. ככל שריכוז ה-PEG נמוך יותר, כך המשקל המולקולרי של הדנ"א שניתן לזרז ביעילות גבוה יותר. מחקרים רבים השתמשו ב-PEG במהלך מיצוי סביבתי של דנ"א ורנ"א 1,2 (מסוכם בטבלה 1 17,33,36,37,38,39) בשלב הסופי 33,36,37 או כדי לרכז דגימות מים גדולות להפקת חלקיקים נגיפיים כמו ב-SARS-CoV-2 15,40. בעבודה הנוכחית נמצא כי ריכוזי ה-PEG ששימשו בעבר למיצוי דנ"א סביבתי (שנקבעו במידה רבה על ידי פרוטוקולי מעקב נגיפיים) אינם לוכדים דנ"א ליניארי בעל משקל מולקולרי נמוך. לכן, הם מפסידים דגימה של מקטעי דנ"א קצרים ואינם מתאימים להערכת תוכן AMR במדויק. מחקר זה ניצל את התכונות של פוליאתילן גליקול ונתרן כלורי כדי לזרז ביעילות מקטעי DNA ליניאריים בעלי משקל מולקולרי נמוך בתפוקה גבוהה שיכולה, בעתיד, להוביל לשיטת מיצוי DNA חסכונית. שיטה זו יכולה לשמש להעשרת היחס של DNA מקוטע ומשקל מולקולרי נמוך מדגימות טבעיות מורכבות, ובכך ללכוד תמונה מדויקת יותר של AMR סביבתי. עם קצת יותר חידוד, הטכניקה משאילה את עצמה ליישום קל ובעלות נמוכה על ידי תאגידים עירוניים מקומיים וגופים ממשלתיים אחרים לשימוש ככלי מעקב עם הכשרה טכנית מינימלית.
1. דיגום שפכים
2. הפקת DNA מדגימות שפכים
3. משקעים של תגובת שרשרת פולימראז (PCR) - DNA ליניארי מוגבר לבדיקת התאוששות DNA על פני מגוון משקלים מולקולריים
קביעת פרוטוקול למיצוי DNA בתפוקה גבוהה מדגימות שפכים
גרסה שונה של פרוטוקולים שנקבעו בעבר שימשה להפקת DNA ו- RNA באיכות גבוהה מדגימות מים17. הדגימות נלקחו מנקז פתוח וכן ממתקני טיהור שפכים באזור דלהי-NCR בצפון הודו. לאחר עיבוד מקדים באמצעות PEG ו-NaCl (איור 1), הדגימות עובדו באמצעות ערכות להפקת דנ"א מאדמה וממים. בכל המקרים נצפתה רצועה בולטת בעלת משקל מולקולרי גבוה שככל הנראה מתאימה לדנ"א חיידקי תוך-תאי וכתם רקע, כפי שאופייני לדגימות סביבתיות37 (איור 2).
היעדר שאיבת DNA יעילה משפכי מכון טיהור שפכים (STP)
אף על פי שהתקבלה תפוקה סבירה של דנ"א כולל מנקז פתוח ומשפעת STP (טבלה 3), לא ניתן היה לקבל דנ"א מהשפכים המטופלים הסופיים; בעיות עם תפוקה נמוכה תוארו גם בעבודה קודמת41 (איור 3). לאחר הטיפול, הכולל הכלרה של שפכים, ובמקרים מסוימים גם טיפולי UV וגם אולטרה-סינון42, העומס המיקרוביאלי צפוי להיות נמוך, וכל שאריות DNA (המורכבות מדנ"א חוץ-תאי ומקוטע) ידוללו. הריכוז הנמוך הראשוני של PEG המשמש בריכוז הדגימות ובמשקעים של חומצות גרעין עשוי להוציא DNA במשקל מולקולרי נמוך. במילים אחרות, הדנ"א המקוטע עלול ללכת לאיבוד בשלב הריכוז הראשוני.
עלייה בריכוזים של PEG ו-NaCl מובילה למשקעים של DNA במשקל מולקולרי נמוך יותר
כדי לבדוק אם הגדלת ריכוז ה-PEG מסייעת בהעשרת דנ"א במשקל מולקולרי נמוך יותר, נוצר תקן מעבדה של מקטעי PCR באורכים שונים, היוצר מגוון של מקטעי דנ"א ליניאריים (איור 4). התקן היה נתון לארבעה תנאי משקעים שונים - 9% PEG-8000 + 0.3 M NaCl (השילוב המקורי), 9% PEG-8000 + 1.2 M NaCl (העלאת מלח בלבד), 30% PEG-8000 + 0.3 M NaCl (העלאת PEG בלבד) ו- 30% PEG-8000 + 1.2 M NaCl (העלאת מלח ו- PEG). התנאים נבחרו בהתבסס על הפרוטוקול הסטנדרטי המשמש למעקב אחר SARS-CoV-217 ועל סמך תנאים שדווחו במחקר של שיטות מודולריות של מיצוי DNA מדגימות סביבתיות33. שתי מהירויות צנטריפוגה שונות - 15,000 x g ו- 20,000 x g - שימשו בהתבסס על ההשפעות של מהירויות דיפרנציאליות על כדורי DNA43. עם העלאת ריכוזי ה-PEG וה-NaCl ל-30% ו-1.2 מיליון, בהתאמה, ההתאוששות הכוללת של הדנ"א גדלה בכ-70%, ומקטעי דנ"א קטנים כמו 150 זוגות בסיסים (bp) הואצו ביעילות (איור 5). ההבדל במהירות לא השפיע רבות על היבול (איור 6A) וייתכן שהוא נובע מזמן השימוש הארוך בצנטריפוגה. מאחר ששחזור הדנ"א הכולל היה נמוך יותר בשילוב המקורי של PEG/NaCl, ייתכן שפסי משקל מולקולריים נמוכים יותר, למרות שהיו קיימים, היו בריכוז מתחת לגבול ההדמיה. כדי לבדוק זאת, כמות ה- DNA הקלט למשקעים הוגדלה, ועודף DNA המתאים לכל טיפול (1.5 מ"ג) הועמס על ג'ל האגרוז להדמיה. רק הטיפול עם 30% PEG הראה התאוששות טובה של המשקל המולקולרי הנמוך ביותר, כלומר פס של 150 bp (איור 6B).
משקעים של דנ"א מעגלי (דנ"א גנומי חיידקי ופלסמיד) אינם עוקבים אחר אותה מגמה
אי קולי MG155 DNA גנומי ופלסמיד (pRSV, ~ 4 kb) שימשו למשקעים עם ריכוזי PEG ו- NaCl שונים. שלא כמו עם דנ"א ליניארי, לא הייתה השפעה משמעותית של העלאת רמות PEG ו-NaCl (איור 7), מה שמרמז על כך שתשואות של דנ"א מעגלי ובעל משקל מולקולרי גבוה (בדרך כלל דנ"א תוך-תאי) אינן מושפעות מהעלאת PEG. זאת בניגוד לתצפיות קודמות עם משקעים חלבוניים44, שם המסיסות ירדה בתלילות עם ריכוז PEG. בהתחשב בכך ש-PEG פועל כחומר צפיפות, משערים כי שטח הפנים של המקרומולקולה הזמין לאינטראקציה ממלא תפקיד חשוב ביעילותו כגורם מזרז. עם דנ"א ליניארי, ככל שהגודל גדל, סביר להניח שגם השטח הזמין לאינטראקציה גדל. עם דנ"א מעגלי, ייתכן שריכוזי PEG נמוכים כבר מספיקים כדי להרוות את המולקולה, והעלאה נוספת של הריכוז עשויה שלא להגדיל את שטח הפנים האפקטיבי לאינטראקציה.
תפוקה ירודה של DNA משפכים בעת עיבוד מראש של משקעים עם PEG ו- NaCl מושמטת
כדי לבדוק אם עיבוד מקדים של שפכים חיוני להפקת DNA, 20 מ"ל של שפכים מומתים בחום (70°C, 4 שעות) הוזנקו עם 10 מ"ג של תקן ליניארי שהוכן קודם לכן והודגרו במשך הלילה ב-4°C (א) ללא PEG + NaCl, (ב) עם 9% PEG + 0.3 M NaCl (שילוב מקורי), ו-(ג) עם 20% PEG + 1.2 M NaCl (PEG מוגבר ומלח). לאחר מכן עובדו הדגימות באמצעות ערכת הקרקע לצורך מיצוי DNA, כפי שמוסבר בפרוטוקול. נמצא כי תפוקת הדנ"א המופק עולה ב-60% בדגימות שפכים לפני עיבוד עם 9% PEG + 0.3 M NaCl בהשוואה ללא שלב עיבוד מקדים (איור 8), מה שמצביע על כך שעיבוד מקדים של משקעים מסוג PEG ו-NaCl חיוני לקבלת דנ"א בעל תפוקה גבוהה מדגימות שפכים. ראוי גם לציין כי בעוד שתפוקת הדנ"א הכוללת, כולל דנ"א גנומי בעל משקל מולקולרי גבוה (gDNA), נמוכה יותר כאשר משתמשים ב-PEG גבוה ובמלח למשקעים, שיעור הדנ"א בעל משקל מולקולרי נמוך מועשר (איור 8). ניתן לייחס את הירידה בתפוקה הכוללת בהעלאת PEG ומלח לאופי צמיגי מאוד של PEG, אשר יכול להוביל לאובדן כדורי DNA בעת הסרת הסופרנטנט. זה מחזק את הטיעון של שיטת מיצוי הדנ"א המוצעת בשלב (איור 9), שבה דנ"א בעל משקל מולקולרי גבוה יכול להיות מופק תחילה באמצעות משקעים נמוכים של PEG ו-NaCl, והסופרנאטנט שנוצר יכול להיות נתון לסבב נוסף של עיבוד מקדים עם PEG ו-NaCl מוגברים כדי לחלץ ביעילות את הדנ"א בעל המשקל המולקולרי הנמוך שנמלט מסבב המשקעים הראשון.
איור 1: עיבוד מקדים של דגימות שפכים. סכמטי המציג את זרימת העבודה מאיסוף דגימות ועד מיצוי DNA. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: פרופיל ג'ל טיפוסי של דנ"א המופק מדגימות שפכים. נפח של 50-100 מ"ל (כפי שמצוין באיור) של שפכים שנדגמו מאתרים שונים היה מנוטרל בחום על ידי דגירה ב 70 ° C במשך 4 שעות. לאחר מכן הוא הודגר עם 9% PEG ו-0.3 M NaCl למשך הלילה בטמפרטורה של 4°C ולאחר מכן עובד כדי לחלץ DNA באמצעות אדמה או ערכת מים. כ-150 ננוגרם של דנ"א שהופק הועמס על ג'ל אגרוז 1% יחד עם סולם זוגות בסיס של קילו אחד (kb) כסמן ועבר אלקטרופורזה (90 וולט, 30 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. הטבלה מימין מפרטת את מקורות איסוף הדגימות, נפח השפכים המעובדים והערכה המשמשת להפקת DNA עבור כל נתיב. (STP: מכון טיהור שפכים; UVR: קרינה אולטרה סגולה) לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 3: דגימות שפכי STP מראות תפוקת דנ"א כוללת ירודה. נפח של 40 מ"ל שפכים שנדגמו משפכים ושפכים של STP היו מנוטרלים בחום על ידי דגירה בטמפרטורה של 70 מעלות צלזיוס למשך 4 שעות. לאחר מכן הוא הודגר עם 9% PEG ו-0.3 M NaCl למשך הלילה בטמפרטורה של 4°C ולאחר מכן עובד כדי לחלץ DNA באמצעות ערכת אדמה או מים או ערכת מיצוי DNA גנומית חיידקית. כ-150 ננוגרם של דנ"א כולל שהופק הועמס על ג'ל אגרוז 1% יחד עם סולם 1 קילובייט כסמן ועבר אלקטרופורזה (90 וולט, 30 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. ריכוז הדנ"א המופק עבור דגימות הקולחים היה מתחת ל-1 ננוגרם/מ"ל של שפכים ולכן לא ניתן היה לדמיין זאת. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 4: יצירת תקן גודל דנ"א ליניארי לבדיקת היעילות של משקעי דנ"א בעלי משקל מולקולרי נמוך. חמישה מקטעי DNA בגדלים שונים נוצרו על ידי הגברת PCR באמצעות E . coli (MG1655) DNA גנומי כתבנית ופריימרים ותנאים כמתואר בטבלה 2. DNA מטוהר (~ 1 מיקרוגרם) עם ערכת טיהור PCR הועמס על ג'ל אגרוז 1% יחד עם סולם 1 קילובייט כסמן והיה נתון לאלקטרופורזה (90 V, 40 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. הנתיבים מסומנים בשמות גנים שמהם הוגבר הקטע ובגודל האמפליקון הצפוי. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 5: דנ"א בעל משקל מולקולרי נמוך משוחזר ביעילות רק בריכוז ה-PEG הגבוה ביותר (30%). קלט DNA (3.34 מיקרוגרם) מהתקן בגודל שנוצר בעבר טופל בשילובים שונים של PEG ו- NaCl כפי שמצוין באיור וחולץ כמפורט בפרוטוקול. מהירות הצנטריפוגה בה נעשה שימוש הייתה 15,000 x גרם. עבור קלט (נתיב 3) ו- 1.2 M NaCl + 30% PEG (נתיב 7), 0.8 מיקרוגרם DNA הועמס על הג'ל. עבור השאר, מכיוון שהתשואה הכוללת הייתה נמוכה, הכמות הכוללת של DNA שהופקה ב -16 μL הועמסה וסולם 1 קילובייט הועמס כסמן גודל על ג'ל אגרוז 1% והיה נתון לאלקטרופורזה (80 V, 45 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. התיבה הלבנה מדגישה את הפס הנמוך ביותר של 150 bp. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 6: התאוששות דנ"א במשקל מולקולרי נמוך נקבעת על-ידי ריכוזי PEG גבוהים ולא על-ידי ריכוזי מלח גבוהים. (A) קלט דנ"א (14 מיקרוגרם) מהתקן בגודל טופל בשילובים שונים של PEG ו-NaCl, כפי שמצוין באיור, והופק באמצעות משקעי אתנול כמפורט בפרוטוקול. מהירות הצנטריפוגה בה נעשה שימוש הייתה 15,000 x g ו- 20,000 x g, כפי שמצוין באיור. כל כמות הקלט DNA ו- DNA שחולץ, יחד עם סולם 1 קילובייט, הועמסו על ג'ל אגרוז 1% והיו נתונים לאלקטרופורזה (90 V, 30 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. (B) קלט DNA (15.67 מיקרוגרם) מהתקן בגודל שנוצר קודם לכן טופל בשילובים שונים של PEG ו-NaCl, כפי שמצוין באיור, וחולץ כמפורט בפרוטוקול. מהירות הצנטריפוגה בה נעשה שימוש הייתה 15,000 x גרם. DNA שהופק (1.5 מיקרוגרם) הועמס לכל נתיב וסולם 1 קילובייט הועמס כסמן גודל על ג'ל אגרוז 1% ועבר אלקטרופורזה (80 וולט, 45 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. התיבה הלבנה מדגישה את הפס הנמוך ביותר של 150 bp. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 7: התאוששות הדנ"א הגנומי והפלסמיד אינה מושפעת באופן משמעותי מעלייה בריכוז PEG ו-NaCl. קלט DNA (9 מיקרוגרם; 4.5 מיקרוגרם פלסמיד ו-4.5 מיקרוגרם דנ"א גנומי) טופל בשילובים שונים של PEG ו-NaCl כפי שמצוין באיור וחולץ כמפורט בפרוטוקול. מהירות הצנטריפוגה בה נעשה שימוש הייתה 15,000 x גרם. כל כמות הקלט DNA ו- DNA שחולץ, יחד עם סולם 1 קילובייט, הועמסו על ג'ל אגרוז 1% ועברו אלקטרופורזה (90 V, 45 דקות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. הקופסאות הלבנות מציינות את הדנ"א הגנומי ואת הדנ"א הפלסמיד. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 8: עיבוד מקדים של משקעים עם PEG ו-NaCl חיוני להפקת דנ"א משפכים בעלי תפוקה גבוהה. שפכים מומתים בחום (70°C, 4 שעות) (20 מ"ל) הוזנקו ב-10 מ"ג של תקן ליניארי שהוכן קודם לכן והודגרו במשך הלילה ב-4°C ללא PEG ו-NaCl או ריכוזי PEG ו-NaCl משתנים כפי שמצוין באיור. לאחר מכן הוא עובד כדי לחלץ DNA באמצעות ערכת אדמה. קלט DNA (4 מיקרוגרם) המשמש לדוקרציה (נתיב 1), ו- DNA שהופק (4 מיקרוגרם) עם שלב עיבוד מקדים של 9% PEG + 0.3 M NaCl (נתיב 3) הועמס על ג'ל אגרוז 1%. בשאר התנאים, כל כמות הדנ"א שחולץ הועמסה על הג'ל מכיוון שהתשואה הייתה נמוכה. סולם של 1 קילובייט הועמס גם הוא כסמן גודל. הג'ל היה נתון לאלקטרופורזה (70 V, 2 שעות). DNA הודגם תחת אור אולטרה סגול (UV) באמצעות הצבע SYBR SAFE. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 9: שיטה מדורגת מוצעת להפקת דנ"א משפכים כדי להעשיר דנ"א במשקל מולקולרי גבוה ונמוך. תרשים זרימה המתאר שיטה דו-שלבית של מיצוי DNA משפכים עם שלב עיבוד מקדים ראשוני באמצעות ריכוז PEG ו-NaCl נמוך. הסופרנאטנט מהצעד הראשון נתון לסבב נוסף של משקעים טרום עיבוד עם PEG מוגבר ו- NaCl כדי לחלץ ביעילות דנ"א במשקל מולקולרי גבוה ונמוך משפכים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
טבלה 1. שימוש קודם ב-PEG וב-NaCl במחקרים להפקת DNA מדגימות סביבתיות. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.
טבלה 2. רצפי פריימר ותנאי PCR ליצירה סטנדרטית. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.
טבלה 3. תפוקת DNA ואיכותו המתקבלים מדגימות שפכים במשך חודשיים בשנת 2023. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.
AMR הוא אחד מעשרת האיומים הבריאותיים המובילים כיום, כפי שצוין על ידי ארגון הבריאות העולמי, ומעקב סביבתי אחר AMR מוכר ככלי חשוב ברחבי העולם. כפי שהוזכר במבוא, תיעוד מקיף של AMR סביבתי כולל דנ"א בעל משקל מולקולרי נמוך, מקוטע וחוץ-תאי. פרוטוקול העיבוד המקדים שדווח כאן באמצעות ריכוז גבוה של PEG בשילוב עם מלח (30% PEG ו-1.2 M NaCl) משיג תוצאה זו על ידי העשרת שיעור הדנ"א בעל משקל מולקולרי נמוך מבלי להשפיע על מיצוי שברים בעלי משקל מולקולרי גבוה יותר (בעיקר דנ"א גנומי ופלסמיד). זאת בניגוד לשיטות ריכוז קודמות המשתמשות בפרוטוקולי PEG נמוכים יותר וקיט ישיר (ללא עיבוד מקדים) המסורבלים בשל הצורך בעיבוד נפחים גדולים. עיבוד מקדים עם ריכוזי PEG נמוכים יותר לא היה יעיל בשחזור דנ"א במשקל מולקולרי נמוך ("נמוך" מתייחס כאן לפסי דנ"א מתחת ל-600 bp). כאשר לא נעשה שימוש ב-PEG במהלך עיבוד מקדים, מיצוי הדנ"א גרוע, וכתוצאה מכך רק 10% מהדנ"א הקלט משוחזר, לעומת 70% כאשר משתמשים ב-PEG וב-NaCl (איור 8). בנוסף לתוספת של PEG ו- NaCl, צעד חשוב נוסף הוא הסרת שאריות אתנול לאחר מיצוי DNA מהערכה כדי לקבל DNA טהור לעיבוד במורד הזרם. חשוב לקבוע את נפח המים הראשוני הדרוש כדי לקבל כמות כוללת של לפחות ~ 300 ng עד 5 מ"ג DNA בנפח של 30-50 מ"ל עם ההדבקה. בניגוד ל-1 ליטר או יותר של מים המעובדים בדרך כלל להפקת דנ"א משפכים27,41, נמצא כי בשלב העיבוד המקדים המוצע כאן, די ב-27.5-40 מ"ל בלבד כדי לקבל דנ"א איכותי לעיבוד במורד הזרם. שפכים מכילים גם חלקיקים וחומר אורגני, אשר יכולים להכיל תאי חיידקים נספגים ו- DNA חוץ-תאי. לפיכך, ספיחת תאים ודנ"א המלווה בליזה של התא היא צעד חשוב להגדלת תפוקת ה- DNA. ריכוזי PEG גבוהים הופכים את הדגימה לצמיגה ויכולים לעכב את שלבי הליזה והספיחה למיצוי DNA, כאמור. כדי להימנע מכך, הוצעה שיטה מדורגת למיצוי דנ"א, כפי שמתואר בתרשים הזרימה (איור 9). שיטה זו תסייע בחילוץ דנ"א תוך-תאי בעל משקל מולקולרי גבוה (איור 7), ודנ"א חוץ-תאי בעל משקל מולקולרי נמוך מקוטע ומעגלי.
אחת המגבלות הנוכחיות של פרוטוקול זה במונחים של הוצאות היא המשך עיבוד של DNA מועשר במשקל מולקולרי נמוך באמצעות ערכה לשיפור האיכות. מגבלה זו ניתנת לעקיפה באמצעות שיטות אחרות של ניקוי DNA, כמו מיצוי פנול-כלורופורם. מגבלה מעשית נוספת היא טיפול בריכוזי PEG גבוהים מכיוון שהגלולה עלולה ללכת לאיבוד בשל צמיגות גבוהה של התמיסה. נכון לעכשיו, עיבוד מקדים באמצעות PEG ו- NaCl מתבצע, ואחריו גרסה שונה של פרוטוקול ערכה קיים, כלומר, הערכה עדיין משמשת לטיהור DNA סופי. טיהור ללא ערכה של DNA, אשר נותן תפוקת DNA גבוהה אך של טוהר נמוך (לא דווח כאן), הוא אופטימיזציה כדי לשפר את איכות ה- DNA שחולץ. בשל האופי הצמיגי של תמיסות PEG, יש לכוון לריכוז PEG אופטימלי שיכול להניב מגוון רחב של גדלי DNA ועם זאת להיות מטופל בנוחות. הורדת הריכוז ל-20% (איור 6B) השיגה תוצאה המתווכת ליעילות מיצוי של PEG נמוך (9%) וגבוה (30%); זה עשוי להיות שווה מעקב בעבודה בעתיד.
PEG משמש באופן שגרתי במהלך שלבים שונים של מיצוי DNA מדגימות סביבתיות. עם זאת, השימוש ב-PEG לא עבר סטנדרטיזציה למיצוי DNA בהקשר של מעקב AMR. מעקב אחר שפכים כרוך באיתור עמידות מיקרוביאלית בנישות רבות ושונות, כולל STPs (שפכים וקולחים) וניקוז פתוח וסגור 8,27. בעוד שהמידע על AMR בשפכים מספק מידע חיוני על העמידות המסתובבת בקהילה, נוכחותם של גנים של AMR בשפכים חשובה באותה מידה כדי למדוד ולחזות את הופעתן של התפרצויות עמידות. דגימות קולחים בדרך כלל יש עומס מיקרוביאלי נמוך מאז רוב התאים נהרגים במהלך תהליך הטיפול, וכתוצאה מכך תפוקת DNA התא נמוכה מאוד. עם זאת, הקולחים מכילים דנ"א צף חופשי חוץ-תאי הכולל הן דנ"א גנומי בעל משקל מולקולרי גבוה והן פלסמיד בעל משקל מולקולרי נמוך, פאגמידים ודנ"א מקוטע. גנים AMR הנמצאים בדנ"א במשקל מולקולרי נמוך (הן מקוטעים והן פלסמיד/פאגמידים) יכולים לעבור לתאים החיים הנותרים בקולחים, מה שמוביל להפצת עמידות 30,41,45. לכן, חשוב לזהות DNA חוץ-תאי בעל משקל מולקולרי נמוך בשפכים. שיטות אחרות המשמשות להפקת DNA משפכים בעת הערכת AMR בדרך כלל אינן מבטיחות העשרה ראשונית של DNA במשקל מולקולרי נמוך. גישה זו של מיצוי DNA משפכים יכולה לשמש כדי לספק מידע על התנגדות מקיפה של הסביבה.
המחברים מצהירים כי אין ניגודי עניינים.
אנו מכירים בתמיכת מימון מקרן רוקפלר (מענק קרן רוקפלר מספר 2021 HTH 018) כחלק מצוות APSI הודו (Alliance for Pathogen Surveillance Innovations https://data.ccmb.res.in/apsi/team/). אנו מכירים גם בסיוע הכספי שניתן על ידי בנק Axis לתמיכה במחקר זה ובית הספר Trivedi למדעים ביולוגיים באוניברסיטת אשוקה עבור ציוד ותמיכה אחרת.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-seat microcentrifuge | Eppendorf Centrifuge 5425 R | EP5406000046 | |
Absolute Ethanol (Emsure ACS, ISO, Reag. Ph Eur Ethanol absolute for analysis) | Supelco | 100983-0511 | |
Agarose | Invitrogen | 16500500 | |
Bench top refrigerated centrifuge | Eppendorf Centrifuge 5920 R | EP5948000131 | |
ChemiDoc Imaging System | BioRad | 12003153 | |
DNeasy PowerSoil Pro Kit | Qiagen | 47014 | |
DNeasy PowerWater Pro Kit | Qiagen | 14900-100-NF | |
dNTPs (dNTP Mix 10mM Each,0.2 mL, R0191) | Thermo Fisher | R0191 | |
DreamTaq DNA Polymerase, 5 U/µL + 10x DreamTaq Buffer* | Thermofscientific | EP0702 | |
E-Gel 1 Kb Plus Express DNA Ladder | Invitrogen | 10488091 | |
Maxiamp PCR tubes 0.2 mL | Tarsons | 510051 | |
Molecular Biology Grade Water for PCR | HiMedia | ML065-1.5ML | |
NanoDrop OneC Microvolume UV-Vis Spectrophotometer | Thermo Scientific | 13400519 | |
Parafilm | Bemis | S37440 | |
PEG-8000 | SRL | 54866 | |
QIAquick PCR & Gel Cleanup Kit | Qiagen | 28506 | |
Qubit 4 Fluorometer (with WiFi) | Thermofisher | Q33238 | |
Qubit Assay Tubes | Thermofisher | Q32856 | |
Qubitt reagent kit for ds DNA, broad range | Thermo Scientific | Q32853 (500 assays) | |
Sodium Chloride | HiMedia | TC046M-500G | |
SYBR Safe DNA Gel Stain | Invitrogen | S33102 | |
T100 Thermal Cycler | BioRad | 1861096 | |
Thermo Cycler (ProFlex 3 x 32-well PCR System) | Applied Biosystems | 4484073 | |
Wizard Genomic DNA Purification Kit | Promega | A1125 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved