Method Article
פרוטוקולים עבור היערכות תקופות הגולמי ומדידה של אגף פיגמנטציה של דרוזופילה guttifera מתוארים. האחסון הזמני, כימות של פיגמנטציה לספק בסיס מוצק לימוד מנגנוני התפתחותית של תכונות למבוגרים ולאפשר השוואה interspecific של תכונה הפיתוח.
מגוונת מיני דרוזופילה (זבוב הפירות) מספקים הזדמנויות ללמוד מנגנונים של פיתוח, שינויים גנטיים אחראים שינויים אבולוציוניים. בפרט, השלב למבוגרים הוא מקור עשיר של תכונות מורפולוגיות להשוואה interspecific, כולל השוואה פיגמנטציה כנף. במחקר התפתחותי הבדלים בין המינים, התבוננות מפורטת ובימוי המתאים נדרשים עבור השוואה מדויקת. כאן נתאר פרוטוקולים הזמני של תקופות הגולמי, כימות של אגף פיגמנטציה של זבוב פירות מנוקד, guttifera דרוזופילה. ראשית, אנו מתארים את שיטת עבור ההגדרה של שלבים הגולמי בהתבסס על מורפולוגיות ופיקוח מורפולוגי מפורט. שיטה זו כוללת טכניקה עבור הסרת את puparium, כמו במקרה chitinous החיצוני של הגולם, כדי לאפשר התבוננות מפורטת מורפולוגיות הגולמי. שנית, אנו מתארים שיטה למדידת משך שלבים מוגדרים הגולמי. לבסוף, אנו מתארים את השיטה על כימות של פיגמנטציה כנף בהתבסס על ניתוח התמונה באמצעות תמונות דיגיטליות ותוכנה ImageJ. באמצעות שיטות אלה, אנו יכולים להקים בסיס מוצק להשוואת תהליכים התפתחותיים של תכונות למבוגרים בשלבים הגולמי.
חלק תכונות מורפולוגיות דרוזופילה מגוונים בין המינים1,2,3,4,5. עלינו לגשת לשאלה של גיוון איך מורפולוגי נשאלת על ידי השוואת את המנגנונים של דור מורפולוגיות אלה. דוגמאות כאלה מורפולוגיות הם trichomes זחל, מסרקים המין למבוגרים, המנגנון איברי המין החיצוניים, פיגמנטציה בטן ואגף פיגמנטציה6,7,8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15. ללמוד הבדלים מורפולוגיים בין מבוגרים, התבוננות וניתוח של השלבים הגולמי הם חשובים, כי גורלו של תכונות למבוגרים נקבע לפי הזחל מאוחר וממשיך מורפוגנזה הבאים במהלך תקופת הגולמי.
בלימודי ביולוגיה התפתחותית דרוזופילה melanogaster, "שעות APF" (שעות לאחר היווצרות הגולמי) היא השיטה הנפוצה כדי לציין גולמי16. מערכת זו מעסיקה זמן מוחלט לאחר היווצרות הגולמי, והוא מאוד נוח עבור ניסויים שגרתית. עם זאת, מהירות התפתחותי עשויים להיות שונים בין הגלמים, עשוי להיות מושפע הבדל גנטי, epigenetic או microenvironmental ואת ולכן נתקל באותו זמן מוחלט לאחר היווצרות הגולמי אינה מבטיחה כי הגלמים הם באותו שלב התפתחותי. במקרים רבים, שלבים מוגדרים על-ידי תכונות מורפולוגיות עדיפים להשוואת בכמה אנשים. במיוחד, השוואה בין מינים דורש היערכות מדויק השוואה בין שלבים (הומולוגיים) המתאים.
Bainbridge ו- Bownes17 מוכר 20 שלבים הגולמי (P1 כדי P15(ii)) מבוסס על תכונות מורפולוגיות של הגלמים melanogaster דרוזופילה . לביום היא השיטה הנפוצה ביותר של מורפולוגי הזמני התפתחותית18. במחקר הקודם, ביצענו staging הגולמי של דרוזופילה guttifera להקים בסיס הכנף פיגמנטציה מחקרים19. Guttifera ד יש דפוס שחור עם נקודות על הכנפיים והוא אחד המינים מודל עבור אגף פיגמנטציה היווצרות20. למרות הפננו את הקריטריונים מורפולוגי שמתואר Bainbridge של Bownes' מחקר17, מדדנו ישירות משכים הבמה על ידי תצפיות טורי19, במקום להשתמש שערוך Bainbridge ו Bownes' הבמה המשכים מתדר שנצפו. כאן נתאר את השיטה של היערכות הגולמי ואת מדידה של המשכים של הגולמי שלבי דרוזופילה בשימוש ואחFukutomi19.
ללמוד מנגנון התפתחותית של אגף פיגמנטציה, עלינו לדעת מתי בשלבים הגולמי או למבוגרים הפיגמנטציה. Fukutomi et al. 19 לכמת צפיפות אופטית (נחמד) של פיגמנטציה בשלבים הגולמי ומבוגרים על-ידי ניתוח תמונות של תמונות כנף. הפיגמנטציה של כנפיים דרוזופילה נחשב נגרמת על ידי הצטברות של מלנין שחור21. על כימות של מקרי מוות ממנת יתר, שימשו תמונות גווני אפור ו- ImageJ תוכנה (https://imagej.nih.gov/ij/)22 . כדי לזהות ולכמת את הפיגמנטציה במקום ספציפי (ΔOD), אנחנו להחסיר OD מחוץ נקודה OD בתוך מקום. כדי להפוך שיטה זו אובייקטיבית הדירים, המקומות יתר המידה צריך להיות נחוש באמצעות אגף ורידים כמו ציוני דרך. במאמר זה נתאר בפירוט שיטה זו של כימות של פיגמנטציה כנף ב דרוזופילה guttifera.
1. לטוס מניות
2. תצפית של גולם בחדות שלבים הגולמי
הערה: הגולם להשגחה נלקח מן המלאי לטוס עם 12:12 h/כהה מחזור ב 25 º C. Bainbridge ו- Bownes17 תיאר סיכון נמוך של העברת melanogaster ד הגלמים מהמקום המקורי של התגלמות על חתיכת נייר טישו בטעימת (97% הישרדות של הגלמים הועברו 946). Guttifera ד הגלמים ניתן להכין למעשה באותה שיטה.
3. הסרת puparium
הערה: גלמי של דרוזופילה מכוסים במבנה הנקרא את puparium. חרק של Muscomorpha (זבובים) תזילו שלה לציפורן זחל-להתגלמות; במקום זאת, זה מחזק את הקוטיקולה לאחר apolysis, ואני משתמש בו בתור כיסוי מגן של הגולם, puparium24. גולם המתגוררים בתוך puparium יש לציפורן הגולמי האמיתי, וזה מאוד רכה ושבירה. לפני apolysis מתקיים סביב P4(ii), epithelia ו- puparium מחוברים יחד, ולכן הסרת את puparium ללא נזק קשה מאוד. לאחר P5, הסרת את puparium היא מייגעת, אבל שימושי עבור ההגדרה של שלבים הגולמי ופיקוח מורפולוגי. התהליך מתבצע כדלקמן.
4. מדידת המשכים של שלבים הגולמי
5. מידת האינטנסיביות של כתמים שחורים על כנף
הערה: ניתן לכמת את עוצמת כתמים שחורים על כנף הגולמי או למבוגרים על ידי מדידת צפיפות אופטית (OD). מסנן זכוכית עם לקיחת ידוע (צפיפות מדורגת מסנן) משמש כיול25, כך ניתן לחשב את יתר של אזור מסויים של תמונה דיגיטלית של האגף. OD במקום ו- OD מחוץ במקום נמדדים ולאחר שהאחרון יופחת מ לשעבר כדי לקבל את העוצמה של המקום (ΔOD). כאן, אנו מתארים את השיטה של דיסקציה, מדידה וחישוב של ΔOD. הליך זה יכול להיעשות לאחר שלב 2, עצמאית שלב 3, שלב 4. וברגע אחד הופיעה בשלב 2 ומבין כל השלבים הגולמי, ניתן ישירות להתחיל או חזור על שלב 5.
תקופת guttifera ד הגולמי מחולק 17 שלבים (P1 - P15(ii); תמונות של נציג שלושה שלבים (P1, P5 - 6, P10) מוצגים באיור 3, בכל שלבי 17 מומחשים איור 4). למרות Bainbridge ו- Bownes17 מזוהה 20 שלבים melanogaster ד, חלק השלבים האלה לא היתה אפשרות להחיל כדי guttifera ד. את הסדר של שני אירועים התפתחותיים, את המראה של הגוף הצהוב (מסה של תאים לשפוך בתוך פיתול26) ואת העיתוי של בקוריאנית Malpighian הופכת לירוקה, הם לא תחת פיקוח קפדני ב guttifera ד, ומכאן אנו יכולים לא נפרד P5 (i ), P5(ii) ו- P6. כמו כן, בניגוד ב ד melanogaster, העיתוי של השחרה של בית החזה והבטן סומרות סונכרן, ולכן אנחנו יכולים לא נפרד P11(i) ו- P11(ii)19.
אנו יכולים למדוד את אורך השלבים הגולמי של guttifera ד (טבלה 3, Fukutomi et al.19). כל התקופה הגולמי הוא ארוך יותר מזה של melanogaster ד בגיל 25 ° C17כ 20 h. אנחנו מחושבים ΔODs של האזורים מסביב campaniform sensillum, עצה וריד האורך, crossvein אחורי. כאן, אנו מראים את לקיחת ΔODs אצל מבוגרים 7 ימים לאחר וגיחתו (טבלה 4). על ידי השוואת הנתונים של שלבים רבים, מצאנו כי שלב P12(i) הוא התזמון של היווצרות פיגמנטציה, פיגמנטציה הזאת הושלמה על ידי 24 שעות לאחר וגיחתו (איור 5, מן המדידות המקורי בשימוש Fukutomi et al. 19).
איור 1. איור של הסרת puparium. (א) במקום צדדי הגחון גולם למעלה על נייר-דבק דו צדדי. הסר את החלק הקדמי של puparium. (ב) לשבור את puparium עם מלקחיים מן הצד הבטני. (ג) לאחר שבירת את puparium, להוציא הגולם שימוש במכחול. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
באיור 2. ההגדרה של אזור למדידת פיגמנטציה. (א) מנקודה A עבור נקודה המשויכת של sensillum campaniform. (B) B נקודה על נקודה המשויכת טיפ וריד האורך. (ג) הנקודה C עבור נקודה המשויכת crossvein האחורי. (ד) נקודה D עבור אזור הבקרה. סולם מציינות 250 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 3. דוגמאות לשלבים הגולמי מוגדרים. (א) גולם של שלב P1 מכוסה puparium. (ב) גולם של שלב P5 - 6. (ג) גולם של שלב P10. Puparia יוסרו לפני התצפית (ב') ו- (ג). סולם מציינות 500 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
באיור 4. איורים של 17 שלבים הגולמי שתוארה guttifera ד. (א) P1, puparium הוא לבן. (ב) P2, צבע puparium הוא חום בהיר. (ג) P3, בועה הוא ציין הצד הלטראלי (חץ שחור). (ד) P4(i), הבועה הוא גדול יותר מאשר ב- P3 (חץ שחור), הגולם הוא קליל ב- PBS. (ה) P4(ii), פער הוא ציין החלק הקדמי (חץ שחור), החלק האחורי (ראש חץ אפור). (ו) P5 - 6, Malpighian בקוריאנית להעביר (קשה לראות אם מכוסה על ידי puparium). הצורה הגולמי נוצר על ידי האפיתל הגולמי ואת לציפורן הגולמי. (ז) P7, יכול להיות שנצפו הגוף צהוב בצד הגבי (חץ שחור). (ח) P8, העיניים הן צהוב. (I) P9, העיניים הן אמבר. (י) P10, העיניים אדומות (K) P11 סומרות מסלולית ו- ocellar (ראש חץ אפור), vibrissae, macrochaetae בית החזה (חץ שחור), סומרות tarsal הינם שחור גלויה. (יב) P12(i), קצות הכנפיים הן אפורות. (ז) P12(ii), כל חלקי הכנפיים הם אפור (חץ שחור). (N) P13, הכנפיים הם שחור לגמרי. (טו) P14, הראש והרגליים לחלוטין החשוך. (טז) P15(i), meconium יכול להיות שנצפו על הבטן הגבי (חץ שחור). (יז) P15(ii), הזבוב הוא eclosing. פירוט השלבים האלה מתוארים Fukutomi et al. 19 אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 5. פיתוח של פיגמנטציה סביב sensillum companiform על כנף. חוגים מציינים ΔODs בודדים, אופקיות מציינים ממוצעים. P10: n = 10, P11: n = 10, 12(i): n = 10, P15(i): n = 11, 3 ח': n = 8, 24 ח': n = 7, 7 ימים: n = 10. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
רכיב | |
סוכר לבן רך | 51.6 g |
קמח תירס | 172.4 g |
גריסים תירס - C | 86.4 גרם |
שמרים בירה יבשה | 106 g |
אבקת אגר | 35.28 g |
ddH2O | 4000 mL |
מרתיחים 30 דקות ומניחים להצטנן עד 70 מעלות צלזיוס. | |
להוסיף 4 g של בוטיל p-hydroxybenzoate מומס 40 מ"ל אתנול. | |
מערבבים היטב ויוצקים 9 מ ל כל אחד לתוך צלוחיות פלסטיק (בקוטר 25 מ מ x גובה 96 מ מ). |
טבלה 1. ההרכב של מזון קמח תירס/סוכר/שמרים/אגר רגיל.
רכיב | כמות |
NaCl | 80 גר' |
אשלגן כלורי | דור 2 |
נה2HPO4·12H2O | ג'י 29 |
2פו ח'4 | דור 2 |
ddH2O | עד 10 L |
ערכת pH 7.4 |
בטבלה 2. ההרכב של PBS (1 X).
הבמה | זאת אומרת של משך (h) | ש | n |
P1 - 2 | 1.7 | 0.65 | 16 |
P3 | 2.1 | 0.65 | 16 |
P4(i) | 2.1 | 1.69 | 19 |
P4(ii) | 0.3 | 0.28 | 29 |
P5 - 6 | 5.0 | 3.07 | 30 |
P7 | 31.9 | 7.22 | 46 |
P8 | 9.6 | סיכון 2.81 | 57 |
P9 | 10.9 | 2.66 | 55 |
P10 | 11.7 | 2.96 | 39 |
P11 | 4.4 | סיכון 2.81 | 44 |
P12(i) | 1.1 | 0.76 | 44 |
P12(ii) | 2.0 | 0.70 | 43 |
P13 | 2.2 | 0.68 | 10 |
P14 - 15(i) | 28.6 | 2.75 | 10 |
P15(ii) | 1.4 | 0.87 | 10 |
סה | 121.7 |
בטבלה 3. נמדד המשכים של שלבים הגולמי של guttifera ד.
OD | ΔOD | |||||||
Campaniform sensilum | וריד האורך עצה | Crossvein האחורי | שליטה | Campaniform sensilum | וריד האורך עצה | Crossvein האחורי | ||
הפרט | (נקודה A) | (הנקודה B) | (נקודה C) | (נקודה D) | (נקודה A - נקודה D) | (הנקודה B - נקודה D) | (נקודה C - נקודה D) | |
1 | 0.549 | 0.484 | 0.515 | 0.256 | 0.293 | 0.228 | 0.259 | |
2 | 0.529 | 0.489 | 0.516 | 0.254 | 0.275 | 0.235 | 0.262 | |
3 | 0.546 | 0.48 | 0.533 | 0.255 | 0.291 | 0.225 | 0.278 | |
4 | 0.583 | 0.496 | 0.566 | 0.255 | 0.328 | 0.241 | 0.311 | |
5 | 0.523 | 0.479 | 0.528 | 0.235 | 0.288 | 0.244 | 0.293 | |
6 | 0.572 | 0.509 | 0.546 | 0.265 | 0.307 | 0.244 | 0.281 | |
7 | 0.568 | 0.511 | 0.56 | 0.256 | 0.312 | 0.255 | 0.304 | |
8 | 0.56 | 0.507 | 0.562 | 0.27 | 0.29 | 0.237 | 0.292 | |
9 | 0.551 | 0.485 | 0.569 | 0.259 | 0.292 | 0.226 | 0.31 |
בטבלה 4. נמדד מקרי מוות ממנת יתר של ΔODs של guttifera ד מבוגרים 7 ימים לאחר וגיחתו.
נתאר כאן את הפרוטוקולים עבור ההגדרה של שלבים הגולמי, הסרת את puparium להשגחה מפורט, מדידת המשכים של שלבים הגולמי, מידת האינטנסיביות של כתמים שחורים על כנף ב guttifera ד. פרוטוקולים אלה יכול להיות מיושם עבור רבים דרוזופילה , הקשורות לטוס זן במיוחד עם כנף פיגמנטציה.
התבוננות מעמיקה ותיאור מפורט יותר אירועים התפתחותיים תאפשר בהמשך חלוקת משנה של שלבים. במקרים רבים, אירוע התפתחותיות הדורשות ניתוח או חלוקתה של גולם אינה מתאימה להגדרת הבמה, כי אחד צריך להרוג גולם עבור האחסון הזמני, ושימוש נוסף של אותו אדם היא קשה. לשימוש של זן דרוזופילה חדש, אחד צריך להעסיק שקירב מחוץ puparium התפתחותי אירועים בשלב הראשון. בהתאם למטרת המחקר, אחד יכול אז עוד יותר לסעף שלבים בהתבסס על organogenesis מסוים או אירועים התפתחותיים אחרים.
לשם השוואה interspecific שלבים מרובים, קושי פוטנציאלי הוא היפוך סדר אירועים התפתחותיים בין מינים (heterochrony27). לדוגמה, ב- ד melanogaster, צנורית Malpighian הופך ירוק, ואז הגוף הצהוב הופך גלוי, ואילו צו זה יכול. להיות הפוך כמה הגלמים של guttifera ד19. במקרה כזה, קשה השוואה קפדנית בין שלבים הומולוגיים. בהתאם התופעה של עניין, אחד ייתכן שתצטרך להגדיר מחדש או משנית שלב מסוים מבוסס על ארוע התפתחותי. לדוגמה, אנו יכולים בערך בחר הגלמים של P5 - 6, לעשות השוואה interspecific של ג'ין ביטויים באגפים הגולמי באמצעות אגף מורפולוגיה כמחוון של תזמון התפתחותית14.
בדרך כלל, זה לוקח 10-30 דקות כדי להסיר את puparium. אם אדם רוצה להתבונן במה קצר, גלמי צריך להיות מוכן לקחת בחשבון הזמן שעובר במהלך ההסרה puparium. לדוגמה, אם אדם רוצה לצפות P12(i) של guttifera ד, אשר רק משך 1.1 h, הכנת הגלמים ב P11 ייתן תוצאה טובה.
ב פרוטוקול שלנו, נייר טישו בטעימת משמש עבור הרקע של תמונות הגולמי. בהתאם שלב התצפית ומבנים אחד רוצה להראות דמות, אחד באפשרותך להשתמש נייר טישו לבן או שחור. עבור P3 למעבר P4(ii), העמדה של בועת גולם חשובה להבחנה בין שלבים, נייר טישו השחור מועיל לבחון את המיקום של הבועה. עבור השלבים לאחר P5, נייר טישו לבן עדיף כי זה מועיל לבחון את גוף צהוב, צבע עיניים, סומרות וצבע הגוף.
Bainbridge Bownes17 מוערך משך שלבים הגולמי מן התדר שלהם של המראה. הטבלה הזמני שלהם היא הנפוצה ביותר עבור melanogaster ד18. עבור השיטה שלהם, הם מוכנים ארבע בקבוקים מזון המכיל חמש נשים בוגרות, חמישה גברים מבוגרים שמר אותם בחושך ו ואז הגלמים באקראי הוצאו מן בקבוק אחד כל 11, 12, 13 ו- 14 ימים לאחר תחילתה של הנחת הביצה. הם נספרים מספר הגלמים בשלבים מסוימים, לחשב את הממוצעים. האורך של כל שלב הגולמי יכול להיות מוערך בהתבסס על הנתונים של משך הזמן הכולל של התקופה הגולמי ונתונים אלה תדר. בעיה אחת עם שיטה זו היא כי זה לא ניתן להשתמש כדי להעריך את משך הזמן המדויק של שלבים הגולמי אם התזמון התפתחותית נוטה להיות מסונכרנים בין הגלמים.
למעשה, ניסינו Bainbridge שיטת של Bownes ב guttifera ד, השגנו נתונים משוחד בגלל סינכרון בין הגלמים. אנחנו לא יוכל לזהות את הגורם לתופעה, אך כמה אפשרויות 1) גלמי נשמר שעון ביולוגי מהשלב הצעיר שלהם ו/או 2) הם הגיבו החשיפה לאור שהתרחשה תצפית. לכן, החלטנו למדוד את משך שלב בפועל על ידי תצפית ישירה. פעולה זו ממזערת הטיה הנגרמת על ידי שעון ביולוגי.
השיטה המתוארת כאן היא שיטה לכמת הצטברות נוספת של מלנין בעור כתמים בהשוואה שלהם שליטה והסביבה (ΔOD), על-ידי חיסור OD של אזור הבקרה מ OD של האזור ספוט. שיטה זו בהשראת שיטה לכימות תוכן ה-DNA גרעיני על-ידי Feulgen מכתים ותמונה ניתוח (28,densitometry29). כאחת הבעיות האפשריות עבור יישום שיטה זו כנף פיגמנטציה, ΔOD יכול להיות ערך שלילי, במיוחד כאשר גולם צעיר מאוד ויש לו כמעט שום פיגמנטציה. בשלבים יותר, יתכנו קצת פיגמנטציה באזור הבקרה. השימוש OD פשוטה של האזור ספוט עצמה הולמת במקום ΔOD בהתאם למטרת המחקר. במקרה של guttifera ד, השימוש OD פשוטה במקום ΔOD לא שינתה את הנטייה של נתוני או את המסקנות של המחקר.
המחברים יש אין ניגוד אינטרסים.
אנו מודים קרול B. שון וורנר תומאס על מתן מניות לעוף, Naoyuki הפתיל עבור ציוד, ביונג ג'ין סוק על עזרתו מצלם אגאטה Kiyokazu על הייעוץ, נקאג'ימה אליזבת לצורך עריכה באנגלית. עבודה זו נתמכה על ידי KAKENHI 17K 19427 ו טקדה למדע.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Drosophila guttifera | The Drosophila Species Stock Center at the U.C. San Diego | 15130-1971.10 | Drosophila guttifera, a fruit fly species used in this article |
Plastic vial | Hightech | MKC-30 | Plastic vial, for fly stock maintenance |
Buzz plugs vial and bottle closures for glass vials | Fisher Scientific | AS-271 | Cellulose plug, for fly stock maintenance |
White soft sugar | Mitsui Sugar | J-500g | White soft sugar, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Corn flour | Nippon Flour Mills | F | Corn flour, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Corn grits - C | Nippon Flour Mills | GC | Corn grits - C, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Agar powder | Matsuki Kanten Sangyo | No.602 | Agar powder, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Dry beer yeast | Asahi Food & Healthcare | Y2A | Dry beer yeast, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Butyl p-hydroxybenzoate | Nacalai Tesque | 06327-02 | Butyl p-hydroxybenzoate, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Ethanol | Wako | 057-00456 | Ethanol, for standard cornmeal/sugar/yeast/agar food |
Flat bottom microtube | Ina Optica | CF-0150 | 1.5 mL microtube, for collecting pupae |
CAPSULEFUGE | Tomy | PMC-060 | Mini microcentrifuge, for collecting pupae |
Sterilized Schale NB | Sansei Medical | 01-013 | Plastic Petri dish (diameter 90 mm x height 15 mm) |
Serum tube rack | Iwaki | 9796-050 | Used as a moist chamber, for observation of pupa |
Corning Falcon Easy-Grip tissue culture dish | Corning | 353001 | Plastic Petri dish (diameter 35 mm x height 10 mm) |
Falcon standard tissue culture dish | Corning | 353002 | Plastic Petri dish (diameter 60 mm x height 15 mm) |
Push-pin | Kokuyo | 51233709 | Push-pin, for making pinholes on the microtube lid |
Stereomicroscope | Olympus | SZX16 | Stereomicroscope, for morphological observation |
Digital camera | Olympus | DSE-330-A | Digital camera, for imaging |
NICETACK double sided tape | Nichiban | NW-15SF | Double sided tape, for removing puparium |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | Forceps, for removing puparium |
Van Gogh VISUAL Paint brush | Talens Japan | GWVR-#5/0 | Paint brush, for removing puparium |
Greiner CELLSTAR 12 well cell culture plate | Merck | 665-180 | 12-well cell culture plate, for measuring durations of pupal periods |
NaCl | Wako | 191-01665 | NaCl, for PBS |
KCl | Nacalai Tesque | 285-14 | KCl, for PBS |
Na2HPO4·12H2O | Wako | 196-02835 | Na2HPO4·12H2O, for PBS |
KH2PO4 | Nacalai Tesque | 28721-55 | KH2PO4, for PBS |
Stepped Neutral Density (ND) Filter 0.04 - 3.0 | Edmund Optics | 64-384 | Stepped density filter, for calibration of pigmentation measurement |
ImageJ software | NIH | 1.8.0-101 | ImageJ software, for measurement of intensity of black spots on a wing (https://imagej.nih.gov) |
FINE FROST glass slide | Matsunami Glass Ind | FF-001 | Glass slide, for measurement of intensity of black spots on a wing |
Square microscope cover glass 18 x 18 | Matsunami Glass Ind | C018181 | Cover slip, for measurement of intensity of black spots on a wing |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved