从成年小鼠的分离，培养和窦房结肌细胞的功能分析方法

方法证实，用于从膜片钳电生理学或成像研究成年小鼠窦房结细胞（自组装膜）的分离。分离的细胞可以直接使用，也可以在培养物中保持，以允许所关注的蛋白质，如遗传编码的记者的表达。

窦房结细胞（SAMS）作为心脏的起搏器自然，倡导通过产生自发的动作电位（APS）击败每一个心脏。这些起搏器的AP反映许多膜电流和细胞内钙循环的协调活动。然而，推动自发起搏器活动地对空导弹的确切机制仍然难以实现。急性分离的地对空导弹是实验解剖心脏起搏的分子基础的必要准备。然而，模糊的解剖，显微解剖复杂和挑剔的酶消化条件阻碍了广泛使用急性分离地对空导弹。此外，方法无法获得直到最近允许地对空导弹的长期培养的蛋白表达研究。在这里，我们提供了地对空导弹从成年小鼠中分离了一步一步的协议和视频演示。方法也证明了体外和expressi维持成年小鼠地对空导弹通过对腺病毒感染外源性蛋白质。急性分离，并通过这些方法制备培养的地对空导弹是适用于各种电生理和影像学检查。

在心脏的窦房结起搏细胞（窦房结细胞"地对空导弹"）产生自发的，有节奏的动作电位（APS），通过心肌传播发起每次心跳。使用急性分离地对空导弹许多种实验已经为有助于心脏起搏器活动的产生机制，阐明至关重要。地空导弹是从他们的心房和心室肌同行中的形态，功能和表达方面有很大不同高度专业化的心肌细胞。在自组装膜自发的AP的标志是舒张驱动的膜电位向阈值，以触发下一个AP ^1,2-期间自发去极化。这种"起搏器势"取决于许多不同的膜电流包括"滑稽电流"（我_f）中 ，T型和L型钙电流，钠钙交换CURR的协调活动耳鼻喉科_{（ⅠNCX），}这是由^钙释放从肌质网^3,4驱动。

虽然急性分离的小鼠地对空导弹是起搏的研究必不可少的实验准备，地空导弹的小鼠隔离可以通过一个具有挑战性的方法，因为鼠标SAN的模糊的解剖和小尺寸需要细致入微的显微切割和组合的酶和机械细胞解离需要仔细优化。

在这里，我们提供已被成功地用于从膜片钳记录^5-8成年小鼠隔离地对空导弹的协议的详细视频演示。据我们所知，没有这样的视觉可从任何其他来源的示范。此外，一个新的方法，证明了在该分离的SAM从成年小鼠可在体外维持数天，由此允许引入蛋白质，基因编码通过腺病毒感染⁹报告分子或RNAi。

所有的动物程序符合由美国科罗拉多州安舒茨医学校区的大学机构动物护理和使用委员会批准的方案进行。标准协议下一直使用雄性C57BL / 6J小鼠的2-3个月的年龄进行了优化。

1.准备解决库存和用品在实验中的研究进展

注:请参阅材料表进行必要的设备和用品。

1. 全台氏，低^钙 /镁^离子台氏，卡夫改良，Brühe（KB）解决方案，与牛血清白蛋白（BSA）解决方案:如表1所示，准备每个以下方法解决1升。使用过滤超纯去离子水中所有的解决方案。划分为长达六个月各溶液到50ml等分试样并储存在20℃。立即实验前解冻个人等份，并存储于4最多一周6℃。
2. 在超纯过滤的去离子水（ 见表1）溶解氯化钠和_氯化钙制备50毫升的10mM NaCl和1.8毫米氯化钙₂适应解的。在室温下储存长达六个月。
3. 吹打入微量离心管中制备弹性蛋白酶4.75酶活性单位（U）等分试样。储存在4℃下长达三个月。
4. 吹打成离心管准备375微克等分（超纯H ₂ O）胶原酶蛋白酶荟萃。储存在-20°C至三个月。
5. 准备两个火抛光的巴斯德吸液管，一个用于组织转移（〜1.5毫米最终开口直径; 图1Aiv和图1C）和一个用于解离（〜直径2毫米; 图1Aiii和图1C）。
   1. 得分巴斯德移液器用玻璃切割器和沿刻痕对齐，以产生大于所需尺寸稍大的开口。火- 波兰语各吸管的切断端为〜30-60秒以上上本生灯以产生厚的抛光壁和所需直径的开口的低火焰。确保火抛光开无任何裂缝或粗糙的边缘。
6. 通过加入准备两个夹层菜约25mL硅氧烷弹性体，根据制造商的指示对各100毫米的培养皿（ 图1AI和图1B）混合。允许在室温下固化48小时。
7. 文化只有:25-50准备每毫升电镀液和培养液按表2商店为最多两个星期在4℃。

2.准备解决方案中使用的细胞分离日

注:以下金额从一个鼠标窦房结细胞的分离。

1. 加入2.5倍mL的低的Ca ²⁺ / Mg ^2+离子的台罗德氏（pH为6.9），以每三个小，圆底培养管的秒。地方管在35±1℃水浴。
2. 加入2.5倍mL的低^钙 /镁^离子台氏到一个大圆底文化管。对此管中，加入1等份（4.75 U）弹性蛋白酶和一个等份（375微克）胶原酶蛋白酶结合。涡流混合。在35±1℃的水浴地方管。
3. 添加2.5毫升KB培养基至三个附加的小，圆底培养管和一个附加大圆底培养管中。地方管在35±1℃水浴。
4. 〜7个毫升BSA溶液加入到一个大底的培养管。保持此管在室温下。
5. 放置20-40毫升完成台氏溶液的在50毫升的烧杯中（ 图1Aii）。添加10 USP / ml肝素，漩涡混合，然后将烧杯在35±1℃水浴。

3.准备其他解决方案和材料培养细胞（跳过这些步骤为急性分离的细胞）

1. 在无菌组织培养罩，将每只小鼠2个12毫米的圆形玻璃盖玻片上成24孔板的各个孔中。
   注:24孔板被使用，因为孔是一个方便的大小，它用于限制用于随后的病毒感染的体积。
2. 吸管大约200μl的小鼠层粘连蛋白的100纳克/毫升的溶液在无菌磷酸盐缓冲盐水（PBS）稀释到每个盖玻片。
3. 孵育层粘连蛋白盖玻片在培养箱隔离（至少1小时）的在37℃下的持续时间。
4. 预暖的电镀培养基和培养基（来自步骤1.7和表3）至37℃。

4.窦房结隔离

1. 在化学通风橱中，放置一个鼠标在两腔室箱的一个室并通过棉签引入另一个室〜200μl的液体异氟烷麻醉。确认麻醉（通常在30〜60〜秒）用脚趾捏。安乐死通过颈脱位鼠标。
   注:空1毫升枪头盒可用于形成两腔盒;打开机架倒挂在框中创建单独的隔间为异氟醚，以防止老鼠直接接触它。
2. 胸部用剪刀样肋骨取出皮草揭露使用外部组织钳（ 图1Aviii）和解剖剪刀（ 图1Avix）胸腔。洗澡胸腔用约2ml温热完成台氏使用肝素移液管。
   注:继续洗澡胸腔必要的时候，不要让准备干。
3. 在解剖显微镜下，小心地取出肺和胸腺内部使用剪刀（ 图1Avi）和解剖钳（ 图1Avii）。
4. 虽然轻轻地捧着与内部解剖钳心脏的顶点，小心切开下腔静脉和一奥尔塔与内部剪刀从胸腔取出心脏。的心脏转移到的硅解剖的菜肴之一，并与洗澡〜4毫升回暖肝素完整台氏用移液管。
5. 东方的心脏，使血管后可见并朝上，与实验者的右动物的右心房和左心房对实验者的左边。一旦为导向，通过顶点到硅解剖盘固定钉的心脏。
6. 找到心室和心房（心室上面清晰圈）之间的凹槽。
7. 使用内部解剖剪，使一个切口在槽，保持更靠近心室比心房。冲洗槽与切口额外的温暖肝素完整台氏根据需要使心房和阀门的一个明确的说法。继续沿着槽切成心房从心室中分离出来。
8. 转移心房组织到第二硅解剖盘和洗澡用〜3毫升回暖肝素完成台氏。
9. 定向的组织，使得动物的右心房，现可实验者的左侧，左心房是在右侧。
   注:右心房是比较透明的，而左心房有更多的暗红色基调。
10. 通过下和优越的腔静脉与右和左心耳针组织，轻轻拉伸的制备。删除任何剩余的脂肪或其他组织，让准备（注意不要切进心房壁，由于窦房结是相当微妙的，可以很容易损坏）的一个明确的说法。
11. 通过经由腔静脉切开心房前壁。重新定位销必要形象化房间隔。
12. 沿房间隔切割以除去左心房。重新钉住准备，轻轻地伸展。
13. 除去叔他右心耳并通过沿嵴终，这显示为深橙色条纹接壤心耳切割释放窦房结。
14. 再针的淋巴组织和削减它横向（垂直于嵴），以产生三个相等大小的条带。

5.窦房结消化

1. 使用窄火抛光的吸管（ 图1Aiv），窦房结组织的三个条带转移到第一含2.5低的Ca毫升三小，圆底管²⁺ / Mg ^2+离子蒂罗德在35±1°水浴。孵育5分钟。
2. 转移组织带以第二小圆底含有2.5 mL的低的Ca管²⁺ / Mg ^2+离子蒂罗德在35±1℃的水浴中，使用相同的窄吸管。通过轻轻旋转管或通过狭窄的吸管轻轻吹打洗净组织带。不要INVERt为管。
3. 转移组织带向第三小圆底含2.5 mL的低的Ca ²⁺管/镁^离子台氏，并重复步骤5.2中所述的清洗步骤。
4. 转印条带成含有2.5低的Ca毫升大圆底管²⁺ / Mg ^2+离子蒂罗德与35℃水浴中的酶（蛋白酶加胶原酶蛋白酶掺合物）。确保所有这三个组织带都存在。孵育在35±1℃下10-15分钟。通过轻轻摇动混合管每5分钟。不要颠倒管。

6.窦房结肌细胞解离

1. 以下的酶消化，使用窄火抛光移液器在35±1℃下的组织带轻轻转移到含2.5毫升的KB溶液中的第一小，圆底管中。通过轻轻摇动管冲洗组织。
   注:组织带将出现一定程度的半透明并可能在日聚集在一起，是点。把手轻轻酶消化后，以避免失去细胞。
2. 在35±1℃的转移组织含有2.5毫升KB第二小圆底管中。摇动轻轻地洗。
3. 在35±1℃的转移组织含有2.5毫升KB第三小圆底管中。摇动轻轻地洗。
4. 在35±1°C转移组织含2.5毫升KB大，圆底管。
5. 使用较大的火抛光的吸管（ 图1Aiii和图1C），游离由恒研磨大圆底管细胞在约0.5-1赫兹5-10分钟，注意保持淹没解离管35±1℃的水浴中，并避免引入气泡到溶液中。
   注意:研磨时间与离解吸管直径和移液的力而变化。时间应调整，以使组织块在t剩余他解离年底显得单薄，透明，纤细。如果组织保留任何颜色，解离可能是不完整的。频率（0.5-1赫兹）是用手工确定。
6. 除去从水浴含有解离的SAM圆底管中，在室温下平衡5分钟。

7.窦房结钙重新适配（在室温下进行）

注:对于自组装往培养实验，在下面的部分中的过程应该在无菌组织培养罩来进行。如果自组装将被用于急性实验，没有必要在无菌环境中执行这些步骤。

1. 添加75微升的氯化钠/ _氯化钙适配溶液（ 表2）。摇动轻轻地混合和孵育5分钟。
2. 加入160微升氯化钠/ _氯化钙适应的解决方案。摇动轻轻地混合和孵育5分钟。
3. 加入390微升BSA溶胶ution（ 见表2）。摇动轻轻地混合和孵育4分钟。
4. 加将1.25ml BSA溶液。摇动轻轻地混合和孵育4分钟。
5. 加入4.37毫升的BSA溶液。摇动轻轻地混合和孵育4分钟。
   注意:钙的终浓度将是1.8毫米。
6. 以下钙重新适应，通过允许在〜2000×g离心〜10分钟或通过离心进行重力沉降3分钟收集自组装膜。
   1. 对于急性分离细胞，温和地去除和丢弃约5ml用玻璃巴斯德吸管取上清液，留下细胞的〜2毫升的体积。存储这些细胞在室温下长达〜8小时，对膜片钳记录。
   2. 对于培养的细胞，用无菌玻璃巴斯德吸管除去尽可能多的上清液越好。在1ml悬浮细胞沉淀预热（37℃）镀层中（ 表2）。

8.电镀和文化窦房缪的核细胞（跳过了急性分离的细胞）

1. 来自步骤3.3用巴氏吸管去除盖玻片层粘连蛋白溶液。立即种子500微升（〜50-100个细胞）到每个层粘连蛋白涂层的盖玻片（来自步骤3）。
   注:收缩抑制剂2,3-丁二酮单肟（BDM）被包括在电镀和培养基，以防止收缩，这将导致细胞⁹的磨损。
2. 返回包含新接种的SAM的24孔板的孵化并在95％空气/ 5％CO ₂的气氛中，在37℃保持。允许细胞粘附于盖玻片在电镀介质4-6小时（ 表2）。
3. 轻轻地用无菌巴斯德吸管去除电镀液。每个预温（37℃）培养基的井500微升（ 表2）替换。

9.成人窦房肌细胞文化的腺病毒转导（跳过了急性分离的细胞）

1. 估计CE数每盖玻片LLS立即通过计数细胞中的视场，在显微镜下，调整放大率施加腺病毒之前。计算所有细胞，而不仅仅是地对空导弹。
2. 稀腺病毒在培养基199等1-10微升的该应用程序需要达到的感染的每个细胞100病毒单位的最终复数（MOI）调节稀释的病毒滴度。添加以逐滴方式腺病毒溶液直接在镀自组装膜。
3. 孵育与含病毒的培养基过夜（〜12-14小时）的细胞。然后用新鲜培养基交换。维持细胞在培养箱，改变培养基每48小时，直到获得期望的蛋白质表达。

10.急性分离或养殖地对空导弹的功能评价

注:以下协议是用两性霉素穿孔，补丁技术，同时记录自发的AP和我孤立地对空导弹的功能性评估的一个例子 _{f起相同的细胞（见参考文献^9）。}

1. 如表3中所述制备的记录方案。
2. 制备20毫克/毫升两性霉素-B的DMSO上记录的当日新鲜的储备溶液。保持库存在室温和避光。稀两性霉素-B库存胞内溶液至200微克的终浓度/ ml的临使用前。保持冰最终吸管解决方案，并避光。
   注:对于实验的含两性霉素吸管溶液应准备通过稀释储备溶液的等分进入胞内溶液和涡流至少1分钟新鲜每小时。
3. 转移的等分试样急性分离的SAM细胞悬液或玻璃盖玻片在35±1℃的轴承培养的SAM至含有台氏液的记录室的片段。灌注细胞用台氏液至少2分钟之前，电recordinGS去除培养基中剩余的任何残留BDM。
   注:自发收缩应当在转移到台氏液立即明显。自组装用于记录可以通过功能，包括自发收缩活性，形态特征（ 例如 ， 图2），缺乏条纹的，HCN4蛋白的表达，I _F电流的存在，膜电容<50 pF时，自发的AP的组合来确定与波形，包括一个舒张去极化阶段和缓慢的冲程。
4. 用硼硅玻璃移液器1.5-3.0MΩ的电阻，与细胞内液填充尖端而缺少浸渍10-30秒霉素。然后再填充与含两性霉素溶液吸管。 GΩ的细胞贴附密封应尽可能快得越好。如果密封的形成是困难的，增加的顶端填充时间。
   注:访问电阻应不断监视下形成细胞贴附密封的，和录音应该只在<10MΩ稳定的接入电阻后展开。
5. 要记录自发的AP，开关放大器快速电流钳模式，无电流注入。
   注意:记录的AP时，以稳定的燃烧率，如先前报道¹⁰为1nM异丙被包括在细胞外台氏液。

这里所描述的协议已被预先采用自发活性的SAM从成年小鼠适合于各种不同的膜片钳研究^5-8的隔离。此外，该协议允许，可以在培养物中维持长达一周孤立的SAM。基因转移到培养的细胞可以通过腺病毒感染⁹来完成。在本节介绍的结果我们以前的工作中获得，并在这里显示为急性分离培养地对空导弹的特点例子。

如图2中所示，自发活性的SAM可以在培养物中维持长达6天。培养的细胞保持整体形态，这是非常类似于急性分离的SAM，具有的平均长度，宽度没有显著变化，横截面面积，或培养膜电容细胞相比，急性分离的细胞（ 图2B - E）。不过，有人在上培养时间可行的地对空导弹的数量的减员。因此，建议培养从来自多个动物汇集的细胞，如果实验设计需要大量的数据集来制备。

在制定从成年小鼠心肌细胞窦房结培养协议的主要目标是创建一个系统，以便在成年地对空导弹的天然细胞外源性背景蛋白的表达。这种类型的蛋白表达的一个例子在图3中为细胞的情况下示出的共同感染用表达所述荧光标记蛋白GFP和mCherry病毒。我们发现，蛋白表达是显而易见的腺病毒感染的24小时之内，并且是最大为48小时（ 图3）内测试的蛋白质。 100的病毒MOI导致近100％的inf挠度效率无细胞毒性的证据。与此相反，使用基于脂质的试剂转染未能产生任何可检测的基因转移到成人的SAM，即使经过72小时^9。

通过膜片钳电功能特性是为急性分离培养地空导弹图4A的评价至关重要展示了使用两性霉素穿孔，补丁录像配置从急性分离或培养的地对空导弹记录自发动作电位的典型电流钳记录。动作电位波形分别急性分离和培养的SAM相似和有一个在平均AP射速（ 图4B）没有差别。

我_f是自组装膜和产生I _F的HCN4通道的一个标志被用作窦房结免疫细胞化学标记。因此，公关在膜片钳记录I _F的esence可用于支持这样的想法，该细胞是实际上的SAM。所有的自发活性的急性和培养的自组装膜的本文描述也响应于一个1秒电压步骤-120毫伏表现出I _F> 100 pA的。对于这里示出的代表性的结果，将细胞用含有1mM氯化钡₂到方框K ⁺电流（ 表3）和I _F的活化的电压依赖性用3秒极化电压的步骤测定从-60到-160台氏液灌注毫伏-50 mV的钳制电压，正如我们前面所述^5-8。电流密度在从-50 mV的保持电位响应于3秒超极化测试脉冲至-150mV进行评价。有在第I活化_的F任一的电压依赖性或I _F急性分离和培养的自组装（ 图4之间的电流密度没有显著差异Ç - D）。自发的AP和这些合作录音I _F从单个SAM需要大约总共9分钟（包括2分钟初洗，在电流钳模式下自发的AP 30-60秒，2分钟解决方案的变化，大约5分钟收集足够的电压钳数据来描述的I _F）活化的电压依赖性。因此，在图4C所示的数据还示出了细胞制剂的稳健性。

图1: 解剖仪器鼠标地对空导弹的隔离和分离 （A） 我含约25mL硫化硅橡胶双10cm陪替皿。每道菜都预装了6-10小夹层针用来固定组织。 二100毫升的烧杯持有完整的台氏在35＃176;。水浴III宽（〜2毫米直径），火抛光分解吸管静脉狭窄（〜1.5毫米直径）与完整的台氏洗澡准备火抛光移液管v塑料移液管。肝素六，内部组织操纵自我开放内部切割程序微型剪刀。 七，罚款钳（针尖大小0.06×0.02毫米）。 八，组织钳，5.5，1×2的牙齿外部组织操纵。 九。弯曲虹膜剪4.3外部切割程序。 （B）特写照片突出放在解剖盘小夹层针。 （C）特写照片凸显火抛光窄移液管（ 左 ）和火抛光的广口吸管机械研磨（ 右 ）。 请点击此处查看大versio这个数字的n个。

图 2: 急性分离和培养的地空导弹在形态上没有区别 答 :代表地空导弹亮场图像之后，可以立即隔离（急性）或24小时后，48小时，72小时，96小时， 或体外 6天乙 - ð :平均（±SEM）的最大长度，对急性分离与培养48小时的SAMÈ宽度和截面积:平均（±SEM）从电压钳记录膜电容从急性分离或培养的自组装膜。所有的比较都是不显著:P> 0.05，与尖锐。从参考⁹改编。 请点击此处查看该图的放大版本。

图 3: 在培养的自组装膜明场和具有代表性的体外培养的SAM的表面荧光图像外源蛋白质已经在100的MOI被病毒感染表达eGFP的（绿色）和mCherry（红色）的腺病毒的腺病毒表达 ，无论是在24或48小时后二重感染。比例尺= 20微米。从参考⁹转载。

图4:含1纳米异丙肾上腺素的台氏液从急性分离（ 黑色 ）代表电流钳记录或养殖（ 灰色 ）地对空导弹:培养地空导弹 A 的电特性 。比例尺:40 mV时，100毫秒B:平均（±SEM）的瞬时在急性分离的发射频率（ 黑 ; N = 6）或48小时培养（ 灰色 ; N = 14）地空导弹C:标准化的平均值（±SEM）电导电压的关系为I _F在急性分离（ 黑 ; N = 8）或培养（ 灰色 ; N = 14）地空导弹插图 :从急性（ 黑色 ）或养殖（ 灰色 ）地对空导弹3秒超极化测试脉冲在10 mV递增引起-60至-160 mV的代表当前家庭D:平均值（ ±SEM）在急性分离（ 黑色 -150 mV的I _F电流密度; N = 7）和培养（ 灰色 ; N = 8）地对空导弹。从参考⁹改编。 请点击此处查看该图的放大版本。

表1:解离解决方案窦房结细胞的分离使用的溶液的组成。浓度为毫米除了注意的地方。

表2:电镀和培养液用于窦房结细胞的电镀和培养液成分。

表3:电记录溶液的胞外组合物用于从窦房结细胞霉素穿孔贴片记录（台氏）和细胞内（PP）的解决方案。

本文提出了从成年小鼠完全分化的窦房结细胞的分离和培养的详细协议。隔离协议可靠生产适合要么直接电生理分析或随后的培养自发活动的鼠标地对空导弹。类似的协议已经报道许多其它基团（例如，参见参考文献^{11,12,10,13-17）。}然而，我们的用于体外维持成年小鼠的SAM协议保留特性形态，自发活动，细胞的电生理特性，并允许蛋白⁹的腺病毒递送。

对于修改和协议的故障，有几个关键步骤应注意。第一关键因素是一个显著批与批变异的消化酶（步骤1.4），它可以显着改变的数量和自组装膜的质量的活性在一个给定prepar分离通货膨胀。这种可变性是弹性蛋白酶，其通常需要特定大量的优化，其中的浓度和暴露时间应包围在多个制剂的过程中（通常是并行完成的），以最大限度的细胞数和健康，尤其如此。为地对空导弹的来自不同物种的隔离某些协议使用单独胶原酶和蛋白酶，而不是在本协议中的胶原酶蛋白酶结合。然而，许多对许多变异为每个这些酶是相当高的（类似于弹性蛋白酶），因此有必要重复几轮的联合优化。酶混合物提供跨其它更多的一致性和需要更少的优化步骤。

第二个关键，并且不明显，对于故障排除SAM隔离的因素是火抛光的玻璃吸管解离（ 图1C）的完整性。如果吸移管的边缘包含任何尖锐边缘，裂缝或积累Çellular碎片，机械研磨步骤可破坏细胞，导致钙毒性。火抛光的吸管解离应更换，至少每2个月经常使用的，或在小区产量还是品质在多个筹备过程中显着下降的任何时间。

时机和机械分离的力可用于排除隔离协议第三关键的一步。该研磨需要慢（约0.5-1赫兹），但是5-10分钟有力的动荡。更快的速率以及减少时间也可以使用，但是，以避免引入的气泡或在溶液中产生泡沫是重要的。当窦房结样品已完全分离，剩下的组织带应出现束状和白色的颜色;微妙的粉红色十岁上下的颜色表明不完整的研磨。当200-400X放大率检查，从最佳样品制备细胞具有光滑的细胞膜，而细胞MEMB过度消化或过度研磨样品ranes有陨石坑和条纹外观。在健康的细胞，收缩是观察细胞的端部主要作为细微抽动。收缩波是受损细胞，可观察到剧烈收缩的时间很短，前成球机的标志。破裂的离解吸管这么细胞损伤的最常见原因。在该已下消化或欠研磨样品，细胞存在作为团块或聚集体，而不是单细胞，并且可以在剩余的组织块可以观察到收缩的SAM的显著号码。

每个用户都需要单独地进行优化的解离。虽然酶促消化和机械解离时间都应该被调整，因此建议在最初保持酶促消化时间常数而修改的解离时间。额外的微调主要依赖于用户的识别能力，一残留在研磨结束时的组织片的ppearance - 当片是束状并在颜色发白，则研磨应当停止。优化还需要容纳在窦房结伴随在年龄，性别，或小鼠的品系差异变化。例如，来自老年动物⁷细胞的解离需要在这两个酶促消化和机械解离时间减小。作为一般准则，从2-3个月大的雄性C57BL / 6小鼠的产量大约50-200可行的地空导弹典型的制备中，其中5-10或许可以成功的膜片夹在一个美好的一天的会议上，根据实验。产率是当旧的小鼠用于⁷相当（〜30％）低。

文化协议的成功还依赖于几个关键步骤。最重要的是，原代细胞培养的成功需要高质量的离解，如以上所讨论。建议第在急性分离细胞制剂试图维持在培养细胞之前进行优化。培养细胞的第二个关键因素就在于细胞电生理记录的选择。为了达到最佳效果，选择录音培养地对空导弹应于含BDM-培养基冲洗立即自发地收缩。在洗出BDM自发收缩的起病缓慢，是不健康的细胞的标志。

山姆培养体系确实有一定的局限性，最明显的是鼠标SAN的尺寸非常小。而在这里展示了方法允许用于电生理和成像研究足够的细胞数量，组织的有限数量的排除培养的SAM的生化分析。该技术的另一个限制是，自组装膜必须是在可逆肌球蛋白ATP酶抑制剂，BDM的存在下培养。这是一个潜在的问题，因为BDM有其他细胞的影响，包括非特异性磷酸酶的活性，心肌转录抑制因子^19，和钠通道，钙通道和兰尼碱受体²⁰的抑制。然而，数据显示，BDM对这里检测地对空导弹的形态和电生理特性的影响很小。

在未来的应用，它很可能是这里概述的方法可以适用于从较大的哺乳动物制备的SAM培养物。与腺病毒基因转移相结合，这种文化可能允许在大型动物模型起搏的遗传操作。引入感兴趣的蛋白质的能力，还提供了在其中基因编码的报道分子可用于在自组装膜来探测细胞内信号通路的未来应用。

None.

We thank Dr. Christian Rickert for critical reading of the manuscript. This work was supported by a grant from the National Heart Lung and Blood Institute (R01-HL088427) to CP. EJS was supported by 5T32-AG000279 from the National Institute on Aging. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.