Method Article
После проверки по крови кислород уровня зависимой функциональной магнитно-резонансной томографии (жирный МР-томографию), соответствующий соматосенсорные баррель коры площади поля (называемый S1BF) правильно активирован, Главная цель этого исследования заключается в количественном определении содержания лактата колебания в активированных крыса мозги на локализованных протонного магнитного резонанса спектроскопии (1H-MRS) в 7 т.
Спектроскопия ядерного магнитного резонанса (ЯМР) предлагает возможность измерения мозгового метаболит содержимое в естественных условиях и неинвазивно. Благодаря технологических разработок последнего десятилетия и увеличение прочности магнитного поля это теперь возможно получить хорошее разрешение спектров в естественных условиях в мозге крыс. Neuroenergetics (т.е., исследование метаболизма мозга) и, особенно, метаболического взаимодействия различных типов клеток привлекают все больше и больше интереса в последние годы. Среди этих метаболического взаимодействия существование лактат Трансфер между нейронами и астроциты все еще обсуждается. Это, таким образом, большой интерес для выполнения функциональных протонного магнитного резонанса спектроскопии (1H-MRS) в мышиной модели активации и монитор лактат мозга. Однако метил лактат пик перекрывается резонанс пиков липидов и трудно поддаются количественной оценке. Описанные ниже протокол позволяет метаболических и лактата колебания контролироваться в районе активированного мозга. Церебральный активации получается путем стимуляции нитевидные и 1H-MRS выполняется в соответствующего активированного баррель коры, чьи области обнаруживается с помощью крови кислород уровня зависимой функционального магнитного резонанса (жирный МР-томографию). Подробно описаны все шаги: выбор анестетиков, катушек и последовательности, достижение эффективного нитевидные стимуляции непосредственно в магнит и обработки данных.
Мозг обладает встроенные механизмы, которые позволяют регуляции ее основных субстрата (то есть, глюкозы), и за его вклад и его использования, в зависимости от различий в местных мозговой деятельности. Хотя глюкозы является главным энергетическим субстратом для мозга, эксперименты, проведенные в последние годы показали, что лактат, который производится путем астроциты, может быть эффективной энергии субстрат для нейронов. Это поднимает гипотеза лактат Трансфер между астроциты и нейроны1. Известный как ANLS, экзоцитоз нейрон лактат Трансфер2, теория обсуждается до сих пор высоко но привело к предложению что глюкоза, вместо того, чтобы идти прямо в нейроны, могут ввести астроциты, где он метаболизируется в лактат, метаболита , затем переданы нейронов, которые используют его как энергии эффективным субстрат. Если в естественных условияхсуществует такой трансфер, он будет иметь несколько важных последствия, как для понимания основных методов в функциональной мозгового томографии (позитронно-эмиссионная томография [PET]), так и для расшифровки метаболических изменений наблюдается в патологии мозга.
Для изучения метаболизма мозга и, особенно, метаболические взаимодействия между нейронами и астроциты, четыре основные методы доступны (не включая микро-/ Наносенсоры): авторадиографии, PET, два Фотон флуоресцентные confocal микроскопии и миссис. Авторадиографии был одним из первых предлагаемых методов и предоставляет образы региональных накопления радиоактивного 14C-2-deoxyglucose в срезах головного мозга, а PET урожайности в vivo изображения регионального поглощение радиоактивных 18 F-deoxyglucose. Они оба имеют недостаток использования irradiative молекул при производстве низким пространственное разрешение изображений. Двух Фотон микроскопии обеспечивает сотовой резолюции флуоресцентных зондов, но рассеяния света в ткани ограничивает глубину визуализации. Эти три технологии ранее использовались для изучения neuroenergetics грызунов в столбик стимуляции3,4,5,6. В естественных условиях Миссис имеет двойное преимущество неинвазивной и нерадиоактивных, и любой структуры мозга могут быть изучены. Кроме того миссис может быть выполнена во время активации нейронов, называемый функциональный миссис (ОФМ), которая была разработана совсем недавно в грызунов7. Таким образом протокол для мониторинга метаболизм мозга во время мозговой активности 1H-MRS в естественных условиях и неинвазивно предлагается. Процедура описана в взрослых здоровых крыс с активации мозга, полученных путем стимуляции нитевидные воздуха слоеное, выполняются непосредственно в 7 тепловизор магнитный резонанс (МР) T, но могут быть адаптированы в генетически модифицированных животных, а также в любые патологические состояния .
Все животные процедуры проводились в соответствии с руководящими принципами экспериментов животных директиву Совета европейских сообществ от 24 ноября 1986 (86/609/ЕЕС). Протокол встретился этические принципы французского министерства сельского хозяйства и лесов и был одобрен комитетов местных этики (Comité d «этики pour L» исследования Animale Бордо n ° 50112090-A).
Примечание: Во время измерений MR, адекватный уровень анестезии и физиологического мониторинга (температура тела, частота дыхания) являются необходимым требованиям.
1. Животные
2. анестезия
3. крыса размещение в магнит для стимуляции столбик
4. нитевидные стимуляции
5. смелые МР-томографию приобретения
6. смелые обработка
7. Протон миссис приобретений
8. Протон миссис обработка
Этот протокол позволяет количественная оценка метаболит колебаний во время активации мозга, который получается путем стимуляции правой нитевидные непосредственно в магнит.
В этом исследовании Общая цель смелые МР-томографию было проверить, что столбик стимуляции был эффективным, чтобы визуализировать области активированного S1BF и правильно найти voxel для 1H-ОФМ. Устройство для активации столбик является эффективным. Действительно, когда правый усы были стимулируется с помощью системы домашней воздуха слоеное, позитивный сигнал смелые был обнаружен в левый ствол коры (рис. 4B), также называется S1BF, для поля соматосенсорные баррель (n = 8). Повышение позитивный сигнал был обнаружен в левый ствол коры в восьми из восьми крыс, тогда как только фон был обнаружен в правом полушариях. Когда смелые МР-томографию была выполнена без стимуляции нитевидные, нет сигнала повышение было отмечено в левой или правой S1BF.
В сравнение анатомических изображения МРТ и крыса мозга Атлас схем8области активированного мозга, визуализированное смелые МР-томографию позволяет voxel быть помещены в районе S1BF, который активируется во время стимуляции нитевидные. Этот voxel расположен на трех последовательных слайды (толщиной 1 мм), поскольку коры ствола составляет 3 мм в длину. Когда мозг слайд практически разделены на четыре четверти, voxel расположен в верхней левой четверти на примерно под углом 45° (рис. 6).
При включении парадигмы для стимуляции нитевидные, увеличение содержания лактата было отмечено в левой S1BF (рис. 6, типичный спектров, полученных в одной крысы). Лучше визуализировать метаболических колебания между покоя и активированные периодов, спектральные вычитание была выполнена (рис. 6). От этого вычитается спектра, увеличение содержания лактата с активация мозга был визуализирован гораздо более легко, в эту крысу, N-acetylaspartate (NAA) сигнал был несколько снизилось. Повышение лактата при нейронной стимуляции было также отмечено на спектральном деконволюции (рис. 7AB). Хотя вряд ли лактат пик был обнаружен на спектра в естественных условиях в состоянии покоя, LCModel смогла количественно его (рис. 7A) с точностью и хорошие CRLB значения. Действительно из 23 крыс, только один спектр имели значение CRLB для квантификации лактат равным 24. Ни одна были > 25. Для всех других спектров значения варьировались между 3 и 19.
Вариации содержания лактата во всех 23 крыс представлены на рисунке 8. Из 23 крыс только в одной крысы наблюдалось уменьшение содержания лактата. Было статистически значимой разницы в лактат контента между отдыха и активированные периодов (0,132 ± ± 0,012 и 0.163 0,011, соответственно, значения родственников ПЦР + Cr контента, паре t-теста, p = 0.0005 [параметрический, двустороннее] n = 23). Таким образом была измерена на 31,6% ± 7,8% увеличение содержания лактата при нейронной стимуляции.
Небольшое снижение NAA содержание может наблюдаться в Рисунок 6, который представляет собой типичный спектров в одно животное. Однако, этот вариант NAA не был значительным (1,2% ± 1,2% снижение было измерено, n = 23).
Рисунок 1: оборудование и шаги для анестезии. (A) фотография оборудования должен быть подготовлен до начала наркоза. (B) изофлюрановая насос и индукции камеры. (C) жгут размещения. (D) картина показывает, что правильно введен катетер; Обратите внимание, капля крови в иглы катетера, который является позитивным признаком правильное расположение в Вену. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: стимуляция нитевидные. Все права усы оказались в ловушке в парус с бумажной ленты. Парус позволяет все права усы следует стимулировать в то же время с системой воздуха слоеного и, таким образом, максимально активации нейронов коры ствола. На выходе из системы воздух слоеное (черная трубка) должен быть расположен около 1,5 см и перпендикулярно парус. Проверка вне магнита чтобы убедиться, что парус движется правильно при включении системы воздуха слоеное. Парус должен двигаться на 8 Гц в переднезаднем направлении (без поворота). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: системы Air Пуф для стимуляции нитевидные. Гибкая труба (A) A соединяет сжатого воздуха (B) электромагнитный клапан управления. Второй гибкой трубы приносит импульсного воздуха от вывода Клапан электромагнитный контроль парус. Электромагнитный клапан управления подключен к пульсирующей устройство, которое контролирует парадигмы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: смелый ФМРТ. (A) объем массива размещение катушки. Крыса голова в горизонтальном положении и Заблокированные уха баров. Проверьте, что парус движется свободно и не блокируется катушки или МРТ кровати. (B) типичный смелейшее сигнал в коре активированные левый ствол (красная стрелка). Сигнал не обнаружен в контралатеральной правого полушария (синяя стрелка). Порог устанавливается в 76,5% от максимального значения интенсивности. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: поверхности катушки. (A) изображение поверхности катушки, используемые в данном исследовании. (B) поверхности катушки размещение. Так что левый ствол мозга и, следовательно, поверхности катушки расположены в центре МРТ кровати (голова обратился на угол около 30°, хороший компромисс между правильное расположение коры левой ствол для поверхнос необходимо слегка повернул голову крыса CE катушки и свободные движения парус право усы, которые не должны быть заблокированы МРТ кровать). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6: типичная локализация 1H-MRS в покое (синий спектр) и во время активации столбик (красный спектр). Voxel (зеленый квадрат) расположен в левой S1BF на анатомический T2_TurboRARE изображения, используя крыса мозга Атлас схем и повышение сигнала на смелые МР-томографию изображений. Спектральная вычитание заговор в черном. Лактат и вершины N-acetylaspartate (NAA) указаны на 1,32 и 2,02 ppm, соответственно. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 7: типичный спектральном деконволюции миссис спектров. (A) деконволюция отдыха 128-сканирования спектра. (B) деконволюция активированные спектра 128-сканирования. Остаток, вычитания между экспериментальной спектра (исходных данных) и LCModel нужным; MM = макромолекулы; CR = креатин + Креатинфосфорная кислота; PCho + GPC = фосфохолин + glycerophosphocholine; NAA = N-acetylaspartate; Лак = лактата; GABA = γ-аминомасляная кислота; GLN = глютамин; Glu = глутамата. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 8: изменения в лактат содержание во время стимуляции мозга. Синяя точка: лактат содержание в состоянии покоя, определяется LCModel и относительно креатин + фосфокреатина контента. Красная точка: лактат содержание во время стимуляции нитевидные, определяется LCModel и относительно креатин + фосфокреатина контента. Разница между активирована и отдых, p = 0.0005, паре t-тест (параметрический, двустороннее), n = 23. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Ствол коры, также называется S1BF соматосенсорной коры или ствол поля, — регион в пределах коркового слоя IV, который можно наблюдать с помощью цитохрома с-оксидазы пятнать9, и ее организация хорошо известно, так как он был во многом описанные 10,11. Один пришла связан с одного ствола, в котором около 19000 нейронов организованы в колонке12. Столбик баррель коры путь имеет несколько преимуществ. Во-первых оно может быть активировано внутри магнита с помощью МРТ совместимых воздуха слоеного системы, которая может быть легко домашнее (чтобы убедиться, что в самой большой частью района S1BF, который приблизительно соответствует размер voxel, в котором выполняется служба MRS, все усы сжаты в парус, который позволяет стимуляции максимум пришла). Во-вторых, право нитевидные Активация приводит к активации коры левого ствол, и эта область мозга расположен в соматосенсорной коры, которая позволяет использовать высокочувствительный поверхности катушки. В-третьих этот метод активации соматосенсорной коры неинвазивной по сравнению с электрической лапы стимуляции, последний имея недостаток стимулирования других структур мозга, включая некоторые в правом полушарии13. Таким образом протокол, используемый здесь является наиболее подходящим для выполнения в естественных условиях, неинвазивный и продольные исследования метаболизма мозга при церебральной активации.
Выбор анестезии важно, как многие из анестетики вызывают изменения в нервно-сосудистого муфта, метаболизм мозга и/или мозг деятельности14,15. Например изофлюрановая, наиболее распространенных анестезии используется для МРТ, приводит к трех-шестикратное увеличение мозга лактат содержание15,16 и, таким образом, не должны использоваться в метаболических исследования мозга. Medetomidine является агонистом α2-адренорецепторов, который индуцирует надежный седации, обезболивание, расслабление мышц и anxiolysis17. Эти эффекты могут быть быстро отменены с помощью Атипамезола, антагонист α2. Medetomidine является лучшим кандидатом для выполнения функциональных исследований в грызунов18 , поскольку он имеет очень низкое воздействие на смелый сигнал и низкие изменения в мозге метаболит содержимое.
Важно также правильно следовать парадигме активации нитевидные. Так как ЯМР приобретений длиться несколько минут, использование периодов последовательных активации/остальные необходимо ограничить десенсибилизации нейронов в районе активированного мозга. Параметры этой парадигмы (20 s активации последовал период отдыха продолжительностью 10 s) были выбраны для получения высоких смелые МР-томографию сигнал в соответствующих коре ствола. Много осторожность необходимо соблюдать эти время windows, поскольку крайне важно для определения периода активации отдыха для смелых лечения, даже если она контролируется порт ТТЛ. Для получения высокого уровня активации коры ствола, парус, группы усы вместе также важно так как он позволяет большую часть области S1BF, чтобы стимулировать. Много должно быть позаботиться место воздушной трубки розетки перед этот парус так, что он может двигаться на плоскости переднезаднем. Частоты должен быть тщательно калиброванные, поскольку было доказано, что нейроны в коре ствола активируются, когда столбик стимуляции частота находится между 5 и 15 Гц19. Использование более низких или более высоких частот не приведет к активации области S1BF.
Протокол, используемый в данном исследовании делает его возможным для сравнения спектров, приобретенных в той же области мозга в состоянии покоя и во время стимуляции мозга и, таким образом, для мониторинга метаболические изменения связаны с церебральной активации. Это важно для выполнения локализации последовательность в начале и в конце протокола спектроскопии ЯМР, обеспечить, что животное не сдвинулась и что различия в метаболических содержимое измеряется между покоя и активированные государствами из-за мозга стимуляция и не движение артефакты.
Используя протокол, описанные здесь, увеличение содержания лактата было измерено между отдыха и активирован периодов. В организме человека в начале 90-х годов20,21впервые наблюдался рост лактата, используя в vivo ЯМР спектроскопии во время активации мозга. Однако большинство измерения проводились в людей, а не грызунов, в которых отношение сигнал шум намного ниже. Рат, ex vivo ЯМР количественное определение лактата во время активации мозга крыс была выполнена Mazuel и др. 22, который отметил увеличение мозга лактата содержание с активации нейронов. Представленные здесь результаты показывают, что лактат была увеличена во время активации нитевидные. Однако так как локализованные миссис не позволяют сотовой резолюции, до сих пор неизвестно, от которого сотовой отсека лактат приходит (нейроны или астроциты). Чтобы идти дальше в понимании церебрального метаболизма обменов, такие, как все еще обсуждается ANLSH (экзоцитоз нейрон лактат Трансфер гипотеза), этот протокол должен применяться к генетически модифицированных животных для ключевых компонентов в трансфер, такие как monocarboxylate транспортер.
В исследовании, в описанный здесь было отмечено статистически значимой разницы в содержании NAA. Уменьшение содержания NAA во время визуальной стимуляции был ранее найденных в людей23,24,25, но не подтверждена Mangia и Ткач26. В текущем исследовании мы наблюдали увеличение NAA контента во время активации мозга крыс в 50% и уменьшение на другой половине. Таким образом следует избегать NAA как внутреннюю ссылку для количественной оценки во время функционального миссис нет, другие изменения в содержание метаболит был обнаружен.
Оба лактата и NAA вариации во время активации нейронов привели к полемики23,26,27,,2829. Для дальнейшего нашего понимания этих метаболических колебаний, связаны с деятельностью головного мозга, было бы интересно применять этот протокол к трансгенных животных. Это было бы представить дополнительную информацию о процессе базовой. В целом, локализованные 1H-MRS во время задачи, или функциональные миссис29, является новой техникой в грызунов, отношение к изучению региональных динамических изменений метаболитов, в нормальных и патологических мозги.
Авторы не имеют ничего сообщать.
Эта работа была поддержана тропа LabEx Грант, ссылка АНР-10-LABX-57 и Французск-Швейцарца АНР-ФНС предоставить ссылку АНР-15-CE37-0012. Авторы благодарят Орельен Тротье за его техническую поддержку.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.5 mL syringe with needle | Becton, Dickinson and Company, USA | 2020-10 | 0.33 mm (29 G) x 12.7 mm |
1H spectroscopy surface coil | Bruker, Ettlingen, Germany | T116344 | |
7T Bruker Biospec system | Bruker, Ettlingen, Germany | 70/20 USR | |
Arduino Uno based pulsing device | custom made | ||
Atipamezole | Vétoquinol, S.A., France | V8335602 | Antisedan, 4.28 mg |
Breathing mask | custom made | ||
Eye ointment | TVM laboratoire, France | 40365 | Ocry gel 10 g |
Induction chamber | custom made | 30x17x15 cm | |
Inlet flexible pipe | Gardena, Germany | 1348-20 | 4.6-mm diameter, 3m long |
Isoflurane pump, Model 100 series vaporizer, classic T3 | Surgivet, Harvard Apparatus | WWV90TT | from OH 43017, U.S.A |
Isoflurane, liquid for inhalation | Vertflurane, Virbac, France | QN01AB06 | 1000 mg/mL |
KD Scientific syringe pump | KD sientific, Holliston, USA | Legato 110 | |
LCModel software | LCModel Inc., Ontario, Canada | 6.2 | |
Medetomidine hydrochloride | Vétoquinol, S.A., France | QN05CM91 | Domitor, 1 mg/mL |
Micropore roll of adhesive plaster | 3M micropore, Minnesota, United States | MI912 | |
Micropore roll of adhesive plaster | 3M micropore, Minnesota, United States | MI925 | |
Monitoring system of physiologic parameter | SA Instruments, Inc, Stony Brook, NY, USA | Model 1025 | |
NaCl | Fresenius Kabi, Germany | B05XA03 | 0.9 % 250 mL |
Outlet flexible pipe | Gardena, Germany | 1348-20 | 4.6-mm diameter, 4m long |
Paravision software | Bruker, Ettlingen, Germany | 6.0.1 | |
Peripheral intravenous catheter | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | SP500930S | 22 G x 1", 0.85x25 mm, 35 mL/min |
Rat head coil | Bruker, Ettlingen, Germany | ||
Sodic heparin, injectable solution | Choai, Sanofi, Paris, France | B01AB01 | 5000 IU/mL |
Solenoid control valves, plunger valve 2/2 way direct-acting | Burkert, Germany | 3099939 | Model type 6013 |
Terumo 2 ml syringe | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | SY243 | with 21 g x 5/8" needle |
Terumo 5 mL syringe | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | 05SE1 | |
Wistar RJ-Han rats | Janvier Laboratories, France |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены