Method Article
بعد التحقق من الدم الأكسجين-المستوى-تعتمد على الوظيفية تنشيط التصوير بالرنين المغناطيسي (جريئة الرنين المغناطيسي الوظيفي) أن البرميل somatosensory المقابلة الميدانية المنطقة اللحاء (تسمى S1BF) بشكل صحيح، الرئيسي والهدف من هذه الدراسة تحديد محتوى لاكتات التقلبات في أدمغة الفئران المنشط بالتحليل الطيفي الرنين المغناطيسي بروتون المترجمة (1ح-السيدة) في 7 ت.
مطيافية الرنين المغناطيسي النووي (الرنين المغناطيسي النووي) يتيح الفرصة لقياس المستقلب الدماغي المحتويات في فيفو ونونينفاسيفيلي. وبفضل التطورات التكنولوجية على مدى العقد الماضي، وزيادة قوة الحقل المغناطيسي، من الممكن الآن الحصول على قرار جيد الأطياف في فيفو في الدماغ الفئران. نيورونيرجيتيكس (أي، دراسة الأيض الدماغ)، وخاصة، الأيضية التفاعلات بين أنواع مختلفة من الخلية وقد اجتذبت اهتمام أكثر وأكثر في السنوات الأخيرة. بين هذه التفاعلات الأيضية، لا تزال تجري مناقشة وجود لاكتات مكوكية بين الخلايا العصبية وأستروسيتيس. وهكذا، أنها ذات أهمية كبيرة لأداء وظيفي بروتون الرنين المغناطيسي الطيفي (1ح-السيدة) في نموذج الفئران من لاكتات التنشيط ومراقبة المخ. ومع ذلك، ذروة لاكتات الميثيل يتداخل الدهن صدى القمم ويصعب قياسها كمياً. البروتوكول هو موضح أدناه يسمح الأيضية ولاكتات التقلبات التي يتعين رصدها في مجال تنشيط الدماغ. يتم الحصول على التنشيط الدماغي بتحفيز الخط الطولي وتتم 1ح-السيدة في قشرة البرميل المنشط المقابلة، المجال الذي تم الكشف عن استخدام تعتمد الدم الأوكسجين على مستوى وظيفي التصوير بالرنين المغناطيسي (جريئة الرنين المغناطيسي الوظيفي). ويرد وصف كامل جميع الخطوات: اختيار المسكنات والملفوف، وتسلسل، تحقيق كفاءة الخط الطولي التحفيز مباشرة في المغناطيس، وتجهيز البيانات.
الدماغ يمتلك الجوهرية آليات تسمح بتنظيم الركيزة الرئيسية (أيالسكر)، لمساهمته والانتفاع بها، تبعاً للتغيرات في النشاط الدماغي المحلية على حد سواء. ورغم أن السكر هو الركيزة الرئيسية للطاقة للدماغ، أظهرت التجارب التي أجريت في السنوات الأخيرة أن اللاكتات، التي ينتجها أستروسيتيس، يمكن أن يكون الركيزة كفاءة الطاقة للخلايا العصبية. وهذا يطرح فرضية لاكتات مكوكية بين أستروسيتيس والخلايا العصبية1. يعرف باسم أنلس، أستروسيتي-العصبية لاكتات المكوك2، النظرية هو مناقشة لا يزال عاليا، بل أدى إلى الاقتراح أن الجلوكوز، بدلاً من الدخول مباشرة في الخلايا العصبية، قد أدخل أستروسيتيس، حيث أنه يتم استقلاب إلى لاكتات، المستقلب هو ، ثم نقل إلى الخلايا العصبية، واستخدامه بمثابة الركيزة كفاءة الطاقة. في حالة وجود مثل هذا مكوك في فيفو، عليها عدة نتائج هامة، سواء لفهم التقنيات الأساسية في مجال التصوير الدماغي الوظيفي (بوزيترون التصوير المقطعي [أليف]) أو لفك رموز التعديلات الأيضية ولاحظ في أمراض المخ.
دراسة الأيض الدماغ، وخاصة، تتوفر التفاعلات الأيضية بين الخلايا العصبية و astrocytes، التقنيات الرئيسية الأربعة (لا بما في ذلك المشاريع المتناهية الصغر/nanosensors): أوتوراديوجرافي والحيوانات الأليفة واثنين-فوتون مجهرية [كنفوكل] الفلورسنت والسيدة. أوتوراديوجرافي كان واحداً من أول الأساليب المقترحة ويقدم صوراً للتراكم الإقليمي المشعة 14ج-2-ديوكسيجلوكوسي في شرائح المخ، بينما الحيوانات الأليفة الغلال في فيفو الصور لاستيعاب الإقليمية المشعة 18 وديوكسيجلوكوسي. وكلاهما قد سيئات استخدام جزيئات إيرادياتيفي أثناء إنتاج الصور ذات الدقة المنخفضة المكانية. اثنين-فوتون الفحص المجهري يوفر القرار الخلوية من المسابر الفلورسنت، ولكن تشتت الضوء بالانسجة يحد عمق التصوير. وقد استخدمت هذه التقنيات الثلاثة سابقا لدراسة نيورونيرجيتيكس في القوارض من خلال الخط الطولي التحفيز3،4،،من56. في فيفو السيدة ميزة مزدوجة موسع ونونراديواكتيفي، ويمكن أن تستكشف أي بنية الدماغ. وعلاوة على ذلك، يمكن أن يؤديها السيدة أثناء تنشيط الخلايا العصبية، تقنية تسمى السيدة الوظيفية (فمرس)، الذي تم تطويره مؤخرا جداً في القوارض7. ولهذا، يقترح وضع بروتوكول لمراقبة الأيض المخ أثناء النشاط الدماغي قبل 1ح-السيدة في فيفو ونونينفاسيفيلي. الإجراء هو وصف في الفئران صحية الكبار مع تنشيط الدماغ التي حصل عليها تحفيز الخط الطولي جوية-نفخة القيام بها مباشرة في تصوير رنين المغناطيسي (السيد) تي 7، لكن قد تكون مناسبة في الحيوانات المحورة وراثيا، وكذلك في أي حالة مرضية .
وقد أجريت جميع الإجراءات الحيوانية وفقا للمبادئ "التوجيهية التجارب الحيوانية" "توجيهات مجلس الجماعات الأوروبية" من 24 نوفمبر 1986 (86/609/EEC). البروتوكول التقى المبادئ التوجيهية الأخلاقية الفرنسية من وزارة الزراعة والغابات، ووافقت عليه لجان الأخلاقيات المحلية (د اللجنة 'الأخلاق صب L' ° expérimentation ن بوردو أنيمالي 50112090-أ).
ملاحظة: خلال القياسات السيد، مستوى كاف من التخدير والمراقبة الفسيولوجية (درجة حرارة الجسم، ومعدل التنفس) شروط لا غنى عنها.
1-الحيوانات
2-التخدير
3-فأر التنسيب في المغناطيس لتنشيط الخط الطولي
4-الخط الطولي التحفيز
5-جريئة الرنين المغناطيسي الوظيفي اقتناء
6-معالجة جريئة
7-بروتون السيدة المقتنيات
8-تجهيز السيدة بروتون
ويسمح هذا البروتوكول التحديد الكمي لتقلبات المستقلب أثناء التنشيط الدماغي، الذي يتم الحصول عليه بتحفيز الخط الطولي الأيمن مباشرة في المغناطيس.
وكان الهدف العام المتمثل في الرنين المغناطيسي الوظيفي جريئة في هذه الدراسة، للتحقق من أن تنشيط الخط الطولي كانت تتسم بالكفاءة، لتصور منطقة S1BF المنشط، وتحديد فوكسل ل 1ح-فمرس بشكل صحيح. الجهاز بنيت لتفعيل الخط الطولي الكفاءة. في الواقع، عندما حفز شعرات الصحيح باستخدام نظام نفخة الهواء محلية الصنع، تم اكتشاف إشارة إيجابية جريئة في قشرة البرميل اليسرى (الشكل 4 باء)، S1BF، دعت أيضا إلى ميدان البرميل somatosensory (n = 8). تم الكشف عن تعزيز إشارة إيجابية في قشرة البرميل الأيسر في ثمانية من أصل ثمانية الفئران، حين تم الكشف عن الخلفية فقط في نصفي الكرة اليمين. عندما تم إجراء الرنين المغناطيسي الوظيفي جريئة دون تنشيط الخط الطولي، لوحظ تعزيز لا إشارة في اليسار أو في حق S1BF.
في مقارنة بين الصور السيد التشريحية والفئران الدماغ أطلس مخططات8، يسمح مجال تنشيط الدماغ تصور بالرنين المغناطيسي الوظيفي جريئة فوكسل لتوضع في منطقة S1BF، والتي يتم تفعيلها من خلال تحفيز الخط الطولي. هذا فوكسل يقع على ثلاث شرائح متتالية (1 مم) منذ قشرة البرميل الواحد 3 مم في الطول. عندما يتم فصل الشريحة الدماغ تقريبا إلى أربعة أرباع، فوكسل يقع في أعلى اليسار الربع في ما يقارب 45° زاوية (الشكل 6).
عند تشغيل النموذج لتنشيط الخط الطولي، لوحظت زيادة في محتوى لاكتات في S1BF اليسرى (الشكل 6، أطياف النموذجية التي تم الحصول عليها في أحد الفئران). أفضل تصور تقلبات الأيضية بين المنشط فترات، ويستريح طرح طيفي أنجز (الشكل 6). من هذا الطيف المطروحة، كان تصور الزيادة في محتوى لاكتات مع تنشيط الدماغ أكثر سهولة، بينما في هذه الفئران، إشارة N-أسيتيلاسبارتاتي (ناه) انخفض قليلاً. كما لوحظت زيادة لاكتات أثناء تنشيط الخلايا العصبية في deconvolution الطيفية (الشكل 7 أ، ب). في حين تم الكشف عن ذروة لاكتات نادراً في الطيف في فيفو في بقية، لكموديل كان قادراً على قياس ذلك (الشكل 7 أ) بدقة وحسن كرلب القيم. في الواقع، كان طيف واحد فقط من أصل 23 الفئران، قيمة كرلب للقياس الكمي لاكتات يساوي 24. أيا كانت > 25. لكافة الأطياف الأخرى، والقيم تراوحت بين 3 و 19.
التغيرات في محتوى لاكتات في جميع الفئران 23 ترد في الشكل 8. من أصل 23 الفئران، لوحظ انخفاض في محتوى لاكتات في فأر واحد فقط. كان هناك اختلاف مهم إحصائيا في لاكتات المحتوى بين الراحة والمنشط فترات (± ± 0.012 و 0.163 0.132 0.011، على التوالي، قيم أقارب PCr + Cr المحتوى، إقران تي-اختبار، ف = 0.0005 [حدودي، ثنائي الطرف] ، n = 23). ولذلك، تم قياس نسبة 7.8% ± 31.6% في محتوى لاكتات خلال تحفيز الخلايا العصبية.
ويمكن ملاحظة حدوث انخفاض طفيف في محتوى ناه في الشكل 6، الذي يمثل أطياف النموذجية التي تم الحصول عليها في الحيوان واحدة. ولكن هذا الاختلاف ناه لم يكن كبيرا (وتم قياس انخفاض 1.2% ± 1.2%، n = 23).
رقم 1: المعدات والخطوات للتخدير. (أ) صورة للمعدات أن يكون مستعدا قبل البدء بالتخدير. (ب) Isoflurane الدائرة مضخة والاستقراء. (ج) وضع عاصبة. (د) الصورة توضح القسطرة قد تم إدراجها بشكل صحيح؛ ملاحظة قطره الدم في الإبرة القسطرة، وعلامة إيجابية على الموقع الصحيح في هذا السياق. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 2: تنشيط الخط الطولي. حق كل شعرات محاصرون في شراع مع شريط ورقي. الشراع يسمح شعرات كل الحق حفز في نفس الوقت مع نظام نفخة الهواء، وذلك، يزيد من تنشيط الخلايا العصبية للقشرة للبرميل. يجب أن يكون موجوداً مأخذ النظام نفخة الهواء (أنبوب أسود) حوالي 1.5 سم وخط عمودي للشراع. الاختيار خارج المغناطيس للتأكد من الشراع تسير بشكل صحيح عن طريق تشغيل النظام نفخة الهواء. يجب نقل الشراع في 8 هرتز في اتجاه الصورة (لا التناوب). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 3: نظام نفخة الهواء لتنشيط الخط الطولي. يربط أنابيب مرنة (A) بالهواء المضغوط إلى (ب) صمام التحكم اللولبي. أنبوب مرن ثاني يجلب الهواء نابض من إخراج صمام التحكم اللولبي للشراع. صمام الملف اللولبي التحكم توصيل الجهاز النبض، والذي يتحكم في النموذج. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 4: جريئة الرنين المغناطيسي الوظيفي- (أ) حجم الصفيف وضع اللولب. رأس فأر في وضع أفقي وحظرها بواسطة أشرطة الإذن. تحقق من أن الشراع تتحرك بحرية وغير محظور باللولب أو بواسطة التصوير بالرنين المغناطيسي السرير. (ب) غامق نموذجي إشارة في قشرة المنشط للبرميل الأيسر (السهم الأحمر). يتم الكشف عن لا إشارة في نصف الكرة الأيمن كونترالاتيرال (السهم الأزرق). يتم تعيين العتبة نسبة 76.5 في المائة من الحد الأقصى لقيمة الكثافة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الرقم 5: لفائف السطح. (أ) صورة من اللولب السطحية المستخدمة في هذه الدراسة. (ب) وضع لفائف السطحية. يجب تشغيل رأس الجرذ قليلاً حيث أن اللحاء الأيسر للبرميل، ومن ثم اللولب السطحية تقع في وسط السرير التصوير بالرنين المغناطيسي (الرأس هو تحول بزاوية مقدارها حوالي 30°، حلاً وسطا جيدا بين الموقع الصحيح من اللحاء الأيسر للبرميل للسطوح لفائف ce وحركات حرة من الإبحار شعيرات الحق، الذي يجب أن لا يتم حظر بالسرير التصوير بالرنين المغناطيسي). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 6: النمطية المترجمة 1ح-السيدة في بقية (الطيف الأزرق) وأثناء تنشيط الخط الطولي (الطيف الأحمر)- فوكسل (الساحة الخضراء) يقع في S1BF اليسرى على الصور التشريحية T2_TurboRARE باستخدام مخططات أطلس الدماغ الفئران وتعزيز الإشارات على صور الرنين المغناطيسي الوظيفي جريئة. الطرح الطيفي المرسومة باللون الأسود. لاكتات وقمم N-أسيتيلاسبارتاتي (ناه) ترد في جزء في المليون 1.32 و 2.02، على التوالي. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 7: deconvolution الطيفية النموذجية للسيدة الأطياف. (أ) Deconvolution طائفة بقية 128-المسح الضوئي. (ب) Deconvolution طائفة المنشط 128-المسح الضوئي. بقايا، والطرح بين الطيف التجريبية (البيانات الخام)، وتناسب لكموديل؛ مم = جزيء ضخم؛ Cr = الكرياتين + phosphocreatine؛ بتشو + المؤتمر الشعبي العام = phosphocholine + جليسيروفوسفوتشوليني؛ ناه = N-أسيتيلاسبارتاتي؛ أمريكا اللاتينية والكاريبي = لاكتات؛ GABA = حمض أمينوبوتيريك γ؛ جلن = الجلوتامين؛ غلو = الغلوتامات. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 8: الاختلافات في لاكتات المحتوى من خلال تحفيز المخ. النقطة الزرقاء: لاكتات المحتوى في الراحة، وتقرر لكموديل ونسبة الكرياتين + phosphocreatine المحتوى. نقطة حمراء: لاكتات المحتوى أثناء تنشيط الخط الطولي، يحدد لكموديل ونسبة الكرياتين + phosphocreatine المحتوى. الفرق بين المنشط والراحة، ف = 0.0005، إقران تي-اختبار (حدودي، ثنائي الطرف)، n = 23. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
قشرة البرميل، كما دعا S1BF لقشرة سوماتوسينسوري أو الحقل للبرميل، وهي منطقة داخل الطبقة القشرية الرابع التي يمكن ملاحظتها باستخدام الفسفرة التأكسدية تلطيخ9، والتنظيم معروف جيدا نظراً لأنه قد تم إلى حد كبير وصف 10،11. فيبريسا واحد متصل واحد للبرميل، التي تنظم بها حوالي 19,000 من الخلايا العصبية في عمود12. مسار الخط الطولي للبرميل اللحاء له العديد من المزايا. أولاً، أنه يمكن تفعيلها داخل المغناطيس باستخدام نظام هواء-نفخة متوافقة مع التصوير بالرنين المغناطيسي، التي يمكن أن تكون محلية الصنع بسهولة (للتأكد من أن الجزء الأكبر من منطقة S1BF، التي تتطابق مع تقريبا حجم فوكسل الذي يتم تنفيذ السيدة، شعرات جميع وتقلص في شراع الذي يسمح للحث على أقصى قدر فيبريسا). ثانيا، حق تفعيل الخط الطولي ويؤدي إلى تنشيط اللحاء الأيسر للبرميل، ويقع هذا المجال المخ في القشرة سوماتوسينسوري، الذي يسمح باستخدام لفائف السطحية العالية الحساسة. ثالثا، هذا الأسلوب من تفعيل قشرة somatosensory موسع مقارنة بتحفيز مخلب الكهربائية، وجود العيب من تنشيط الهياكل الدماغ الأخرى، بما في ذلك بعض في نصف الكرة الأيمن13. ولذلك، البروتوكول المستخدم هنا الأنسب لأداء المجراة، موسع، والطولية دراسة الأيض الدماغ تحت التنشيط الدماغي.
اختيار مخدر حاسم، كما العديد من المسكنات تحدث تغييرات في اقتران neurovascular واستقلاب الدماغ الدماغ النشاط14،15. على سبيل المثال، إيسوفلوراني، المخدر الأكثر شيوعاً المستخدمة للتصوير بالرنين المغناطيسي، ويؤدي إلى ثلاثة إلى ستة أمثال في الدماغ لاكتات المحتوى15،16 و، ولذلك ينبغي أن لا تستخدم في الدراسات الاستقلابية الدماغ. ميديتوميديني هو مؤثر α2-أدرينوريسيبتور، الذي يدفع موثوقة التخدير والتسكين واسترخاء العضلات وأنكسيوليسيس17. يمكن عكس هذه الآثار بسرعة باستخدام أتيباميزولي، α2-خصم. ميديتوميديني هو أفضل مرشح لإجراء الدراسات الفنية في القوارض18 حيث له تأثير منخفض جداً في إشارة جريئة والتعديلات أدنى في محتويات المستقلب الدماغ.
من المهم أيضا اتباع نموذج الخط الطولي التنشيط بشكل صحيح. المقتنيات الرنين المغناطيسي تستمر لعدة دقائق، استخدام فترات متعاقبة التنشيط/الراحة ضروري للحد من الحساسية من الخلايا العصبية في منطقة الدماغ المنشط. المعلمات من هذا النموذج (20 ثانية للتنشيط تليها فترة راحة من 10 s) تم اختيارها للحصول على إشارة جريئة الرنين المغناطيسي الوظيفي أعلى في القشرة البرميل المقابلة. يجب أن يكون كثير الحرص على احترام هذه النوافذ الزمنية حيث أنها حاسمة لتحديد فترة تنشيط بقية لمعالجة جريئة، حتى ولو أنه يتم التحكم بواسطة منفذ TTL. للحصول على مستوى عال للبرميل اللحاء التنشيط، الشراع تلك الجماعات شعيرات معا المهم أيضا أنه يسمح للجزء الأكبر من منطقة S1BF أن تحفز. يجب أن يكون كثير الحرص على وضع أنبوب الهواء منفذاً أمام هذا الشراع بحيث أنه يمكن نقل على متن طائرة الصورة. وقد التردد تكون محسوبة بدقة نظراً لأنه قد ثبت أن الخلايا العصبية في قشرة البرميل يتم تنشيطها عندما يكون الخط الطولي التحفيز التردد بين 5 و 15 هرتز19. استخدام تردد أدنى أو أعلى لن يؤدي إلى تنشيط منطقة S1BF.
البروتوكول المستخدم في هذه الدراسة يجعل من الممكن مقارنة أطياف المكتسبة في نفس مجال الدماغ في الراحة وخلال تحفيز المخ، وذلك، لرصد الأيضية التغيرات التنشيط مرتبطة بالمخ. من المهم إجراء تسلسل تعريب في البداية ونهاية البروتوكول مطيافية الرنين المغناطيسي النووي، التأكد من أن الحيوان لم يتحرك، وأن الاختلافات في محتويات الأيضية يقاس بين الدول يستريح وتفعيلها سبب الدماغ التحفيز وليس إلى حركة القطع الأثرية.
استخدام بروتوكول وصف هذه الوثيقة، وتم قياس زيادة في محتوى لاكتات بين يستريح وتنشيط فترات. أولاً، لوحظت زيادة لاكتات استخدام في فيفو الرنين المغناطيسي الطيفي أثناء تنشيط الدماغ في البشر في أوائل التسعينات20،21. ومع ذلك، أجريت قياسات معظم البشر بدلاً من القوارض، التي أقل بكثير من نسبة الإشارة إلى الضوضاء. في الفئران، وكان يؤديها السابقين فيفو الرنين الكمي من لاكتات أثناء تنشيط الدماغ الفئران مازويل et al. 22، الذي لاحظ زيادة لاكتات المحتوى مع تنشيط الخلايا العصبية في الدماغ. وتبين النتائج المعروضة هنا زاد ذلك اللاكتات أثناء تنشيط الخط الطولي. بيد السيدة المترجمة يجيز القرار الخلوية، أنها لا تزال غير معروفة من لاكتات حجرة الهاتف الخلوي الذي يأتي (الخلايا العصبية أو أستروسيتيس). على المضي قدما في فهم عمليات التبادل الأيضي الدماغي، مثل ما زالت تناقش أنلش (أستروسيتي-العصبية لاكتات المكوك الفرضية)، هذا البروتوكول له ليتم تطبيقها على الحيوانات المحورة وراثيا للمكونات الرئيسية في هذا المكوك، مثل مونوكاربوكسيلاتي الناقلين.
ولوحظ في الدراسة المذكورة هنا، لا يوجد اختلاف مهم إحصائيا في محتوى ناه. كان انخفاض في محتوى ناه خلال التحفيز البصري سبق العثور عليها في البشر23،،من2425، ولكن لم تؤكدها مانجايا و Tkac26. في الدراسة الحالية، لاحظنا زيادة في ناه المحتوى أثناء تنشيط الدماغ في 50% الفئران، وانخفاضا في النصف الآخر. ولذلك، ينبغي تجنب ناه كمرجع داخلي للقياس الكمي خلال الوظيفية "لا السيدة" الأخرى الاختلاف في محتوى المستقلب تم الكشف عن.
لاكتات على حد سواء وأدت الاختلافات ناه أثناء تنشيط الخلايا العصبية للجدل23،،من2627،،من2829. لزيادة فهمنا لهذه التقلبات ايضية مرتبطة بنشاط الدماغ، سيكون من المثير للاهتمام أن تطبيق هذا البروتوكول على الحيوانات المحورة وراثيا. وهذا سيكون تقديم مزيد من المعلومات حول العملية الأساسية. عموما، ومترجمة 1ح-السيدة أثناء إحدى مهام، أو وظيفية السيدة29، أسلوب ناشئة في القوارض، ذات الصلة بدراسة التغيرات الدينامية الإقليمية في نواتج الأيض، في العقول العادية أو المرضية.
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
وأيد هذا العمل منح درب لابيكس، مرجع ANR-10-لابكس-57، والفرنسية-السويسرية ANR-فنس منح إشارة ANR-15-CE37-0012. يشكر المؤلفون تروتييه اوريليان لدعمه التقني.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.5 mL syringe with needle | Becton, Dickinson and Company, USA | 2020-10 | 0.33 mm (29 G) x 12.7 mm |
1H spectroscopy surface coil | Bruker, Ettlingen, Germany | T116344 | |
7T Bruker Biospec system | Bruker, Ettlingen, Germany | 70/20 USR | |
Arduino Uno based pulsing device | custom made | ||
Atipamezole | Vétoquinol, S.A., France | V8335602 | Antisedan, 4.28 mg |
Breathing mask | custom made | ||
Eye ointment | TVM laboratoire, France | 40365 | Ocry gel 10 g |
Induction chamber | custom made | 30x17x15 cm | |
Inlet flexible pipe | Gardena, Germany | 1348-20 | 4.6-mm diameter, 3m long |
Isoflurane pump, Model 100 series vaporizer, classic T3 | Surgivet, Harvard Apparatus | WWV90TT | from OH 43017, U.S.A |
Isoflurane, liquid for inhalation | Vertflurane, Virbac, France | QN01AB06 | 1000 mg/mL |
KD Scientific syringe pump | KD sientific, Holliston, USA | Legato 110 | |
LCModel software | LCModel Inc., Ontario, Canada | 6.2 | |
Medetomidine hydrochloride | Vétoquinol, S.A., France | QN05CM91 | Domitor, 1 mg/mL |
Micropore roll of adhesive plaster | 3M micropore, Minnesota, United States | MI912 | |
Micropore roll of adhesive plaster | 3M micropore, Minnesota, United States | MI925 | |
Monitoring system of physiologic parameter | SA Instruments, Inc, Stony Brook, NY, USA | Model 1025 | |
NaCl | Fresenius Kabi, Germany | B05XA03 | 0.9 % 250 mL |
Outlet flexible pipe | Gardena, Germany | 1348-20 | 4.6-mm diameter, 4m long |
Paravision software | Bruker, Ettlingen, Germany | 6.0.1 | |
Peripheral intravenous catheter | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | SP500930S | 22 G x 1", 0.85x25 mm, 35 mL/min |
Rat head coil | Bruker, Ettlingen, Germany | ||
Sodic heparin, injectable solution | Choai, Sanofi, Paris, France | B01AB01 | 5000 IU/mL |
Solenoid control valves, plunger valve 2/2 way direct-acting | Burkert, Germany | 3099939 | Model type 6013 |
Terumo 2 ml syringe | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | SY243 | with 21 g x 5/8" needle |
Terumo 5 mL syringe | Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon | 05SE1 | |
Wistar RJ-Han rats | Janvier Laboratories, France |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
ISSN 1940-087X
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved
We use cookies to enhance your experience on our website.
By continuing to use our website or clicking “Continue”, you are agreeing to accept our cookies.