이 작업은 NIH-NICHD에서 MS까지의 교내 교부금으로 지원되었습니다. NIH-NIMH 계측 핵심 시설의 G. Dold와 T. Talbot에게 맛있는 전달 시스템 설계에 대한 도움을 주신 데 대해 감사드립니다.

<ol>
	<li>Chandrashekar, J., Hoon, M. A., Ryba, N. J. P., Zuker, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+receptors+and+cells+for+mammalian+taste.">The receptors and cells for mammalian taste.</a> Nature. 444 (7117), 288-294 (2006).</li><li>Chen, X., Gabitto, M., Peng, Y., Ryba, N. J. P., Zuker, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Gustotopic+Map+of+Taste+Qualities+in+the+Mammalian+Brain.">A Gustotopic Map of Taste Qualities in the Mammalian Brain.</a> Science. 333 (6047), (2011).</li><li>Yarmolinsky, D. A., Zuker, C. S., Ryba, N. J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Common+Sense+about+Taste:+From+Mammals+to+Insects.">Common Sense about Taste: From Mammals to Insects.</a> Cell. 139 (2), 234-244 (2009).</li><li>Mueller, K. L., Hoon, M. A., Erlenbach, I., Chandrashekar, J., Zuker, C. S., Ryba, N. J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+receptors+and+coding+logic+for+bitter+taste.">The receptors and coding logic for bitter taste.</a> Nature. 434 (7030), 225-229 (2005).</li><li>Zhao, G. Q., Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+receptors+for+mammalian+sweet+and+umami+taste.">The receptors for mammalian sweet and umami taste.</a> Cell. 115 (3), 255-266 (2003).</li><li>Huang, A. L., Chen, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cells+and+logic+for+mammalian+sour+taste+detection.">The cells and logic for mammalian sour taste detection.</a> Nature. 442 (7105), 934-938 (2006).</li><li>Pfaffmann, C., Carl, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+afferent+code+for+sensory+quality.">The afferent code for sensory quality.</a> Am Psychol. 14 (5), 226-232 (1959).</li><li>Lemon, C. H., Katz, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neural+processing+of+taste.">The neural processing of taste.</a> BMC Neurosci. 8 (Suppl 3), (2007).</li><li>Barretto, R. P. J., Gillis-Smith, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neural+representation+of+taste+quality+at+the+periphery.">The neural representation of taste quality at the periphery.</a> Nature. 517 (7534), 373-376 (2015).</li><li>Reiter, S., Campillo Rodriguez, C., Sun, K., Stopfer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+Coding+of+Individual+Chemicals+by+the+Gustatory+System.">Spatiotemporal Coding of Individual Chemicals by the Gustatory System.</a> J Neurosci. 35 (35), 12309-12321 (2015).</li><li>Wilson, D. M., Boughter, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bitter+Taste+Stimuli+Induce+Differential+Neural+Codes+in+Mouse+Brain.">Bitter Taste Stimuli Induce Differential Neural Codes in Mouse Brain.</a> PLoS ONE. 7 (7), e41597 (2012).</li><li>Glendinning, J. I., Davis, A., Ramaswamy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+different+taste+cells+and+signaling+pathways+to+the+discrimination+of+"bitter"+taste+stimuli+by+an+insect.">Contribution of different taste cells and signaling pathways to the discrimination of "bitter" taste stimuli by an insect.</a> The Journal of neuroscience the official journal of the Society for Neuroscience. 22 (16), 7281-7287 (2002).</li><li>Kay, L. M., Stopfer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Information+processing+in+the+olfactory+systems+of+insects+and+vertebrates.">Information processing in the olfactory systems of insects and vertebrates.</a> Semin Cell Dev Biol. 17 (4), 433-442 (2006).</li><li>Liman, E. R., Zhang, Y. V., Montell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+Coding+of+Taste.">Peripheral Coding of Taste.</a> Neuron. 81 (5), 984-1000 (2014).</li><li>Carleton, A., Accolla, R., Simon, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+in+the+Mammalian+Gustatory+System.">Coding in the Mammalian Gustatory System.</a> Trends Neurosci. 33 (7), 326-334 (2010).</li><li>Stocker, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+organization+of+the+chemosensory+system+in+Drosophila+melanogaster:+a+rewiew.">The organization of the chemosensory system in Drosophila melanogaster: a rewiew.</a> Cell Tissue Res. 275 (1), 3-26 (1994).</li><li>Mitchell, B. K., Itagaki, H., Rivet, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+and+central+structures+involved+in+insect+gustation.">Peripheral and central structures involved in insect gustation.</a> Microsc Res Tech. 47 (6), 401-415 (1999).</li><li>Falk, R., Bleiser-Avivi, N., Atidia, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Labellar+taste+organs+of+Drosophila+melanogaster.">Labellar taste organs of Drosophila melanogaster.</a> J Morphol. 150 (2), 327-341 (1976).</li><li>Hodgson, E. S., Lettvin, J. Y., Roeder, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiology+of+a+primary+chemoreceptor+unit.">Physiology of a primary chemoreceptor unit.</a> Science. 122 (3166), 417-418 (1955).</li><li>Delventhal, R., Kiely, A., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+recording+from+Drosophila+labellar+taste+sensilla.">Electrophysiological recording from Drosophila labellar taste sensilla.</a> J Vis Exp. (84), e51355 (2014).</li><li>Weiss, L. A., Dahanukar, A., Kwon, J. Y., Banerjee, D., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+and+cellular+basis+of+bitter+taste+in+Drosophila).">The molecular and cellular basis of bitter taste in Drosophila).</a> Neuron. 69 (2), 258-272 (2011).</li><li>Descoins, C., Marion-Poll, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+responses+of+gustatory+sensilla+of+Mamestra+brassicae+(Lepidoptera,+Noctuidae)+larvae+to+three+ecdysteroids:+ecdysone,+20-hydroxyecdysone+and+ponasterone.">Electrophysiological responses of gustatory sensilla of Mamestra brassicae (Lepidoptera, Noctuidae) larvae to three ecdysteroids: ecdysone, 20-hydroxyecdysone and ponasterone.</a> A. J Insect Physiol. 45 (10), 871-876 (1999).</li><li>Popescu, A., Couton, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Function+and+central+projections+of+gustatory+receptor+neurons+on+the+antenna+of+the+noctuid+moth+Spodoptera+littoralis.">Function and central projections of gustatory receptor neurons on the antenna of the noctuid moth Spodoptera littoralis.</a> J Comp Physiol. 199 (5), 403-416 (2013).</li><li>Morita, H., Yamashita, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generator+potential+of+insect+chemoreceptor.">Generator potential of insect chemoreceptor.</a> Science. 130 (3380), 922 (1959).</li><li>Davis, N. T., Hildebrand, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroanatomy+of+the+sucking+pump+of+the+moth,+Manduca+sexta+(Sphingidae,+Lepidoptera).">Neuroanatomy of the sucking pump of the moth, Manduca sexta (Sphingidae, Lepidoptera).</a> Arthropod Struct Dev. 35 (1), 15-33 (2006).</li><li>St&#252;rckow, B., Adams, J. R., Wilcox, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Neurons+in+the+Labellar+Nerve+of+the+Blow+Fly.">The Neurons in the Labellar Nerve of the Blow Fly.</a> Z Vergl Physiol. 54, 268-289 (1967).</li><li>St&#252;rckow, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+studies+of+a+single+taste+hair+of+the+fly+during+stimulation+by+a+flowing+system.">Electrophysiological studies of a single taste hair of the fly during stimulation by a flowing system.</a> Proceed 16 Intern Contr Zool. 3 (8), 102-104 (1963).</li><li>Christensen, T. A., Hildebrand, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Male-specific,+sex+pheromone-selective+projection+neurons+in+the+antennal+lobes+of+the+moth+Manduca+sexta.">Male-specific, sex pheromone-selective projection neurons in the antennal lobes of the moth Manduca sexta.</a> J Comp Physiol A. 160, 553-569 (1987).</li><li>Reiter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Gustatory Information Processing. , (2014).</li><li>Saha, D., Leong, K., Katta, N., Raman, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multi-unit+Recording+Methods+to+Characterize+Neural+Activity+in+the+Locust+(Schistocerca+Americana)+Olfactory+Circuits.">Multi-unit Recording Methods to Characterize Neural Activity in the Locust (Schistocerca Americana) Olfactory Circuits.</a> J Vis Exp. (71), (2013).</li><li>Pouzat, C., Mazor, O., Laurent, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+noise+signature+to+optimize+spike-sorting+and+to+assess+neuronal+classification+quality.">Using noise signature to optimize spike-sorting and to assess neuronal classification quality.</a> J Neurosci Methods. 122 (1), 43-57 (2002).</li><li>Hill, D. N., Mehta, S. B., Kleinfeld, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quality+Metrics+to+Accompany+Spike+Sorting+of+Extracellular+Signals.">Quality Metrics to Accompany Spike Sorting of Extracellular Signals.</a> J Neurosci. 31 (24), 8699-8705 (2011).</li><li>Fee, M. S., Mitra, P. P., Kleinfeld, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automatic+sorting+of+multiple+unit+neuronal+signals+in+the+presence+of+anisotropic+and+non-Gaussian+variability.">Automatic sorting of multiple unit neuronal signals in the presence of anisotropic and non-Gaussian variability.</a> J Neurosci Methods. 69 (2), 175-188 (1996).</li><li>Heisenberg, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mushroom+body+memoir:+from+maps+to+models.">Mushroom body memoir: from maps to models.</a> Nat Rev Neurosci. 4 (4), 266-275 (2003).</li><li>Naraghi, M., Laurent, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odorant-induced+oscillations+in+the+mushroom+bodies+of+the+locust.">Odorant-induced oscillations in the mushroom bodies of the locust.</a> J Neurosci. 14, 2993-3004 (1994).</li><li>Laurent, G., Wehr, M., Davidowitz, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+representations+of+odors+in+an+olfactory+network.">Temporal representations of odors in an olfactory network.</a> J Neurosci. 16, 3837-3847 (1996).</li><li>Perez-Orive, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oscillations+and+sparsening+of+odor+representations+in+the+mushroom+body.">Oscillations and sparsening of odor representations in the mushroom body.</a> Science. 297, 359-365 (2002).</li><li>Stopfer, M., Jayaraman, V., Laurent, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odor+identity+vs.+intensity+coding+in+an+olfactory+system.">Odor identity vs. intensity coding in an olfactory system.</a> Neuron. 39, 991-1004 (2003).</li><li>Laurent, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Olfactory+network+dynamics+and+the+coding+of+multidimensional+signals.">Olfactory network dynamics and the coding of multidimensional signals.</a> Nature Re Neurosci. 3, 884-895 (2002).</li></ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

여기에 설명 된 방법은 비교적 단순한 동물 인 Manduca sexta의 생체 내 기록이 긴 전달 시간 (2 시간 이상) 동안, 맛이 좋은 전달 전, 도중 및 이후에 여러 무작위로 선택된 GRN의 특징을 나타낼 수 있도록합니다. 이 방법은 정확한 시간 제어와 함께 다수의 맛이있는 자극을 신속하고 순차적으로 전달할 수있게 해 주며, 맛있는 표현의 기초가되는 신경 메커니즘을 연구하는데 유용합니다. 이 프로토콜은 monosynaptically 연결 interneurons 10 GRNs를 모니터링하여 postsynaptic 대상 뉴런 ( 예 : SEZ)로 전송할 때 맛에 대한 GRNs의 반응이 변형되는 방법을 연구하는 데 사용되었습니다. 또한, 이러한 방법은 복잡한 패러다임의 실행이 미각 코딩의 기본 측면을 연구 할 수 있도록 실험자의 필요에 맞게 조정할 수 있습니다. 처음 시작할 때우리의 연구 결과로 우리가 때때로 해결해야만했던 기술적 문제 중 하나는 tetrode 전선으로 상악 신경에서 신호를 감지 할 수 없다는 것이 었습니다. 가능한 원인은 해부 프로토콜이 도전적이기 때문에 다양하며 좋은 준비를 얻으려면 일부 연습이 필요합니다. 첫째, 나방 절개 중 상악 신경이 손상되기 쉽습니다. 특히 신경 조직을 둘러싼 외피를 제거하는 동안. 둘째, 외장이 완전히 제거되지 않으면 테트로 드 와이어가 신경에 접근하지 못할 수 있습니다. 두 경우 모두 새로운 준비를 시작하는 것이 종종 이러한 문제를 해결하는 가장 쉬운 방법입니다. 셋째, 테트로 드 와이어에 문제가있을 수 있습니다. 이것은 1kHz에서 ~ 270kΩ이어야하는 전선의 임피던스를 측정하여 점검 할 수 있습니다. 임피던스 값이 ~ 300 kΩ 이상인 경우 와이어를 금으로 전기 도금하여 원하는 임피던스를 얻으십시오 (참조 30 참조). 넷째, 장비가 잘못 연결되었을 수 있습니다.또는 오작동. 또 다른 가능한 문제는 스파이 킹 신호가 기록되지만 뉴런 (들)이 맛이 잘 드러나지 않는 것처럼 보인다는 것입니다. 이것은 기록 된 뉴런이 전달 된 맛의 세트에 민감하지 않기 때문일 수 있습니다. 또한, GRN의 축색 돌기 외에도 상악 신경에는 기계 감각 섬유가 들어 있다는 사실을 기억하는 것이 중요합니다. 따라서, GRN 대신 또는 GRN에 추가하여 기계 감각 뉴런으로부터 기록하는 것이 가능하다. 그러나 맛이 좋은 전달 시스템은 실험 전반에 걸쳐 일정한 기계적 입력을 제공하도록 설계되어있어 맛에 대한 반응이 전달의 기계 구성 요소에 대한 응답으로 뒤죽박죽이 될 가능성이 거의 없습니다. 다른 맛은 아니지만 다른 맛을 나타내는 뉴런은 GRN으로 명확하게 분류 할 수 있습니다. 화합물 분해 또는 증발로 인한 맛의 농도 또는 조성의 변화를 피하기 위해 새로 희석 된 맛을 첨가하는 것이 좋습니다용매의. 또한 시스템을 정기적으로 청소하여 튜브 오염 및 장애물을 피할 것을 권장합니다. 또 다른 기술적 인 문제는 불리한 신호 대 잡음비입니다. 이 문제는 종종 욕실 접지 전극의 위치를 ​​재 염화 또는 조정하여 해결할 수 있습니다. 다른 해결책은 장치 내에서 각각의 전기 접속의 길이를 차폐하고 최소화하는 것을 요구할 수있다. 마지막으로 tetrode 녹음을 사용하여 얻은 데이터를 올바르게 분석하려면 신중한 스파이크 정렬이 필요합니다. 우리는 완전 자동화 된 방법이 일반적으로 부적절하다는 것을 발견했습니다. tetrode 데이터 10 , 29 , 31 , 32 , 33을 분석하기 전에 스파이크 분류 문헌에 익숙해지는 것이 좋습니다. 우리의 해부 프로에 대한 대안tocol을 사용할 수 있습니다. 여기에서는 나방 머리의 복부를 통해 해부를 기술하여 상악 신경과 SEZ에 접근 할 수있게 해주었습니다. 그러나 등쪽을 해부하여 이러한 구조에 접근하는 것도 가능합니다. 우리는 등쪽의 준비가 깊은 위치 때문에 이러한 미각 구조에서 녹음을하기에는 최적이 아니라는 것을 알았지 만,이 준비는 버섯 바디와 같은 고차원 구조의 녹음을 가능하게하는 이점을 제공합니다. - 감각 통합, 연상 학습 및 기억 처리 34 . 우리는 상악 신경에서 기록하기 위해 tetrode 전극의 사용에 초점을 맞추었지만, 우리가 예시 한 바와 같이 표준 세포 내 날카로운 전극도이 목적으로 사용될 수 있습니다. 또한 두 기술을 결합하여 여러 뇌 영역에서 동시 녹음을 수행 할 수 있습니다 10 . 신경 과학 관련 문헌은곤충과 척추 동물 모두 35 , 36 , 37 , 38 , 39에 적용되는 후각 코딩과 같은 감각 처리의 기본 원리를 밝히기위한 강력한 도구로 입증 된 무 모형 모델. 우리의 방법으로 맛있는 코딩에 대한 근본적인 새로운 통찰력이 생길 수 있기를 바랍니다.

맛과 후각 시스템은 환경에서 화학 물질의 내부 표현을 생성하여 맛과 냄새에 대한 인식을 각각 일으킨다. 이러한 화학적 감각은 짝짓기 및 식사 찾기에서부터 포식자와 독소를 피하는 것에 이르기까지 생물체의 생존에 결정적인 역할을하는 데 필수적입니다. 이 과정은 환경 화학 물질이 감각 수용체 세포의 원형질 막에 위치한 수용체와 상호 작용할 때 시작됩니다. 이러한 세포는 직접적으로 또는 뉴런과의 상호 작용을 통해 화학 물질의 정체와 농도에 대한 정보를 전기 신호로 변환합니다. 이 신호는 고차 뉴런과 다른 뇌 구조로 전달됩니다. 이러한 단계가 진행됨에 따라 원 신호는 항상 감각 정보를 감지, 차별, 분류, 비교 및 ​​저장하고 적절한 조치를 선택하는 생물체의 능력을 향상시키는 변화를 겪습니다. 브래지어 이해 방법환경 화학 물질에 대한 정보는 다양한 작업을 수행하는 데 가장 좋은 방법입니다. 신경 과학의 기본 질문입니다. 맛사지 코딩은 비교적 간단하다고 생각되어왔다. 맛을 이끌어내는 모든 화학 분자는 자연적으로 약 5 가지 정도의 기본 맛질 중 하나에 속한다 ( 즉 , 단맛, 쓴맛, 신맛) , 짠맛 및 우마미) 1 . 이 &quot;기본 취향&quot;관점에서, 미각 시스템의 임무는이 기본 취향 중 어느 것이 존재 하는지를 결정하는 것입니다. 더 나아가, 신경계의 기본적인 맛 표현의 근간을 이루는 신경 메커니즘은 명확하지 않으며 &quot;표식 된 선&quot; 2 , 3 , 4 , 5 , 6 또는 &quot;섬유 패턴&quot; 7 </sup&gt; , 8 코드. 분류 된 라인 코드에서 각 감각 세포와 신경 팔로워 각각은 단일 미각 품질에 반응하여 그 미각에 특화된 중추 신경계의보다 높은 처리 센터에 대한 직접적이고 독립적 인 경로를 형성합니다. 반대로 섬유 패턴 코드에서 각 감각 세포는 여러 가지 맛의 특성에 반응 할 수 있으므로 맛에 관한 정보는 감각 뉴런 집단의 전반적인 반응으로 표현됩니다. 미식가 정보가 기본 맛, 표식 된 선 또는 기타 다른 메커니즘을 통해 표현되는지 여부는 불분명하며 최근 조사 3 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 의 초점입니다. 우리의 최근 연구는 미각 시스템이 시공간 인구 코드를 사용하여기본 취향 카테고리보다는 개인 취향의 표현 10 . 여기서 우리는 미식가 코딩을 연구하는 데 도움이되는 3 가지 새로운 도구를 제공합니다. 첫째, 우리는 hawkmoth Manduca sexta 의 사용을 전기 생리 학적으로 맛을 연구 할 수있는 비교적 단순한 모델 유기체로 사용하고 해부 과정을 기술 할 것을 제안한다. 둘째, 우리는 개별 GRN의 활동을 기록하기 위해 세포 외 &quot;tetrodes&quot;의 사용을 제안합니다. 셋째, 우리는 정확한 시간에 맞춘 동물의 맥박을 전달하고 모니터링하기위한 새로운 장치를 제안합니다. 이 도구는 우리 연구실과 다른 사람들이 후각 시스템을 연구하는 데 사용했던 기술을 적용했습니다. 초파리 Drosophila melanogaster , 메뚜기 Schistocerca americana , 나방 Manduca sexta 와 같은 곤충은 수십 년 동안 원주민 에 대한 기본 원칙을 이해하는 데 강력한 자원을 제공했습니다감각 코딩 ( 예, olfaction 13 )을 포함하는 vous system. 포유 동물에서 미각 수용체는 복잡한 두 번째 전령 경로를 통해 뉴런과 통신하는 전문화 된 세포입니다. 곤충에서는 더 간단합니다. 맛 수용체는 뉴런입니다. 또한 주변의 포유류 맛 경로는 비교적 복잡하며 여러 개의 평행 신경 경로를 특징으로하며 중요한 구성 요소는 작은 뼈 구조에 포함되어 접근하기가 어렵습니다 15 . 곤충 맛 경로는 더 단순 해 보인다. 곤충에서 GRN은 안테나, 구강, 날개 및 다리에 위치한 sensilla라고 알려진 특수 구조에 포함되어 있습니다 16 , 17 . GRN은 하부 식도염 (SEZ)에 직접 투영되며, 그 역할은 주로 미각 기태라고 여겨지며 17맛있는 뉴런 10 . 거기에서 정보는 신체로 전달되어 반사 신경을 유도하고, 더 높은 뇌 영역으로 통합되고 저장되며 궁극적으로 행동 선택을 유도합니다 16 . 맛 정보가 신경계 전반에 걸쳐 점에서 점으로 전파되고 변형되는 방법을 이해하기 위해 주변 맛 반응을 특성화하는 것이 필요합니다. 곤충에서 GRNs의 신경 활동을 직접 모니터하는 가장 보편적으로 사용되는 방법은 tip-recording technique 12 , 18 , 19 , 20 , 21 , 22 , 23 입니다. 이것은 sensillum 위에 직접 전극을 놓는 것인데, 많은 것은 접근하기가 비교적 쉽습니다. 이 맛은 전극 내에 포함되어 활성화 및 확장이 가능합니다.감각 기관에서 GRNs의 뉴런 반응을 측정합니다. 그러나, 전착제가 전극에 함유되어 있기 때문에, 전착제가 전달되기 전 또는 제거 된 후에 GRN 활성을 측정하거나, 전극 ( 20) 을 대체하지 않고 맛을 교환 할 수 없다. 또 다른 방법 인 &quot;측벽&quot;기록 기술은 GRNs 활동을 기록하는데도 사용되었습니다. 여기서, 녹음 전극은 미각 감각기 ( 24) 의 기저부에 삽입되고, 맛은 감지기의 팁상의 별도의 유리 모세관을 통해 전달된다. 두 기술 모두 GRN에서 특정 감각으로 녹음하는 것을 제한합니다. 여기에 우리는 새로운 기술을 제안합니다 : 다른 sensilla의 무작위로 선택된 GRN 축색 돌기에서 녹음하면서, 따로 따로 타액을 코에 뿌리십시오. Axon 녹음은 축삭을 운반하는 신경에 ​​날카로운 유리 전극 또는 세포 외 전극 다발 (tetrodes)을 삽입하여 이루어집니다.SEZ 10 에 대한 코에있는 GRNs. 만두 카 (Manduca) 에서는 이러한 축색 돌기가 순수 구 심성 인 것으로 알려진 상악 신경을 가로 지르며, 감각 반응의 모호하지 않은 기록을 가능하게합니다 25 . 축색 돌기에서 녹음하는이 방법은 2 시간 이상 동안 일련의 풍성한 프리젠 테이션 전, 진행 중 및 후에 GRN 반응을 안정적으로 측정 할 수 있습니다. 여기에서는 SEZ와 함께 상악 신경을 노출시키는 해부 과정을 설명합니다. SEZ에서는 여러 개의 GRN과 뉴런의 반응을 동시에 기록 할 수 있습니다. 우리는 스파이크 정렬 방법과 결합 할 때 다중 (동시에 6 개까지) GRN을 동시에 분석 할 수있는 맞춤형 4 채널 트위스트 와이어 테 트로 드를 사용하여 GRN의 세포 외 기록을 사용하는 방법을 설명합니다. 우리는 tetrodes로 만든 기록과 날카로운 세포 내 기록으로 만든 기록을 비교합니다전극. 마지막으로 우리는 맛있는 자극을 전달하기위한 새로운 장치를 설명합니다. 많은 연구원들이 olfaction 연구에서 냄새 물질을 전달하기 위해 오랫동안 사용해온 장비 인 Sturckow와 동료 (참고 문헌 26 , 27 참조)가 개발 한 이전의 다 채널 전달 시스템을 개선하여 gustation을 연구하는 데 유리합니다. 이 타이밍의 전압 판독 값을 제공하면서 맛이 좋은 전달의 타이밍을 제어; 여러 가지 맛의 자극을 신속하고 순차적으로 전달할 수 있습니다. 상기 장치는 일정한 흐름의 깨끗한 물 속에서 코를 가볍게 핥아서 정련 된 제어 펄스를 전달할 수있다. 각각의 맛 펄스는 코를 통과하여 씻겨 나간다. 맛이 나는 맛있는 음식 착색제가 약간 포함되어있어 정확한 타이밍으로 맛있는 오븐의 통과를 모니터 할 수 있습니다코에요.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Dissection and Specimen Preparation&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polypropylene tube, 15 mL Falcon</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-53A</td><td></td></tr><tr><td>Needle, Short bevel, 19 G x 1 - 1/2&quot;&amp;nbsp;</td><td>&amp;nbsp;MONOJET</td><td>888200144</td><td>For applying air to remove the hair from the moth.</td></tr><tr><td>Modeling Clay-Van Aken Plastalina&amp;nbsp;</td><td>DickBlick</td><td>33268</td><td></td></tr><tr><td>Petri dish -100 x 15 mm&amp;nbsp;</td><td>VWR International</td><td>89000-304</td><td></td></tr><tr><td>Pipette tip (1 - 200 &amp;micro;L)</td><td>USA Scientific</td><td>1111-0806</td><td></td></tr><tr><td>Razor blade</td><td>Techni Edge</td><td>TE05-071</td><td></td></tr><tr><td>22 AWG standard hookup wire</td><td>AlphaWire</td><td>1551</td><td>For inserting the proboscis into the pippete tip.</td></tr><tr><td>Batik wax</td><td>Jacquard</td><td>7946000</td><td></td></tr><tr><td>Electric waxer</td><td>Almore International</td><td>66000</td><td></td></tr><tr><td>Stereo Myscroscope</td><td>Leica</td><td>MZ75</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #1 forceps (coarse)&amp;nbsp;</td><td>World Precision Instruments</td><td>500335</td><td>For removing fat and non-nervous tissue.</td></tr><tr><td>Dumont #5 titanium forceps (fine)&amp;nbsp;</td><td>World Precision Instruments</td><td>14096</td><td>For removing fat and non-nervous tissue.</td></tr><tr><td>Dumont #5SF forceps (super-fine)</td><td>World Precision Instruments</td><td>500085</td><td>For desheathing the nervous tissue.</td></tr><tr><td>Vannas scissors (fine)</td><td>World Precision Instruments</td><td>500086</td><td>For removing the cuticle.</td></tr><tr><td>Collagenase/Dispase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11097113001</td><td></td></tr><tr><td>Epoxy</td><td>Permatex</td><td>84101</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Saline Perfusion System&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Extension set with rate flow regulator</td><td>&amp;nbsp;B Braun Medical Inc.</td><td>V5200</td><td></td></tr><tr><td>IV administration set with Y injection site</td><td>&amp;nbsp;B Braun Medical Inc.</td><td>V1402</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Tastant Delivery System&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>White Translucent Nylon Tubing OD 1/4&quot;, ID 1/8&quot;</td><td>Small Parts Inc.</td><td>B001JJT4SA</td><td>Rigid tube that connects the four main elements of the system.</td></tr><tr><td>Soldering iron</td><td>Circuit Specialists</td><td>ZD200BK</td><td></td></tr><tr><td>Rotary tool-Dremel</td><td>Dremel</td><td>4200</td><td></td></tr><tr><td>Polypropylene mesh, hole size (hole size 0.1 x 0.13 cm)&amp;nbsp;</td><td>Industrial Netting</td><td>XN5170</td><td>For ensuring that the probosises of different animals are placed in the same location.</td></tr><tr><td>Pressurized 16-Channel perfusion system&amp;nbsp;</td><td>Bioscience Tools</td><td>PS-16H</td><td>For tastant delivery. This system includes pinch valves, tubing, manifold, solution cylinders, valve controller and fitting accessories.</td></tr><tr><td>Polypropylene tubing, ID 0.034&quot;, ID 0.050&quot;</td><td>Becton, Dickinson &amp;amp; Co</td><td>427421</td><td>Output tube from the perfusion system.</td></tr><tr><td>Pneumatic PicoPump</td><td>World Precision Instruments</td><td>SYS-PV820</td><td>For controlling the output channel of the perfusion system.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Data acquisition software system, LabVIEW PCI-MIO-16E-4 DAQ card</td><td>National Instruments</td><td>LabVIEW 2011</td><td>To control the pico pump for tastant delivery and to record the signals from the color sensor.</td></tr><tr><td>Compulab 3 Manostat peristaltic pump</td><td>Sigma</td><td>P1366</td><td>For pumping water.</td></tr><tr><td>Silicone tubing, ID 1/16&quot; OD 1/8&quot;</td><td>Cole-Parmer</td><td>WU-95802-02</td><td>To connect the water source to the peristaltic pump tubing, and the outlet tube of the pump to the rigid tube of the delivery system.</td></tr><tr><td>Color sensor-digital fiber optic sensor</td><td>Keyence</td><td>&amp;nbsp;FS-V31M</td><td>For monitoring tastant delivery.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Color sensor-reflective fiber unit</td><td>Keyence</td><td>FU35-FZ</td><td>To connect the color sensor device.</td></tr><tr><td>Dental periphery Wax</td><td>Henry-Schein Dental</td><td>6652151</td><td>To secure the proboscis into the rigid tube.</td></tr><tr><td>Two 3.7 L containers</td><td></td><td></td><td>To provide water to the system, and to recollect the water waste.</td></tr><tr><td>Fast green FCF&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>F7258</td><td></td></tr><tr><td>Dressing forceps 25.5 cm</td><td>WPI</td><td>500364</td><td>To introduce moth proboscis into the proboscis hole in the rigid tube.</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Electrophysiology Equipment&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>D.C. amplifier</td><td>Brown-Lee</td><td>440</td><td></td></tr><tr><td>Lamp</td><td>Schott</td><td>Schott Fostec Light Source DCR 2</td><td></td></tr><tr><td>Manual micromanipulator</td><td>Leica</td><td>micromanipulator</td><td>To precisely insert the tetrodes into the animal&#039;s brain. The manipulator has to allow fine and coarse movements in x, y and z axis.</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Leica</td><td>MZ75</td><td></td></tr><tr><td>Vibration-isolation table (MICRO-g lab table)</td><td>TMC</td><td>63-541</td><td></td></tr><tr><td>Oscilloscope</td><td>Tektronix&amp;nbsp;</td><td>TDS2014</td><td></td></tr><tr><td>16-channle pre-amplifier and amplifier</td><td>16 Channel MA-800 Amplifier System&amp;nbsp;</td><td>B.E.S 2013</td><td></td></tr><tr><td>Computer</td><td>Dell</td><td>optiplex 780</td><td>The following are the minimum recommended requirements. RAM: 3.32 GHz, 3GB. Processor: Intel Core&amp;nbsp;2 Duo. Graphic card: integrated Intel GMA X4500.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Data acquisition software system, LabVIEW PCI-MIO-16E-4 DAQ card</td><td>National Instruments</td><td>LabVIEW 2011</td><td>To control the pico pump for tastant delivery and to record the signals from the color sensor and electrode.</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Tastants&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KAc</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5708</td><td></td></tr><tr><td>LiCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L9650</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>73575</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>84097</td><td></td></tr></tbody></table>

new methods to study gustatory coding

맛 감각을 통해 동물은 환경에서 화학 물질을 감지하여 생존에 중요한 행동을 유발할 수 있습니다. 미각 수용체 뉴런 (GRNs)은 맛있는 분자를 검출 할 때 뇌의 팔로워 뉴런으로 전파되는 전기 활동의 패턴으로서 미각의 정체와 집중에 대한 정보를 암호화합니다. 이 패턴들은 미각의 내부 표현을 구성하며, 동물은 행동을 선택하고 추억을 만들 수 있습니다. 상대적으로 간단한 동물 모델의 사용은 감각 코딩의 기본 원리를 연구하는 강력한 도구였습니다. 여기서 우리는 나방 Manduca sexta를 사용하여 맛있는 코딩을 연구하는 3 가지 새로운 방법을 제안합니다. 첫째, 우리는 상악 신경과 부 식도 역 (SEZ)을 노출시키는 해부 과정을 제시하여 축색 돌기에서 GRN의 활성을 기록 할 수있게합니다. 둘째로, 우리는 세포 외 전극의 사용을 기술하여 다중 GRN의 활동을 기록한다.와이어를 상악 신경에 직접 연결하십시오. 셋째, 우리는 높은 시간 정밀도로 다른 맛의 펄스를 전달하고 모니터링하기위한 새로운 시스템을 제시합니다. 이 방법은 전이가 전달되기 전, 중 및 후에 GRN에서 직접 생체 내에서 의 신경 반응 을 특성화 할 수 있습니다. 우리는 여러 GRN에서 기록 된 전압 추적의 예제를 제공하고 개별 뉴런의 반응을 식별하기 위해 데이터에 스파이크 정렬 기술을 적용하는 방법의 예를 제시합니다. 마지막으로 우리의 녹음 접근법을 검증하기 위해 GRN에서 얻은 세포 외 녹음과 tetrodes를 날카로운 유리 전극으로 얻은 세포 내 녹음과 비교합니다.

GRNs의 활동은 맛있는 전달 전, 도중 및 후에 세포 외 tetrode 전극을 사용하여 기록 할 수 있습니다 ( 그림 6A 및 6C ). 그림 6A (중간 및 하단 패널)는 상악 신경에 배치 된 4 개의 와이어 각각에 의해 기록 된 필터링 된 (300-6,000 Hz) 전압 트레이스를 보여줍니다. 여기에서 활동 전위 (화살표)를 반영하는 다양한 진폭의 신호를 볼 수 있습니다. 시험 시작 후 1 초의 맛이 나는 (1 M 자당) 펄스가 전달되었다. 자극의 개시 및 오프셋은 컬러 센서 ( 도 6A , 상부 패널)에 의해 모니터링되었다. 4 개의 채널 ( 그림 6A , 가운데 패널) 각각에서 관찰 할 수있는 맛이 강한 유도 스파이크. GRN은 일부 타 스탄 (tastant)에 반응 할 때 기계 센서 (mechanosensors) (여기에는 아무 것도 표시되지 않음)와 식별되고 구별 될 수 있습니다 tetrode 기록에서 단일 뉴런 반응을 확인하고 분리하기 위해 Pouzat 31 및 Kleinfeld 32 , 33 방법을 기반으로 한 맞춤 함수 집합을 사용하여 오프라인 스파이크 정렬을 수행했습니다 (이러한 방법은이 인용 문헌에 설명되어 있습니다 : 10 , 29 ). 도 6B 는 도 6A에 도시 된 데이터에 적용된 스파이크 정렬의 예를 도시하며, 잘 격리 된 세 개의 단위가 발견되었다. 도 6C의 래스터 도표는 6 개의 상이한 맛 (1 M 수크로오스, 말 토즈 및 NaCl, 100 mM 카페인 및 10 mM 베르베린 및 로브 라인)에 대한 도 6B 의 3 개의 단리 된 단위의 반응을 순차적으로 전달한 것이다s / tastant가 표시됨). 도 6c에 도시 된 바와 같이, 기록 된 GRN은 침묵 (GRN 1)에서 저온 또는 중등도 (GRN 2 및 3)에 이르는 다양한 기준 활성도를 갖는다. 맛이 진한 발병 후, GRNs는 다양한 활동 패턴을 보이고 맛에 다른 선택성을 보입니다. 예를 들어, GRN 1은 자당에만 반응하는 반면, GRN 2는 말토오스와 NaCl에 스파이크의 파열로 반응했고, 자극의 시작에서만 스파이크로 로브 라인에 반응했습니다. 또한 일부 반응은 자극의 시간 ( 예 : 자당에 대한 GRN 1 반응)에 고정되어 있지만 다른 반응은 자극 지속 시간 ( 예 : 베르베린에 대한 GRN 3 반응)보다 오래 지속되거나 흥분성 및 억제 성 성분을 모두 포함합니다 NaCl 및 자당에 대한 GRN 2 반응). GRNs의 다양한 민감도와 활동 패턴에 대한 더 자세한 정보는 참고 문헌 10을 참조하십시오. <p class="jove_content" fo:keep-together.within-page= &quot;1&quot;&gt; 상악 신경에서 GRN을 기록하기위한 tetrode와 spike-sorting 기술의 유효성을 확인하기 위해, 우리는 기존의 날카로운 유리 전극 (80-120 MΩ의 저항)을 사용하여 다른 동물의 GRN 축삭에서 세포 내 기록을 수행했습니다. 우리는 세포 내 녹음을 사용하여 얻은 활동 패턴이 tetrode 기술을 사용하여 관찰 된 반응과 유사하다는 것을 발견했습니다 ( 그림 7 ). 패널 A의 녹색 상자에 전압 트레이스는 자당 프레 젠 테이션의 5 연속 시도 동안 GRN 1에서 세포 내 기록되었고, 동일한 반응은 패널 B에서 래스터 플롯으로 표시됩니다 (이 유형의 응답은 tetrodes 및 도 6c에 도시 된 바와 같이). 날카로운 세포 내 전극으로 기록 된 GRN2는 더 넓은 반응 패턴을 나타낸다. <img alt="도 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55868/55868fig6v2.jpg"/&gt; 그림 6 : 세포 외 Tetrodes와 상악 신경 기록의 대표 결과. ( A ) 상악 신경에서 4 개의 와이어 각각에 의해 기록 된 필터링 된 (300-6,000 Hz) 전압 트레이스가 표시됩니다 (중간 패널). 중간 패널에 적색 음영으로 표시된 기간 동안 1 초의 맛을 적용했습니다. 자극의 시작 및 오프셋은 상부 패널의 적색 전압 트레이스에 의해 표시된 바와 같이 컬러 센서에 의해 모니터링되고 중간 패널의 적색 음영 영역으로 표시됩니다. 점선으로 된 수평선은 +50 (상단), 0 (중간) 및 -50 (하단) μV를 나타냅니다. 수직 점선 내부 영역에 해당하는 원시 전압 트레이스가 확대되어 표시됩니다 (하단 패널). 스파이크의 예는 화살표로 표시됩니다. ( B ) 패널 A에 표시된 데이터에 적용된 스파이크 분류의 예. 4 개의 세포 외 와이어 (1-4) 각각에 기록 된 파형e는 기록 된 신호에 기여하는 세 가지 다른 GRN (단위 1 ~ 3)으로 식별됩니다. 세 가지 단위에 대한 개별 사건 (색이있는가는 선)과 평균 (두꺼운 검은 색 선)이 표시됩니다. 스파이크 정렬 방법 (참고 문헌 10 , 29 참조)을 사용하여 독립적 인 단위를 신뢰성있게 식별하기 위해서는 여러 가지 통계적 기준을 고려해야합니다. ( C ) 3 개의 격리 된 단위의 반응을 나타내는 6 개의 다른 맛 (4 가지 시도 / 맛이 나와 있음)에 대한 래스터 그림. 맛있는 전달 시간 (1 초)은 붉은 색 음영 영역으로 표시됩니다. 미각의 농도는 1 M (자당, 말토오스, NaCl), 100 mM (카페인) 및 10 mM (베르베린 및 로브 라인)이었다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55868/55868fig6v2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 7" c<html> lass = &quot;xfigimg&quot;src = &quot;/ files / ftp_upload / 55868 / 55868fig7.jpg&quot;/&gt; 그림 7 : GRN Axons의 세포 내 기록. ( A , 녹색 상자 패널) 1M의 자당 (Suc) 5 연속 자극에 의해 elicited, 상악 신경에 배치 날카로운 유리 세포 내 전극 (80-120 MΩ의 저항)와 GRN에서 기록 된 전압 추적. ( B ) 날카로운 유리 세포 내 전극으로 기록 된 2 개의 상이한 시험 물질 (100 mM 회색 글꼴 색, 1 M 검정색 글꼴 색)에 대한 패널 A (녹색 상자 패널)에 나타난 반응을 포함하여 2 개의 GRN 반응의 래스터 그림 상악 신경에 위치한다. (7 가지 시도 / 맛과 3 가지 시도 / 물이 표시됨). 맛있는 배달 시간은 두 패널의 빨간색 음영 영역으로 표시됩니다. 자극의 개시 및 오프셋은 각 패널의 하단에 빨간색 전압 트레이스로 표시된 것처럼 컬러 센서에 의해 모니터링되었습니다.es / ftp_upload / 55868 / 55868fig7large.jpg &quot;target =&quot;_ blank &quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Watch this Scientific Journal Video about New Methods to Study Gustatory Coding at JoVE.com

New Methods to Study Gustatory Coding

미식가 코딩을 연구하기위한 세 가지 새로운 방법을 제시 합니다. 나방의 Manduca sexta ( Manduca ) 라는 간단한 동물을 사용하여 우리는 해부 프로토콜, 다중 미각 수용체 뉴런의 활동을 기록하기위한 세포 외 tetrodes의 사용법, 정확한 타이밍 버섯의 전달 및 모니터링 시스템을 설명합니다.

새로운 방식으로 맛보기 코딩 공부하기

The sense of taste allows animals to detect chemicals in the environment, giving rise to behaviors critical for survival. When Gustatory Receptor Neurons ...

Nanyang Technological University

Research

Education

JoVE Journal

JoVE Core

Biology

Neuroscience

Human Biology

Sensory Systems

SCIENTISTS IN ACTION

9.3K 조회수.  National Institutes of Health (NIH).  미식가 코딩을 연구하기위한 세 가지 새로운 방법을 제시 합니다. 나방의 Manduca sexta ( Manduca ) 라는 간단한 동물을 사용하여 우리는 해부 프로토콜, 다중 미각 수용체 뉴런의 활동을 기록하기위한 세포 외 tetrodes의 사용법, 정확한 타이밍 버섯의 전달 및 모니터링 시스템을 설명합니다. 

비디오: New Methods to Study Gustatory Coding

Psychophysical Tracking Method to Measure Taste Preferences in Children and Adults

The Monell two-series, forced-choice, paired-comparison tracking method provides a reliable measure of sweet taste preferences from childhood to adulthood. The method, which is identical for children, adolescents, and adults, is of short duration (&#60; 15 min), does not rely on sustained attention or place demands on memory (which would yield spurious age differences), and minimizes the impact of language development, making this method amenable to the cognitive limitations of pediatric populations. In this whole-mouth tasting method, subjects are asked to taste (without swallowing) pairs of solutions of different sucrose concentrations and to point to the solution they prefer. Each subsequent pair contains the participant&#39;s preceding preferred concentration and an adjacent stimulus concentration. The procedure continues until the subject chooses either a given concentration of sucrose when paired with both a higher and a lower concentration, or the highest or lowest concentration two consecutive times. Subjects are prevented from reaching response criteria on the basis of first or second position bias by the two-series design of the method, which counterbalances the order of solution presentation within each pair between the series (the weaker concentration is presented first in Series 1, second in Series 2). The geometric mean of the two sucrose concentrations chosen in Series 1 and 2 is an estimate of the participant&#39;s most preferred level of sucrose. Sucrose preference as determined with this laboratory-based measure has been shown to be associated with preference for sugars in foods and beverages and with taste receptor genotype, family history of alcoholism, and race/ethnicity, as well as depressive symptomatology among pediatric populations. The method has real-world relevance and has been applied to determine most preferred level of other tastes (e.g., salt), making it a valuable psychophysical tool.

Sweet taste has powerful hedonic appeal among people of all ages, particularly children. Described herein is a reliable and valid method that can be used to determine the level of sweetness most preferred, making it a valuable psychophysical tool for scientists.

정신 물리학 추적 방법은 어린이와 성인의 맛의 기본 설정을 측정하는

The Monell two-series, forced-choice, paired-comparison tracking method provides a reliable measure of sweet taste preferences from childhood to ...

연구

행동분석학

Electrophysiological Recording From Drosophila Labellar Taste Sensilla

The peripheral taste response of insects can be powerfully investigated with electrophysiological techniques. The method described here allows the researcher to measure gustatory responses directly and quantitatively, reflecting the sensory input that the insect nervous system receives from taste stimuli in its environment. This protocol outlines all key steps in performing this technique. The critical steps in assembling an electrophysiology rig, such as selection of necessary equipment and a suitable environment for recording, are delineated. We also describe how to prepare for recording by making appropriate reference and recording electrodes, and tastant solutions. We describe in detail the method used for preparing the insect by insertion of a glass reference electrode into the fly in order to immobilize the proboscis. We show traces of the electrical impulses fired by taste neurons in response to a sugar and a bitter compound. Aspects of the protocol are technically challenging and we include an extensive description of some common technical challenges that may be encountered, such as lack of signal or excessive noise in the system, and potential solutions. The technique has limitations, such as the inability to deliver temporally complex stimuli, observe background firing immediately prior to stimulus delivery, or use water-insoluble taste compounds conveniently. Despite these limitations, this technique (including minor variations referenced in the protocol) is a standard, broadly accepted procedure for recording Drosophila neuronal responses to taste compounds.

Electrophysiological Recording From Drosophila Labellar Taste Sensilla

This protocol describes extracellular recording of the action potential responses fired by labellar taste neurons in Drosophila.

에서 전기 생리학 기록<em&gt; 초파리</em&gt; Labellar는 Sensilla 맛

The peripheral taste response of insects can be powerfully investigated with electrophysiological techniques. The method described here allows the ...

신경과학

Taste Exam: A Brief and Validated Test

The emerging importance of taste in medicine and biomedical research, and new knowledge about its genetic underpinnings, has motivated us to supplement classic taste-testing methods in two ways. First, we explain how to do a brief assessment of the mouth, including the tongue, to ensure that taste papillae are present and to note evidence of relevant disease. Second, we draw on genetics to validate taste test data by comparing reports of perceived bitterness intensity and inborn receptor genotypes. Discordance between objective measures of genotype and subjective reports of taste experience can identify data collection errors, distracted subjects or those who have not understood or followed instructions. Our expectation is that fast and valid taste tests may persuade researchers and clinicians to assess taste regularly, making taste testing as common as testing for hearing and vision. Finally, because many tissues of the body express taste receptors, taste responses may provide a proxy for tissue sensitivity elsewhere in the body and, thereby, serve as a rapid, point-of-care test to guide diagnosis and a research tool to evaluate taste receptor protein function.

This protocol measures human taste responses and includes a brief anatomical assessment, a short taste test, and a validation method using the subject&#39;s reported sensation and taste receptor genotype.

맛 시험: 짧고 검증 테스트

The emerging importance of taste in medicine and biomedical research, and new knowledge about its genetic underpinnings, has motivated us to supplement ...

의학

Whole-Mount Staining, Visualization, and Analysis of Fungiform, Circumvallate, and Palate Taste Buds

Taste buds are collections of taste-transducing cells specialized to detect subsets of chemical stimuli in the oral cavity. These transducing cells communicate with nerve fibers that carry this information to the brain. Because taste-transducing cells continuously die and are replaced throughout adulthood, the taste-bud environment is both complex and dynamic, requiring detailed analyses of its cell types, their locations, and any physical relationships between them. Detailed analyses have been limited by tongue-tissue heterogeneity and density that have significantly reduced antibody permeability. These obstacles require sectioning protocols that result in splitting taste buds across sections so that measurements are only approximated, and cell relationships are lost. To overcome these challenges, the methods described herein involve collecting, imaging, and analyzing whole taste buds and individual terminal arbors from three taste regions: fungiform papillae, circumvallate papillae, and the palate. Collecting whole taste buds reduces bias and technical variability and can be used to report absolute numbers for features including taste-bud volume, total taste-bud innervation, transducing-cell counts, and the morphology of individual terminal arbors. To demonstrate the advantages of this method, this paper provides comparisons of taste bud and innervation volumes between fungiform and circumvallate taste buds using a general taste-bud marker and a label for all taste fibers. A workflow for the use of sparse-cell genetic labeling of taste neurons (with labeled subsets of taste-transducing cells) is also provided. This workflow analyzes the structures of individual taste-nerve arbors, cell type numbers, and the physical relationships between cells using image analysis software. Together, these workflows provide a novel approach for tissue preparation and analysis of both whole taste buds and the complete morphology of their innervating arbors.

This paper describes methods for tissue preparation, staining, and analysis of whole fungiform, circumvallate, and palate taste buds that consistently yield whole and intact taste buds (including the nerve fibers that innervate them) and maintain the relationships between structures within taste buds and the surrounding papilla.

곰팡이, 둘레 및 미각 미각의 전체 마운트 염색, 시각화 및 분석

Taste buds are collections of taste-transducing cells specialized to detect subsets of chemical stimuli in the oral cavity. These transducing cells ...

In vivo Calcium Imaging of Mouse Geniculate Ganglion Neuron Responses to Taste Stimuli

Within the last ten years, advances in genetically encoded calcium indicators (GECIs) have promoted a revolution in in vivo functional imaging. Using calcium as a proxy for neuronal activity, these techniques provide a way to monitor the responses of individual cells within large neuronal ensembles to a variety of stimuli in real time. We, and others, have applied these techniques to image the responses of individual geniculate ganglion neurons to taste stimuli applied to the tongues of live anesthetized mice. The geniculate ganglion is comprised of the cell bodies of gustatory neurons innervating the anterior tongue and palate as well as some somatosensory neurons innervating the pinna of the ear. Imaging the taste-evoked responses of individual geniculate ganglion neurons with GCaMP has provided important information about the tuning profiles of these neurons in wild-type mice as well as a way to detect peripheral taste miswiring phenotypes in genetically manipulated mice. Here we demonstrate the surgical procedure to expose the geniculate ganglion, GCaMP fluorescence image acquisition, initial steps for data analysis, and troubleshooting. This technique can be used with transgenically encoded GCaMP, or with AAV-mediated GCaMP expression, and can be modified to image particular genetic subsets of interest (i.e., Cre-mediated GCaMP expression). Overall, in vivo calcium imaging of geniculate ganglion neurons is a powerful technique for monitoring the activity of peripheral gustatory neurons and provides complementary information to more traditional whole-nerve chorda tympani recordings or taste behavior assays.

Here we present how to expose the geniculate ganglion of a live, anesthetized laboratory mouse and how to use calcium imaging to measure the responses of ensembles of these neurons to taste stimuli, allowing for multiple trials with different stimulants. This allows for in depth comparisons of which neurons respond to which tastants.

마우스 의 생체 칼슘 이미징에서 맛 자극에 신경절 신경 반응

Within the last ten years, advances in genetically encoded calcium indicators (GECIs) have promoted a revolution in in vivo functional imaging. Using ...

&#181;Tongue: A Microfluidics-Based Functional Imaging Platform for the Tongue In Vivo

Intravital fluorescence microscopy is a tool used widely to study multicellular dynamics in a live animal. However, it has not been successfully used in the taste sensory organ. By integrating microfluidics into the intravital tongue imaging window, the &#181;Tongue provides reliable functional images of taste cells in vivo under controlled exposure to multiple tastants. In this paper, a detailed step-by-step procedure to utilize the &#181;Tongue system is presented. There are five subsections: preparing of tastant solutions, setting up of a microfluidic module, sample mounting, acquiring functional image data, and data analysis. Some tips and techniques to solve the practical issues that may arise when using the &#181;Tongue are also presented.

 &#181;Tongue: A Microfluidics-Based Functional Imaging Platform for the Tongue In Vivo

The article introduces the &#181;Tongue (microfluidics-on-a-tongue) device for functional taste cell imaging in vivo by integrating microfluidics into an intravital imaging window on the tongue.

μTongue: Vivo의 혀를 위한 미세 유체 기반 기능 이미징 플랫폼

Intravital fluorescence microscopy is a tool used widely to study multicellular dynamics in a live animal. However, it has not been successfully used in ...

곤충 맛 뉴런 활동의 향상된 분석을 위한 새로운 방법

Base Recording: A Technique for Analyzing Responses of Taste Neurons in Drosophila

Insects taste the external world through taste hairs, or sensilla, that have pores at their tips. When a sensillum comes into contact with a potential food source, compounds from the food source enter through the pore and activate neurons within. For over 50 years, these responses have been recorded using a technique called tip recording. However, this method has major limitations, including the inability to measure neural activity before or after stimulus contact and the requirement for tastants to be soluble in aqueous solutions. We describe here a technique that we call base recording, which overcomes these limitations. Base recording allows the measurement of taste neuron activity before, during, and after the stimulus. Thus, it allows extensive analysis of OFF responses that occur after a taste stimulus. It can be used to study hydrophobic compounds such as long-chain pheromones that have very low solubility in water. In summary, base recording offers the advantages of single-sensillum electrophysiology as a means of measuring neuronal activity - high spatial and temporal resolution, without the need for genetic tools - and overcomes key limitations of the traditional tip recording technique.

저자 스포트라이트: 화학수용의 발전 – 곤충 냄새 수용체에서 비코딩 RNA까지

A rarely used method of electrophysiological recording, base recording, allows analysis of features of taste coding that cannot be examined by conventional recording methods. Base recording also allows the analysis of taste responses to hydrophobic stimuli that cannot be studied using traditional electrophysiological methods.

염기 기록: 초파리에서 미각 뉴런의 반응을 분석하는 기법

Insects taste the external world through taste hairs, or sensilla, that have pores at their tips. When a sensillum comes into contact with a potential ...

In Vivo Calcium Imaging of Taste-Induced Neural Responses in Adult Drosophila

For nearly two decades, in vivo calcium imaging has been an effective method for measuring cellular responses to taste stimuli in the fruit fly model organism, Drosophila melanogaster. A key strength of this methodology is its ability to record taste-induced neural responses in awake animals without the need for anesthesia. This approach employs binary expression systems (e.g., Gal4-UAS) to express the calcium indicator GCaMP in specific neurons of interest. This protocol describes a procedure in which flies expressing GCaMP are mounted with the labellum securely positioned, enabling fluorescence in the brain to be recorded at millisecond resolution under a confocal microscope while a solution is applied to the labellum, stimulating all labellar taste sensilla. The examples provided focus on calcium responses in primary gustatory receptor neurons of D. melanogaster. However, this approach can be adapted to record from other neurons of interest within the brain of Drosophilids or other insect species. This imaging method enables researchers to simultaneously record collective calcium responses from groups of gustatory neurons across the labellum, complementing electrophysiological tip recordings that quantify action potentials from individual neurons. The in vivo calcium imaging technique outlined here has been instrumental in uncovering molecular and cellular mechanisms of chemosensation, identifying unique temporal response patterns in primary taste neurons, investigating mechanisms of gustatory modulation, and exploring taste processing in downstream circuits.

A calcium imaging approach enables the recording of taste-induced responses in the brains of awake flies while a solution is applied to the labellum. Primary gustatory responses in Drosophila melanogaster are used as an example, but this protocol can be adapted to study downstream neurons or other species.

생체 내 성체 초파리에서 미각 유도 신경 반응의 칼슘 이미징

For nearly two decades, in vivo calcium imaging has been an effective method for measuring cellular responses to taste stimuli in the fruit fly model ...

새로운 방식으로 맛보기 코딩 공부하기

요약

더 많은 비디오 탐색

이 비디오의 챕터

정신 물리학 추적 방법은 어린이와 성인의 맛의 기본 설정을 측정하는

에서 전기 생리학 기록

맛 시험: 짧고 검증 테스트

곰팡이, 둘레 및 미각 미각의 전체 마운트 염색, 시각화 및 분석

마우스 의 생체 칼슘 이미징에서 맛 자극에 신경절 신경 반응

μTongue: Vivo의 혀를 위한 미세 유체 기반 기능 이미징 플랫폼

염기 기록: 초파리에서 미각 뉴런의 반응을 분석하는 기법

염기 기록: 초파리에서 미각 뉴런의 반응을 분석하는 기법

염기 기록: 초파리에서 미각 뉴런의 반응을 분석하는 기법

생체 내 성체 초파리에서 미각 유도 신경 반응의 칼슘 이미징