Method Article
Gel-seq permet aux chercheurs de préparer simultanément les bibliothèques pour les deux ADN - et RNA-seq au surcoût négligeable à partir de 100-1000 cellules à l’aide d’un dispositif simple hydrogel. Cet article présente une approche détaillée pour la fabrication de l’appareil ainsi que le protocole biologiques pour générer des bibliothèques appariés.
La capacité d’amplifier et de séquences d’ADN ou ARN de petits échantillons de départ est parvenue seulement dans les cinq dernières années. Malheureusement, les protocoles standard pour la production génomique ou bibliothèques de transcriptomique sont incompatibles et chercheurs doivent choisir de séquence d’ADN ou ARN pour un échantillon donné. Gel-seq résout ce problème en permettant aux chercheurs préparer simultanément des bibliothèques pour les ADN et d’ARN à partir de 100-1000 cellules à l’aide d’un dispositif simple hydrogel. Cet article présente une approche détaillée pour la fabrication de l’appareil ainsi que le protocole biologiques pour générer des bibliothèques appariés. Nous avons conçu le Gel-seq afin qu’il pourrait être facilement mis en œuvre par d’autres chercheurs ; de nombreux laboratoires de génétique ont déjà l’équipement nécessaire pour reproduire la fabrication de dispositifs de Gel-seq. Notre protocole emploie couramment utilisé des kits pour les deux ensemble-transcription amplification (WTA) et préparation de bibliothèque, qui sont également susceptibles d’être familière aux chercheurs déjà versé dans la génération génomique et transcriptomique bibliothèques. Notre approche permet aux chercheurs de mettre à profit la puissance du séquençage de l’ADN et l’ARN sur un seul échantillon sans le découper et avec surcoût négligeable.
Prochaine génération séquençage (NGS) a eu un impact profond sur le déroulement de la recherche en génétique. Là où autrefois, chercheurs se sont penchés sur le séquençage du génome d’une espèce entière, il est maintenant possible de séquencer le génome d’une tumeur unique ou même une seule cellule dans une expérience. 1 NGS a également rendu rentable pour séquencer les transcriptions d’ARN présentes dans une cellule, une collection de données appelées le transcriptome. La capacité d’amplifier et de séquences d’ADN ou ARN de petits échantillons de départ est parvenue seulement dans les cinq dernières années. 2 , 3 , 4 malheureusement, protocoles standard sont incompatibles et chercheurs doivent choisir de séquence d’ADN ou ARN pour un échantillon donné. Lorsqu’un échantillon de départ est assez grand, il peut être divisé en deux. Toutefois, à des échelles plus petites, perte de matériel en raison de la séparation des échantillons peut affecter la qualité de la bibliothèque et mise en commun des échantillons peut moyenne des variations intéressantes entre les cellules. 5 par ailleurs, les chercheurs sont plus en plus intéressés à l’examen d’échantillons qui ne peut pas être divisés, comme des cellules individuelles ou des biopsies de petite tumeur hétérogène. 6
Pour résoudre ce problème, trois protocoles ont récemment été mis au point pour séquencer l’ADN et l’ARN de l’échantillon de départ même : Gel-seq7, G & T-seq8et9de la DR-seq. Cet article présente un protocole détaillé pour Gel-seq, qui peut être utilisé pour générer simultanément bibliothèques d’ADN et d’ARN à partir d’aussi peu que 100 cellules au surcoût négligeable. La nouveauté de Gel-seq est la capacité de séparer l’ADN et l’ARN fondée exclusivement sur la taille à l’aide de matrices de faible coût hydrogel. L’innovation de base du protocole Gel-Seq est la séparation physique de l’ADN de l’ARN. Cette séparation se fait par électrophorèse en utilisant une combinaison des membranes de polyacrylamide qui tirent parti de la différence de taille entre ces molécules. Pour mettre ces différences de taille en contexte, examiner comment l’ADN et l’ARN sont imagés : alors que l’ADN existe sur l’échelle de micron et peut être consulté à l’aide de microscopes traditionnels, ARN existe à l’échelle du nanomètre et doit être copié à l’aide de techniques complexes comme cryo-electron microscopie. 10
L’approche à la séparation de l’ADN et l’ARN dans le présent protocole est illustré à la Figure 1. Le panneau de gauche montre l’ADN et l’ARN libre flottant dans la solution près d’une membrane. Lorsqu’un champ électrique est appliqué, comme indiqué dans le panneau de droite, ADN et l’ARN l'expérience une force électrophorétique qui induit la migration à travers la membrane. En ajustant les propriétés de la membrane, nous avons créé une membrane semi-perméable qui sépare l’ADN de l’ARN. Les molécules d’ADN sont poussés contre la membrane, mais sont accrocher au bord à cause de leur grande taille. En revanche, les petites molécules d’ARN, peuvent reconfigurer et tissent leur chemin à travers la membrane. Ce processus, connu comme la reptation, est semblable à la manière de qu'un serpent se déplace dans l’herbe. Finalement, ces molécules d’ARN sont arrêtés par une deuxième membrane haute densitée qui est trop difficile pour les polymères encore plus petits (> 200 paires de bases) de se soustraire à travers. Une fois physiquement séparés, l’ADN et l’ARN peuvent être récupérées et traitées pour générer des informations sur le génome et le transcriptome. Alors que nous pouvons séparer les ADN et ARN, nous avons identifié les meilleurs résultats sont obtenus si l’ARN est inverse, transcrit d’ADNc avant la séparation. Les hybrides de cDNA/ARN sont plus stables que RNA seule et peuvent toujours passer à travers la membrane de faible densitée.
Figure 1 . Principe de fonctionnement de gel-seq. Le principe sous-jacent utilisé pour séparer physiquement les ADN et ARN. Dans un champ électrique appliqué, petites molécules d’ARN migrent à travers la membrane de faible densitée, mais grosses molécules d’ADN sont pris au piège à la surface. Ce chiffre a été reproduit de Réf. 7 avec la permission de la Royal Society of Chemistry. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Cet article décrit en détail les deux la fabrication de l’appareil de Gel-seq et le protocole biologiques pour générer jumelé bibliothèques d’ADN et d’ARN. Un aperçu des deux est illustré à la Figure 2. Le dispositif est fabriqué par marcottage trois densité différente des gels de polyacrylamide uns sur les autres dans un processus similaire à la création des gels empilables standard. 11 le protocole biologique commence par 100-1000 cellules suspendues dans du PBS. Les cellules sont lysées et l’ARN est convertie en ADNc avant que l’appareil est utilisé pour séparer l’ADN génomique des hybrides cDNA/ARN. Après la séparation et de récupération, génomique et transcriptomique bibliothèques sont préparés à l’aide d’un processus qui suit de près le protocole de kit de préparation de bibliothèque standard du génome entier. Plus de détails sur le développement et la validation de Gel-seq peut être lu dans son laboratoire sur une publication de la puce « Gel-seq : génome entier et le séquençage de transcriptome de faibles intrants ADN et l’ARN bibliothèque préparation simultanée à l’aide de barrières semi-perméables hydrogel ." 7
Figure 2 . Protocole gel-seq. Une vue d’ensemble des étapes pour fabriquer le dispositif Gel-seq et le protocole à généré jumelé bibliothèques d’ADN et d’ARN. Certaines parties de cette figure ont été reproduits à partir Réf. 7 avec la permission de la Royal Society of Chemistry. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Pour générer des bibliothèques de l’ADN et l’ARN de cellules individuelles, les chercheurs doivent envisager d’utiliser soit G & T-seq ou DR-suiv. G & T-Seq, comme Gel-seq, repose sur une séparation physique de l’ARN de l’ADN génomique. Cette approche s’appuie sur l’ARN messager (ARNm) 3′ polyadénylé queue comme une menu déroulant cible. L’ARNm est capturée sur une pastille magnétique utilisant une amorce d’oligo-dT biotinylé. Une fois l’ARNm a été capturée, les perles sont maintenus en place avec un aimant et le surnageant contenant l’ADN genomic peut être enlevé et transféré dans un autre tube. Après que cette séparation physique est terminée, bibliothèques distinctes peuvent être générés de l’ARNm et l’ADN. 8 cette approche fonctionne bien si l’ARN d’intérêt est polyadénylé, cependant il ne peut pas servir à étudier non polyadénylé transcriptions, tels que les ARN ribosomiques, ARNt ou l’ARN des procaryotes.
DR-seq s’appuie sur une étape de pré amplification où l’ADN et ADNc dérivé de l’ARN sont amplifiés dans le même tube. L’échantillon est alors divisé en deux et traitée en parallèle de préparer des bibliothèques d’ADN - et RNA-seq. Pour distinguer l’ADN génomique et l’ADNc dérivé de RNA, DR-seq adopte une approche computationnelle. Séquences où se trouvent seulement les exons sont supprimés par le calcul dans les données d’ADN génomiques, comme ceux qui pourraient provenir de l’ADN ou ARN. 9 un avantage de cette approche est que l’ADN et l’ARNC/ARN ne doivent pas être physiquement séparés comme cela se fait en Gel-seq et G & T-suiv. L’inconvénient, cependant, est que DR-seq nécessite une connaissance a priori du génome et du transcriptome (c.-à-d., les exons et introns) et qu’il n’est peut-être pas idéal pour des applications telles que le séquençage de noyaux, dans lequel plusieurs transcriptions ne sont pas encore pleinement épissé et contiennent encore des introns. 12
La nouveauté de Gel-seq est la capacité de séparer l’ADN et l’ARN dans des centaines de cellules basées exclusivement sur la taille. Cette méthode nécessite aucune connaissance a priori du génome ou du transcriptome, est robuste contre l’épissage incomplète et n’est pas limitée aux transcriptions de poly-adenylated. Pour les applications où un chercheur peut commencer avec au moins 100 cellules, Gel-seq offre une approche simple à l’aide de matériaux bon marché et largement disponible.
1. préparation de la Solution produits chimiques
Remarque : Les étapes suivantes sont pour la préparation de solutions chimiques requises dans les étapes ultérieures. Ceux-ci peuvent être faits en vrac et stockés pendant plusieurs mois.
2. gel-seq Cassette Fabrication
Remarque : Gel-seq a été développé avec des cassettes verticale (voir Table des matières pour plus d’informations) ; Toutefois, le présent protocole peut être adapté pour fonctionner avec n’importe quel cassette d’électrophorèse de gel standard.
Remplissage Gel précurseur | Précurseur de Gel haute densité | Faible densité Gel précurseur | |||
40 %T, 3.3%C Acrylamide Bisacrylamide Solution | 1,6 mL | 50 %T, 5 %C Acrylamide Bisacrylamide Solution | 2,4 mL | 40 %T, 3.3%C Acrylamide Bisacrylamide Solution | 0,6 mL |
Eau désionisée | 10,2 mL | Eau désionisée | 1,0 mL | Eau désionisée | 4,8 mL |
Une Solution de saccharose (50 % p/v) | 2,6 mL | Une Solution de saccharose (50 % p/v) | 0,6 mL | ||
10 X Tris-Borate-EDTA | 1,6 mL | 10 X Tris-Borate-EDTA | 0,6 mL | ||
Persulfate d’ammonium (10 % p/v) | 104,0 ΜL | Persulfate d’ammonium (10 % p/v) | 50,0 ΜL | Persulfate d’ammonium (10 % p/v) | 39,0 ΜL |
TEMED | 6.0 ΜL | TEMED | 1,0 ΜL | TEMED | 2.2 ΜL |
Volume total | 16,1 mL | Volume total | 4,1 mL | Volume total | 6,0 mL |
Tableau 1. Gel des réactifs de synthèse. Gel de polyacrylamide réactifs de précurseur suffisants pour la fabrication de 2 cassettes.
3. préparation et Transcription inverse
4. gel séparation et de récupération de l’échantillon
5. ADNg bibliothèque préparation
6. cDNA Library préparation
7. Bibliothèque préparation avec la moitié du Volume des réactions
8. solid Phase réversible immobilisation perle bibliothèque nettoyage
La séparation physique des hybrides ADNg et cDNA/ARN dans le dispositif de Gel-seq peut être visualisée par l’imagerie gel fluorescent ; un résultat représentatif est illustré à la Figure 3. Paroi A montre le dispositif fabriqué de Gel-seq ; fausses couleurs a été ajouté pour distinguer les gel de différentes régions. Panneau B apparaît une fermeture de quatre départs différents utilisés pour la validation. La troisième voie, un contrôle négatif, représente à fond et montre qu’il n’y a aucune autoflourescence du gel aux interfaces. Nous avons chargé les ruelles de premiers et deuxième avec échelles d’ADN. Ces voies montrent seulement une bande sombre à l’interface entre les membranes haute et basse densité, révélant que les petits fragments peuvent passer par le gel de basse densité. La quatrième voie montre le comportement d’un échantillon biologique d’intérêt : 500 cellules PC3. Nous avons chargé lane quatre tel que décrit à l’étape 3 du protocole. L’image montre la séparation de l’ADN génomique et hybrides cDNA/ARN. Une bande sombre au dessus de la membrane de faible densité est l’ADN génomique de megabase-échelle tandis que les hybrides cDNA/ARN sont empilés à l’interface des régions basses et haute densitées. Contrairement aux ruelles chargées avec l’échelle, il y a aussi plusieurs groupes présents au sein de la région à haute densité du gel. Ces fragments, plus petits que 100 bp, sont des produits hors cible produits des oligonucléotides amorces au cours de la transcriptase inverse. Panneau C montre une image représentative de l’ensemble du dispositif Gel-seq d’une expérience réussie. Lanes étiquetés RNA/ADNc ont été traitées avec le protocole Gel-seq, tandis que les voies marquées RNA montrent une séparation de juste ADNg et d’ARN. Panneau D montre une expérience ratée avec des bandes noires en haut de chaque voie de la membrane de faible densitée. Cela était dû à tampon d’électrophorèse contaminé par des fragments d’ADN. À cette étape, les chercheurs devraient chercher pour les contrôles propres négatifs et deux bandes noires distinctes indiquant la présence de l’ADNg séparé et RNA/cDNA hybrides.
Figure 3 . Résultats de séparation gel-Seq. Le dispositif de Gel-seq (A) et une image fluorescente montrant la séparation des DNA et RNA/cDNA hybrides (B). Fausses couleurs a été ajouté pour distinguer plus facilement entre les différentes régions de la masse volumique dans le gel. (C et D) Images fluorescentes représentatives de l’ensemble du dispositif d’un succès (C) et (D) ratée Gel-seq. NTC ne = aucun modèle de contrôle. Certaines parties de cette figure ont été reproduits à partir Réf. 7 avec la permission de la Royal Society of Chemistry. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Une fois que les hybrides de DNA et RNA/ADNc ont été séparés et le reste du protocole Gel-seq terminé, il est possible de générer des bibliothèques de séquençage. Pour valider les bibliothèques de prêts, nous exécuter une expérience d’électrophorèse de gel standard (Figure 4) ou un bioanalyzer. Dans la Figure 4 révèle bibliothèques générées à partir des cellules PC3 500 et 750 cellules HeLa. La figure montre la distribution de fragment pour bibliothèques appariés produits de Gel-seq (étiqueté « Gel ») par rapport aux échantillons inégalées générés avec des protocoles standard (étiquetés « Tube »). Les tailles de fragment pour Gel-seq apparaissent entre 200 et 800 basepairs comme prévu lors de la préparation des bibliothèques à l’aide de la trousse de préparation de bibliothèque standard du génome entier. Si les fragments de bibliothèque n’apparaissent pas dans la gamme de taille correcte dans cette étape, la préparation de la bibliothèque a échoué.
Figure 4 . Comparaison de taille de Fragment bibliothèque. Une image d’électrophorèse de gel fluorescent en comparant la distribution granulométrique bibliothèque entre Gel-seq (Gel) et les contrôles standard (Tube). La voie de gauche contient une faible masse échelle d’ADN avec fragment tailles 100, 200, 400, 800, 1200 et 2000 basepairs. La taille de fragment pour toutes les bibliothèques comprises entre 200 et 800 basepairs, comme prévu aux bibliothèques préparés avec ce kit. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
L’ultime validation du protocole Gel-seq est basée sur l’analyse des résultats de séquençage. Nous avons choisi les cellules PC3 pour nos expériences de validation, ces cellules ont des profils d’expression homogènes qui permettent aux échantillons d’être fendu et traitées à l’aide de Gel-seq tant les méthodes traditionnelles ; Voir la Figure 5. Une comparaison entre l’ADN génomique des cellules PC3 est montrée dans les Figures 5A et 5 b. Figure 5 A montre une comparaison des profils de variation (CNV) numéros de copie du génome entier produit de PC3 à l’aide de Gel-seq ou une réaction de préparation de bibliothèque standard du génome entier (tube contrôle). Chaque point est un comte de moyenne normalisée bin ; emplacements sont définis à partir de données de génome de référence telle que chaque emplacement a égale nombre attendu dans une cellule diploïde saine, c'est-à-dire, une ligne plate, représentant des copies égales pour chaque région du tout autosomique (à l’exclusion des X et Y) chromosomes. PC3 contient plusieurs copies des mêmes régions qui apparaissent comme des pics supérieurs à un nombre de deux copies de fond. Gel-seq génère un profil CNV qualitativement similaire comme réaction de tube standard. Accord entre les deux parcelles peut être évaluée quantitativement par régression linéaire, comme indiqué dans le tableau B. Une corrélation de Pearson de R = 0,90 indique que les données génomiques recueillies par ou l’autre méthode sont fonctionnellement équivalentes.
Figure 5 . Validation de la bibliothèque. Gel-seq validation pour la génomique (A et B) et transcriptomique (C, D et E) données générées par les cellules PC3 et Hela. Paroi A montre une comparaison du génome CNV profils générés par PC3 à l’aide de Gel-seq (Gel-seq) ou une réaction standard (tube). MAPD = médiane absolue de la différence par paires. Le groupe B est une régression linéaire entre les deux échantillons dans le groupe A, avec R = 0.90 indiquant les données génomiques sont fonctionnellement équivalentes. Les axes montrent que le bac normalisé log2 compte. Séries C et D comparer les données transcriptomiques cellules PC3, chaque point présentant un décompte dans transcriptions par kilobases par million (TPM). Les axes montrent la comparaison entre deux échantillons comme comtes de transcription log2 normalisé. Panneau C montre une comparaison des réplicats techniques générés à l’aide de Gel-seq, et panneau D montre qu'une comparaison entre le Gel-seq et traditionnel RNA-Seq. panneau E montre que Gel-seq peut résoudre des cellules du type basé sur RNA expression à l’aide d’une analyse en composantes principales. L’axe x indique que les premiers comptes de composantes principales 91,6 % de la variation entre les échantillons tandis que l’axe des y montre que les comptes de deuxième composante principale pour seulement 6,5 % de la variance. Certaines parties de cette figure ont été reproduits à partir Réf. 7 avec la permission de la Royal Society of Chemistry. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
De même, nous avons comparé les données transcriptomiques de notre protocole Gel-seq pour le protocole de puce-Seq dans tube standard. La figure 5 illustre la corrélation entre les deux réplicats techniques Gel-seq (Figure 5C) et entre Gel-seq et la méthode standard (Figure 5D). Chaque point est un comte dans transcriptions par kilobases par million (TPM) pour chaque gène détecté à TPM > 5 dans les deux ensembles de données. Les régressions linéaires sont affichées sous forme de lignes rouges, et le coefficient de corrélation de Pearson est affiché dans le coin supérieur gauche. Réplicats techniques de Gel-seq (R ∼ 0,8) d’accord, mais moins bien en corrélation avec la méthode standard (R < 0,7). Ceci suggère que le Gel-seq introduit un biais dans la numération de gène. Heureusement, ce biais est systématique et, comme il ressort de l’analyse en composantes principales dans la Figure 5E, on peut toujours tirer des conclusions significatives entre différents échantillons biologiques.
Il y a plusieurs étapes critiques associées à la fabrication de dispositifs de Gel-seq ainsi que le protocole lui-même. Pendant la fabrication, nous vous recommandons de commencer avec les épaisseurs de couche prescrite pour les différentes régions du gel. Nous avons passé beaucoup de temps test options de fabrication différente et le protocole décrit ici produit les meilleurs dispositifs pour les cassettes répertoriés dans Table des matières et réactifs. Si les chercheurs utilisent un système de cassette alternative, ils peuvent trouver nécessaire de régler les volumes utilisés lors de la création des dispositifs. Le défi majeur dans la fabrication, c’est que si la région à haute densité de gel est trop grande, il peut se décoller sur les bords de la cassette et créer des poches d’air à l’intérieur de la cassette qui va perturber l’électrophorèse. En effectuant un cast plusieurs cassettes avec plusieurs volumes de différentes couches, les chercheurs devraient être en mesure de déterminer rapidement la configuration optimale pour leur matériel spécifique.
Le protocole Gel-seq a également plusieurs étapes critiques qui peuvent être validées avant la fin du protocole. Un seul point d’échec potentiel est la séparation de l’ADNg et RNA/cDNA hybrides. Cela peut être validé par l’imagerie de l’appareil Gel-seq après la séparation (voir la Figure 3B). Dans une série d’expériences, nous avons constaté que notre approvisionnement en laboratoire du tampon avait été contaminé par l’ADN et causait autoflourescence important dans notre dispositif (voir Figure 3D). Cela rend difficile de déterminer si la séparation avait eu lieu. Imagerie de fluorescence nous a aidés à identifier et corriger le problème avant d’utiliser des réactifs coûteux pour générer des bibliothèques de séquençage.
Un autre point critique est étape 6.2, l’amplification de qPCR de cDNA après la séparation. Les chercheurs devraient être très attentif ne pas à overamplify dans cette étape, car il réduira la qualité des données RNA-seq. Cette considération n’est pas unique à Gel-seq, mais est un élément commun de préparation de bibliothèque faibles intrants RNA-seq. L’amplification par PCR au cours de la préparation de la bibliothèque de séquençage est souvent nécessaire, mais elle peut introduire des biais et des erreurs de séquence. Le nombre de cycles pour l’ACP requis dépend de la complexité et de la quantité d’échantillon. Il est généralement conseillé de limiter le nombre de cycles PCR au strict minimum nécessaire pour produire suffisamment clustering quand les bibliothèques sont séquencés. En théorie, un protocole peut être optimisé pour déterminer le nombre exact de cycle qui donne le nombre suffisant de copies sans introduire d’artefacts excessives. Dans la pratique, cependant, incohérences dans la qualité de l’échantillon, chargement, ou de la manipulation au début dans le protocole peut considérablement affecter la distribution des modèles moléculaires disponibles pour prép PCR, qui se répercute sur le nombre de cycle PCR optimal de la bibliothèque. La solution plus générale, nous avons trouvé pour surveiller la progression des réactions d’amplification à l’aide d’un colorant fluorescent, exécuter les réactions sur un thermocycleur PCR en temps réel et arrêter les réactions dans l’exponentielle (linéaires par rapport à nombre de cycles) phase. Dans notre expérience, la surveillance en temps réel est particulièrement pertinente lors du développement, adaptation ou adopter un nouveau protocole.
La dernière étape critique génère génomique et transcriptomique bibliothèques. La clé de cette étape consiste à définir la concentration initiale d’échantillon pour la réaction de prép bibliothèque ADN aussi proche de 0,2 ng/µL (total de 0,5 ng) que possible. C’est relativement simple pour le cDNA de qPCR amplifié car il y a généralement un excès d’ADNc, mais il peut être plus difficile pour les échantillons ADNg. Nous avons trouvé attention attention à l’étape de vacufuge était nécessaire alors que les échantillons étaient étant concentrées. Comme prévu, au cours d’expériences avec 1000 cellules, l’étape de vacufuge pourrait être arrêtée beaucoup plus tôt que les expériences avec 100 cellules. Le nombre d’échantillons dans le vacufuge a également touché le taux d’évaporation dans nos expériences. Nous avons constaté qu’à l’aide d’un flourometer pour valider l’ADN contenu à mi-chemin de l’étape de concentration pourrait être utile lors de l’exécution du protocole avec des échantillons inconnus. Heureusement, si les chercheurs plus concentré un échantillon, nucléase libre de l’eau peut être ajouté pour diluer l’échantillon. Théoriquement, il est possible d’utiliser le vacufuge pour sécher l’ADN et puis remettre en suspension dans le volume désiré ; Cependant, nous suggérons d’éviter l’évaporation complète.
Nous considérons trois méthodes actuelles de production simultanées bibliothèques d’ADN et d’ARN, Gel-seq7, G & T-seq8et DR-seq9, comme gratuit. Gel-seq est idéal pour les échantillons dans la plage de cellules de 100-1000 et ne nécessite pas de menu déroulant cibles ou une connaissance a priori du génome. Les deux autres méthodes sont mieux adaptées aux applications de cellule unique. Un de nos objectifs dans le développement de Gel-seq était de créer un protocole qui pourrait être facilement mis en œuvre par d’autres chercheurs. Nous avons donc décidé de fabrication d’engins dans le facteur de forme standard d’une cassette de gel de polyacrylamide. Alors que la technique nous permet de définir nos différentes membranes est roman, plupart des laboratoires de génétique ont déjà tout le matériel nécessaire pour fabriquer le dispositif Gel-seq. En outre, le coût du dispositif est trivial - seulement 5,25 $ pour un appareil qui peut traiter 12 échantillons. Cela dit, comme avec n’importe quel protocole de préparation de bibliothèque à l’aide de réactifs commerciaux, le coût global pour générer des bibliothèques demeure élevé. Notre coût de réactif par exemple était de 50 $ pour l’ensemble-transcription amplification et 28 $ pour la préparation de la bibliothèque d’ADN et d’ARN. Heureusement, le dispositif de Gel-seq lui-même soit le protocole utilisé. Par exemple, au cours du développement nous testé avec succès l’appareil à l’aide de cellules de culture et une ancienne RNA bibliothèque amplification protocole19, bien que nous avons trouvé que ce n’était pas approprié pour des échantillons de tissus provenant de souris. Regardant vers l’avenir, comme des alternatives moins chères pour la préparation de la bibliothèque sont développés, notre protocole peut être adapté pour fonctionner avec ces nouvelles techniques. Nous pensons que les chercheurs trouveront simple à mettre en œuvre Gel-seq dans leurs propres laboratoires. Nous espérons que cela facilitera l’adoption rapide de la technologie.
KZ est membre fondateur et conseiller scientifique de Singlera Genomics Inc.
Financement de ce travail a été fourni par l’Université de San Diego, la National Science Foundation recherche Fellowship programme d’études supérieures, accorder des NIH R01-HG007836 et par le ministère coréen des sciences, de TIC et de la planification Future.
Les versions antérieures d’une plusieurs personnalités ont été tout d’abord publiées dans « Hoople, G. D. et al. Gel-seq : génome entier et séquençage de transcriptome de faibles intrants ADN et l’ARN bibliothèque préparation simultanée à l’aide de barrières semi-perméables hydrogel. Laboratoire sur une puce 17, 2619-2630, doi:10.1039 / c7lc00430c (2017). » Laboratoire sur une puce a sanctionné la réutilisation des figures dans cette publication.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reagents | |||
Acrylamide Monomer | Sigma Aldrich | A8887-100G | |
Ammonium Persulfate | Sigma Aldrich | A3678-25G | |
Ampure XP Beads | Beckman Coulter | A63880 | Referred to in the text as solid phase reversible immobilization (SPRI) beads |
DNA Gel Loading Dye (6x) | ThermoFisher Scientific | R0611 | Referred to in the text as 6X loading dye |
Ethyl alcohol | Sigma Aldrich | E7023-500ML | |
KAPA SYBR FAST One-Step qRT-PCR Kits | Kapa BioSystems | 7959613001 | Referred to in the text as 2X qPCR mix |
N,N′-Methylenebis(acrylamide) | Sigma Aldrich | 146072-100G | Also known as bis-acrylamide |
NexteraXT DNA Library Preparation Kit (referred to in the text as library preparation kit) | Illumina | FC-131-1024 | Includes: TD (referred to in the text as transposase buffer), ATM (referred to in the text as transposase), NT (referred to in the text as transposase stop buffer), and NPM (Referred to in the text as library prep PCR mix) |
Nuclease Free Water | Millipore | 3098 | |
Protease | Qiagen | 19155 | |
SMART-Seq v4 Kit (referred to in the text as whole-transcript amplification (WTA) kit) | Takara/Clontech | 634888 | Includes: Lysis buffer, RNase inhibitor, 3’ SMART-Seq CDS Primer II A (referred to in the text as RT primer), 5X Ultra Low First Strand Buffer (referred to in the text as first strand buffer), SMART-Seq v4 Oligonucleotide (referred to in the text as template switch oligonucleotide (TSO)), SMART-Scribe Reverse Transcriptase (referred to in the text as reverse transcriptase), and PCR Primer II A (referred to in the text as cDNA PCR primer) |
Random hexamer with WTA adapter | IDT | n/a | 5′-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTAC-NNNNNN-3′ |
Sucrose | Sigma Aldrich | S0389-500G | |
TEMED | Sigma Aldrich | T9281-25ML | |
DNA AWAY Surface Decontaminant | ThermoFisher Scientific | 7010PK | Referred to in the text as DNA removal product |
Tris-Borate-EDTA buffer (10X concentration) | Sigma Aldrich | T4415-1L | |
SYBR Gold Nucleic Acid Gel Stain (10,000X Concentrate in DMSO) | ThermoFisher Scientific | S11494 | Referred to in the text as gel stain |
Equipment | |||
BD Precisionglide syringe needles, gauge 18 | Sigma Aldrich | Z192554 | Any equivalent hardware is acceptable |
Branson CPX series ultrasonic bath | Sigma Aldrich | Z769363 | Any equivalent hardware is acceptable |
Empty Gel Cassettes, mini, 1.0 mm | ThermoFisher Scientific | NC2010 | Any equivalent hardware is acceptable |
Mesh Filter Plate - Corning HTS Transwell 96 well permeable supports - 8.0 µm pore size | Sigma Aldrich | CLS3374 | Referred to in the text as 8 um mesh filter plate |
PowerPac HC Power Supply | Bio-Rad | 1645052 | Any equivalent hardware is acceptable |
Qubit Fluorometer | ThermoFisher Scientific | Q33216 | Any equivalent hardware is acceptable |
Vacufuge Concentrator | Eppendorf | 22822993 | Any equivalent hardware is acceptable |
XCell SureLock Mini-Cell system | ThermoFisher Scientific | EI0001 | Any equivalent hardware is acceptable |
Bio-Rad CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System | Bio-Rad | 1855195 | Any equivalent hardware is acceptable |
Amersham UVC 500 Ultraviolet Crosslinker | GE Healthcare Life Sciences | UVC500-115V | Discontinued, any equivalent hardware is acceptable |
Gel Doc XR+ Gel Documentation System | Bio-Rad | 1708195 | Referred to in the text as gel imager |
Dark Reader Transilluminator | Clare Chemical Research | DR89 | Referred to in the text as UV transilluminator |
Ultrasonic Bath | Bransonic | 1207K35 | Any equivalent ultrasonic bath is acceptable. |
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