Method Article
يعد تصور الميالين هدفا مهما للعديد من الباحثين الذين يدرسون الجهاز العصبي. CARS هي تقنية متوافقة مع التألق المناعي الذي يمكنه تصوير الدهون داخل الأنسجة مثل الدماغ الذي يضيء الهياكل المتخصصة مثل المايلين.
التحليل الطيفي المتماسك المضاد لستوكس رامان (CARS) هو تقنية يستخدمها الكيميائيون والفيزيائيون بشكل كلاسيكي لإنتاج إشارة متماسكة من الاهتزازات المميزة للجزيئات. ومع ذلك ، فإن هذه التوقيعات الاهتزازية هي أيضا سمة مميزة للجزيئات داخل الأنسجة التشريحية مثل الدماغ ، مما يجعلها مفيدة بشكل متزايد وقابلة للتطبيق على تطبيقات علم الأعصاب. على سبيل المثال ، يمكن ل CARS قياس الدهون عن طريق الروابط الكيميائية المثيرة على وجه التحديد داخل هذه الجزيئات ، مما يسمح بتحديد الجوانب المختلفة للأنسجة ، مثل المايلين المشارك في النقل العصبي. بالإضافة إلى ذلك ، بالمقارنة مع التقنيات الأخرى المستخدمة عادة لتحديد كمية المايلين ، يمكن أيضا إعداد CARS لتكون متوافقة مع تقنيات الفلورسنت المناعي ، مما يسمح بوضع العلامات المشتركة مع علامات أخرى مثل قنوات الصوديوم أو المكونات الأخرى للانتقال المشبكي. تغيرات الميالين هي آلية مهمة بطبيعتها في إزالة الميالين من الأمراض مثل التصلب المتعدد أو الحالات العصبية الأخرى مثل متلازمة X الهشة أو اضطرابات طيف التوحد هي مجال ناشئ من مجالات البحث. في الختام ، يمكن استخدام CARS بطرق مبتكرة للإجابة على الأسئلة الملحة في علم الأعصاب وتقديم أدلة على الآليات الأساسية المتعلقة بالعديد من الحالات العصبية المختلفة.
إمكانات العمل هي الوحدة الأساسية للمعلومات في الدماغ ، ويشكل الانتشار المحتمل للعمل من خلال المحاور العصبية أحد أعمدة معالجة المعلومات1،2،3. تتلقى الخلايا العصبية عادة مدخلات قريبة من خلايا عصبية أخرى متعددة وتدمج هذه المدخلات ضمن نافذة زمنية ضيقة معينة 4,5. لذلك ، تلقت آليات الانتشار المحتمل للعمل في المحاور العصبية قدرا كبيرا من الاهتمام من المحققين.
عند الانتشار من خلال محور عصبي ، يتم تجديد إمكانات العمل بشكل متكرر على طول المحور العصبي لضمان انتشار موثوق به6. في معظم الخلايا العصبية للفقاريات ذات الفكين (gnathostomes) ، تحيط المحاور العصبية بغمد من المايلين ، وهي مادة غنية بالدهون تنتجها الخلايا قليلة التغصن القريبة أو خلايا شوان ، وهي أنواع من الخلايا الدبقية (تمت مراجعتها في 7,8). يعزل غمد المايلين هذا المحور العصبي كهربائيا ، مما يقلل من سعته ويسمح بالانتشار المحتمل للعمل بكفاءة وسرعة واستهلاك أقل للطاقة. لا يغطي المايلين المحور العصبي بشكل موحد ، ولكنه يغمد المحور العصبي في أجزاء تحتوي على فجوات قصيرة بينهما ، تسمى عقد رانفييه (تمت مراجعتها في 9,10). يؤثر كل من سمك الميالين ، الذي يتحكم في مستوى العزل الكهربائي للمحور العصبي ، وتباعد عقد رانفييه ، التي تتحكم في التردد الذي يتم به تجديد إمكانات الفعل على طول محور عصبي ، على سرعة انتشار إمكانات العمل (تمت مراجعته في11).
هناك مجموعة كبيرة من الأدبيات التي تشير إلى أن سمك الميالين يؤثر على سرعة الانتشار المحتمل للعمل في المحاورالعصبية 12،13،14. علاوة على ذلك ، يمكن أن تؤدي التغييرات في الميالين المحوري إلى عدد من عجز CNS 15,16,17,18,19,20,21. لذلك ليس من المستغرب أن تركيز العديد من الجهود البحثية ينطوي على قياس وتوصيف الميالين المحوري. تم إجراء قياسات سمك المايلين بشكل شائع باستخدام المجهر الإلكتروني ، وهي تقنية تتطلب قدرا كبيرا من إعداد الأنسجة ويصعب استخدامها مع الكيمياء النسيجية المناعية. ومع ذلك ، هناك أيضا تقنية أسرع وأبسط لقياس الميالين المحوري الذي يعتمد على التحليل الطيفي المضاد لستوكس (CARS). يمكن ضبط ليزر CARS على ترددات مختلفة وعند ضبطه على ترددات مناسبة لإثارة الدهون ، يمكن تصوير المايلين دون الحاجة إلى أي ملصقات إضافية22. يمكن دمج تصوير الدهون مع الكيمياء النسيجية المناعية القياسية بحيث يمكن تصوير الدهون مع العديد من قنوات الفلورسنت23. التصوير الميالين باستخدام CARS أسرع بكثير من المجهر الإلكتروني وله دقة ، وإن كانت أقل من EM ، كافية للكشف عن الاختلافات الصغيرة في الميالين في نفس النوع من المحاور العصبية.
امتثلت جميع التجارب لجميع القوانين المعمول بها ، والمبادئ التوجيهية للمعاهد الوطنية للصحة ، وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة جامعة كولورادو أنشوتز المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها.
1. الحيوانات
2. إعداد الأنسجة
3. تلطيخ
الشكل 1: يمكن الجمع بين تصوير CARS والتصوير الفلوري المناعي. توضح الرسوم البيانية أن تصوير CARS يحدث عند 660/640 نانومتر طيف إشارة حمراء26. هذا الطول الموجي بعيد بما فيه الكفاية عن نطاق الأخضر أو الأزرق أو الأشعة فوق البنفسجية ، مما يسمح بمزيج من إشارة CARS مع التألق المناعي في هذه النطاقات. على وجه التحديد ، يشير الرسم البياني أيضا إلى الإثارة والانبعاثات ل Nissl الموسومة بالفلوروفور الأزرق ، والتي تم دمجها مع CARS أثناء جمع النتائج التمثيلية لهذا المنشور. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
4. التصوير
ملاحظة: يحتوي إعداد ليزر CARS على ليزر ألياف يوفر ساعة 80 ميجاهرتز ، وليزر OPO (مذبذب بارامتري بصري) مع نطاق قابل للضبط يتراوح بين 770-990 نانومتر مع شعاع ستوكس مثبت عند 1031 نانومتر ، وهي ضرورية لجمع إشارة CARS. هناك فتحة واحدة لكلا الحزمتين.
الشكل 2: رسم تخطيطي لأداة CARS يوضح ليزر CARS (الأسهم الحمراء) والكشف عن الليزر غير المنزوع (NDD) والكشف الأمامي المدمجين في مؤتمر المسح الضوئي بالليزر. في NDD إلى الأمام ، نحصل على CARS لسندات C-H (الأسهم الحمراء الداكنة) و SHG (الجينات التوافقية الثانية) عند 515 نانومتر (السهم البرتقالي). في epi NDD ، نحصل على CARS لروابط C-H (الأسهم الحمراء الداكنة) و 2PE (انبعاث الفوتون المزدوج) التألق الذاتي (سهم أزرق فاتح). بالتتابع ، يمكن الحصول على صور متحدة البؤرة الفلورية (الأسهم الخضراء لليزر المرئي ، والأسهم الزرقاء للكشف عن البؤرة). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: يمكن ل CARS إلقاء الضوء على المايلين (الأرجواني) في أنسجة المخ (جذع الدماغ) أثناء تصوير علامات Nissl (السماوية) أو الفلورسنت. وتظهر اللوحتان نتائج تمثيلية من جربيل منغولي (صورة واحدة M. unguiculatus، الشكل 3A، C، E) والفأر (z-stack max projection M. musculus، الشكل 2B، D، F)، مما يشير إلى أنه يمكن استخدام هذه التقنية عبر الأنواع. يوضح الشكل 3A و B Nissl باللون السماوي ، C ، D إشارة CARS باللون الأرجواني ، E ، F يجمع بين إشارات Nissl و CARS مع كل لوحة للجربيل أو الماوس ، على التوالي. تظهر كلتا المجموعتين من الصور قسما من النواة الإنسية للجسم شبه المنحرف (MNTB) في جذع الدماغ. تتلقى الخلايا العصبية في MNTB مدخلات من محاور عصبية شديدة الميالين ، والتي تنتهي في كأس عقد ، وهو نوع من المشبك العملاق27. شريط المقياس هو 20 ميكرومتر. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
واحدة من أكبر مزايا المجهر CARS على التقنيات الأخرى هي التوافق مع التصوير الفلوري23. ويبين الشكل 1 أطياف CARS مقارنة ب Nissl الموسومة بعلامة الفلورسنت المناعي التي تظهر تداخلا ضئيلا / معدوما في الأطياف. يوضح الشكل 2 الليزر الذي تم إعداده ل CARS بالاقتران مع المجهر البؤري. يوضح الشكل 3 صورتين تمثيليتين ، واحدة ككومة واحدة وواحدة z-stack max الإسقاط من الجربيل والماوس التي يمكن الحصول عليها باستخدام تصوير CARS تظهر كلا من أجسام الخلايا (سماوي) وإشارة المايلين (أرجواني).
تؤكد مجموعة متزايدة من الأدبيات على دور المايلين في وظائف الدماغ13،16،21،28. علاوة على ذلك ، نحن نعلم أن سمك الميالين ونمط الميالين يمكن أن يتغير في العديد من الحالات العصبية مثل التصلب المتعدد (تمت مراجعته في29) ، والشيخوخة (تمت مراجعته في 30) ، والتوحد20،31 ، وغيرها الكثير. لذلك ليس من المستغرب أن يحتاج المزيد والمزيد من الباحثين إلى تقييم الميالين عبر أنسجة المخ والنماذج الحيوانية ، في العديد من الحالات الطبية ، وفي عدد متزايد من المواقف التجريبية. تشمل الطرق التقليدية لتصوير الميالين في أنسجة المخ وضع العلامات على الأجسام المضادة متبوعة بالمجهر الضوئي والمجهر الإلكتروني (EM). تستغرق كلتا التقنيتين وقتا طويلا وتتطلبان بروتوكولات إعداد الأنسجة متعددة الخطوات ، والتي ترتبط بالأخطاء المحتملة والتغييرات في تكوين الأنسجة. لقد أظهرنا طريقة بديلة يمكن أن تسفر عن نتائج مماثلة بشكل أسرع بكثير بسبب القدرة على تصوير المايلين بشكل أسرع بكثير ، والتي يمكن دمجها مع المجهر الضوئي الفلوري الإضافي. الأهم من ذلك ، يمكن استخدام هذه التقنية لتصوير الدهون في أنسجة المخ دون الحاجة إلى علامات أو ملصقات إضافية. لا تسمح هذه التقنية فقط بتصوير المايلين على طول محاور سليمة ، ولكنها تسمح بتصوير منتجات انهيار المايلين مثل اللويحات أو القطرات السائلة32 ، والتي ثبت أنها تحدث ، على سبيل المثال ، في التصلب المتعدد33.
كان التردد الذي تم ضبط ليزر CARS عليه مناسبا لتحيز الصورة بشكل كبير لصالح الدهون ، مما أدى إلى صور عالية الجودة بشكل عام للميالين ، لأن المايلين هو إلى حد بعيد المادة الغنية بالدهون الأكثر شيوعا في الدماغ. مبدأ هذه التقنية هو أن ليزر CARS ، الذي يمكن ضبطه على ترددات مختلفة ، يتم ضبطه على 792.2 نانومتر ، وهو تردد مناسب لإثارة روابط CH2 . هذه وفيرة في الدهون ، والتي تحتوي على سلاسل طويلة من مجموعات CH2 المرتبطة بروابط الكربون والكربون مع مجموعة واحدة من حمض الكربوكسيل الطرفي في النهاية. أدت الدهون المثيرة مع هذا التردد إلى إشارة يمكن تصويرها بعد ذلك باستخدام تقنية الكشف عن المجهر البؤري القياسي. تدعم جودة الصور الناتجة التحليلات الكمية التي يمكن إجراؤها إما بواسطة مراقب بشري أو خوارزميات آلية34. ومع ذلك ، فإن هذه الطريقة لا تصنف المايلين حصريا لأن روابط CH2 ليست حصرية للمايلين ، وبالتالي فإن CARS أقل تحديدا من الجسم المضاد. نتيجة لذلك ، تظهر الصور بعض الملصقات ، والتي لا ترتبط بالمايلين. الأهم من ذلك ، أن تسمية الخلفية هذه لا تضر بجودة القياسات أو القدرة على التحليلات الكمية.
دقة تصوير CARS محدودة الحيود وتشبه اثنين من المجهر الفوتوني (~ 250 نانومتر) وبالتالي أقل من دقة EM. لذلك ، يجب على الباحثين الذين يهدفون إلى تقييم الاختلافات الصغيرة جدا في سمك الميالين عند حدوثه ، على سبيل المثال ، في بعض الحالات الطبية ، أن يكونوا على دراية بهذا القيد. يمكن أن تؤكد عناصر التحكم الإضافية في EM في عينة صغيرة أن الدقة كافية لهدف البحث الخاص بهم.
تتمثل إحدى المزايا الرئيسية ل CARS لتصوير المايلين ، إلى جانب السرعة والسهولة ، في القدرة على الجمع بين تصوير الدهون الخالي من الملصقات والمجهر البؤري الفلوري. اعتمادا على المجهر المستخدم في CARS ، يمكن تصوير قناتين أو حتى ثلاث قنوات إضافية بحيث يمكن دمج تصوير المايلين مع وضع العلامات على الأجسام المضادة ، أو بقعة Nissl ، أو خطوط الماوس المعدلة وراثيا التي تعبر عن بروتينات الفلورسنت ، أو ما شابه ذلك. القيود المحتملة باستخدام الفلوروفور الطول الموجي الأطول هي في الغالب لأن إشارة CARS يتم ملاحظتها من خلال مرشحات ممر النطاق الترددي 640-680 نانومتر التي يمكن أن تلتقط انبعاث الفلوروفورات الخضراء و / أو الحمراء. ومع ذلك ، فإن ليزر بيكو ثانية المستخدم في إثارة CARS لديه طاقة نبض ذروة ~ 10 مرات أقل من ليزر الفيمتو ثانية القياسي المستخدم في إثارة الفوتونين ، ويترجم إلى ~ 100 أقل من التألق. علاوة على ذلك ، فإن ليزر بيكو ثانية النبضي 797.2 نانومتر المستخدم في إثارة CARS بعيد طيفيا عن ذروة امتصاص المقطع العرضي ثنائي الفوتون للفلوروفورات المرئية. لذلك ، فإن ليزر بيكو ثانية CARS غير فعال للغاية لإثارة الفوتون المزدوج للفلوروفورات المرئية ، مما يجعل إشارة الفلورسنت لا تذكر للعبور إلى اكتشاف CACARS. ومع ذلك ، يجب اختبار ذلك عن طريق تصوير عينة تحكم سلبية لا تحتوي على أي ملصقات فلورسنت مقارنة بعينة ذات علامات فلورسنت.
في الختام ، يعد تصوير CARS تقنية مناسبة لتصوير المايلين في أنسجة المخ. في حين أن الدقة قابلة للمقارنة مع المجهر الضوئي القياسي وبالتالي فهي أقل من EM ، فإن السرعة وسهولة الاستخدام تجعل هذه التقنية بديلا جذابا للطرق الحالية.
ويعلن صاحبا البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.
بدعم من NIH R01 DC 17924 و R01 DC 18401 (Klug) و NIH 1R15HD105231-01 و T32DC012280 و FRAXA (McCullagh). تم إجراء تصوير CARS في الجزء الأساسي من المجهر الضوئي المتقدم من مركز NeuroTechnology في الحرم الجامعي الطبي بجامعة كولورادو Anschutz المدعوم جزئيا من NIH P30 NS048154 و NIH P30 DK116073.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Anesthetic: | |||
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" | Exel int | 260040 | |
Fatal + | Vortech | ||
Surgery: | |||
Spring Scissors - 8mm Cutting Edge | Fine Science Tools | 15024-10 | |
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Perfusion: | |||
4% Paraformaldehyde | Fisher Chemical | SF994 (CS) | |
Fine Scissors - Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Kelly hemostats | Fine Science Tools | 13019-14 | |
Millipore H2O | |||
Needle tip, 23 GA x 1" | BD precision glide | 305193 | |
Phosphate buffered saline (PBS): | |||
Potassium chloride | Sigma | P9333 | |
Potassium phosphate monobase | Sigma | P5655 | |
pump with variable flow or equivalent | |||
Sodium chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Sodiumphosphate dibasic | Sigma | S7907 | |
Dissection: | |||
50 mL vial with 4% PFA | |||
Bochem Chemical Spoon 180mm | Bochem | 230331000 | |
Fine Scissors - Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Noyes Spring Scissors | Fine Science Tools | 15011-12 | |
Pair of fine (Graefe) tweezers | Fine Science Tools | 11050-10 | |
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10" | |||
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Surgical Scissors - Blunt | Fine Science Tools | 14000-20 | |
Slicing: | |||
Agar, plant | RPI | 9002-18-0 | |
Vibratome | Leica | VT1000s | |
well plate | Alkali Sci. | TPN1048-NT | |
Staining: | |||
AB Media: | 1n 1,000 mL of Millipore H2O | ||
Phosphate buffered (PB): | |||
Potassium Phosphate Monobase | Sigma | P5655 | |
Sodium Phosohate Dibasic | Sigma | S7907 | |
BSA (Bovine serum albumin) | Sigma life science | A2153-100g | |
Sodium Chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Triton X-100 | Sigma - Aldrich | x100-500ml | |
Nissl 435/455 | Invitrogen | N21479 | |
CARS: | |||
APE picoemerald laser | Angewandte Physik & Elektronik GmbH | ||
bandpass filter (420-520 nm) | Chroma Technology | HQ470/100m-2P | |
bandpass filter (500-530 nm) | Chroma Technology | HQ515/30m-2P | |
bandpass filters (640-680 nm) | Chroma Technology | HQ660/40m-2P | |
Confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Cut Transfer pipet | Fisher | 13-711-7M | |
dichroic longpass 565 nm | Chroma Technology | 565dcxr | |
dichroic longpass 585 nm | Chroma Technology | 585dcxr | |
dichroic shortpass 750 nm | Chroma Technology | T750spxrxt | |
glass bottom culture dish | MatTek | P35G-0-10-C | |
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) | Allen Scientific Glass Inc | ||
multiphoton shortpass emission filter 680 nm | Chroma Technology | ET680sp-2p8 | |
PBS |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved