Method Article
Uyarılmış Raman saçılması (SRS) mikroskopisi, biyomoleküllerin spesifik kimyasal bağların içsel titreşimine dayanarak etiketsiz görüntülenmesini sağlar. Bu protokolde, canlı farelerin omuriliğindeki hücresel yapıları görselleştirmek için entegre bir SRS ve iki fotonlu floresan mikroskobun enstrümantal kurulumu açıklanmaktadır.
Uyarılmış Raman saçılması (SRS) mikroskopisi, biyolojik dokuların doğal mikro ortamında içsel moleküler titreşime dayalı etiketsiz görüntülenmesini sağlar, böylece hücresel altı çözünürlükte biyolojik süreçlerin in vivo çalışması için mükemmel bir araç sağlar. İki foton uyarılmış floresan (TPEF) görüntülemeyi SRS mikroskobuna entegre ederek, dokuların çift modal in vivo görüntülemesi, hücresel metabolizma, bağışıklık tepkisi ve doku yeniden şekillenmesinde yer alan dinamik süreçleri anlamaya yardımcı olan çoklu perspektiflerden kritik biyokimyasal ve biyofiziksel bilgiler elde edebilir. Bu video protokolünde, bir TPEF-SRS mikroskop sisteminin kurulması ve hayvan omuriliğinin in vivo görüntüleme yöntemi tanıtılmaktadır. Omurilik, merkezi sinir sisteminin bir parçası olarak, beyin ve periferik sinir sistemi arasındaki iletişimde kritik bir rol oynar. Fosfolipitlerde bol miktarda bulunan miyelin kılıfı, aksiyon potansiyellerinin tuzlayıcı iletimine izin vermek için aksonu çevreler ve yalıtır. Omurilikteki miyelin kılıfların in vivo görüntülenmesi, nörodejeneratif hastalıkların ve omurilik hasarının ilerlemesini incelemek için önemlidir. Protokol ayrıca hayvan hazırlama ve yüksek çözünürlüklü biyolojik görüntüler elde etmek için in vivo TPEF-SRS görüntüleme yöntemlerini de tanımlamaktadır.
Raman mikroskobu1,2, biyomoleküllerdeki çeşitli kimyasal bağların karakteristik frekanslarına dayanarak biyolojik dokuları görüntülemek için güçlü bir etiketsiz yöntem olarak ortaya çıkmaktadır. Non-invaziv ve iyi uyarlanabilir görüntüleme kabiliyeti sayesinde Raman mikroskopisi, miyelin kılıfı3,4,5, adipositler6,7 ve lipit damlacıkları gibi biyolojik dokulardaki lipitle zenginleştirilmiş bileşenleri görüntülemek için yaygın olarak kullanılmaktadır8,9,10 . Uyarılmış Raman kazancı (SRG) veya uyarılmış Raman kaybı (SRL) olarak elde edilen uyarılmış Raman saçılması (SRS) sinyali arka plansızdır ve spontan Raman saçılmasına mükemmel spektral benzerlik gösterir11,12. Ek olarak, SRL ve SRG, analit konsantrasyonuna doğrusal olarak bağımlıdır ve biyokimyasal bileşenlerin kantitatif analizine izin verir9,11,13. İki foton uyarılmış floresan mikroskobu (TPEF), doğal optik kesitleme yeteneği, derin penetrasyon derinliği ve düşük fototoksisitesi nedeniyle in vivo biyolojik görüntüleme için yaygın olarak kullanılmaktadır14,15,16. Bununla birlikte, TPEF görüntülemenin performansı floresan etiketlerin özelliklerine bağlıdır ve geniş bant floresan spektrumları nedeniyle çözülebilir renklerin sayısı sınırlıdır8,17,18,19. Etiketsiz SRS görüntüleme ve floresan bazlı TPEF görüntüleme iki tamamlayıcı görüntüleme yöntemidir ve bunların kombinasyonu dokuların bol miktarda biyofiziksel ve biyokimyasal bilgisini sağlayabilir. Bu iki görüntüleme yönteminin her ikisi de, tek bir mikroskop sistemine basit entegrasyona izin veren doğrusal olmayan optik (NLO) işlemlere dayanmaktadır. SRS ve TPEF görüntülemenin kombinasyonu, sözde çift modal görüntüleme, hücrelerin ve dokuların yüksek boyutlu görüntülenmesini ve profillenmesini sağlayarak karmaşık biyolojik sistemlerin kapsamlı bir şekilde anlaşılmasını kolaylaştırır. Spesifik olarak, pikosaniye (ps) SRS mikroskopisi, femtosaniye (fs) SRS tekniğine11 kıyasla yüksek spektral çözünürlükte kimyasal bağ görüntülemesi elde edebilir ve biyolojik dokuda, özellikle kalabalık parmak izi bölgesinde20,21 çoklu biyokimyasal bileşenleri ayırt etmeyi sağlar. Ek olarak, tutarlı anti-Stokes saçılma (CARS) mikroskobunun entegrasyonu ile yaygın olarak kullanılan bir başka çift modlu NLO mikroskop sistemi ile karşılaştırıldığında, SRS, spektral ve görüntü yorumlamanın yanı sıra algılama hassasiyeti açısından CARS'a üstün performans göstermektedir11. SRS-TPEF mikroskobu, Caenorhabditis elegans9,22, Xenopus laevis kurbağa yavrusu beyni5, fare beyni23,24, omurilik25,26, periferik sinir27 ve yağ dokusu7 gibi çeşitli biyolojik sistemleri incelemek için güçlü bir araç olarak kullanılmıştır.
Omurilik, beyin ile birlikte merkezi sinir sistemini (CNS) oluşturur. Fizyolojik ve patolojik koşullar altında CNS'deki hücresel aktiviteleri in vivo olarak görselleştirmek, CNS bozukluklarının mekanizmalarını anlamak için kritik öneme sahiptir28,29,30 ve buna karşılık gelen tedavilerin geliştirilmesi31,32,33. Yüksek hızlı aksiyon potansiyeli iletimi için aksonları saran ve yalıtan miyelin kılıf, CNS'nin gelişiminde önemli bir rol oynar. Demiyelinasyon, multipl skleroz gibi beyaz cevher bozukluklarında bir ayırt edici özellik olarak düşünülmektedir34. Ek olarak, omurilik yaralanmasından35 sonra, miyelin kalıntıları makrofaj aktivasyonunu modüle ederek kronik inflamasyona ve ikincil yaralanmaya katkıda bulunabilir36. Bu nedenle, canlı fare modellerinde nöronlar ve glial hücrelerle birlikte miyelin kılıfın in vivo görüntülenmesi, CNS bozukluklarındaki dinamik süreçleri anlamada büyük yardımcı olmaktadır.
Bu protokolde, ev yapımı bir TPEF-SRS mikroskobunun temel kurulum prosedürleri tanımlanmış ve fare omuriliği için çift modlu in vivo görüntüleme yöntemleri tanıtılmıştır.
Bu çalışmada gerçekleştirilen tüm hayvan prosedürleri, Hong Kong Bilim ve Teknoloji Üniversitesi (HKUST) Laboratuvar Hayvanları Tesisi'nin yönergelerine göre yürütülmekte ve HKUST Hayvan Etiği Komitesi tarafından onaylanmıştır. TPEF-SRS mikroskobunun kurulması ve çalıştırılması için lazer kullanımı için güvenlik eğitimi gereklidir. Lazerle çalışırken daima uygun dalga boyu aralığına sahip lazer güvenlik gözlükleri kullanın.
1. TPEF-SRS mikroskobunun kurulumu (kurulum şeması için bkz. Şekil 1)
2. TPEF-SRS mikroskop sistemi kalibrasyonu
3. İn vivo floresan ve SRS görüntüleme için farenin cerrahi olarak hazırlanması
4. Fare omuriliğinin in vivo TPEF-SRS görüntülemesi
Spinal aksonların ve miyelin kılıflarının in vivo dual-modal görüntülemesi, dorsal kök gangliyon afferent nöronlarında EYFP'yi eksprese eden Thy1-YFPH transgenik fareler kullanılarak gerçekleştirilir (Şekil 3). Bu etiketli afferent nöronlar, duyusal bilgiyi periferik sinirden omuriliğe iletir, merkezi dal omurilik dorsal kolonunda bulunur. TPEF-SRS mikroskobu ile, yoğun olarak dağılmış miyelin kılıfı, etiketsiz SRS görüntüleme kullanılarak net bir şekilde görselleştirilebilir ve TPEF görüntüleme kullanılarak seyrek etiketli YFP aksonları gözlemlenebilir. Çift modelli görüntüleme ile aksonların kalın bir miyelin kılıf tabakası ile yakından sarıldığı ortaya konmuştur (Şekil 3C). Aksollemmanın miyelin kılıfının çıplak olduğu Ranvier (NR) düğümleri, aksiyon potansiyellerinin hızlı tuzlayıcı yayılımında önemli bir rol oynar. TPEF-SRS omurilik görüntüsünde (Şekil 3C) görülebileceği gibi, NR azalmış aksonal çapı ve doğrudan hücre dışı matrikse maruz kalan aksolemmayı göstermektedir. NR'nin varlığını ve yerini doğrulamak için aksonları çevreleyen miyelin kılıflarla birlikte görüntülemek önemlidir. Bu nedenle, TPEF-SRS mikroskopisi, hücresel dinamiklerin mekanizmalarını anlamak için önemli olan omurilik bozukluklarının gelişiminde aksonların ve miyelin kılıflarının dinamik değişikliklerini gözlemlememizi sağlar.
Resim 1: TPEF-SRS mikroskop sisteminin şematik diyagramı. Pompa ve Stokes ışınları, pikosaniye (ps) lazerde dikroik ayna (D1) ile birleştirilir. ps ışını ve femtosaniye (fs) ışını, 3 mm XY-tarama galvanometre aynalarına uyacak şekilde bir çift lens (sırasıyla L3, L4 ve L1, L2) tarafından harmanlanır ve genişletilir / daraltılır. Fs ışını bir yarım dalga plakası (HWP) ile yataydan dikey polarizasyona döndürülür ve daha sonra polarize edici bir ışın ayırıcı (PBS) tarafından ps ışını ile birleştirilir. Tarama aynaları ve objektif lensin arka göz bebeği, telesentrik tarama lensi L5 ve sonsuzluk düzeltmeli tüp lens L6 ile konjuge edilir. Lazer ışını, 25x hedefin arka diyaframını doldurmak için tarama ve tüp lens tarafından genişletilir. Uyarılmış Raman saçılması (SRS) görüntüleme için, hedef tarafından toplanan geri saçılan pompa ışını bir PBS tarafından yansıtılır ve geniş bir alana (10 mm x 10 mm) silikon fotodiyota (PD) yönlendirilir. İki fotonlu görüntüleme için, iki foton uyarılmış floresan (TPEF) sinyali, dikroik ışın ayırıcı D2 tarafından fotoalgılama ünitesine yansıtılır. TPEF sinyalini algılamak için bir akım fotoçarpanı (PMT) modülü kullanılır. Kısaltmalar-L1-L10: lensler; OL: objektif lens; D1-D3: dikroik aynalar; Fs1, Fs2: filtre kümeleri; M: aynalar; OM1, OM2: optik aynalar; P0-P2: hizalama plakaları. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: OPO kontrol yazılımındaki gecikme yöneticisinin arayüzü. Kırmızı ok, kalibre edilmiş gecikme verilerinin uygulanması için onay kutusunu gösterir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Resim 3: Fare omuriliğinin in vivo TPEF-SRS görüntülemesi. (A) Fare omuriliğinin cerrahi hazırlığının şematik diyagramı ve omuriliğin parlak alan görüntüsü. (B) Omuriliğin in vivo görüntülenmesi için fare montaj şeması. (C) Fare omuriliğindeki aksonların ve miyelin kılıflarının maksimal z projeksiyon görüntüleri. Beyaz ok uçları, Ranvier'in bir düğümünün yerini gösterir. Miyelinin SRS görüntüleri 2863.5 cm-1'lik Raman kaymasında çekilmiştir. Şekil A , BioRender (https://biorender.com/) kullanılarak oluşturulmuştur. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Bu protokolde, TPEF-SRS mikroskobunun temel kurulumu ayrıntılı olarak açıklanmaktadır. SRS görüntüleme için, pompa ve Stokes kirişleri OPO'nun içinde geçici ve uzamsal olarak üst üste biner. Bununla birlikte, bu örtüşme mikroskop sisteminden geçtikten sonra bozulabilir. Bu nedenle, pompanın ve Stokes ışınlarının kolokalizasyonunun hem mekansal hem de zamansal optimizasyonu, optimum SRS görüntülemeyi elde etmek için gerekli ve kritiktir. Pompa ve Stokes ışını arasındaki zamansal gecikme, mikroskop sistemindeki optik elemanların dağılmasıyla belirlenen iki ışının optik yol farkı ile ilgilidir38. Pompa ışınının dalga boyu farklı Raman kaymalarında SRS görüntüleme için ayarlandığında, optik lenslerin kırılma indisi dalga boyuna bağlı olduğundan, pompa ışınının optik yol uzunluğu buna göre değişir38. Bu nedenle, pompa ve Stokes lazer darbesi arasındaki zamansal gecikme, pompa ışınının dalga boyuna göre değişir ve bu nedenle kalibre edilmesi gerekir. OPO, pompanın ve Stokes ışınının zamansal senkronizasyonu için yazılım kontrollü bir gecikme hattı ile donatılmıştır. Aynı optik kurulum için, gecikme verileri sabit kalır ve yalnızca bir kez kalibre edilmesi gerekir. Sonuç olarak, pompa ışınının farklı dalga boylarındaki gecikme verileri, gelecekteki kullanım için ilk ölçümde kaydedilebilir. Kalibre edilmiş gecikme verileri, pompa ışınının dalga boyu değiştirildiğinde OPO kontrol yazılımı tarafından otomatik olarak uygulanabilir, bu da farklı Raman kaymalarında SRS görüntüleme veya hiperspektral SRS görüntüleme için uygundur. TPEF-SRS görüntüleme için, kombinasyondan sonra ps ve fs ışınlarının sıkı uzamsal örtüşmesi, iki görüntüleme modeli arasında herhangi bir FOV kaymasını önlemek için kritik bir adımdır. İlk olarak, ps pompa ışını ve fs ışını, her ikisinin de mikroskop sisteminin optik ekseninde olduğundan emin olmak için hizalanır, bu da iki görüntüleme modelini değiştirirken herhangi bir FOV kaymasını önlemek için kritik öneme sahiptir. Daha sonra, pompa kirişini referans olarak kullanarak, Stokes kiriş konumu, katı mekansal kolokalizasyon elde etmek için buna göre ayarlanır. Her hizalama prosedürü, optimuma ulaşmak için birkaç deneme gerektirir.
SRS sinyali önemli ölçüde azalırsa, önce kilitleme amplifikatörünün faz değeri ve zaman gecikmesi verileri kontrol edilmelidir. Senkronizasyon sinyali bozulduğunda kilitli amplifikatör fazdan çıktığından, faz değeri, güç kaynağı veya EOM senkronizasyon sinyali kesildikten sonra her seferinde yeniden ayarlanmayı gerektirir. Pompanın ve Stokes kirişinin zamansal senkronizasyonu, OPO içindeki gecikme hattını hafifçe ayarlayarak hızlı bir şekilde kontrol edilebilir. Kalibre edilen zaman gecikmesi verileri optimum değerden uzaksa, gecikme yöneticisi iletişim kutusundaki Sıfır Tarama düğmesine tıklayarak gecikme ofsetini yeniden kalibre etmek için sıfır tarama yapılmalıdır. Tüm sıfır tarama prosedürü yaklaşık 10 dakika sürer. SRS sinyali, faz ve zaman gecikmesi değerinin optimizasyonundan sonra toparlanamazsa, Stokes ışınının EOM modülasyonu, adım 2.1.3-2.1.4'te açıklandığı gibi kontrol edilmelidir. Stokes darbe treninin kapalı konumundaki küçük darbe zirvelerinin gözlemlenmesiyle yok olma oranı 10 dB'den çok daha düşükse, EOM yeniden başlatılmalı ve modülasyon gücü ve fazı maksimum modülasyon derinliği elde etmek için yeniden ayarlanmalıdır. Genellikle, modülasyon problemi EOM'yi sıfırlayarak çözülebilir. Değilse, üreticiden teknik destek alınmalıdır.
İn vivo kalın doku görüntülemesi için epi-SRS tespit modu kullanılmalıdır. Bu protokolde, uyarma lazerini geçirmek ve geriye saçılan SRS sinyalini dedektöre yansıtmak için bir PBS kullanılır. Algılanan SRL sinyali, ileri giden pompa ışınının dokular tarafından geri saçılmasına bağlıdır. Uyarma lazerleri doğrusal polarizasyona sahiptir ve PBS'den tamamen geçebilirken, geri saçılan ışın polarizasyonu kaydırmıştır ve bu nedenle PBS tarafından sadece kısmen yansıtılabilir. Bu nedenle, mevcut sinyal toplama şeması, dairesel bir fotodetektörün doğrudan hedefin önüne yerleştiren stratejiye kıyasla daha düşük verimlilik gösterir12. Bununla birlikte, lipit bakımından zengin dokuların güçlü saçılması nedeniyle39, omuriliğin yüksek sinyal-gürültü oranlı SRS görüntüleri (512 x 512 piksel) 1-2 s entegrasyon süresi ile elde edilebilir ve bu PBS tabanlı toplama şeması omurilik görüntüleme için uygun bir yaklaşım haline gelir. Öte yandan, güçlü doku saçılması ışık penetrasyon derinliğini sınırlar. Hem SRS hem de TPEF görüntüleme için, omurilik için görüntüleme derinliği yaklaşık 50 μm ile sınırlıdır.
SRS ve TPEF görüntüleme için sıralı görüntüleme prosedürü, mevcut çift modal görüntüleme yönteminin en büyük sınırlamasıdır. Protokolde TPEF ve SRS görüntüleme, motorlu palet otomatik olarak anahtarlanarak 1 s aralıklarla aynı yerde sırayla gerçekleştirilir. Hareket artefaktları, TPEF ve SRS görüntülerinin kusurlu bir şekilde birleşmesine neden olabilir, bu da bu yöntemin hayvanların nefes ve kalp atışlarından büyük ölçüde etkilenen son derece dinamik süreçleri veya dokuları görüntüleme yeteneğini sınırlar. Olası bir çözüm, SRS görüntüleme sırasında ps lazer ile uyarılmış iki foton floresansını aynı anda toplamaktır9. Bununla birlikte, bu yöntem sadece güçlü floresan sinyallere sahip biyolojik yapılara uygulanabilir, çünkü ps darbesi fs darbesine kıyasla çok daha düşük bir floresan uyarma verimliliğine sahiptir14. Alternatif olarak, sorun, fs lazer kaynağının, SRS görüntülemenin düşük spektral çözünürlüğü pahasına, SRS ve TPEF sinyallerinin aynı anda etkili bir şekilde uyarılmasına izin verdiği bir fs-SRS sistemi22,40 kullanılarak çözülebilir. Diğer bir çözüm, SRS görüntüleme sırasında elde edilen ps lazer uyarılmış floresansı, fs floresan görüntülerini kaydetmek için referans olarak kullanmaktır. Şekil 3'te gösterildiği gibi, SRS ve floresan görüntüleme sırasında önemli bir hareket meydana gelmezse bu kayıt stratejisi iyi çalışır.
SRS, biyolojik görüntülemede benzersiz avantajlar sergiler, çünkü spesifik etiketsiz kontrast mekanizmasına dayanarak biyomoleküllerin kimyasal bilgilerini sağlar41. Multimodal NLO görüntüleme için TPEF ile de birleştirilen CARS ile karşılaştırıldığında, SRS daha iyi spektral ve görüntü yorumlama yeteneği göstermiştir11. Bu nedenle, lipid9,11, protein42,43, DNA44 ve alkin (C ≡ C)13,45, karbon-döteryum (C-D)9,46 ve oksijen-döteryum (O-D) bağları47,48 içeren biyo-ortogonal bileşenlerin görüntülenmesinde yaygın olarak uygulanmaktadır. biyolojik dokularda. Bu protokolde, SRS görüntüleme için bir ps lazer kaynağı ve TPEF görüntüleme için bir fs lazer kaynağı kullandık, bu da verimli floresan uyarımı ve yüksek Raman spektral çözünürlüğünün avantajlarını birleştirerek çeşitli biyomoleküllerin etkili bir şekilde farklılaşmasına izin verdi42,44. Omurilikte, glial hücreleri, nöronları ve işe alınan bağışıklık hücrelerini içeren karmaşık hücre-mikro çevre etkileşimleri, yaralanmaların49 ve hastalıkların50 ilerlemesine katkıda bulunur. Çeşitli floresan ve SRS görüntüleme probları ile birleştirildiğinde, TPEF-SRS mikroskopisi, çeşitli hücresel yapıların yanı sıra farklı biyomolekül bileşenlerinin eşzamanlı görüntülenmesini sağlayabilir ve bu da omurilik bozukluklarının başlangıcını ve gelişimini anlamamızı önemli ölçüde kolaylaştırabilir.
Yazarların açıklayacak hiçbir şeyleri yoktur ve rekabet eden finansal çıkarları yoktur.
Bu çalışma, Hong Kong Araştırma Hibeleri Konseyi tarafından 16103215, 16148816, 16102518 16102920, T13-607/12R, T13-706/11-1, T13-605/18W, C6002-17GF, C6001-19E, N_HKUST603/19, İnovasyon ve Teknoloji Komisyonu (ITCPD/17-9), Üniversite Hibeleri Komitesi Mükemmellik Programı Alanı (AoE/M-604/16, AOE/M-09/12) ve Hong Kong Bilim ve Teknoloji Üniversitesi (HKUST) tarafından RPC10EG33 hibesi yoluyla desteklenmiştir.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
#2 Forceps | Dumont | 11223-20 | For laminectomy |
10X objective | Nikon | CFI Plan Apo Lambda 10X | |
25X objective | Olympus | XLPLN25XSVMP2 | |
Burn cream | Betadine | ||
Camera | Sony | α6300 | |
Current amplifier | Stanford research | SR570 | |
Current photomultiplier modules | Hamamatsu | H11461-01 | |
D2 665 nm long-pass dichroic mirror | Semrock | FF665-Di02-25x36 | For directing epi-fluorescence signal to the detection module |
D3 700 nm short-pass dichroic mirror | Edmund | 69-206 | For separating SRS from TPEF detection path |
Depilating cream | Veet | ||
FS1 975 nm short-pass filter | Edmund | 86-108 | For blocking stokes beam |
FS1 Bandpass filter | Semrock | FF01-850/310 | For blocking stokes beam |
Fs2 Bandpass filter | Semrock | FF01-525/50 | For selecting YFP signal |
Fs2 Shortpass filter | Semrock | FF01-715/SP-25 | For blocking fs excitation laser beam |
Half-wave plate | Thorlabs | SAHWP05M-1700 | |
High-speed photodetector | MenloSystems | FPD 310-F | For checking Stokes beam modulation |
Iodine | Betadine | ||
IR Scope | FJW | FIND-R-SCOPE Infrared Viewer 2X Kit Model 84499C2X | |
Iris | Thorlabs | CPA1 | |
L1 | Thorlabs | AC254-060-B-ML | |
L10 | Thorlabs | LA4052-A | |
L2 | Thorlabs | LA1422-B | |
L3 | Thorlabs | AC254-050-B | |
L4 | Thorlabs | AC254-060-B-ML | |
L7 | f=100 mm, AB coating | ||
L8 | Thorlabs | LA4874-A | |
L9 | Thorlabs | AC254-035-B-ML | |
Lock-in amplifier | APE | ||
Mirror | Thorlabs | PF10-03-P01 | |
Motorized flipper | Thorlabs | MFF101/M | |
multifunctional acquisition card | National Instrument | PCIe-6363 | |
Oscilloscope | Tektronix | TDS2012C | |
Photodiode | APE | For detecting SRS signal | |
Picosecond laser source | APE | picoEmerald | |
Polarizing beam splitter | Thorlabs | CCM1-PBS252/M | |
Power meter | Newport | 843-R | |
Saline | Braun | ||
Scan lens L5 | Thorlabs | SL50-CLS2 | |
Scanning mirror | Cambridge Technology | 6215H | |
Silicone gel | World Precision Inc. | KWIK-SIL | |
Ti:sapphire fs laser | Coherent | Chameleon Ultra II | |
Tube lens L6 | Thorlabs | TTL200-S8 |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır