Method Article
В этом исследовании представлен метод выделения нейронов у неонатальных мышей WT. Это требует тщательной диссекции спинного мозга от неонатальной мыши с последующим отделением нейронов от ткани спинного мозга путем механического и ферментативного расщепления.
Мы представляем протокол для изоляции и культуры нейронов спинного мозга. Нейроны получают от неонатальных мышей C57BL / 6 и выделяют в послеродовой день 1-3. В одном эксперименте собирают мышь, обычно 4-10 щенков, рожденных из одной размножающейся пары, и спинальные шнуры собираются индивидуально от каждой мыши после эвтаназии с изофлураном. Позвоночник расщепляется, а затем спинной мозг высвобождается из колонки. Затем спинальные шнуры измельчают для увеличения площади поверхности доставки для ферментативной протеазы, которая позволяет высвобождать нейроны и другие клетки из ткани. Затем растирание происходит в растворе. Этот раствор затем фракционируют в градиенте плотности для отделения различных клеток в растворе, позволяя выделить нейроны. Приблизительно 1-2,5 × 10 6 нейронов можно выделить из одной группы подстилок. Затем нейроны высевают на лунки, покрытые клеем factoКоторые обеспечивают правильный рост и созревание. Нейроны занимают приблизительно 7 дней для достижения зрелости в среде роста и культивирования и могут быть использованы после этого для лечения и анализа.
Понимание патологии спинного мозга требует использования различных моделей, как на макроскопическом, так и на микроскопическом уровнях. Крупные и мелкие животные модели 1 , 2 , 3 используются для исследований in vivo заболеваний и травм спинного мозга. При изучении этих проблем in vivo имеет свои достоинства, анализ спинного мозга ограничен гомогенатом всего спинного мозга или секциями тканей 4 . Это создает некоторую двусмысленность при попытке изолировать конкретные ответы и цели в спинном мозге среди его резидентных нейронов и окружающих глии. Увеличение доступности генетически управляемых мышей позволяет более детально исследовать биологию на клеточном и молекулярном уровнях. Таким образом, здесь используется неонатальная модель мыши, позволяющая изучать уникальные свойства и биологию нейронов спинного мозга in vitro .
Изоляция и поддержание нейронов in vitro не особенно прямолинейны. Существует относительное изобилие методов изоляции нейронов от кортикальной ткани взрослых грызунов, которые, как представляется, приводят к значительному количеству изолированных нейронов ( т. Е. Миллионов) 5 , 6 , 7. Напротив, выход нейронов из ткани спинного мозга ниже 8 , 9 , 10 , частично из-за меньшей массы ткани. Кроме того, у мышей наблюдается относительная малочисленность методов изоляции неонатальных Нейроны спинного мозга и существующие методы ограничены более низкими выходами нейронов ( т. Е. Сотнями) 9 или трудоемкими и ресурсоемкими методами, требующими выделения эмбриональных мышей 10 .В этом протоколе мыИспользуйте методику, позволяющую экономически выгодную изоляцию значительного числа нейронов из спинальных клеток неонатальных мышей. Как обычно в ранее опубликованных методах, мы используем папаин в качестве ферментативной протеазы, позволяя высвобождать нейроны из ткани спинного мозга 5 , 6 . Кроме того, мы используем градиент плотности для рафинированного разделения клеток, который ранее считался эффективным 6 , 10 . В то время как среда, в которой клетки инкубируются, может различаться, по нашему опыту и, как было опубликовано ранее 11 , добавка с добавлением новой питательной среды B27 оказалась критической для долголетия нейронов. Нейроны обычно жизнеспособны на срок до 10 дней, что позволяет проводить лечение.
Уход и лечение животных в этой процедуре проводились в соответствии с руководящими принципами Комитета по институциональному уходу и использованию животных в Университете Колорадо.
1. Подготовка решений
2. Покрывающие скважины и слайды
ПРИМЕЧАНИЕ. Нейроны плохо прилипают к пластиковым или стеклянным поверхностям.
3. Уборка лезвий
ПРИМЕЧАНИЕ. Все приборы должны быть подвергнуты автоклавированию (135 ° C и 30 фунтов на квадратный дюйм для циклов 4 × 7 минут) для стерильности.
4. Изолирующие нейроны
ПРИМЕЧАНИЕ. Следующий этап должен выполняться в вытяжном шкафу с ламинарным потоком. Ожидается знакомство с базовой стерильной техникой.
Используя этот метод, один подстилок (4-10 щенков) позволяет выделить 1-2,5 10 6 нейронов, подходящих для посева на культуральные планшеты. Обычно 4-8 лунок высевают при указанной выше концентрации ( т.е. 300 000 клеток / мл). Рисунок 3 демонстрирует появление нейронов при этой концентрации через неделю в культуре при низкой ( а ) и высокой ( б ) световой микроскопии увеличения. Тем не менее, мы также смогли культивировать клетки при концентрациях до 500 000 клеток / лунку и до 100 000 клеток / лунку. Использование более высоких концентраций требует более среднего и пристального внимания к условиям окружающей среды, так как питательные вещества могут быстро истощаться, что приводит к токсической кислотной среде для клеток. При более низких концентрациях клетки, как правило, не достигают полной зрелости, а разрастание поддерживающих клеток ( то есть олигодендроцитов, миCroglia и астроциты).
Клетки обычно начинают прилипать к поверхности в течение первых двух часов ( рис. 4а ). Аксоны начнут прорастать в течение первых 24-48 часов ( рис. 4b -4c ). Соединения между различными нейронами в культуре обычно достигают зрелости через 7 дней ( рис. 4d ), при этом эксперименты обычно проводятся на нейронах.
Нейроны идентифицируются под световой микроскопией, так как они имеют различные аксонные проекции. Наши выделения с использованием слоя 3 ( рис. 2 ) дают ~ 80-90% нейронов в культуре. Это подтвердили с использованием иммунофлюоресцентного окрашивания нейроспецифических маркеров. На фиг. 5с нейроновый цитоскелетный белок, связанный с микротрубочками, протеин 2 (MAP2) представляет собойС указанием контуров и аксонных проекций нейронов через неделю в культуре. Аналогично, на рис. 6в нейрон-специфический ядерный маркер NeuN окрашивается, показывая ядра нейронов. Эти нейронные маркеры объединены с изображениями ядра (DAPI, рис. 5a , 6a ) и цитоплазмы (GFP, рис. 5b , 6b ), и полученные изображения объединяются ( рис. 5d , 6d ), где подробно описывается относительное количество нейронов в другие клетки в культура. При использовании слоев 2 и 3 выход нейронов несколько выше; Однако, как правило, в чистом растворе меньше нейронов (~ 70%).
Рисунок 1: Просеивание позвоночного столба и спинного мозга, выпущенного из 3-дневной неонатальной мыши.Стрелка в ( а ) указывает на хвостовой конец позвоночника, где вставляется игла для освобождения спинного мозга. Выпущенный спинной мозг ( b ) показан погруженным в PBS. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Градиент плотности, с добавлением клеток после центрифугирования. Слои изложены и лучше визуализированы в изображении мультфильма. Самый поверхностный слой (0) обычно является обломком ткани спинного мозга. Слой 1 богат олигодендроцитами и астроцитами. Слои 2 и 3 содержат большинство нейронов. Хотя слой 3 содержит нейроны с наивысшей чистотой, некоторые поддерживающие клетки ( то есть астроциты и олигодендроциты) находятся в слое 2. PeЛак на дне в основном содержит микроглиальные клетки. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Световая микроскопия нейронных клеточных культур после 7 дней изоляции. При 10-кратном увеличении ( а ) можно видеть аксональные соединения между различными конгломератами нейронов. При увеличении 40х ( б ) нейроны можно более точно визуализировать с их аксоновскими проекциями. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
> Рисунок 4: Временной курс нейронов после посева на лунках. Изображение ( а ) показывает клетки 1 ч, ( б ) 24 ч, ( в ) 48 ч и ( г ) через 1 неделю после посева. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 5: Иммунофлуоресцентное пятно нейронов с использованием нейронного цитоскелетного маркера MAP2. Ядерное окрашивание (DAPI) показано синим цветом ( a ) с цитоплазматическим окрашиванием (GFP) в зеленом ( b ) и белком цитоскелета нейрона (MAP2) в красном ( c ). Объединенные изображения ( d ) объединяются, показывая относительное обилие нейронов.Target = "_ blank"> Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 6: Иммунофлуоресцентное пятно нейронов с использованием нейронного ядерного маркера NeuN. Ядерное окрашивание (DAPI) показано синим цветом ( a ), с цитоплазматическим окрашиванием (GFP) в зеленом ( b ) и нейронном ядрах (NeuN) в красном ( c ). Объединенные изображения ( d ) объединяются, показывая относительное обилие нейронов. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
СМИ | Место хранения | Ингредиенты | подготовка | ||
HABG | 4 ° C / 24 часа | 100 мл | - Оттепель B27 в холодильнике 4 ° C O / N - Фильтровать стерилизацию (0,22 мкм) | ||
Hibernate A | 97,8 мл | ||||
B27 [2%] | 2 мл | ||||
GlutaMAX [0,5 мМ] | 0,25 мл | ||||
Нейробазальная медицина | 4 ° C / 1 неделя | 100 мл | - Оттепель B27 в холодильнике 4 ° C O / N - Фильтровать стерилизацию (0,22 мкм) - Аликвот 50 мл порций в 50 мл пробирки (хранить при 4 ° С) | ||
Нейробазальный А | 97 мл | ||||
B27 [2%] | 2 мл | ||||
GlutaMAX [0,5 мМ] | 0,25 мл | ||||
Pen / Strep [1%] | 1 мл | ||||
Пищеварение | День изоляции | 10 мл | - Энергично встряхивать - Дайте ему посидеть в ванне с температурой 37 ° C в течение 30 минут (в идеале приготовлено за 30 минут до использования) - Фильтровать стерилизацию (0,22 мкм) | ||
HA-Са | 10 мл | ||||
Папаин | 25 мг | ||||
GlutaMAX [0,5 мМ] | 0,025 мл | ||||
Градиент плотности | День изоляции | 1 градиент | |||
Слой | OptiPrep | НАВг | |||
(0,13 мл) | (5,29 мл) | ||||
1 Нижняя часть | 0,26 мл | 1,24 мл | |||
2 | 0,19 мл | 1,31 мл | |||
3 | 0,15 мл | 1,35 мл | |||
4 Вверх | 0,11 мл | 1,39 мл |
Таблица 1: Подготовка медиа и решений, используемых в настоящем Протоколе.
Покрывающий субстрат | Место хранения | Ингредиенты | подготовка | |
PDL | - 20 ° C Замораживание-оттепель | Полигидро-гидразид поли-D-лизина | 5 мг | - Аликвоту 4 мл в 15 мл пробирки и немедленно хранить при -20 ° C - 0,5 мл / лунку (24-луночный планшет) |
Стерильная вода | 50 мл | |||
Laminin | День покрытия | Ламинин (1 мг / мл) | 80 мкл | - Достаточно для 8 лунок в 24-луночном планшете - 0,35 мл / лунку (24-луночный планшет) |
Нейробазальная среда | 2,72 мл |
Таблица 2: Подготовка покрывающих субстратов, используемых для покрытия скважин, на которых культивируются нейроны.
Этот метод позволяет обеспечить надежную культуру нейронов спинного мозга. Как только уровень владения техникой будет достигнут, для завершения потребуется приблизительно 3,5 часа. Мы смогли провести изоляцию нейронов от 2 отдельных пометов (всего 16 мышей) примерно через 4 часа. Ключевым шагом в осуществимости является способность эффективно извлекать спинальные шнуры от мышей. Выход позволяет наносить несколько колодцев и на способность тестировать нейроны при различных условиях. Мы смогли обработать нейроны после зрелости и надежно оценить экспрессию белка с использованием Вестерн-блот-анализа. Кроме того, использование стеклянных слайдов внутри лунок для прикреплений нейронов позволяет провести дальнейший анализ окраски нейронов.
Эта процедура выгодна тем, что она не требует эмбриональной ткани и связанной с ней интенсивности труда. Кроме того, нет необходимости использовать взрослые спинальные шнуры для сбора достаточной ткани для адекватногоE нейронов. Это предотвращает фактор возрастной рецептуры поведения в физиологии нейронов, как это видно у взрослых мышей. Однако этот метод не без ограничений. Как упоминалось ранее, возрастные нейроны исключаются с помощью неонатальных мышей, и это может быть ограничение, если возрастное поведение и биология являются сферой исследования. В процедуре есть кривая обучения, которая необходима не только для оптимизации урожайности, но и для обеспечения здоровых изолированных нейронов. Техника извлечения спинного мозга может занять некоторое время, особенно для новорожденных мышей. Мы заметили, что длительное время, связанное с экстракцией спинальных кордов, приводит к нейронам, которые можно культивировать в течение значительно более короткого периода. Это несколько облегчается путем размещения нейронов на льду; Однако время все еще играет ключевую роль.
Существуют основные этапы процедуры, которые помогают обеспечить оптимальный выход нейронов. Если выход нейрона не такой, как eXpected, необходимо оценить несколько этапов. Во-первых, количество спинальных шнуров в идеале должно быть больше 4. Когда используются 3 спинальных шнура или меньше, выход обычно составляет менее 1 миллиона нейронов. Должна быть обеспечена адекватная подготовка пищеварительной среды (шаг 4.5). Оставляя ткань слишком долго в пищеварительной среде, вызывают чрезмерное разрушение клеток, в то время как использование пищеварительной среды, которая не была активирована при 37 ° C, приведет к уменьшению количества изолированных нейронов. Наконец, методика растирания (шаг 4.7) должна выполняться с точностью. Низкие урожаи обычно возникают из-за неадекватного растирания. Хорошим показателем является то, будет ли решение облачным во время растирания - если этого не произойдет, вполне вероятно, что растирание слишком мягкое.
Если выход такой же, как ожидалось, но, по-видимому, нейроны не регенерируют процессы в течение первых 1-2 дней, проблема, как правило, является провалом в надлежащем покрытии либо с недостаточной промывкойИли сушки (этап 2.2). Если ячейки первоначально обрабатывают процессы, а затем становятся апоптотическими до отметки 5-7 дней, может быть несколько проблем. Во-первых, убедитесь, что раствор HABG готов в течение 24 часов после выделения и что добавляется свежая добавка B27, которая была оттаивана в тот же день приготовления HABG. Антиоксиданты в этом дополнении должны быть свежими и не истекли. Затем убедитесь, что пузырьки не введены во время процесса растирания (шаг 4.7). Введение пузырьков воздуха способствует этой проблеме и может быть связано с сушкой нейронов. Кроме того, убедитесь, что культура не перегружена загрязнением, что можно объяснить неудачами в стерильности.
Здесь мы описываем использование 24-луночных планшетов, на которых можно засеять нейроны. Иногда необходимо проводить исследования времени и / или дозировки, например, при использовании фармакологических средств. Этот метод можно модифицировать, а нейроны можно высевать на 48-луночный планшетВместо этого. Так как площадь поверхности скважины в 48-луночном планшете вдвое меньше, чем в 24-луночном планшете, то объемы используемых растворов для покрытия должны быть разрезаны наполовину. Клетки также должны быть покрыты на половину объема ( т.е. 0,5 мл вместо 1,0 мл). Однако их концентрация должна оставаться неизменной ( т.е. 1-5 × 10 5 клеток / мл). Хотя это исследование было проведено с использованием мышей C57BL / 6, этот метод должен быть применим к другим генетически управляемым штаммам.
Ишемия спинного мозга и защита - область растущего интереса 12 , 13 , 14 . Клинически торакоабдоминальная аортальная хирургия может привести к разрушительному параличу, связанному с ишемией спинного мозга и реперфузией, патофизиология которой еще предстоит полностью понять 15 , 16 . Понимание того, как нейроны реагируют наE стресс ишемии возможен с использованием этой модели. Наша группа ранее опубликовала информацию о повреждениях нейронов спинного мозга, связанных с ишемическим оскорблением, через лишение кислородной глюкозы с использованием этой техники 17 . Модель также была расширена за счет включения культуры астроцитов, отделенной от нейронов 18 .
В заключение, этот метод ценен для изучения патофизиологии спинного мозга и микробиологии нейронов. Культура без сыворотки позволяет точно контролировать окружающую среду. Он обеспечивает прямой доступ для применения фармакологических агентов. В сочетании с дополнительными методами, такими как лихорадка кислородной глюкозы, этот метод может быть полезен для расширения нашего понимания патофизиологии детерминантной ишемии спинного мозга.
Авторы не имеют раскрытия.
У авторов нет подтверждений.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Hibernate A Medium - 500 mL | Thermo-Fisher | A1247501 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A1247501 |
Hibernate A Minus Calcium - 500 mL | Brainbits | HA-Ca | http://www.brainbitsllc.com/hibernate-a-minus-calcium/ |
Glutamax 100X - 100 mL | Thermo-Fisher | 35050061 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/35050079 |
B27 Supplement 50X - 10 mL | Thermo-Fisher | 17504044 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/17504044 |
Papain, Lyophilized - 100 mg | Worthington | LS003119 | http://www.worthington-biochem.com/pap/cat.html |
Neurobasal A Medium - 500 mL | Thermo-Fisher | 10888022 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10888022 |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Thermo-Fisher | 15140122 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15140122 |
Poly-D-Lysine (PDL) hydrobromide - 5 mg | Sigma-Aldrich | P6407-5MG | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p6407?lang=en®ion=US |
Mouse Laminin - 1 mg | Thermo-Fisher | 23017015 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/23017015 |
Trypan Blue - 20 mL | Sigma-Aldrich | T8154-20ML | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t8154?lang=en®ion=US |
OptiPrep Density Gradient Medium - 250 mL | Sigma-Aldrich | D1556-250ML | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/d1556?lang=en®ion=US |
Dichlorodimethylsilane (DMDCS, Sigma Silicoat) | Sigma-Aldrich | 440272-100ML | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/440272?lang=en®ion=US |
Chloroform | Sigma-Aldrich | 288306-1L | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/288306?lang=en®ion=US |
Glass Pippette - 9" | Sigma-Aldrich | 13-678-20C | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/cls7095d9?lang=en®ion=US |
Pipette bulb - 5 mL | Sigma-Aldrich | Z186678-3EA | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/z186678?lang=en®ion=US&cm_sp=Insite-_-prodRecCold_xviews-_-prodRecCold10-1 |
BRAND® Petri dish, glass - 60 x 15 mm | Sigma-Aldrich | BR455717-10EA | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/br455717?lang=en®ion=US |
Sterile 24-Well Cell Culture Plate | Sigma-Aldrich | M8812-100EA | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m8812?lang=en®ion=US |
Hausser Hemacytometer (glass counting chamber) | Fischer Scientific | 02-671-6 | https://www.fishersci.com/shop/products/hausser-bright-line-phase-hemacytometer-hemacytometer/026716 |
Glass Slides - 12 mm sterile cover glass - uncoated | Neuvitro | GG-12-1.5-Pre | http://www.neuvitro.com/german-coverslip-12mm-diameter.htm |
NeuN Rabbit Monoclonal Antibody - 100 µL | Abcam | ab177487 | After fixing in paraformaldehyde (PFA) and blocking with 5% BSA, cells on a 12 mm coverslip were incubated in the antibody diluted 1:200 for 18 h in 4 °C |
MAP-2 Mouse Monoclonal Antibody - 50 µL | Abcam | ab11267 | After fixing in paraformaldehyde and blocking with 5% BSA, cells on a 12 mm coverslip were incubated in the antibody diluted 1:500 for 18 h in 4 °C |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены