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Nós demonstramos um método para recolher bactérias magnetotáticas (MTB), que podem ser aplicadas para águas naturais. MTB podem ser isolados e enriquecidos a partir de amostras de sedimento utilizando uma configuração relativamente simples que aproveita magnetismo da bactéria natural. Isolado MTB pode então ser analisada em detalhe utilizando luz e microscopia eletrônica.
Bactérias magnetotáticas (MTB) são microorganismos aquáticos que foram pela primeira vez descritos nomeadamente em 1975 uma das amostras de sedimentos coletados em salinas de Massachusetts (EUA). Desde então MTB foram descobertos em água e sedimentos estratificados-colunas de todo o mundo 2. Uma característica comum a todos MTB é que eles contêm magnetossomos, que são intracelulares, nanocristais ligado à membrana magnéticas de magnetita (Fe 3 O 4) e / ou greigite (Fe 3 S 4) ou ambos os 3, 4. No hemisfério norte, MTB normalmente são atraídos para a extremidade sul de um ímã de barra, enquanto no hemisfério sul geralmente são atraídos para a extremidade norte de um ímã de 3,5. Esta propriedade pode ser explorada durante a tentativa de isolar a partir de amostras ambientais MTB.
Uma das formas mais comuns de enriquecer MTB é a utilização de um contentor de plástico transparente de recolher os sedimentos e água a partir de uma fonte natural,tal como um tanque de água doce. No hemisfério norte, o sul de uma barra magnética é colocada contra a parte exterior do recipiente um pouco acima do sedimento na interface sedimento-água. Depois de algum tempo, a bactéria pode ser removido do interior do recipiente perto do magneto com uma pipeta e, em seguida, enriquecido ainda mais por meio de um capilar de pista 6 e um magnete. Uma vez enriquecido, a bactéria pode ser colocado sobre uma lamela de microscópio, utilizando um método de gota pendente e observados num microscópio de luz, ou depositado sobre uma grelha de cobre e observadas por microscopia electrónica de transmissão (TEM).
Usando este método, isolado MTB pode ser estudada microscopicamente para determinar características tais como o tipo de comportamento de natação, e número de flagelos a morfologia das células, das células, a forma dos cristais magnéticos, número de magnetossomos, o número de cadeias de magnetossomos em cada célula, a composição de os cristais nanomineral e presença de vacúolos intracelulares.
1. MTB Colecção
2. Isolamento MTB
3. Autódromo de MTB
4. Enriquecimento MTB
5. Observação MTB por microscopia de luz
6. MTB observação por Microscopia Eletrônica de Transmissão (TEM)
Um íman é uma ferramenta eficaz que pode ser usado para isolar as bactérias magnetotáticas (MTB) contidas em amostras ambientais (Figura 1A). A pista de corrida capilar (Figura 1B) utiliza as propriedades magnéticas de MTB de atrair os através de um tampão de algodão, onde eles podem ser separados a partir de microrganismos não-magnetotáticas também contidos na amostra ambiental.
Figura 1. Uma garrafa de plástico transparente contendo uma amostra de sedimento e água coletada do rio Olentangy em Columbus, Ohio (EUA). O frasco contém aproximadamente metade do sedimento e meio de água. A extremidade sul de um magneto é colocado a cerca de 1 cm acima do sedimento por até várias horas (A). Depois de remover algum do fluido a partir de perto do íman no interior do recipiente, ele é colocado no interior de um r capilaracetrack onde o mergulho MTB através de um tampão de algodão (seta) para o fim sul de um ímã de barra (B). A fim acima da vista da pista capilar mostrando a amostra, o algodão, o fluido filtrado, extremidade fechada do tubo capilar e extremidade sul de uma barra magnética (C).
Figura 2. Uma vez que o MTB foram enriquecidas a partir da pista de corrida, uma pequena gota pode ser colocado sobre uma lamela, que é depois virado de cabeça para baixo e colocado sobre um anel de vedação que está apoiado sobre uma lâmina. Esta sanduíche slide-o-ring-lamela pode ser colocado em um estágio de microscópio de luz e visualizado utilizando uma objectiva 60X seco (lentes de petróleo são inconvenientes para usar com uma gota em suspensão).
Figura 3. Imagem do microscópio brilhante campo da natação MTB (finasetas longas) e reunir à beira da gota em suspensão (setas curtas), que é próxima ao pólo sul de um ímã de barra.
Figura 4. Imagem de microscopia eletrônica de transmissão de uma bactéria magnetotáticos único enriquecido a partir de uma amostra de sedimento ambiental. A morfologia da célula (spirillum) e magnetossomos são claramente visíveis, juntamente com um único flagelo.
Bactérias magnetotáticas não são necessariamente encontrados em cada ambiente aquático 8, mas quando elas ocorrem, eles podem ser encontrados na ordem de 100 - 1000 células por mililitro 2. A fim de observar o MTB microscopia óptica, você vai precisar de cerca de 50 bactérias / ml em sua amostra 8. Se não houver nenhum ou poucos MTB em sua amostra, então você precisa selecionar um novo site ambiental para coletar suas amostras ou você terá de tentar uma ou mais das técnicas discutidas na próxima seção.
Primeiro, você deve tentar recolher mais sedimentos do ambiente usando uma grande banheira de plástico 8. Isto é especialmente útil se um grande número de MTB unculturable são necessários. Dependendo da amostra ambiental, pode não ser possível isolar amostras de MTB tendo uma concentração de 50 bactérias / ml, imediatamente após a recolha da amostra. Portanto, quando você traz sua amostra ambiental volta à laboratory, pode ser benéfico para aguardar a amostra para se aclimatarem às condições laboratoriais antes de tentar isolar o MTB usando uma barra magnética. Este período de aclimatação permitirá que a comunidade bacteriana para amadurecer e repovoar a cultura levando a maiores concentrações de MTB. Outra técnica simples, que muitas vezes produz amostras de MTB mais concentrados é a de deixar o íman em barra no lado do recipiente da amostra (Figura 1A), por um período mais longo de tempo (por exemplo, durante vários dias). Isto deve permitir que o tempo de MTB mais a migrar para o íman. Uma técnica final que pode ser útil, é a utilização de várias pistas (Figura 1B) de uma só vez e, em seguida, combinam o MTB de cada pista de corrida numa única amostra. Se você acredita que há um problema com uma pista de corrida ou se há muitos microrganismos contaminantes (isto é, não-MTB) em sua amostra enriquecida, você pode colocar a pista sob um microscópio de luz para observar o MTB como eles nadam através do plu algodãog e para dentro da ponta. Isso permitirá que você para determinar se microrganismos contaminantes também estão vindo através do tampão de algodão e quando parar o processo de enriquecimento.
Devemos mencionar que existem formas mais sofisticadas para isolar MTB, mas estes métodos requerem o uso de equipamentos mais especializados. Um exemplo envolve a utilização de uma bobina magnética, em vez de uma barra magnética, e os vasos de vidro personalizados para isolar MTB de sedimentos de água doce 10, 11. O protocolo aqui descrito representa um método barato e eficaz para determinar se um sítio ambiental contém MTB. Este protocolo de isolamento e enriquecimento é suficientemente simples para que os estudantes podem dominar microbiologia e facilmente "sintonia fina", de modo que os rendimentos mais elevados de MTB pode ser alcançado. Uma vez que o MTB foram isolados, a análise de outros, tais como hibridação in situ de fluorescência, 16S rRNA para sequenciação espectroscopia dispersiva análise comunidade, a energia (EDS), TEM, microscopia ópticae medições magnéticas podem ser conduzidos sobre o MTB 12, 13, 14.
Não há conflitos de interesse declarados.
Este trabalho foi suportado por concessões do National Science Foundation EUA (EAR-0920299 e 0745808-EAR); National Science Foundation EUA Leste Asiático e Pacífico Verão Institutos, a Sociedade Geológica da América Programa Bolsa Pesquisa e os Subsídios para Pesquisa de Pós-Graduação Alumni e Bolsa da Universidade Estadual de Ohio. Gostaríamos de agradecer ao editor e dois revisores anônimos por seus comentários perspicazes.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Nome do item | Companhia | Número de catálogo | Comentários (opcional) |
Lâminas de vidro | Fisher Scientific | S95933 | |
Pasteur pipetas de vidro | Fisher Scientific | 13-678-6A | |
O-ring | Loja de ferragens | ||
Lamínulas | Fisher Scientific | 12-542B | |
Ímã de barra | Fisher Scientific | S95957 | |
Recipiente | Qualquer | Qualquer plastic ou recipiente de vidro que pode conter pelo menos 0,5 L e pode ser selada | |
Algodão | Qualquer | ||
Microscópio com lente seca 60X | Zeiss | Uma lente de 60X a seco não é absolutamente necessária, mas isto apresenta uma NA elevada sem utilizar óleo | |
Diamante caneta | Fisher Scientific | 08-675 | |
Filtro de 0,22 milímetros | Fisher Scientific | 09-719C | |
1 seringa ml | Fisher Scientific | NC9788564 | |
Microtubos | Fisher Scientific | 02-681-320 | |
Formvar / carbono200 mesh, grades de cobre | Ted Pella Inc. | 01800 | |
Acetato de uranilo | Ted Pella Inc. | 19481 | |
Tecnai Espírito TEM | FEI | ||
Tecnai F20 S / TEM | FEI |
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