Method Article
בפרוטוקול הנוכחי, מודל השתלת לב עכבר משמש לחקירת מנגנון דחיית אלוגרפט לבבי. במודל השתלת לב הטרוטופי זה, יעילות הניתוח משופרת, והישרדותם של שתלי לב מובטחת על ידי אנסטומוזה מקצה לקצה של צוואר הרחם של השתלת לב באמצעות טכניקת שרוול שונה.
דחיית השתלת לב מגבילה את הישרדותם לטווח ארוך של חולים לאחר השתלת לב. מודל השתלת לב עכבר אידיאלי לחקר המנגנון של דחיית אלוגרפט לבבי במחקרים פרה-קליניים בגלל ההומולוגיה הגבוהה שלהם עם גנים אנושיים. הבנה זו תסייע לפתח גישות ייחודיות לשיפור הישרדותם ארוכת הטווח של החולים המטופלים באלושתלי לב. במודל עכברי, השתלת לב תורם בטן מבוצעת בדרך כלל עם אנסטומוזה מקצה לקצה לאבי העורקים של המקבל ונבוב ורידי נחות באמצעות תפרים. במודל זה, ליבו של התורם מושתל באנסטומוזה מקצה לקצה לעורק התרדמה ולווריד הצוואר של המקבל בטכניקת השרוול השונה. ניתוח ההשתלה מבוצע ללא תפירה ובכך עשוי להגדיל את הישרדותו של המושתל שכן אין הפרעה באספקת הדם וריפלוקס ורידי פלג הגוף התחתון. מודל עכברי זה יסייע לחקור את המנגנונים העומדים בבסיס הדחייה האימונולוגית והפתולוגית (חריפה/כרונית) של אלוגרפטים לבביים.
השתלת לב הפכה לטיפול הסטנדרטי באי ספיקת לב סופנית. יותר מ-5,500 השתלות לב בשנה מבוצעות בארגונים הרשומים תחת האגודה הבינלאומית להשתלות לב וריאות. בקרב מושתלי הלב האלוגניים, שיעור הדחייה לשנה הוא עדיין >10%, בעוד ששיעור הדחייה ל-3 שנים עלה ל-36%1,2. עם זאת, טיפולים מניעתיים יעילים לחולים עם דחיית אלוגרפט לבבית חסרים. לכן, מחקרי מודלים בבעלי חיים מוצדקים המבהירים את המנגנונים הפיזיולוגיים העומדים בבסיס הדחייה החיסונית והפתולוגית של אלוגרפטים לבביים. מחקרים כאלה יתרמו לחקר מטרות חדשות הנדרשות לפיתוח תרופות יעילות, אשר יסייעו במניעת דחיית אלוגרפט לבבי וישפרו את שיעורי ההישרדות באוכלוסיות חולים אלה.
כמה מנגנונים אימונולוגיים ופתופיזיולוגיים פוטנציאליים של דחיית אלוגרפט לבבי הוצעו לאחרונה במחקרי מודל עכברים של השתלת לב הטרוטופית 3,4,5. כתוצאה מכך, השתלת לב הטרוטופית בעכבר הפכה למודל פרה-קליני אידיאלי לחקר מנגנוני הדחייה החיסונית והפגיעה הפתולוגית המתרחשים בהשתלות לב לאחר השתלת לב בגלל ההומולוגיה הגבוהה שלהם עם גנים אנושיים. הרעיון הרווח הוא לבצע השתלה הטרוטופית במודל עכברי על ידי אנסטומוזה בטנית מקצה לקצה באבי העורקים המושתל ונבוב ורידי נחות באמצעות תפרים, בדומה לאנטומיה האנושית הרגילה. עם זאת, הליך זה עלול להפריע לאספקת הדם של המקבל וריפלוקס ורידי של פלג הגוף התחתון6. לכן, הליך השתלת לב הטרוטופי שונה במודל עכבר מוצע כאן.
ליבו של התורם מושתל בעורק התרדמה ובווריד הצוואר של המקבל על ידי אנסטומוזה צווארית מקצה לקצה בטכניקת שרוול שונה. הליך שונה זה הקל על ההיתכנות הניתוחית והבטיח את הישרדות השתל הלבבי מבלי להפריע לאספקת הדם ולריפלוקס ורידי של פלג הגוף התחתון.
כל הניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתאם למדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה, מהדורה שמינית, המועצה הלאומית למחקר (ארה"ב) 2011. נהלים המערבים נבדקים בבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה לטיפול ושימוש בבעלי חיים של בית החולים לסרטן של אוניברסיטת צ'ונגצ'ינג, צ'ונגצ'ינג, סין. עכברי BALB/c ו-C57BL/6 זכרים במשקל 20-30 גרם, שהתקבלו ממקורות מסחריים (ראו טבלת חומרים), שימשו למחקר השתלת לב אלוגנית. עכברי C57BL/6 שימשו כתורמים ומושתלים סינגניים, ואילו עכברי BALB/c שימשו כמושתלים אלוגניים. סכמה של הפרוטוקול מוצגת באיור 1.
הערה: כל החומרים המשמשים במהלך הניתוח, כולל מכשירים ופתרונות ניתוחיים, הם סטריליים. ההליך הכירורגי שומר על עקרון טכניקת הפעולה האספטית.
1. הליך הנמען
2. הליך התורם
3. השתלה
במודל השתלת לב הטרוטופי זה של עכבר צוואר הרחם, שיעור ההישרדות של עכברים מושתלים היה כ -95.2% (20 מתוך 21 עכברים שרדו). סיבת המוות העיקרית הייתה דימום לאחר הניתוח. פעימות הלב המהירות עם קצב קבוע משמשות אינדיקטור להישרדות הלב התורם המושתל.
עכברי C57BL/6 ו-BALB/c היו מסוג MHC (H-2b) ו-MHC (H-2d) בדגם זה, בהתאמה 7,8. שני זנים אלה נבדלים זה מזה ב-H-2, הגורם לדחייה חריפה בתיווך תאי T9. מתוך כל השתלות הלב, 62.5% אבדו תוך 7 ימים לאחר ההשתלה, כפי שהוערך על ידי מישוש פעימות הלב. כל השתלות הלב אבדו תוך 8 ימים לאחר ההשתלה. לעומת זאת, כל השתלות הלב האיזוגניות שרדו מעבר ל-4 שבועות (איור 2). עכברים ששרדו מעבר ל-4 שבועות הומתו על ידי שאיפתCO2.
איור 1: סכמטי של מודל השתלת הלב ההטרוטופי של צוואר הרחם בעכבר. (A) פרוטוקול להכנת הנמען: לאחר חיתוך עורק התרדמה המשותף ווריד הצוואר החיצוני בקצה הפרוקסימלי, לומן כלי הדם נחתך ומקובע לאחר שעבר דרך השרוול הדוקרני עם קצה משופע וחריצים על פני השטח. הריבוע המקווקו מציג את מבנה השרוול ואת השימוש בו. (B) כריתת לב מתורם: לאחר זילוח הלב התורם עם הפרין ותמיסת HTK מהווריד הנבוב התחתון ואבי העורקים, קושרים את הווריד הנבוב העליון והתחתון ואת וריד הריאה בתפרים. לאחר מכן הלב של התורם נכרת על ידי חיתוך כלי הדם. (ג) השתלת לב התורם. עורק הריאה ואבי העורקים של התורם מוצמד לווריד הצוואר החיצוני של הנתרם, ועורק התרדמה דרך השרוול כאשר כלי הדם של המקבל מופנים החוצה בתבנית מקצה לקצה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: עקומת הישרדות עבור שתלי לב. עקומת ההישרדות של שתלי לב מראה כי השתלות לב אלוגניות אובדות תוך 8 ימים לאחר ההשתלה, אשר הוערכה על ידי מישוש פעימות הלב. סה"כ 10 עכברים מושתלים עברו השתלת לב הטרוטופית צווארית שונה בכל קבוצה. כל השתלות הלב האיזוגניות שרדו יותר מ-4 שבועות. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
רופרט אוברהובר ואח' 10 | Xin Mao et al (עבודה נוכחית) | |||
הרדמה | קסילזין וקטמין | איזופלורן (בטוח, רציף ויציב) | ||
האונה הימנית של הבלוטה התת-לסתית | להסרת | שימור (הפחתת סיבובים של שתלים) | ||
סטרנוקלידומסטואיד ימני | להסרת | שימור (הפחתת סיבובים של שתלים) | ||
זילוח לב | זילוח מדרדר עם תמיסת HTK בטמפרטורה של 4°C מקשת אבי העורקים | 1. זילוח אנטרוגרדי עם מי מלח פיזיולוגיים קרים כקרח בתוספת תמיסת הפרין 100 IU/mL מהווריד הנבוב העל-כבדי. 2. זילוח מדרדר עם תמיסת HTK קרה כקרח מקשת אבי העורקים. (הפחתת קרישה והגברת ההגנה על שריר הלב) | ||
שרוול | קצה קהה, עם ידית | קצה משופע, עם ידית, מוטות וחריצים על פני השטח (להקל על היפוך וקיבוע) |
טבלה 1: השוואה בין טכניקות השתלת לב. טכניקת השתלת הלב ההטרוטופית הנוכחית של עכבר צוואר הרחם שונה מ- Oberhuber, R. et al.10 ויש לה יתרונות נוספים להישרדות השתלת לב.
מודל השתלת הלב בעכבר תורם לחקר מנגנוני הדחייה לאחר השתלת לב, ותורם לפיתוח גישות ייחודיות לשיפור הישרדותם ארוכת הטווח של מושתלי השתלת לב. עם זאת, השתלת לב בעכברים היא משימה מורכבת ומאתגרת, הדורשת רמה גבוהה של טכניקות מיקרוכירורגיה, במיוחד באנסטומוזה וסקולרית11,12,13. מודל השתלת לב הטרוטופי בטני בעכבר מבוצע באמצעות תפרים על ידי אנסטומוזה של אבי העורקים התורם ועורק הריאה לאבי העורקים המקבל ולווריד הנבוב התחתון. אבי העורקים של הנמען והווריד הנבוב התחתון צריכים להיחסם בפעולה זו. לכן, איסכמיה של פלג הגוף התחתון ופקקת של הווריד הנבוב התחתון יכולים להגדיל את הנכות ואת המוות של עכברים מקבלים. כדי להפחית את הקשיים של אנסטומוזה וסקולרית במהלך ההשתלה, Matsuura et al. הציגו לראשונה מודל השתלת לב צוואר הרחם בעכברים באמצעות טכניקת השרוול בשנת 199114. במודל זה, האנסטומוזה דמוית שרוול יתר של כלי דם על ידי קשירה עם שרוול הגבירה את יעילות האנסטומוזה. בניגוד לאנסטומוזה של כלי דם עם תפרים במודל עכבר השתלת לב בטן, היא הפחיתה את ההסתברות לדימום לאחר ההליך. לכן, שיפור יעילות האנסטומוזה הפחית את זמן האיסכמיה של שריר הלב והגדיל את שיעור ההישרדות של שתלי לב. בנוסף, השתלת צוואר הרחם של לב התורם אינה קוטעת את זרימת אבי העורקים המקבל ואת הווריד הנבוב התחתון בהשוואה להשתלת בטן15; לכן, הישרדותם של עכברים מושתלים גדלה.
כאן מתואר מודל השתלת לב ניסיוני הטרוטופי ייחודי של עכברים, שהוקם על ידי רופרט אוברהובר ואחרים. ההליך כולל אנסטומוזה צווארית מקצה לקצה של אבי העורקים ועורק הריאה התורם לעורק התרדמה המקבל ולווריד הצווארי, בעקבות טכניקת שרוול שונה. במודל זה, זרימת הדם המערכתית של העכברים המקבלים אינה מפריעהל-10, וליבו של התורם נוקב מהווריד הנבוב ואבי העורקים הנחותים עם תמיסות הפרין ו-HTK להגנה טובה יותר על שריר הלב. עם זאת, המרכיב הקריטי של מודל זה היה שונה מזה של Oberhuber et al.10, אשר השתמשו בשרוול דוקרני שונה עם קצה משופע וחריצים דומים לזה של Finsterer et al.16. קצה השיפוע מאפשר אוורט דמוי שרוול של לומן כלי הדם. החריצים על פני השטח מאפשרים קיבוע של דפנות כלי דם חתוכים באמצעות שרוול באמצעות תפרים, והמוט שמחוץ לשרוול מפחית את ההחלקה של דפנות כלי הדם האנסטומוזיים מהשרוול (איור 1). שינויים אלו מקצרים את זמן הניתוח ב-20% ומשפרים את יעילות ההשתלה והשרידות של השתלות הלב. יתר על כן, השרוול הדוקרני המותאם מופק מצנתר הפוליאוריתן הנפוץ ביותר המשמש לדיקור בקרקפת, ובכך מוזיל משמעותית את עלות ההליך. השוואה של הטכניקה הנוכחית עם זו של Oberhuber et al.10 מוצגת בטבלה 1.
יש לציין את התכונות הייחודיות של מודל זה. ראשית, אורכו ואיכותו של השרוול חיוניים לאנסטומוזה מוצלחת. האורך המתאים של השרוול היה ~3 מ"מ עם ידית (1 מ"מ) (איור 1). הקליבר המתאים של השרוול הוא 26 G ו 22 G עבור עורק וורידים, בהתאמה. האורך והקליבר הלא מתאימים של השרוול יגרמו לפיתול או מתח מוגזם של כלי הדם האנסטומוזיים. שנית, אורכי הכלים המתאימים של המקבל הם 1.5 עד 2 קפלים של השרוול. שלישית, ליבו של התורם אינו מחורר בלחץ מוגזם, מה שעלול לפגוע בשתל. רביעית, השתל הלבבי קבוע, והשרוול עובר אנסטומוזות בתנוחה מתאימה על ידי תפירה לאחר ההשתלה כדי למנוע תזוזה או פיתול של כלי דם או שתלים אנסטומוזיים. חמישית, שימור הבלוטה התת-מקסילרית והסטרנוקלידומסטואיד תורם להפחתת סיבוב או פיתול של כלי הדם האנסטומוזיים או השתל בעת כריתת הבלוטה התת-לשונית הימנית כדי לייצר פוסה להשתלת לב. שישית, כדי להקל על אוורט דמוי שרוול יתר של לומנאנד כלי הדם להפחית פקקת לאחר הניתוח, תמיסת הפרין (100 IU / מ"ל) ניתן לספק כלי הדם anastomosed בעת ביצוע anastomosis.
טכניקת שרוול זו מקלה על האנסטומוזה של כלי הדם של התורם והמקבל במהלך ההשתלה; עם זאת, קשיות השרוול עשויה, בתורו, להגדיל את הסיכון לסובב את כלי הדם anastomosed, וכתוצאה מכך עלייה פקקת לאחר ההשתלה. אופטימיזציה של חומר השרוול נדרשת כדי להפחית סיבוכים, להגדיל את הישרדות השתל ולהגדיל את שיעור ניצול המודלים בניסויים הבאים. יתר על כן, הצלקת הסיבית של החתך עלולה להגביל את שטח השתל הלבבי ולהשפיע על הישרדותו לטווח ארוך. בנוסף, פליטה של שתל הלב עלולה להפריע לזרימת הדם ההמודינמית הרגילה של העכברים המושתלים. לבסוף, מודל זה אינו פונקציונלי ולא ניתן להשתמש בו כדי להעריך את תפקוד הלב של שתלים. עם זאת, מחקר זה מספק ידע לגבי התפקודים האימונולוגיים והפתולוגיים של השתלת לב.
למחברים אין מה לחשוף.
עבודה זו נתמכה על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (81870304) לג'ון לי.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
5-0 Polyamide Monofilament suture | B.Braun Medical Inc. | C3090954 | |
8-0 Polyamide Monofilament suture | B.Braun Medical Inc. | C2090880 | |
10-0 Polyamide Monofilament suture | B.Braun Medical Inc. | G0090781 | |
22 G polyurethane cuff | B.Braun Medical Inc. | 4251628-02 | |
26 G polyurethane cuff | Suzhou Linhua Medical Instrument Co., LTD | REF383713 | |
Anesthesia induction chamber | RWD Life Science Co., LTD | V100 | |
Atraumatic microvascular clamp | Beyotime | FS500 | |
BALB/c and C57BL/6 mice (20–30 g) | Centre of Experimental Animals (Army Medical University, Chongqing, China) | ||
Buprenorphine | US Biological life Sciences | 352004 | |
Electrocoagulator | Guangzhou Runman Medical Instrument Co., LTD | ZJ1099 | |
Gauze | Henan piaoan group Co., LTD | 10210402 | |
Heating pad | Guangzhou Dewei Biological Technology Co., LTD | DK0032 | |
Heparin | North China Pharmaceutical Co., LTD | 2101131-2 | |
HTK solution | Shenzhen Changyi Pharmaceutical Co., LTD | YZB/Min8263-2013 | |
Injection syringe (10 mL) | Shandong weigao group medical polymer Co., LTD | 20211001 | |
Isoflurane | RWD Life Science Co., LTD | 21070201 | |
Physiological saline | Southwest pharmaceutical Co., LTD | H50021610 | |
Scalp needle | Hongyu Medical Group | 20183150210 | |
Shaver | Beyotime | FS600 | |
Small animal anesthesia machine | RWD Life Science Co., LTD | R500 | |
Surgical operation microscope | Tiannuoxiang Scientific Instrument Co. , Ltd, Beijing, China | SZX-6745 | |
Swab | Yubei Medical Materials Co., LTD | 21080274 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved