Method Article
Wir fassen einen Workflow zusammen, um das Verhalten eines Netzhautneurons als Reaktion auf elektrische Stimulation rechnerisch zu modellieren. Das Berechnungsmodell ist vielseitig und umfasst Automatisierungsschritte, die nützlich sind, um eine Reihe von physiologischen Szenarien zu simulieren und die Ergebnisse zukünftiger In-vivo/In-vitro-Studien zu antizipieren.
Die computergestützte Modellierung ist aufgrund ihrer Fähigkeit, das Verhalten von In-vivo- und In-vitro-Systemen vorherzusagen, zu einer immer wichtigeren Methode im neuronalen Engineering geworden. Dies hat den entscheidenden Vorteil, dass die Anzahl der in einer bestimmten Studie benötigten Tiere minimiert wird, indem eine oft sehr genaue Vorhersage physiologischer Ergebnisse ermöglicht wird. Auf dem Gebiet der visuellen Prothese hat die computergestützte Modellierung eine Reihe praktischer Anwendungen, einschließlich der Information über das Design eines implantierbaren Elektrodenarrays und die Vorhersage visueller Wahrnehmungen, die durch die Abgabe elektrischer Impulse von diesem Array ausgelöst werden können. Einige in der Literatur beschriebene Modelle kombinieren eine dreidimensionale (3D) Morphologie zur Berechnung des elektrischen Feldes und ein Kabelmodell des interessierenden Neurons oder neuronalen Netzwerks. Um die Zugänglichkeit dieser zweistufigen Methode für Forscher zu erhöhen, die möglicherweise nur begrenzte Erfahrung mit der computergestützten Modellierung haben, stellen wir ein Video der grundlegenden Ansätze zur Verfügung, die zur Konstruktion eines Computermodells zu ergreifen sind, und verwenden es zur Vorhersage der physiologischen und psychophysischen Ergebnisse von Stimulationsprotokollen, die über eine visuelle Prothese. Der Leitfaden umfasst die Schritte zum Erstellen eines 3D-Modells in einer Finite-Elemente-Modellierungssoftware (FEM), die Konstruktion eines retinalen Ganglienzellmodells in einer multikompartimentären Neuronen-Computersoftware, gefolgt von der Verschmelzung der beiden. Eine Finite-Elemente-Modellierungssoftware zur numerischen Lösung physikalischer Gleichungen würde verwendet werden, um die elektrische Feldverteilung in den elektrischen Stimulationen von Gewebe zu lösen. Dann wurde eine spezielle Software verwendet, um die elektrischen Aktivitäten einer neuronalen Zelle oder eines Netzwerks zu simulieren. Um diesem Tutorial zu folgen, wäre die Vertrautheit mit dem Funktionsprinzip einer Neuroprothese sowie neurophysiologischen Konzepten (z. B. Aktionspotentialmechanismus und Verständnis des Hodgkin-Huxley-Modells) erforderlich.
Visuelle Neuroprothesen sind eine Gruppe von Geräten, die Stimulationen (elektrisch, Licht usw.) an die Nervenzellen auf dem Sehweg abgeben, um Phosphene oder das Gefühl des Sehens des Lichts zu erzeugen. Es ist eine Behandlungsstrategie, die seit fast einem Jahrzehnt für Menschen mit dauerhafter Erblindung durch degenerative Netzhauterkrankungen klinisch eingesetzt wird. Typischerweise würde ein komplettes System eine externe Kamera umfassen, die die visuellen Informationen um den Benutzer herum erfasst, ein Netzteil und eine Recheneinheit, um das Bild zu verarbeiten und in eine Reihe von elektrischen Impulsen zu übersetzen, und ein implantiertes Elektrodenarray, das das neuronale Gewebe verbindet und die elektrischen Impulse an die Nervenzellen liefert. Das Funktionsprinzip ermöglicht es, eine visuelle Neuroprothese an verschiedenen Stellen entlang des Sehwegs von der Netzhaut zum visuellen Kortex zu platzieren, solange sie dem geschädigten Gewebe nachgeschaltet ist. Ein Großteil der aktuellen Forschung im Bereich visueller Neuroprothesen konzentriert sich auf die Erhöhung der Wirksamkeit der Stimulation und die Verbesserung der räumlichen Sehschärfe, um ein natürlicheres Sehen zu ermöglichen.
Bei den Bemühungen, die Wirksamkeit der Stimulation zu verbessern, war die computergestützte Modellierung eine kostengünstige und zeiteffiziente Methode, um ein Prothesendesign zu validieren und sein visuelles Ergebnis zu simulieren. Computergestützte Modellierung in diesem Bereich gewann seit 1999 an Popularität, als Greenberg1 die Reaktion einer retinalen Ganglienzelle auf extrazelluläre elektrische Reize modellierte. Seitdem wird die computergestützte Modellierung verwendet, um die Parameter des elektrischen Impulses2,3 oder das geometrische Design der Elektrode 4,5 zu optimieren. Trotz der unterschiedlichen Komplexität und der Forschungsfragen arbeiten diese Modelle, indem sie die elektrische Spannungsverteilung im Medium (z. B. Nervengewebe) bestimmen und die elektrische Reaktion abschätzen, die die Neuronen in der Nähe aufgrund der elektrischen Spannung erzeugen.
Die elektrische Spannungsverteilung in einem Leiter kann durch Lösen der Poisson-Gleichungen6 an allen Stellen ermittelt werden:
wobei E das elektrische Feld, V das elektrische Potential, J die Stromdichte und σ die elektrische Leitfähigkeit ist. Die in der Gleichung gibt einen Gradientenoperator an. Bei stationärem Strom werden dem Modell folgende Randbedingungen auferlegt:
wobei n die Senkrechte zur Fläche ist, Ω die Grenze darstellt und I0 den spezifischen Strom darstellt. Zusammen erzeugen sie eine elektrische Isolierung an den Außengrenzen und erzeugen eine Stromquelle für eine ausgewählte Grenze. Wenn wir eine monopolare Punktquelle in einem homogenen Medium mit isotroper Leitfähigkeit annehmen, kann das extrazelluläre elektrische Potential an einem beliebigen Ort durch7 berechnet werden:
wobei Ie der Strom und der Abstand zwischen der Elektrode und dem Messpunkt ist. Wenn das Medium inhomogen oder anisotrop ist oder das Elektrodenarray mehrere Elektroden aufweist, kann eine Berechnungssuite zur numerischen Lösung der Gleichungen praktisch sein. Eine Finite-Elemente-Modellierungssoftware6 zerlegt den Volumenleiter in kleine Abschnitte, die als "Elemente" bezeichnet werden. Die Elemente sind miteinander verbunden, so dass die Auswirkungen der Veränderung in einem Element die Veränderung in anderen beeinflussen, und es löst die physikalischen Gleichungen, die zur Beschreibung dieser Elemente dienen. Mit der steigenden Rechengeschwindigkeit moderner Computer kann dieser Prozess innerhalb von Sekunden abgeschlossen werden. Sobald das elektrische Potential berechnet ist, kann man die elektrische Reaktion des Neurons abschätzen.
Ein Neuron sendet und empfängt Informationen in Form von elektrischen Signalen. Solche Signale gibt es in zwei Formen - abgestufte Potentiale und Aktionspotentiale. Abstufte Potentiale sind vorübergehende Änderungen des Membranpotentials, wobei die Spannung über der Membran positiver (Depolarisation) oder negativer (Hyperpolarisation) wird. Abgestufte Potenziale haben typischerweise lokalisierte Effekte. In Zellen, die sie produzieren, sind Aktionspotentiale Alles-oder-Nichts-Reaktionen, die lange Strecken entlang der Länge eines Axons zurücklegen können. Sowohl abgestufte als auch Aktionspotentiale sind empfindlich gegenüber der elektrischen und chemischen Umgebung. Eine Aktionspotentialspitze kann von verschiedenen neuronalen Zelltypen, einschließlich der retinalen Ganglienzellen, erzeugt werden, wenn ein Schwellentransmembranpotential überschritten wird. Das Aktionspotential Spiking und die Ausbreitung lösen dann die synaptische Übertragung von Signalen an nachgeschaltete Neuronen aus. Ein Neuron kann als Kabel modelliert werden, das in zylindrische Segmente unterteilt ist, wobei jedes Segment aufgrund der Lipiddoppelschichtmembran8 Kapazität und Widerstand aufweist. Ein Neuronen-Rechenprogramm9 kann die elektrische Aktivität einer elektrisch erregbaren Zelle abschätzen, indem es die Zelle in mehrere Kompartimente diskretisiert und das mathematische Modell10 löst:
In dieser Gleichung ist Cmdie Membrankapazität, V e,n ist das extrazelluläre Potential am Knoten n, Vi,n das intrazelluläre Potential am Knoten n, R n der intrazelluläre (longitudinale) Widerstand am Knoten n und I-Ion ist der Ionenstrom, der durch die Ionenkanäle am Knoten nfließt. Die Werte von V aus dem FEM-Modell werden als Ve,n für alle Knoten im Neuron implementiert, wenn die Stimulation aktiv ist.
Die Transmembranströme aus Ionenkanälen können unter Verwendung der Hodgkin-Huxley-Formulierungen11 modelliert werden:
wobei g i die spezifische Leitfähigkeit des Kanals, V m das Transmembranpotential (V i,n - Ve,n) und E Ion das Umkehrpotential des Ionenkanals ist. Für spannungsabhängige Kanäle wie Na-Kanal werden dimensionslose Parameter m und h eingeführt, die die Wahrscheinlichkeit des Öffnens oder Schließens der Kanäle beschreiben:
wobei die maximale Membranleitfähigkeit für den jeweiligen Ionenkanal ist und die Werte der Parameter m und h durch Differentialgleichungen definiert sind:
wobei α x und βx spannungsabhängige Funktionen sind, die die Ratenkonstanten des Ionenkanals definieren. Sie haben im Allgemeinen die Form:
Die Werte der Parameter in diesen Gleichungen, einschließlich der maximalen Leitfähigkeit, sowie die Konstanten A, B, C und D, wurden typischerweise aus empirischen Messungen gefunden.
Mit diesen Bausteinen können Modelle unterschiedlicher Komplexität erstellt werden, indem die beschriebenen Schritte ausgeführt werden. Eine FEM-Software ist nützlich, wenn die Poisson-Gleichung nicht analytisch gelöst werden kann, z. B. bei inhomogener oder anisotroper Leitfähigkeit im Volumenleiter oder wenn die Geometrie des Elektrodenarrays komplex ist. Nachdem die extrazellulären Potentialwerte gelöst wurden, kann das Neuronenkabelmodell in der Neuronen-Rechensoftware numerisch gelöst werden. Die Kombination der beiden Software ermöglicht die Berechnung einer komplexen Neuronenzelle oder eines Netzwerks zu einem ungleichmäßigen elektrischen Feld.
Ein einfaches zweistufiges Modell einer retinalen Ganglienzelle unter suprachoroidaler Stimulation wird mit den oben genannten Programmen erstellt. In dieser Studie wird die retinale Ganglienzelle einer Reihe von Größenordnungen elektrischer Stromimpulse ausgesetzt. Die Position der Zelle relativ zum Reiz wird ebenfalls variiert, um die Distanz-Schwellen-Beziehung zu zeigen. Darüber hinaus umfasst die Studie eine Validierung des Berechnungsergebnisses gegen eine In-vivo-Studie der kortikalen Aktivierungsschwelle unter Verwendung unterschiedlicher Größen der Stimulationselektrode12 sowie eine In-vitro-Studie, die die Beziehung zwischen dem Elektroden-Neuron-Abstand und der Aktivierungsschwelle 13 zeigt.
1. Aufbau des Finite-Elemente-Modells für elektrische Potentialberechnungen
Abbildung 1: Erstellen der Tisssue-Geometrie. Zur Darstellung des Gewebes wurde eine Blockgeometrie in das FEM-Modell eingefügt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Abbildung 2: Erstellen der Elektrodengeometrie . (A) Erstellen einer Arbeitsebene zum Zeichnen der Scheibenelektrode. (B) Skizzieren eines Kreises auf einer Arbeitsebene, um eine Scheibenelektrode zu erzeugen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Abbildung 3: Das Elementqualitätshistogramm des FEM-Modells. Das Histogramm zeigte die Qualität der Elemente im gesamten Modell. Netzverfeinerungen sind erforderlich, wenn sich ein erheblicher Teil der Elemente im minderwertigen Bereich befindet. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Abbildung 4: Zuweisen eines Stromwerts zur Elektrode. Ein einheitlicher Strom, der in der FEM-Software an die Geometrie der Elektrode angelegt wird. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
2. Importieren der Geometrie der neuronalen Zelle in die GUI der Neuron-Rechensuite
Abbildung 5: Exportieren der Neuronenmodellinformationen als .hoc-Datei. Die Geometrie des Neurons wurde in eine .hoc-Datei exportiert, um weitere Änderungen zu ermöglichen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Abbildung 6: Messung der Dimension des Neurons. Die Morphologie des Neurons (Draufsicht) wurde in der GUI der Neuronen-Rechensuite mit überlagerten x-y-Achsen angezeigt. Die Skala war in μm. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
3. Programmierung der NEURON-Rechensimulation
4. Ausführen und Automatisieren mehrerer Simulationen
Abbildung 7: Anzeige und Export der FEM-Berechnungsergebnisse in eine Textdatei. Das Grafikfenster mit einem Multislice-Diagramm des elektrischen Potentials in V. Die Optionen in der Datenexporteinstellung ermöglichten den Export der berechneten Variablen in eine Textdatei. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Abbildung 8: Darstellung des Diagramms des Transmembranpotentials unter Verwendung eines Spannungsgraphen. Das Neuronen-Transmembranpotential wurde in der GUI der Neuronen-Rechensuite angezeigt. Die x-Achse ist die Zeit in ms, während die y-Achse das Transmembranpotential des gewählten Neuronensegments in mV ist. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Wir führten zwei Simulationsprotokolle durch, um die Verwendung des Modells zu demonstrieren. Das erste Protokoll beinhaltete die Variation der Elektrodengröße, während die Position des Neurons und die elektrischen Pulsparameter gleich blieben. Das zweite Protokoll bestand darin, das Neuron in 100-μm-Schritten in x-Richtung zu verschieben, während die Größe der Elektrode konstant blieb. Für beide Protokolle war der verwendete Impuls ein einzelner kathodischer biphasischer Impuls von 0,25 ms Breite mit einem Interphasenspalt von 0,05 ms. Für das erste Protokoll wurde der Radius der Elektrode auf 50, 150, 350 und 500 μm variiert, während für das zweite Protokoll der Radius der Elektrode konstant bei 50 μm gehalten wurde.
Das hier beschriebene Modell zeigte, dass eine Erhöhung der suprachoroidalen Elektrodengröße bei 0,25 ms Pulsbreite die Aktivierungsschwelle des Modellneurons erhöhte (Abbildung 9A). Dieses Ergebnis spiegelte die in vivo Ergebnisse von Liang et al.12 wider, die zeigten, dass die kortikale Aktivierungsschwelle mit zunehmender Elektrodengröße bei dieser Pulsbreite zunimmt.
Die Größenordnungen der Aktivierungsschwellen des Modells weichen aufgrund mehrerer Faktoren von den empirischen Befunden ab. Erstens umfasst dieses Modell nur einen einzigen RGC eines bestimmten Typs, der möglicherweise nicht in der Gruppe von Zellen vorhanden ist, die in der In-vivo-Studie aktiviert werden. Als nächstes enthielt dieses Modell kein Netzhautnetzwerk, das die Aktivierung von RGCs durch exzitatorische Inputs von den bipolaren Zellen erleichtern könnte. Ein weiterer möglicher Grund für die Diskrepanz ist der Elektroden-Netzhaut-Abstand. Es ist möglich, dass der Elektroden-Netzhaut-Abstand in der In-vivo-Studie aufgrund anatomischer Variabilität oder der Operation geringer war als in diesem Modell. Folglich haben wir den Elektroden-Netzhaut-Abstand und damit die Aktivierungsschwelle überschätzt. Es ist auch wichtig zu beachten, dass, obwohl dies in unseren Ergebnissen nicht nachgewiesen wurde, die Modellierung einer Einzelzellschwelle die in vivo kortikale Schwelle oft unterschätzen würde. Dies liegt an den technischen Einschränkungen kortikaler Messungen (vor allem in Bezug auf das Signal-Rausch-Verhältnis), dass die kortikale Aktivität typischerweise erst nach Aktivierung mehrerer retinaler Ganglienzellen nachgewiesen wird. Infolgedessen ist eine Diskrepanz in der Größenordnung der retinalen und kortikalen Aktivierungsschwellen zu erwarten. Trotz dieser Unterschiede zeigte dieses Modell erfolgreich den steigenden Trend der Aktivierungsschwelle aufgrund der Zunahme der Elektrodengröße. Dies resultierte aus dem Fehlen eines Bereichs mit hohem elektrischem Feld im Vergleich zu seiner Umgebung, wenn die Elektrodengröße erhöht wird, was die neuronale Aktivierung nicht begünstigte22.
Als nächstes beobachteten wir die Aktionspotentialmerkmale, um das hier beschriebene Modell zu validieren. Die Latenz oder die Zeit zwischen dem Beginn des Stimulus und dem Höhepunkt der Aktionspotentialspitze lag zwischen 1 und 2,2 ms (Abbildung 9B). Dies entsprach der kurzen Latenzspitze aufgrund der nicht netzwerkvermittelten Netzhautaktivierung23. Die Spike-Breite dieses Modells betrug 1 ms und liegt damit im gleichen Bereich wie die Spike-Breiten von Kaninchen-RGCs, die in vitro24 gemessen wurden.
Im zweiten Stimulationsprotokoll wurde nur die Position des Neurons in der x-Achse (entlang der Länge des Axons) relativ zur Elektrode variiert. In einem Abstand von 0 befand sich der Schwerpunkt des Soma-Abschnitts unmittelbar über dem Zentrum der Scheibenelektrode. Negativer Abstand bedeutet, dass die Scheibenelektrode näher an der axonalen Seite positioniert wurde, während positiver Abstand bedeutet, dass die Scheibenelektrode näher an der dendritischen Seite positioniert wurde. Das Modell zeigte, dass die niedrigste Schwelle erreicht wurde, wenn sich das schmale Segment des Axons unmittelbar über der Scheibenelektrode befand, und sie nahm zu, wenn der x-Abstand größer wurde (Abbildung 9C). Das Bewegen der Elektrode weiter in Richtung des distalen Axons erzeugte eine niedrigere Schwelle im Vergleich zum Bewegen der Elektrode in Richtung der Dendriten aufgrund des Vorhandenseins des Axon-Anfangssegments und des schmalen Segments, in dem die Natriumkanäle häufiger vorkommen. Dieses Ergebnis stimmte mit dem In-vitro-Befund von Jensen et al.13 überein, bei dem Kaninchen-RGCs mit einer ultrafeinen Mikroelektrode stimuliert wurden und die Aktivierungsschwelle am höchsten war, wenn die Elektrode näher an die Dendriten verschoben wurde.
Abbildung 9: Die Ergebnisse der Modellierungsmethode . (A) Die Aktivierungsschwellen für eine retinale Ganglienzelle oberhalb der Scheibenelektrode. Der Elektrodenradius wurde variiert (50, 150, 350 und 500 μm) und die Schwelle mit zunehmender Elektrodengröße erhöht. (B) Die Aktionspotentialform des Neuronenmodells bei 0,25 ms Pulsbreite. Die Aktionspotentiale am Schwellenwert für verschiedene Elektrodengrößen haben die gleiche Spikebreite von 1 ms, aber die Latenz nahm mit zunehmender Elektrodengröße zu. Die Stimulus-Anfangszeit betrug 1 ms und die kathodische Phase verursachte eine Depolarisation an der Membran, aber nicht genug, um ein Aktionspotential zu verursachen. (C) Das Neuron wurde entlang der x-Achse verschoben und die Aktivierungsschwellen zeigten, dass die niedrigste Schwelle von dem Neuron erreicht wurde, dessen Soma sich direkt über der Mitte der Elektrode befand. Der Radius der Elektrode betrug 50 μm. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Ergänzende Abbildung 1: Initialisierung des Finite-Elemente-Modells. Die Arten von Studium und Physik bestimmen die Liste der im Modell gelösten Gleichungen. Diese wurden bei der erstmaligen Erstellung der FEM-Modelldatei festgelegt, können aber auch nach der Erstellung des Modells geändert/hinzugefügt werden. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 2: Ändern der Längeneinheit. Die Längeneinheit und die Winkeleinheit bestimmen die Einheiten, die im Geometriedefinitionsprozess verwendet werden. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 3: Einfügen einer Materialeigenschaft. Die Materialeigenschaften wurden für jede Domäne in einem 3D-Modell definiert. Die verfügbaren Materialeigenschaften wurden im Fenster Materialeinstellung unter Materialeigenschaften aufgelistet. Für die Berechnung des elektrischen Potentials wurde nur die Eigenschaft Elektrische Leitfähigkeit definiert. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 4: Erstellen einer parametrischen Studie zum Durchlaufen einer Liste von Parameterwerten. Eine parametrische Studie ermöglichte es der FEM-Software, die Berechnungen automatisch zu wiederholen und den Elektrodenradiuswert für jede Wiederholung zu ändern. Die Berechnungsergebnisse wurden für jede Wiederholung gespeichert. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 5: Importieren der Neuronenmorphologie aus der SWC-Datei. Die Neuronen-Rechensuite war in der Lage, SWC-Dateien zu lesen, die aus der neuronalen Verfolgung gewonnen wurden. Die importierte Datei enthält Informationen über die Morphologie und Topologie jedes Neuronensegments. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 6: Automatisierung von FEM-Operationen durch Definition einer Methode. Eine Methode wurde definiert, indem ein Skript geschrieben wurde, um Prozesse in der FEM-Software zu automatisieren, die durch die Definition einer parametrischen Studie nicht möglich sind. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Abbildung 7: Integration der Modelle und Automatisierung der Simulationen mit einer Allzweck-Programmiersprache. Die allgemeine Programmiersprache wurde verwendet, um die Neuronensimulationen zu schleifen, während die extrazelluläre Spannungsdatei als Eingang und die neuronale Antwortspannungsdatei als Ausgabe für jeden Schritt in der Schleife geändert wurden. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzendes Material: Kommandozeilen für (1) Definition eines spannungsabhängigen Cat-Kanals. (2) Spannungs- und konzentrationsabhängige Ionenkanäle. (3) Vervollständigen Sie die .mod-Datei. (4) Erzeugung eines biphasischen Pulses in der Neuronensimulation. (5) Berechnung der Koordinate jedes Knotens. (6) Anwendung des biphasischen Pulses. (7) Ausführen der Neuronensimulation. (8) Schleife über einen Bereich von Stromamplituden. (9) Definition einer Methode zur Automatisierung von FEM-Simulationen. (10) Ausführung der Simulationen in einer allgemeinen Programmiersprache. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
In diesem Artikel haben wir einen Modellierungsworkflow demonstriert, der Finite-Elemente- und biophysikalische Neuronenmodellierung kombiniert. Das Modell ist sehr flexibel, da es in seiner Komplexität an verschiedene Zwecke angepasst werden kann und eine Möglichkeit bietet, die Ergebnisse anhand empirischer Befunde zu validieren. Wir haben auch gezeigt, wie wir das Modell parametrisiert haben, um eine Automatisierung zu ermöglichen.
Die zweistufige Modellierungsmethode kombiniert die Vorteile der Verwendung von FEM und Neuronen-Rechensuite, um die Kabelgleichung des Neurons in Gegenwart einer extrazellulären Stimulation zu lösen. Ein FEM ist nützlich, um das extrazelluläre Feld über den Volumenleiter genau zu berechnen, was im Falle einer komplexen Geometrie oder Inhomogenität der Leitfähigkeit oft nicht analytisch zu lösen ist. Der Rechenaufwand dieses Modells ist ebenfalls relativ gering, da von einem statischen Zustand ausgegangen wird.
Während die beschriebene Modellierungsmethode in ihrer Benutzerfreundlichkeit und Flexibilität vorteilhaft ist, gibt es Einschränkungen für diesen Modellierungsworkflow. Erstens erlaubte diese Methode nicht das Vorhandensein einer neuronalen Membran bei der Berechnung des elektrischen Feldes. Joucla et al.25 verglichen die zweistufige Methode mit der gesamten FEM-Methode, bei der die neuronale Geometrie und die Membraneigenschaften in das FEM-Modell einbezogen wurden. Sie zeigten, dass die Einbeziehung des Neurons in die elektrische Feldberechnung die Transmembranpotentialberechnung verändern würde, wenn eine größere Zellstruktur, wie ein Zellkörper, in die Geometrie einbezogen würde. Insbesondere bedeutet die Vereinfachung der Neuronengeometrie in der zweistufigen Methode, dass das Transmembranpotential eines beliebigen Punktes in einem Kompartiment durch das Transmembranpotential am Knoten oder Mittelpunkt des Kompartiments dargestellt wird. Im Gegensatz dazu enthielt das von Joucla vorgeschlagene Whole-FEM-Modell eine explizite Darstellung der 3D-Geometrie des Neurons, die die individuelle Bewertung des Transmembranpotentials an jedem Punkt innerhalb des Kompartiments ermöglichte. Daher könnte das gesamte FEM-Modell besser geeignet sein, wenn die genaue Form und Position des Transmembranpotentials benötigt wird. Diese Methode ist jedoch rechenintensiver als die zweistufige Methode.
Die zweite Einschränkung der Modellierungsmethode betrifft die Verfügbarkeit von Morphologie- und Ionskinetikdaten. Das hier verwendete Modell basierte auf den Tigersalamanderdaten, die zur Modellierung von RGCs von anderen Arten verwendet wurden, aber es könnte Unterschiede in den vorhandenen Arten von Ionenkanälen gegeben haben, die nicht aufgeklärt wurden. Daher kann es in einigen Fällen notwendig sein, In-vitro-Arbeiten durchzuführen, um die Ionenkanalparameter anzupassen.
Drittens könnten die Kosten der FEM-Software eine Einschränkung darstellen. In diesem Fall könnte ein Open-Source-FEM-Programm26 mit einem eingebauten Poisson-Gleichungslöser eine Alternative sein. Abgesehen von der verwendeten FEM-Software ist die in diesem Workflow verwendete Software kostenlos. Während die verwendete FEM-Software eine intuitive GUI und eine gebrauchsfertige elektrische Strommodellierung bietet, ist es möglich, die extrazellulären Wertberechnungen in einer Allzweck-Programmiersoftware durchzuführen. Dies würde jedoch eine manuelle Definition der physikalischen Gleichungen und der numerischen Methoden zur Lösung der Gleichungen27 erfordern. Darüber hinaus kann diese Methode mühsam sein, wenn eine komplexe Gewebe- oder Elektrodenarray-Geometrie verwendet werden soll.
Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.
Diese Forschung wird durch den National Health and Medical Research Council Project Grant (Grant Number 1109056) finanziert.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Computer workstation | N/A | N/A | Windows 64-bit operating system, at least 4GB of RAM, at least 3 GB of disk space |
Anaconda Python | Anaconda Inc. | Version 3.9 | The open source Individual Edition containing Python 3.9 and preinstalled packages to perform data manipulation, as well as Spyder Integrated Development Environment. It could be used to control the simulation, as well as to display and analyse the simulation data. |
COMSOL Multiphysics | COMSOL | Version 5.6 | The simulation suite to perform finite element modelling. The licence for the AC/DC module should be purchased. The Application Builder capability should be included in the licence to follow the automation tutorial. |
NEURON | NEURON | Version 8.0 | A freely-distributed software to perform the computation of neuronal cells and/or neural networks. |
Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden
Genehmigung beantragenThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten