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我们已经制定了一个在体外疟疾，HIV-1病毒共感染模型研究的影响恶性疟原虫在人类原发性单核细胞源性巨噬细胞的HIV-1病毒复制周期。这种多用途的系统可以很容易地适应其他主要易感HIV-1感染的细胞类型。

致命的形式，疟疾的病原体疟原虫 ，人类免疫缺陷病毒类型1（HIV-1）是全球最重要的健康问题，负责一共有4万人死亡，每年^1。由于其广泛的重叠，在发展中地区，特别是撒哈拉以南非洲，疟疾和HIV-1病毒的感染是常见的，但是这两种疾病之间的相互作用是了解甚少。流行病学报告表明，疟疾感染瞬时增强HIV-1复制和增加HIV-1病毒共同感染者的负荷^2,3。因为这种病毒血症保持高抗疟药物治疗后的几个星期，这种现象可能有疾病的进展和传输的影响。

这些意见背后的细胞免疫机制的研究已经只有很少。 在体外研究investig包括生成疟疾，HIV-1的影响已经表明，接触可溶性疟疾抗原可以增加HIV-1感染和免疫细胞的激活。然而，这些研究使用全细胞提取物， 体育恶性疟原虫裂殖阶段寄生虫和外周血单个核细胞（PBMC）中，难以破译，疟疾组件（S）是负责观察到的效果和目标主机的细胞^4,5。最近的工作表明，不成熟的单核细胞来源的树突状细胞的疟原虫色素hemozoin曝光，增加了他们的能力转移HIV-1的CD4 + T细胞^6,7，但它降低HIV-1感染的巨噬细胞^8。为了阐明这个复杂的过程，疟疾寄生虫和HIV-1在不同的有关人权的主要细胞群之间的相互作用的系统的分析，是迫切需要的。

调查的H影响的几个技巧IV-1对微生物的吞噬功能，这些病原体对HIV-1复制的影响已被描述。在这里，我们提出了一种方法，探讨体育的影响恶性疟原虫感染的红细胞，在人类原发性单核细胞源性巨噬细胞中HIV-1病毒的复制。监测使用单周期在荧光素酶报告基因取代env基因的假型病毒，而病毒感染的巨噬细胞释放的数量上的影响是通过测量确定寄生虫暴露在HIV-1的转录/翻译活动的影响HIV-1衣壳蛋白P24在细胞培养上清用ELISA法。

注：与HIV-1和恶性疟原虫的实验必须在适当的生物安全水平实验室（BSL2寄生虫，BSL3 HIV-1和共同感染），可能受感染的人体血液中使用时，必须采取特殊的预防措施。

1。外周血单个核细胞（PBMC）的分离纯化（基于^8日和^9）

1. 开始从新鲜的人体血液与抗凝剂（肝素，柠檬酸，柠檬酸盐葡萄糖或柠檬酸磷酸葡萄糖）治疗的健康献血者（500毫升）。净化和整个协议的其余部分隔离PBMC和使用无内毒素的试剂。
2. 用70％乙醇消毒，包括管，血袋，切管，小心地转移到T150大掌柜瓶血。
3. 准备15毫升淋巴细胞分离介质，每50毫升锥形管（确保Ficoll分离已经达到室温）（Ficoll分离）16管。仔细层顶部的新鲜血液30毫升。
4. 离心30分钟在400 XG在20°Ç折断。
5. 在离心，准备8×50 ml锥形管，室温汉克的平衡盐溶液（HBSS中）每管25毫升。
6. 仔细接口多云细胞环（包含PBMC），转移至50毫升的试管中的HBSS（池2每管细胞环）。完成量上升至50 ml HBSS中。
7. 离心15分钟，在150 XG在20°Ç上休息。
8. 在阴天的细胞环离心，收集黄色上层Ficoll分离的步骤，血浆池，填补了50毫升锥形管。灭活血浆中补充50毫升管加热在56℃，30分钟旋转10分钟为1800 xĞ。保持上清（含稀释自体血浆可以作为介质在稍后的步骤的补充）。
9. 小心取出上清液和resuspenð从步骤1.7在25毫升的HBSS和池2颗粒每50毫升管细胞沉淀。在8分钟的300 XG旋转20°C
10. 小心去除上清，并在10毫升的HBSS和池在一个50毫升管的悬浮颗粒。
11. 采取等份，进行台盼蓝排斥，以评估死亡率和再算上PBMC中。
12. 完整的体积为50毫升的HBSS和自旋10分钟300×Ğ。去除上清，悬浮在5X10 ⁶细胞/ ml的细胞在RPMI 1640（应该约400-500×10 ⁶ PBMC中获得500毫升血液）。

2。单核细胞源性巨噬细胞（MDM）的分化（基于^8日和^9）

1. 种子约1.25×10 ⁸ PBMC的RPMI 1640培养液（25毫升/皿）在15厘米菜。
2. 让细胞坚持1-2小时，在37°C，5％CO ₂气氛。
3. 转让非贴壁细胞，在一个新瓶，并用15毫升内毒素免费PBS两次（5板分钟，300 XG）。贴壁细胞是孤立的单核细胞。
4. 为了让新鲜分离的单核细胞分化成的MDM，加入20毫升5％自体血浆（从1.8步）的RPMI 1640培养基。加入重组人巨噬细胞集落刺激因子（M-CSF的25毫微克/毫升）和青霉素/链霉素溶液（聚苯乙烯，100 U / mL青霉素，100μg/ mL链霉素）。孵育2天，改变培养基孵育2-3额外天在37°C，5％的CO ₂气氛。
5. 删除旧的介质，并用内毒素无PBS一次，添加的PBS轻轻立即吸。要分离的MDM充分分​​化，治疗在37°C〜7毫升Accutase（Accutase，蛋白酶和胶原溶解的活性，使细胞从塑料盘支队市售的混合）在5％CO2的细胞为15-20分钟₂的气氛，在中旬时轻轻摇动。
6. 在每盘添加3-5毫升自体血浆（从1.8步）（以帮助保护细胞刮）。
7. 轻轻刮去确保介质覆盖在任何时候，在转让50毫升管/池细胞的细胞。
8. 用大量的内毒素无PBS板恢复尽可能多的细胞。
9. 旋转200 XG 5分钟，弃上清。
10. 5毫升MDM培养基（10％灭活补胎牛血清白蛋白（iFBS），聚苯乙烯，25毫米肝素钠补充）和计数细胞（MDM的产生通常是2-8％总的PBMC）的RPMI 1640重悬沉淀。注：在这一步可能会采取的MDM等分，以评估流式细胞仪检测细胞纯度人口，通常获得99％的MDM的快递CD14的。
11. 种子1×10 ⁵的MDM MDM的文化介质在24孔板，每孔600μL。
12. 37℃孵育过夜在5％的CO ₂感染前的气氛。

3。生产和定量的HIV-1病毒的股票

1. 生产中使用磷酸钙转染HEK293T细胞follo病毒股翼福尔廷等协议^10。
2. 为了获得20微克任NL4.3 吕克 + 环境保护与单周期内含有编码荧光素酶报告基因的病毒，共同转染HEK293T细胞- R +和的pHCMV-G的10微克，或15微克NL4.3 吕克环境保护 - R +和15微克pJRFL ENV。使用30微克的NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+生成控制糖蛋白缺陷病毒。对于完全复制病毒，使用30微克的NL4.3Bal ENV。向量pHCMV-G的和pJRFL ENV编码水泡性口炎病毒包膜糖蛋白（VSV-G的）和1 CXCR5的嗜性HIV-1（比NL4.3Bal ENV不同），分别。可从⁸质粒的额外信息。质粒可通过美国国立卫生研究院艾滋病研究和参考程序（NIAID的，NIH）。
3. 所有使用病毒酶联免疫吸附股票量化的HIV-1 P24衣壳蛋白¹¹，并在使用前确认其感染的潜力。我们评估我们储存的天花病毒的传染性，通过使用TZM-BL指标细胞^12。

4。文化疟原虫的寄生虫^（13）

4.1寄生虫一般文化和维护

1. 保持体育恶性疟原虫 3D7人类红细胞1的RPMI 1640 4％血细胞比容辅以0.5％（W / V）Albumax二，25微克/毫升庆大霉素（25毫米肝素钠和25毫米碳酸氢钠₃缓冲）（血组Ø+）的无性阶段的寄生虫370μM次黄嘌呤在37°C在1％氧气/氮气中5％的二氧化碳的混合气体。
2. 原虫可以监视由薄涂片的文化，有15％姬姆萨液染色。
3. 始终保持在未受感染的红血细胞在相同条件下（uRBC）培养皿寄生虫作为控制使用。
   为了获得后期parasitES（滋养体/早期裂殖），同步的寄生虫如下：

4.2寄生虫同步

1. 在早晨，收获寄生虫文化，在300 XG旋转5分钟，弃上清。
2. 5包装的细胞量在5％（W / V）的D-山梨醇，并培育5分钟在37°C重悬浮颗粒
3. 旋转300×Ğ5分钟，丢弃30毫升的培养基上清，重悬沉淀，并在孵化器回。
4. 约8小时后，重复步骤4.2.1至4.2.3为了获得紧密同步的寄生虫。后期寄生虫（滋养体/早期裂殖），然后可以收获第二天早上进行的实验。净化前，进行姬姆萨染色，以确认生命周期阶段。

4.3 恶性疟原虫感染的红血细胞（iRBC）净化

1. 消毒用70％乙醇和p VarioMacs分离器（支架和磁铁）花边生物罩下。
2. 修复三通阀CS列的底部。
3. 切针与美天旎的特殊刀具，塑料保护和修复针活塞底部。
4. 磁铁锁入列仔细。
5. MDM培养基10毫升，用拧左边的活塞套件封闭注射器慢慢注入删除列中的所有气泡。
6. 用〜20毫升MDM培养基列。
7. 收获培养板中的红细胞，洗一次10毫升的MDM培养基（300 XG，5分钟）和红细胞颗粒悬浮在12毫升的MDM培养基。慢慢地添加到列中，并通过让悬浮流（只感染的红血细胞中含有寄生虫滋养体或裂殖阶段，将保留的磁场由于存在hemozoin晶体）。
8. 洗一次20毫升中，当它到达列顶部的白色圆盘，停止液体流动。
9. 删除列磁铁和12毫升MDM培养基在一个干净的无菌管流出iRBC。
10. 涂抹等份的恢复iRBC并进行姬姆萨染色，以确认生命周期阶段。
11. 计数恢复iRBC使用血球（隔离红细胞是100％iRBC）。
12. 颗粒细胞（300 XG，5分钟），弃上清和细胞治疗500μL新鲜AB +人血清（opsonisation第¹⁴步）。
13. 在37°C，5％的CO ₂气氛中孵育30分钟。
14. 洗一次10毫升MDM的文化媒介（300× 克 ，5分钟），所需浓度重悬iRBC。通常，10％，原虫15厘米培养皿大致给出〜0.5 1×10 ⁸紧密同步iRBC。

5。暴露于疟原虫的MDM

1. 的MDM揭露到uRBC或iRBC的，细胞必须被悬浮在MDM培养基中，以获得一个uRBC / iRBC比例：75:1的MDM。在先前准备24孔板的MDM添加适当的红细胞悬浮液的体积，以每口井。执行一式三份的所有实验。
2. 在37°C，5％的CO ₂气氛中孵育4小时的共同文化。
3. 600μL内毒素的PBS 3次洗涤细胞，添加在PBS轻轻吸立即。
4. 裂解剩下的红细胞，加入200μl无菌水冰冷的20秒和吸洗井。
5. 加入600μLMDM培养基中培养24小时，在37°C，5％的CO ₂气氛。

6。完全复制型HIV-1感染的MDM

1. 为了评估体育的影响疟原虫在MDM，对HIV-1病毒复制增加，根据图1A，10毫微克的P24 NL4.3Bal 包膜病毒在适当的井（300μL的MDM媒体）所列的计划，只添加在控制井的MDM中等。
2. 在37°C孵育2小时5％CO ₂气氛。
3. 洗细胞，内毒素的PBS 3次添加的PBS轻轻吸立即。加入600μl新鲜的MDM培养基每口井的。
4. 在37°C孵育5％的CO ₂气氛中。
5. 在3天，6，9及12后，病毒感染的开始，收获每个上清200μL，加入200μl新鲜MDM介质的其后。保持在-20℃的收获上清，用ELISA福尔廷等¹⁰后的主要HIV-1衣壳p24蛋白定量。

7。单周期病毒编码荧光素酶与感染的MDM

1. 以确定寄生虫的艾滋病毒在MDM-1基因表达的影响，添加，根据计划概述图1B，10纳克P24任NL4.3 吕克 + 环境保护 （300μL的MDM培养基） - R的+（ VSV-G的），NL4.3 luc +的环境保护- R的+（JRFL ENV）或NL4.3 吕克 +环境保护- R的+病毒在相应的井。
2. 在37°C孵育2小时，5％的CO ₂气氛。
3. 600μL内毒素的PBS 3次洗涤细胞，添加在PBS轻轻吸立即。加入600μl新鲜的MDM培养基每口井的。
4. 在37°C孵育5％的CO ₂气氛中。
5. 删除中期的72小时以下的感染，并添加200μL裂解缓冲液1X（与荧光素酶检测试剂盒提供）。让细胞在室温下溶解，轻轻摇动。贮存于-20°C
6. 解冻板和40微升裂解液转移到一个96光度计板的;添加荧光素酶底物100μL（与荧光素酶检测试剂盒提供）和测量的荧光素酶（萤火虫荧光素酶）在制造商的指示后光度计活动。

8。代表结果

用我们的共同感染模型，我们表明，exposurE的体育疟原虫到MDM的降低HIV-1感染的易感性。事实上，一个显着减少（P级<0.05; 2路方差分析，12天）中释放病毒颗粒，HIV-1上清液中的P24衣壳蛋白衡量，观察预处理与寄生虫（ 图2A）在MDM。这一观察也证实由编码荧光素酶报告基因的病毒感染的细胞。 MDM的与窝藏无论是外源性的，VSV-G或HIV-1糖蛋白的这种病毒的感染导致显着（P <0.05，学生t-检验）荧光素酶在细胞暴露在体育生产恶性疟原虫 （ 图2B）。值得注意的是，VSV-G假型病毒产生了更大的荧光素酶活性比他们JRFLenv同行，这是由于VSV-G的¹⁵假型粒子的感染效率。由于寄生虫博览会MDM的影响，这两种类型的病毒，这表明它影响一些病毒基因前一步pression（ 图2B）。同样重要的是提细胞活力没有影响的MDM博览会到iRBC（数据未列出），表明观察到的抑制是具体的，而不是由于细胞死亡率。

图1。一）为MDM感染板计划完全复制病毒的模拟：未受感染的细胞。 uRBC：细胞暴露给未受感染的红血细胞。 iRBC：细胞暴露到恶性疟原虫感染的红血细胞。 BAL：。NL4.3Bal ENV巴尔/ uRBC的感染细胞：细胞暴露到uRBC感染与NL4.3Bal ENV巴尔/ iRBC的： 暴露与ENV 乙 NL4.3Bal iRBC和感染的细胞）为MDM感染板计划单周期内的荧光素酶编码病毒的模拟：未受感染的细胞。 uRBC：细胞暴露给未受感染的红血细胞。 iRBC：细胞接触到疟原虫 -Infected红血细胞。 δenv：感染的细胞与NL4.3 吕克 + 环境保护- R的。JRFL：与NL4.3 吕克 + 环境保护感染的细胞- R的+（JRFL ENV）。 VSV-G：受感染的细胞与NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+（VSV-G）Δenv/ uRBC：细胞暴露到uRBC和与感染NL4.3 吕克 + ENV-R +Δenv/ iRBC的细胞暴露iRBC感染NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+ JRFL / uRBC：细胞暴露到uRBC和感染NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+（JRFL ENV）。 JRFL / iRBC：细胞暴露到iRBC和感染NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+（JRFL的ENV）。 vsv-g/uRBC：细胞暴露到uRBC和感染NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+（VSV-G）vsv-g/iRBC：细胞暴露到iRBC和感染NL4.3 吕克 + 环境保护- R的+ （VSV-G）。

图2。一）对恶性疟原虫对HIV-1号病毒在MDM生产的MDM暴露到uRBC或iRBC比率​​75:1（uRBC / iRBC：MDM）为4小时和广泛洗净。 ENV NL4.3Bal 2小时P24 10ng细胞感染病毒生产用ELISA监测HIV-1在不同的时间点，最初的病毒感染后无细胞上清的P24。一个有代表性的试验显示B）对恶性疟原虫对HIV-1号病毒的转录在MDM MDM的比率75:1（uRBC / iRBC：感染与uRBC或iRBC的。，MDM）。细胞，然后感染与10ng P24单周期病毒（或者NL4.3 luc +的环境保护- R的+，NL4.3 吕克 + 环境保护 - R +（JRFL ENV）或NL4.3 luc +的环境保护- R的+（VSV- g）条）。荧光素酶的表达进行了评估，在细胞裂解物72小时后，最初的病毒感染。一个有代表性的实验证明。

我们这里介绍两种不同的方法来分析，通过分析或者病毒基因的表达或子代病毒的生产和单核细胞源性巨噬细胞中的复制的HIV-1病毒的周期，即疟疾寄生虫的影响。类似的方法已被用于其他的HIV-1寄生虫合并感染^16。然而，这些新的数据是在疟疾HIV-1感染的调查一步。 。事实上，迪欧等 ⁸研究的hemozoin的效果，对HIV-1病毒复制不活的寄生虫，在与我们的研究结果一致，他们观察到，hemozoin本身并不足以抑制病毒的MDM生产，而不是MDMS。

使用描述实验的布局，我们观察到， 体育恶性疟原虫对明确的巨噬细胞上的HIV-1复制周期的不利影响：预先接触到寄生虫的巨噬细胞中观察到的病毒生产的显着抑制（Figuré2A）和寄生虫病毒转录的具体影响在图2B所示。但是，我们不能离开了病毒进入或融合（decapsidation），或整合后的机制，如蛋白质的合成或病毒粒子组装和出芽，寄生虫任何额外的效果。此外，它是可能的，如果在同一时间或以下的MDM病毒感染寄生虫，将获得对不同HIV-1复制的影响。

我们提供了一个强大的工具进行详细调查的HIV-1 / P 在体外共感染模型疟原虫在宿主细胞相互作用。例如，这与其他技术，如实时定量PCR技术，它可以目标和量化在的病毒retrotranscription和病毒基因整合到宿主细胞基因组的具体步骤，实验布局相结合，是相当可行的，并应取得进一步insights将参与共同感染的机制。此外，具体分析，以评估病毒的周期（病毒融合，decapsidation;，进入定量）的早期步骤，可以适用于这一基本协议，以进一步分析病毒复制的效果。这些修改表明，该协议是关于如何灵活HIV-1的定量分析和检测：确实，即使是标准的HIV-1逆转录酶定量检测用氚标记的核苷酸，可以想象取代ELISA检测为HIV-1 P24。除了MDM的，我们希望我们的系统能适应HIV-1疟疾，如单核细胞和树突状细胞相互作用有关的其他类型的细胞。事实上，MDM的贴壁细胞，促进他们的操作，容易使洗涤iRBC尚未采取，或在接触与MDM，不排除任何的巨噬细胞。这种优势并不适用于树突状细胞和单核细胞，悬​​浮培养，复杂的SEparation的uRBC和免费用这样的细胞，我们目前正在解决这个问题iRBC。我们的系统也可能是有用的研究更复杂的相互作用，如疟原虫暴露在其他免疫细胞CD4阳性T细胞共培养实验，如HIV-1病毒的循环单核细胞源性细胞的影响。最后，我们的协议可能是适合看体育的影响实验HIV-1感染者的HIV-1活化PBMC中的恶性 iRBCs为。

伦理声明

人PBMC获得了从健康献血者的血液，在按照中心医院DE L'拉瓦尔大学研究中心的生物伦理委员会的指导方针。从所有献血者获得书面同意。

没有利益冲突的声明。

这项工作是由加拿大健康研究，通过催化剂的联合感染和并发症补助研究院支持。人红细胞提供了中心医院DE L'拉瓦尔大学血库。