تحديد كفاءة المثبط الكيميائي ضد نمو توكسوبلازما غوندي داخل الخلايا باستخدام قياس النمو القائم على لوسيفيراز

عرض هنا هو بروتوكول لتقييم فعالية تثبيط المركبات الكيميائية ضد في المختبر النمو داخل الخلايا من غوندي توكسوبلازما باستخدام اسيه النمو القائم على لوسيفيراز. وتستخدم هذه التقنية لتأكيد التحديد تثبيط عن طريق الحذف الوراثي للجين المستهدف المقابلة. يتم تقييم تثبيط LHVS ضد بروتياز TgCPL كمثال.

توكسوبلازما غوندي هو مسببات الأمراض الأولية التي تؤثر على نطاق واسع في البشر. المضادات الحيوية الحالية المستخدمة لعلاج التهاب التوكسوبلازمات السريرية محدودة. وبالإضافة إلى ذلك، فإنها تظهر آثار جانبية سلبية في مجموعات معينة من الناس. لذلك ، فإن اكتشاف علاجات جديدة لـ toxoplasmosis السريري أمر حتمي. الخطوة الأولى من تطوير المضادات الحيوية الجديدة هي تحديد المركبات الكيميائية التي تظهر فعالية عالية في تثبيط نمو الطفيليات باستخدام استراتيجية فحص الإنتاجية العالية. وباعتبارها ممرضاً ملزماً داخل الخلايا، لا يمكن لتوكسوبلازما أن تتكرر إلا داخل الخلايا المضيفة، مما يحظر استخدام قياسات الامتصاص البصري كمؤشر سريع للنمو. عرض هنا هو بروتوكول مفصل لسيفراز القائم على تقييم النمو. على سبيل المثال ، يتم استخدام هذه الطريقة لحساب وقت مضاعفة طفيليات توكسوبلازما البرية وقياس فعالية مورفولاينيوريا - لوسيل - homophenyl - الفينيل السلفون الفينيل (LHVS ، وهو مركب استهداف البروتياز السيستين) فيما يتعلق بتثبيط نمو الطفيليات داخل الخلايا. كما وصفت، هو بروتوكول حذف الجينات CRISPR-Cas9 المستندة في توكسوبلازما باستخدام 50 منطقة متجانسة bp لإعادة تركيب القائم على homology (HDR). من خلال تحديد فعالية تثبيط LHVS في البرية من نوع وTgCPL (توكسوبلازما cathepsin L مثل البروتياز) الطفيليات ناقصة, وتبين أن LHVS يمنع نمو الطفيليات البرية من نوع أكثر كفاءة من نمو الـ Οcpl, مما يشير إلى أن TgCPL هو الهدف الذي يربط LHVS إلى في توكسوبلازما. حساسية عالية وسهولة التشغيل من هذا السهو على أساس التسمم النمو المنقّعة جعلها مناسبة لرصد انتشار توكسوبلازما وتقييم فعالية الدواء بطريقة إنتاجية عالية.

Toxoplasma غوندي هو ناجح للغاية ملزمة الطفيلي داخل الخلايا التي تصيب ما يقرب من ثلث السكان البشرية. ويعزى ارتفاع معدل انتقال العدوى في الغالب إلى طرق انتقاله المتنوعة، بما في ذلك استهلاك اللحوم غير المطبوخة جيدا، والتعرض لخزانات الثدييات، وانتقال العدوى الخلقية أثناء الولادة. T. gondii يسبب أساسا العدوى الانتهازية التي يمكن أن تؤدي إلى اعتلال شديد والوفيات في الأفراد المنقوصة^{المناعي1,,2,,3,,4,,5,,6}. المضادات الحيوية المستخدمة حاليا لعلاج داء التوكسوبلازمات الحادة غير فعالة بشكل خاص في علاج العدوى الخلقية والكامنة وتسبب ردود فعل شديدة في بعض الأفراد^3,7,8. وبالتالي ، هناك حاجة ملحة لتحديد العلاجات الجديدة. فهم الاختلافات في العمليات تحت الخلية داخل توكسوبلازما ومضيفها سوف يساعد على تحديد الأهداف المحتملة للأدوية. لذلك ، هناك حاجة إلى تقنيات فعالة ومريحة للتلاعب بالجينوم لدراسة أدوار الجينات الفردية داخل توكسوبلازما. بالإضافة إلى ذلك، Toxoplasma ينتمي إلى Apicomplexa phylum، الذي يتضمن العديد من مسببات الأمراض البشرية الهامة الأخرى، مثل بلازموديوم spp. وCryptosporidium spp. وبالتالي ، يمكن استخدام Toxoplasma ككائن حي نموذجي للمساعدة في دراسة البيولوجيا الأساسية في الطفيليات المعقدة الأخرى.

لتحديد المضادات الحيوية الجديدة ضد مسببات الأمراض الميكروبية ، يتم إجراء فحص عالي الإنتاجية لمكتبة من المركبات الكيميائية في البداية لتحديد فعاليتها في قمع النمو الميكروبي. حتى الآن وقد وضعت العديد من المقاييس النمو على أساس microplate لقياس النمو داخل الخلايا من T. gondii (أي المشعة ³H-uracil أساس القياس الكمي⁹، الكشف عن الطفيليات المستندة إلى ELISA الكمية باستخدام T. gondii-الأجسام المضادة محددة^10،1114، والقياس القائم على البروتين مراسل باستخدام α-galactosidase أو YFP التعبير عن سلالات Toxoplasma ^12،13، وطور مؤخرا عالية المحتوى

ولهذه الاستراتيجيات الفردية مزايا فريدة من نوعها؛ ومع ذلك، بعض القيود أيضاً تقييد تطبيقاتها. على سبيل المثال، بما أن توكسوبلازما لا يمكن أن تتكرر إلا داخل الخلايا الحيوانية النواة، فإن الفلور الفلورية والملزمة غير المحددة للأجسام المضادة المضادة لـT. gondii لاستضافة الخلايا تسبب تداخلًا في القياسات القائمة على الفلورسينس. وعلاوة على ذلك، يتطلب استخدام النظائر المشعة امتثالا خاصا للسلامة ومسائل محتملة تتعلق بالسلامة. بعض هذه الفرضيات هي أكثر ملاءمة لتقييم النمو في نقطة زمنية واحدة بدلا من الرصد المستمر للنمو.

عرض هنا هو بروتوكول على أساس luciferase للقياس الكمي لنمو توكسوبلازما داخل الخلايا. في دراسة سابقة، تم استنساخ جين NanoLuc luciferase تحت مروج توبولولين توكسوبلازما، وهذا البناء التعبير luciferase تم نقلها إلى نوع البرية (RHΟku80ku8سلالةhxg) الطفيليات لإنشاء RHАаku80οhxg:: سلالةNLuc (يشار إليها باسم RHΟku80::NLuc فيما يلي)¹⁵. هذه السلالة بمثابة سلالة الوالدين لتحديد النمو داخل الخلايا وحذف الجينات في هذه الدراسة. باستخدام RHΟku80:: سلالةNLuc ، تم رصد نمو الطفيليات في الخلايا الليفية القلفة البشرية (HFFs) على مدى فترة 96 ساعة بعد العدوى لحساب وقت مضاعفة الطفيليات.

بالإضافة إلى ذلك ، يمكن تحديد فعالية تثبيط LHVS ضد نمو الطفيليات عن طريق رسم معدلات نمو توكسوبلازما مقابل تركيزات LHVS التسلسلية لتحديد قيمة IC_50. وقد ذكرت الأدبيات السابقة أن TgCPL هو هدف رئيسي من LHVS في الطفيليات وأن العلاج مع LHVS يقلل من تطور التهابات توكسوبلازما الحادة والمزمنة^16,17,18,19. بالإضافة إلى ذلك، تم استخدام RHΟku80::NLuc كسلالة أبوية لتعديل الجينوم لتوليد سلالة ناقصة TgCPL(RHΟku80cpl::NLuc)،وتم قياس تثبيط LHVS مقابل هذا المتحول. من خلال مراقبة تحول أعلى من قيم IC₅₀ لLHVS في TgCPL-الطفيليات الناقصة مقارنة بسلالة WT ، تم التحقق من أن TgCPL مستهدف من قبل LHVS في الجسم الحي.

في هذا البروتوكول، RHΟku80:: يستخدمNLuc كسلالة الوالدين، والتي تفتقر إلى كفاءة غير متجانسة نهاية الانضمام المسار (NHEJ)، وبالتالي تسهيل المزدوج كروس homology تعتمد على إعادة الجمع (HDR)^20،21. بالإضافة إلى ذلك، 50 منطقة متجانسة bp محاطة في كلا طرفي كاسيت مقاومة الأدوية بواسطة PCR. يعمل منتج PCR كقالب إصلاح لإزالة موضع الجينات بأكملها عبر HDR باستخدام أدوات تحرير الجينوم المستندة إلى CRISPR-Cas9. ويمكن دمج هذه المناطق القصيرة المتجانسة بسهولة في الالتمهيديات، مما يوفر استراتيجية مريحة لإنتاج قالب الإصلاح. يمكن تعديل هذا البروتوكول لتنفيذ حذف الجينات العالمية ووضع علامات الجينات الذاتية.

على سبيل المثال ، في أحدث منشور لدينا ، تم تغريب ثلاثة جينات بروتياز ، TgCPL، TgCPB (Toxoplasma cathepsin B-like protease) ، وTgSUB1 (Toxoplasma subtilisin like protease 1) ، تم تغريبها وراثيًا في TgCRT (Toxoplasma chloroquine-resistance الناقل) الطفيليات الناقصة باستخدام هذه الطريقة¹⁵. بالإضافة إلى ذلك، TgAMN (a الأمينية المفترضة N [TgAMN, TGGT1_221310]) كان الموسومة داخليا¹⁵. وأفاد مختبر لورديو أيضا باستخدام مناطق متجانسة قصيرة في حدود 40-43 نقطة با لإدخال طفرة جينية موجهة من الموقع ووضع علامات الجينات الذاتية في الجينوم توكسوبلازما باستخدام طريقة مماثلة²². تشير هذه التعديلات الناجحة في الجينوم إلى أن منطقة متجانسة 40-50 bp كافية لإعادة تركيب الحمض النووي بكفاءة في سلالة TgKU80-ناقصة ، والتي تبسط إلى حد كبير التلاعب الجينوم في Gondii Toxoplasma.

يتم تصنيف توكسوبلازما غوندي في مجموعة المخاطر 2 ويجب التعامل معها على مستوى السلامة البيولوجية 2 (BSL-2). وقد استعرضت اللجنة المؤسسية للسلامة البيولوجية في جامعة كليمسون البروتوكول ووافقت عليه.

1. لوسيفيراز القائم على Toxoplasma النمو القول

1. الخلايا الليفية القلفة البشرية البذور (HFFs) 1 أسبوع قبل تلقيح الطفيليات لضمان أن الخلايا المضيفة هي confluent تماما. إجراء عملية تقييم وهمية في لوحة شفافة لضمان بقاء الطفيليات داخل الخلايا طوال فترة التقييم.
   ملاحظة: هنا، يتم إجراء عملية التّسّازي في 96 لوحة صغيرة. وفقا للاحتياجات التجريبية، يمكن توسيع نطاقها تصل إلى 384 أو 1536 ميكروسيل جيدا.
2. تمرير طفيليات توكسوبلازما إلى HFFs ملتوية قبل يومين من الاستخدام عن طريق نقل ~ 0.3-0.4 مل من الطفيليات الملحالة بالكامل إلى قارورة T25. الخلايا المضيفة المصابة في 37 درجة مئوية مع 5٪ CO₂ لمدة يومين.
3. حقنة 5 مل من الطفيليات الطازجة من خلال إبرة السلامة 21 G 5x لتحرير الطفيليات داخل الخلايا ، ثم تمر عبر فلتر 3 ميكرومتر لإزالة حطام الخلايا المضيفة. شطف الطفيليات المتبقية من قارورة باستخدام 7 مل من متوسط D10 الخالية من الفينول الأحمر، ثم تمر من خلال مرشح مرة أخرى.
4. طفيليات الطرد المركزي عند 1000 × غرام لمدة 10 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (RT). صب قبالة supernatant وإعادة تعليق بيليه في 10 مل من الفينول الأحمر خالية من D10 وسائل الإعلام.
5. عد الطفيليات باستخدام مقياس الهيموكيتومتر لتحديد التركيز.
6. تمييع الطفيليات إلى 1 × 10⁴ طفيليات / مل لسلالة البرية من النوع (WT). بالنسبة لسلالات الطفيليات التي تعاني من نقص النمو ، قم بزيادة التركيز وفقًا لذلك لمراقبة زيادة كبيرة في إشارات لوسيفيراز.
7. يُعصر وسائل الإعلام بعناية من 96 لوحة صغيرة جيدة مبذرة مسبقًا بHFFs وتطعيم 150 ميكرولتر من إعادة تعليق الطفيليات إلى آبار في شكل ثلاثة أعمدة وخمسة صفوف ، وهو ما يمثل ثلاث نسخ فنية وخمس نقاط زمنية.
8. احتضان microplate في 37 درجة مئوية و 5٪ CO₂ لمدة 4 ساعة.
9. استنشق الوسائط بعناية من الآبار لإزالة الطفيليات غير الغازية ، ثم قم بملء الآبار بوسائط RT phenol الخالية من اللون الأحمر في كل صف (باستثناء الصف الأول).
10. مزيج أحجام متساوية من PBS و2x luciferase عازلة ويخفف من الركيزة لوسيفيراز إلى 12.5 ميكرومتر.
11. إضافة 100 ميكرولتر من الركيزة لوسيفراز المخفف في كل بئر من الصف العلوي. احتضان microplates في RT لمدة 10 دقيقة للسماح للخلايا لlyse تماما.
12. قياس نشاط luciferase باستخدام قارئ microplate. يتم سرد إعدادات قارئ اللوحة في الجدول 1. تمثل كل قراءة العدد الأولي للطفيليات الغازية في 4 ساعة بعد العدوى.
13. كرر الخطوات 1.9-1.12 لكل صف كل 24 ساعة لمدة 4 أيام دون تغيير الوسط. تعكس هذه القراءات العدد الإجمالي للطفيليات المنسوخة في 24 ساعة و48 ساعة و72 ساعة و96 ساعة بعد العدوى.
14. حساب متوسط القراءات في كل نقطة زمنية وتقسيمها على متوسط القراءات في 4 ساعة لتحديد التغيرات أضعاف في نمو الطفيليات مع مرور الوقت.
15. رسم البيانات باستخدام برنامج الرسوم البيانية. وترد جدول قراءة النمو التمثيلي والمؤامرات من RHΟku80:: الطفيلياتNLuc في الشكل 1A, B.
16. لحساب مضاعفة الوقت، رسم قيم log2 من التغييرات أضعاف في النقاط الزمنية الفردية خلال وقت الحضانة. استخدم دالة انحدار خطي لحساب الميل، والتي تمثل وقت مضاعفة كل سلالة(الشكل 1A، C).

2. تقييم فعالية تثبيط المركبات الكيميائية ضد نمو توكسوبلازما

ملاحظة: هنا، يتم تقديم تقييم تثبيط LHVS في نمو توكسوبلازما كمثال. يتم اختبار ثمانية تركيزات مختلفة من LHVS، ويتم تنفيذ ثلاثة يكرر التقنية لكل من النسخ البيولوجية الثلاث لكل منRHΟku80::NLuc و RHА80Cpl:: سلالاتNLuc. ku80

1. قبل الإصابة بالطفيليات ، وHFFs البذور إلى 96 ميكروصف جيدا في شكل ثلاثة صفوف وتسعة أعمدة لتكرار البيولوجية واحدة لكل مركب لكل سلالة. سيسمح للخلايا المضيفة بالنمو لمدة 7 أيام على الأقل قبل الاستخدام.
2. تمرير RHΟku80::NLuc و RHΟku80CPL:: طفيلياتNLuc لمدة يومين قبل الاستخدام. اتبع الخطوات 1.2-1.6 لتنقية الطفيليات وقياسها الكمي. إعادة تعليق الطفيليات في الوسائط الخالية من الفينول الحمراء عند 1 × 10⁴ طفيليات /مل.
3. استنشق الوسائط من لوحة تحتوي على HFFs ملتوية وتطعيم كل بشكل جيد مع 150 ميكرولتر من إعادة تعليق الطفيليات. احتضان microplate في 37 درجة مئوية و 5٪ CO₂ لمدة 4 ساعة.
4. إعداد LHVS في ثمانية تركيزات مختلفة في خزان بئر 12 عن طريق التخفيف المتسلسل. عموما، يتم تقليل التركيزات بمقدار ثلاثة أضعاف بطريقة تخفيف المسلسل.
   ملاحظة: يتم تقليل أدنى تركيز بمقدار 6,561 أضعاف بالنسبة إلى أعلى تركيز. يمكن تعديل تغيير أضعاف التخفيف وفقًا لذلك استنادًا إلى خصائص مختلفة للمركبات الفردية.
5. في 4 ساعة بعد العدوى، يستنشق وسائل الإعلام لإزالة الطفيليات غير الغازية وملء كل جيدا من الأعمدة 2-9 مع 150 ميكرولتر من وسائل الإعلام المكملة مع LHVS بتركيزات مختلفة. اترك العمود الأول مملوءًا بالوسائط العادية ليكون بمثابة عنصر تحكم غير معالج.
6. احتضان microplate في 37 درجة مئوية و 5٪ CO₂ ل96 ساعة إضافية.
7. تنفيذ الخطوات 1.9-1.11 وقياس نشاط luciferase من الآبار الفردية.
8. متوسط أنشطة لوسيفيراز من ثلاثة يكرر التقنية من الآبار من كل تركيز LHVS الفردية.
9. تقسيم متوسط نشاط لوسيفيراز لكل تركيز LHVS على متوسط نشاط لوسيفراز المشتق من الطفيليات غير المعالجة لحساب نشاط لوسيفيراز العادي كنسبة مئوية.
10. مؤامرة الأنشطة luciferase تطبيع ضد تركيزات LHVS الفردية باستخدام برامج الرسوم البيانية(الشكل 2). كما يتم قياس تثبيط البيريميثامين ضد نمو الطفيليات كعنصر تحكم. البيريميثامين هو مضاد حيوي سريري يستخدم لعلاج التوكسوبلازموس الحاد عن طريق تثبيط استقلاب حمض الفوليك في توكسوبلازما.
11. حساب قيم IC₅₀ للمركبات الفردية باستخدام الأسلوب المضمن في برنامج الرسوم البيانية ، والاستجابة العادية مقابل [مثبط] ، في إطار برنامج الانحدار "جرعة الاستجابة - تثبيط". يتم حساب IC₅₀ باستخدام الصيغة التالية:
    Y = 100/(1 + X/IC₅₀₎
    حيث: Y يمثل أنشطة اللوسيفراز العادية للخلايا المصابة تحت تركيزات مختلفة من المثبط، وX يمثل تركيزات فردية من المثبط.

3- الحذف الجيني المستند إلى CRISPR-Cas9 في طفيليات توكسوبلازما

1. جيل من بناء plasmid التعبير عن دليل الجيش الملكي النيبالي (sgRNA) وCas9 لحذف جين من الفائدة
   1. انتقل إلى www.ToxoDB.org واسترداد تسلسل ترميز الجينات بالكامل، بما في ذلك الإنترونات والمواد الطاردة، إلى جانب 1.5 كيلوبايت 5'-UTRs و3'-UTRs (المناطق غير المترجمة).
      ملاحظة: هنا، يتم استهداف TgCPL (TGGT1_321530) كمثال تمثيلي.
   2. نسخ تسلسل TgCPL المستردة في برنامج تحليل التسلسل (راجع جدول المواد للاسم والإصدار) وتسمية المناطق 5 '- و 3'-UTR.
   3. حدد رمز الأدوات في شريط القائمة العلوي، ثم حدد الاستنساخ | العثور على مواقع CRISPR.
   4. اختر 3'(Cas9)' لموقع موقع PAM وحدد المجلد الذي يحتوي على تسلسل جينوم توكسوبلازما في قسم تسجيل التحديد. اترك بقية الإعدادات كإعدادات افتراضية.
   5. اختيار sgRNA مع المعيارين التاليين: 1) تظهر درجة خصوصية عالية، عموماً > 98٪، و 2) تفتقر إلى G التالية NGG، وهو ترتيب عزر البروتوسبل المجاورة (PAM). يقع عادة sgRNA المختار ة في مواقع قريبة من البداية ووقف codons من الجينات ذات الاهتمام.
   6. نسخ تسلسل sgRNA المحدد ولصقه في قالب التمهيدي التالي.
      
      يمثل الجزء باللون الأحمر تسلسل SgCPL sgRNA المحدد. ويمكن استبداله مع sgRNAs مختلفة لمختلف الجينات ذات الاهتمام.
      ملاحظة: إذا لم يبدأ sgRNA المحدد مع G، إضافة G في بداية sgRNA للمساعدة في تحسين التعبير الخاصة به.
   7. إجراء تفاعل PCR لتعديل البلازميد الموجود مسبقًا المعبر عن sgRNA(الشكل 3A)الذي يستهدف توكسوبلازما uracil phosphoribosyltransferase(TgUPRT)جين²³ باستخدام مخلط اتّصال PCR مع الإعدادات المتوفرة في الجدول 2.
   8. تشغيل منتج PCR على هلام agarose لتأكيد التضخيم الناجح. ومن المتوقع أن يتم تضخيم منتج PCR 10 كيلوبايت(الشكل 3B).
   9. استخراج منتج PCR باستخدام مجموعة استخراج هلام الحمض النووي والتعميم باستخدام مجموعة الطفرات الموجهة من الموقع. راجع الجدول 3 للحصول على الوصفة. احتضان رد الفعل لمدة 10-20 دقيقة في RT.
   10. تحويل منتج PCR دائريإلى E. القولونية واختيار 10 استنساخ لمزيد من التحقق من دمج sgRNA المصممة.
   11. تنمو اثنين من استنساخ واستخراج plasmids. قطع البلازميدات النقية مع BamHI وEcoRV. سوف تسفر البلازميدات المرشح اثنين من العصابات في 2.4 كيلوبايت و 7.2 كيلوبايت(الشكل 3C).
   12. إرسال plasmids لتسلسل Sanger باستخدام التمهيديات عكس M13 لتأكيد استبدال ناجحة من SgUPRT sgRNA مع sgRNA المصممة(الشكل 3D).
2. إنشاء قالب إصلاح لحذف الجينات عبر آلية HDR
   1. وفقًا لمواقع الاستهداف الخاصة بـ sgRNA المختار ، حدد 50 نقطة أساس من 5'UTRs أو 3'UTRs من الجين المستهدف لإعادة التركيب المعتمد على homology (HDR ، انظر قسم المناقشة). ويتبع اختيار المناطق المعايير المذكورة أدناه، تبعاً للموقع الذي تستهدفه الوكالة.
      1. إذا كان موقع الانقسام بواسطة Cas9 يقع في المنبع من codon البداية ، فحدد ما يلي: تسلسل الحمض النووي 50 bp المنبع من موقع الانقسام كمنطقة HDR اليسرى ، وتسلسل الحمض النووي 50 bp المصب من codon التوقف كمنطقة HDR اليمنى.
      2. إذا كان موقع الانقسام بواسطة Cas9 بين codons البداية والتوقف ، فحدد ما يلي: تسلسل 50 bp DNA المنبع من codon بداية كمنطقة HDR اليسرى ، وتسلسل الحمض النووي 50 bp المصب من codon التوقف كمنطقة HDR اليمنى.
      3. إذا كان موقع الانقسام بواسطة Cas9 يقع في المصب من codon التوقف ، حدد ما يلي: تسلسل الحمض النووي 50 bp المنبع من codon البداية كمنطقة HDR اليسرى ، وتسلسل الحمض النووي 50 bp المصب من موقع الانقسام كمنطقة HDR اليمنى.
         ملاحظة: بالنسبة لمجين TgCPL، يقع موقع الانقسام بين codons البداية والتوقف. وهكذا ، تم تصميم التمهيديات التالية لتضخيم قالب الإصلاح باستخدام pMDC64 كقالب ، والذي يقوم بترميز كاسيت مقاومة البيريميثامين. التسلسلات في آنال أسود إلى pMDC64 plasmid لتضخيم PCR. المناطق المسماة باللون الأحمر هي تسلسلات محددة TgCPLلإعادة التركيب المتجانسة.
         
   2. تنفيذ PCR باستخدام premix PCR في ظل ظروف PCR الموضحة في الجدول 4.
   3. تشغيل منتج PCR على هلام agarose(الشكل 3E)،تليها استخراج هلام وإجراءات القياس الكمي الحمض النووي القياسية.
      ملاحظة: إذا تعذر تكبير النطاق المتوقع بنجاح، قم بتحسين شروط PCR و/أو تبديل أزواج التمهيدي.
3. التَرَفَط التوكسوبلازما
   1. تمرير RHΟku80:: طفيلياتNLuc لمدة يومين في قارورة T25 تحتوي على HFFs ملتوية. قارورة T25 من الطفيليات المنكلة بالكامل كافية لحالتين إلى ثلاث حالات نقل.
   2. المحاقن وتنقية الفلتر الطفيليات كما هو موضح في الخطوة 1.2. إعادة تعليق الطفيليات في عازل السيتوميكس وتدور عند 1000 × ز لمدة 10 دقيقة في RT.
   3. غسل الطفيليات بيليه مع 10 مل من العازلة سيتوميكس وتدور أسفل الطفيليات في 1000 × ز لمدة 10 دقيقة في RT.
   4. صب بعناية قبالة supernatant وإعادة تعليق الطفيليات في نفس الحاجز بتركيز 1 × 10⁸ الطفيليات / مل.
   5. مزيج 2 ميكروغرام من الحمض النووي قالب إصلاح مع 20 ميكروغرام من plasmids التعبير sgRNA/Cas9 (نسبة الكتلة = 1:5، أي ما يعادل نسبة 1:3 المولي). إذا كانت غلة التضخيم لقالب الإصلاح منخفضة، فقلّل من إدخال كل من قطع الحمض النووي وفقًا لذلك. يمكن استخدام ما لا يقل عن 0.5 ميكروغرام من قالب الإصلاح.
   6. مزيج 400 ميكرولتر من إعادة تعليق الطفيليات، والحمض النووي، و 5 ميكرولتر من 200 mM ATP/500 mM تقليل الجلوتاثيون (GSH) في أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل. جلب الحجم الإجمالي إلى 500 ميكرولتر مع المخزن المؤقت سيتوميكس، إذا لزم الأمر.
   7. نقل خليط من الطفيليات والحمض النووي إلى كوفيت الكهربية (4 ملم عرض الفجوة) وإجراء الكهربية (2 كيلو فولت الجهد، 50 درجة المقاومة) باستخدام جهاز الكهربية.
   8. نقل الطفيليات الكهربائية إلى قارورة T25 تحتوي على HFFs متجانسة في المتوسط D10 الطازجة. تطبيق المضادات الحيوية المناسبة لاختيار المخدرات بعد 24 ساعة.
   9. الحفاظ على ضغط المخدرات انتقائية حتى نمو الطفيليات المعدلة وراثيا مستقرة.
   10. تنقية الحمض النووي الجينومي من السكان خروج المغلوب والتحقق من أجل دمج كاسيت مقاومة البيريميثامين في مكان TgCPL بواسطة PCR. بعد التحقق، انتقل إلى القسم 3.4. إذا لم يكن كذلك ، قم بإجراء جولة أخرى من التطفل الطفيلي واختيار الدواء. عدم القدرة على الكشف عن التكامل الصحيح لكاسيت مقاومة الدواء يشير عادة إلى أن الجين المستهدف ضروري أو أن موضع الجين غير قابل للوصول.
4. استنساخ الطفيليات بالضربة القاضية
   1. البذور اثنين من لوحات صغيرة 96 جيدا مع خلايا HFF واحتضان في 37 درجة مئوية و 5٪ CO₂ لمدة أسبوع واحد قبل استنساخ الطفيليات.
   2. تمرير ~ 0.3-0.4 مل من السكان من الطفيليات المعدلة وراثيا في قارورة T25 التي تحتوي على HFFs ملتوية وتنمو لهم لمدة 2 أيام. النظر في تمرير المزيد من الطفيليات إذا كان متحولة يظهر عيوب النمو.
      ملاحظة: لتحقيق أفضل عائد وقابلية البقاء ، يتم إصابة الخلايا المضيفة بشدة من الطفيليات ، ويتم الاحتفاظ بمعظم الطفيليات في المرحلة داخل الخلايا.
   3. الخلايا المضيفة المصابة بالمحاقن والطفيليات الطازجة المطهرة للفلتر كما هو مذكور في الخطوة 1.3. إعادة تعليق الطفيليات في وسط D10 وتدور عليها في 1000 × ز لمدة 10 دقيقة في RT.
   4. إعادة تعليق الطفيليات بيليه في 10 مل من متوسط D10.
   5. عد الطفيليات باستخدام مقياس الهيموكيتومتر لتحديد تركيز الطفيليات.
   6. إجراء تخفيف من خطوتين لتحقيق التركيز إلى 10 طفيليات / مل في متوسط D10 مكمّلبالمضاد الحيوي المناسب. عادة ، يتم تخفيف إعادة تعليق الطفيليات الأولية بمقدار 1000 مرة ، تليها تخفيف ثان ٍ إلى 10 طفيليات / مل.
   7. يُسْتَرّس ُ الوسائط من 96 لوحة صغيرة جيداً تحتوي على مركبات HFFs مُنْسِبة ومقوّنة 150 ميكرولتر من الطفيليات المخففة في كل بئر.
   8. ألواح الإنكوبات عند 37 درجة مئوية مع 5% CO₂ لمدة 7 أيام دون إزعاج للسماح بتشكيل البلاك. يمكن أن تكون فترة الحضانة أطول إذا أظهرت الطفيليات المعدلة وراثيا عيوب النمو.
   9. فحص لوحات باستخدام مجهر المرحلة التباين ووضع علامة فقط على الآبار التي تحتوي على لوحة واحدة.
   10. تنفيذ PCR مستعمرة لتحديد المستنسخين الصحيح.
       1. استخدام نصائح ماصة لكشط الجزء السفلي من كل بئر لرفع monolayers HFF المصابة.
       2. Pipet 75 μL من إعادة تعليق الخلية من كل ملحوظ جيدا في 1.5 مل أنابيب الطرد المركزي الدقيقة.
       3. أنابيب الطرد المركزي لمدة 10 دقيقة بأقصى سرعة في RT. يستنشق بعناية supernatant وإعادة تعليق بيليه في 10.25 ميكرولتر من محلول العازلة التي تحتوي على عازلة التخفيف والحمض النووي المضافة المنصوص عليها في عدة(جدول المواد).
       4. احتضان العينات لمدة 4 دقيقة في RT، ثم 2 دقيقة في 98 درجة مئوية. بعد ذلك ، يمكن استخدام العينات لPCR أو تخزينها عند -20 درجة مئوية حتى الاستخدام. وتستخدم ثلاث مجموعات من ردود الفعل PCR لاختبار لتكامل شريط مقاومة المخدرات وفقدان الجينات ذات الفائدة(الشكل 4A). راجع الجدول 5 لإعداد تفاعل PCR والجدول 6 لإعدادات thermocycler.
   11. تحديد المستنسخات الصحيحة ونقل أربع مستنسخات إلى قوارير T25 تحتوي على HFFs ملتوية.
   12. بعد استنساخ الفردية lyse الخلايا المضيفة، وتنقية الحمض النووي الجينوم لمزيد من التحقق PCR.
   13. إذا كان الجسم المضاد الذي يعترف بالبروتين المهم متاحًا ، فاتبع إجراءً قياسيًا للتنبال مناعي للتحقق من فقدان البروتين المستهدف في ضربات توكسوبلازما الصحيحة. وتظهر الصور التمثيلية لفحص TgCPL-حذف متحولة في الشكل 4B, C.

ويمثل الشكل 1 مثالاً لمنحنى النمو لسلالة RHΟku80::سلالة NLuc والحساب المشتق لمضاعفة وقتها. عموما، يتم تنفيذ القول في ثلاثة يكرر التقنية لكل من النسخ البيولوجية الثلاث لتكرار لحساب الاختلافات من قراءات نشاط لوسيفيراز. من أجل حساب التغير العادي في نمو الطفيليات ، تم تقسيم كل قراءة في 24-96 ساعة بعد العدوى على القراءة الأولية في 4 ساعة بعد العدوى ، مما يعكس الكمية الأساسية للطفيليات الحية في المقادير(الشكل 1A ، B). من حيث تحديد وقت مضاعفة الطفيليات ، تم رسم قيم log2 للتغيرات المزدوجة العادية لنمو الطفيليات مقابل كل نقطة زمنية. بعد ذلك ، تعرضت المؤامرة لدالة انحدار خطية للحصول على الميل ، والذي يمثل مضاعفة الوقت(الشكل 1C).

تم تحديد فعالية تثبيط LHVS في سلالات البريةوcPL عن طريق رسم أنشطة لوسيفراز ضد ثمانية تركيزات مثبطة في الشكل 2. من الضروري تضمين الخلايا المصابة دون علاج مثبط لتطبيع أنشطة لوسيفراز الخام في السهو. بالإضافة إلى ذلك ، يلزم إجراء تجربة وهمية في لوحة صغيرة واضحة للمعاينة لضمان أن الطفيليات لا تزال في مرحلة داخل الخلايا في نهاية فترة التنظير.

في الشكل 3، يتم عرض إنشاء والتحقق من بناء تعبير sgRNA يستهدف TgCPL وإنتاج قالب إصلاح لحذف TgCPL. تم تحويل sgRNA 20 bp مطابقة لجين TgUPRT المشفرة في plasmid الأصلي إلى تسلسل الحمض النووي الذي يستهدف جين TgCPL عبر الطفرات الموجهة من الموقع المستندة إلى PCR. لتحقيق ذلك ، تم تصميم تسلسل الحمض النووي الترميز لsgRNAs التي تعترف الجينات المختلفة إلى التمهيدي إلى الأمام ، في حين تم الاحتفاظ التمهيدي العكسي دون تغيير لتبسيط تصميم التمهيدي.

ويبين الشكل 3A منطقة مكبرة من تسلسلات الحمض النووي sgRNA التي تستهدف جين TgUPRT في بلازميد القالب الأصلي وكذلك مجموعة التمهيدي المستخدمة لتوليد متجه التعبير sgRNA الخطي. الشكل 3B يظهر صورة هلام تمثيلية من TgCPLالخطية -استهداف sgRNA التعبير plasmid. الشكل 3C يظهر تقييد هضم endonuclease من TgCPLدائرية -استهداف sgRNA التعبير plasmid. تم استخدام التمهيدي العكسي M13 لتسلسل الدليل المدمج RNA داخل متجه التعبير sgRNA المتولد للجين المحدد. في الشكل 3D، تم محاذاة منطقة الحمض النووي المتسلسلة إلى قالب البلازميد لتأكيد الطفرات الناجحة. يوضح الشكل 3E مناطق البداية والنهاية لكاسيت مقاومة البيريميثامين، ويظهر أين يمكن للالتمهيديات أن تكون قابلة لإنتاج قالب الإصلاح لحذف جين TgCPL. كان قالب الإصلاح مضخمًا PCR وتم تحميله في هلام agarose 1٪ للتحقق من الحجم واستخراج الجل.

تظهر الاستراتيجية العامة لتوليد الضربة القاضية TgCPL والفرز في الشكل 4. تم استخدام ثلاث مجموعات من التمهيديات المعروضة في الشكل 4A لفحص طفيليات حذف TgCPLللتكامل الصحيح بين 5'و 3'-ARMs وحذف تسلسل ترميز TgCPL. كما هو مبين في الشكل 4B، عموما ، يتم اختيار سبعة إلى ثمانية استنساخ للفحص في البداية. يبدأ الفحص عادة بالتحقق من حذف تسلسل الترميز لجين الفائدة. ويتبع ذلك الكشف عن 5 'و 3'-ARMs، مما يساعد على تقليل العدد الإجمالي للاستنساخ ليتم فحصها. يمكن استكمال المزيد من التحقق عن طريق التنبل المناعي المعروض في الشكل 4C إذا كان الجسم المضاد الذي يتعرف على البروتين المستهدف متاحًا.

الشكل 1: القياس الكمي للنمو داخل الخلايا لطفيليات توكسوبلازما باستخدام طريقة قائمة على اللوسيفراز. (أ)قراءات نشاط اللوسيفراز الخام في برنامج جدول البيانات. تم تطبيع القراءات في 24 ساعة و 48 ساعة و 72 ساعة و 96 ساعة بعد العدوى مقابل القراءات الأولية في 4 ساعة بعد العدوى لحساب التغيرات الحظيرة في نمو الطفيليات. (ب)تم متوسط البيانات العادية ورسمها. (ج)تم أيضًا رسم قيم log2 للتغيرات المطوية وإخضاعها للانحدار الخطي لتحديد وقت مضاعفة الطفيلي. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: تقييم فعالية تثبيط LHVS والبيريميثامين باستخدام مسح النمو القائم على لوسيفيراز. تم تلقيح الطفيليات في لوحة 96 بئر لمدة 4 ساعة للسماح بغزو الخلايا المضيفة. تم غسل الطفيليات غير الغازية ، وامتلأت اللوحة بوسائط تحتوي على تركيزات مختلفة من LHVS أو البيريميثامين واحتُضل لمدة 96 ساعة إضافية قبل تحديد نشاط لوسيفيراز. تم تطبيع قراءات اللوسيفز المقاسة للطفيليات المعالجة بتركيزات مثبطة فردية مقابل الإشارة المكتشفة من الطفيليات غير المعالجة. تم رسم البيانات في برنامج الرسوم البيانية، وتم إجراء تحليل الانحدار لتحديد IC_50. وتكرر تقسّر في ثلاثة نسخ بيولوجية مع ثلاثة نسخ تقنية لكل منها. تمثل البيانات متوسط ± SEM، n = 3 يكرر البيولوجية. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 3: توليد بناء البلازميد التعبير sgRNA استهداف TgCPL وإنتاج قالب إصلاح لحذف TgCPL. (أ)تم تعديل pSAG1-Cas9-sgRNA-UPRT plasmid²³ عبر مجموعة طفرات موجهة من الموقع لاستبدال sgRNA التي تستهدف جين TgUPRT إلى TgCPL. يتم توسيع منطقة ترميز sgRNA لإظهار المناطق التي تكون فيها الكُل التمهيدية. بعد PCR ، تم خطيا بلازميد تحور وتحميلها في هلام agarose 1 ٪ للتحقق من التضخيم الناجح ، تليها استخراج هلام. (ب)صورة هلام من PCR تضخيم خطي sgRNA بناء التعبير. (C)بعد استخراج هلام، تم تعميم منتج PCR وتحويلها في وقت لاحق إلى E. القولونية. تم فحص المستنسخين الذين يحتويون على البلازميدات المتوقعة عن طريق الهضم الإندونوبلاسلي التقييدوتسلسل الحمض النووي. وكانت أحجام الفرقة بعد هضم الحمض النووي 7.2 نقطة أساس و 2.4 كيلوبايت. يتم تسمية الفرقة التي تم إنشاؤها بواسطة انشقاق غير محدد من endonucleases بواسطة النجمة. (D)تم استخدام التمهيدي العكسي M13 المسمى في الشكل لتسلسل منطقة الحمض النووي الريبي الدليل يحور داخل TgCPL- استهداف متجه التعبير sgRNA. تم محاذاة منطقة الحمض النووي المتسلسلة إلى قالب البلازميد لتأكيد الطفرات الناجحة. (E)في هذه الدراسة، تم تصميم 50 منطقة متجانسة bp مطابقة ل5'- و 3'-UTRs من TgCPL في التمهيديات لتضخيم قالب الإصلاح وتحيط بها في 5'- و 3'--نهايات كاسيت المقاومة بيريميثامين من قبل PCR، على التوالي. تم استخدام الجيل الكهربي Agarose للتحقق من الحجم الصحيح للمنتج PCR قبل استخراج هلام. الحجم المتوقع لقالب الإصلاح هو ~ 2.7 كيلوبايت. عادة، يمكن الحصول على 5-6 ميكروغرام من قالب الإصلاح من 200 ميكرولتر من تفاعل PCR. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 4: PCR وتأكيد التنبول المناعي من الطفيليات ناقصTGCPL. (أ)رسم تخطيطي يصور الاستراتيجيات العامة لTgCPL-الحذف في توكسوبلازما والفرز القائم على PCR من استنساخ خروج المغلوب TgCPL الصحيح. يتم تسمية التمهيديات المستخدمة للفحص. (B)تم استخدام PCR وagarose هلام electrophoresis لتحديد استنساخ تحتوي على التكامل الصحيح من كاسيت مقاومة البيريميثامين في مكان TgCPL وفقدان الجين TgCPL. كان الحمض النووي الجينومي للسكانcpl بمثابة عنصر تحكم إيجابي للكشف 5'و 3'-ARM، في حين تم استخدام الحمض النووي الجينومي WT للكشف عن جين TgCPL كتحكم إيجابي. تم استخدام المياه بدلا ً من قالب الحمض النووي في تفاعلات PCR لتكون بمثابة عنصر تحكم سلبي. يتم الإشارة إلى النطاقات المتوقعة بواسطة الأسهم، في حين يتم تسمية تضخيمات PCR غير محددة بواسطة العلامات النجمية. (C)تم زراعة استنساخ 1 التي حددها فحص PCR في زراعة الأنسجة لإعداد الخلايا اللينة ومزيد من تحليل المناعة لتأكيد فقدان التعبير TgCPL في خروج المغلوب. تم استخدام TgActin كتحكم في التحميل. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الجدول 1: إعدادات قارئ Microplate لقياس نشاط لوسيفراز أثناء قياس نمو توكسوبلازما القائم على لوسيفراز.

الجدول 2: إعدادات Thermocycler لتوليد متجه التعبير sgRNA.

الجدول 3: وصفة رد فعل لتعميم متجه التعبير sgRNA.

الجدول 4: إعداد Thermocycler لتوليد قالب الإصلاح.

الجدول 5: مستعمرة PCR وصفة رد الفعل لفحص استنساخ توكسوبلازما واحد.

الجدول 6: إعداد Thermocycler لفحص استنساخ توكسوبلازما واحد.

الجدول التكميلي 1: وصفات المخازن المؤقتة.

++يصف هذا البروتوكول بروتوكولًا قائمًا على اللوكفراز لتقييم نمو توكسوبلازما داخل الخلايا وتقييم فعالية تثبيط المركبات الكيميائية ضد نمو الطفيليات. بالمقارنة مع الاستراتيجيات الحالية المتاحة لقياس نمو توكسوبلازما داخل الخلايا، هذه الطريقة تظهر حساسية عالية وخصوصية عالية. أثناء مراقبة نمو الطفيليات ، يوصى بالفحص الوهمي في لوحة صغيرة واضحة 96 لضمان أن السلالة المختبرة لا تُلص قبل الأوان الخلايا المضيفة قبل نهاية فترة التقييم. خلاف ذلك ، فإن قراءات التلألؤ لن تعكس بدقة نمو الطفيليات ، لأن توكسوبلازما تتكرر فقط داخل الخلايا المضيفة.

وقد لوحظ أن صبغة حمراء الفينول بسرعة quenches luciferase النشاط، والتي يمكن أن تؤدي إلى اختلافات كبيرة في قراءات لوسيفيراز بين يكرر التقنية بسبب تأخير في قياسات البئر الفردية من قبل قارئ لوحة. لذلك ، من الأمثل إعداد HFFs في وسط خالي من الفينول الأحمر قبل البذر في 96 ميكروصف جيد. أيضا، في حالة نشاط لوسيزراز عالية، قد يؤدي تداخل عبر الآبار إلى اختلاف كبير بين الآبار المجاورة التي تظهر نشاط لوسيهراز قوي. وبالتالي ، فمن المستحسن وضع عمود فارغ بين كل سلالة.

على وجه التحديد ، بالنسبة لسلالة RHΟku80::NLuc ، يتم تلقيح 1500 طفيلي في كل بئر لأسياب النمو. منذ مضاعفة الوقت لطفيليات WT Toxoplasma هو ~ 6-8 ساعة²⁴، فمن المتوقع أن تشهد زيادة في نشاط لوسيفيراز بنسبة 8- إلى 16 أضعاف في 24 ساعة بعد العدوى. ومع ذلك، فإن بعض السلالات مع عيوب النمو كبيرة تسفر فقط عن زيادة طفيفة في نشاط لوسيفيراز. لذلك ، إذا كان تطعيم الطفيليات الأولي منخفضًا ، فإن الاختلاف المتأصل في نشاط لوسيفيراز سيخفي ملاحظة زيادة في الإضاءة خلال فترة النمو. ومن ثم ، فمن المستحسن تلقيح عدد أكبر من الطفيليات لتحقيق تغيير دقيق أضعاف للسلالات مع نقص النمو.

في البروتوكول، يتبع تصميم RNA الدليل القواعد العامة المستخدمة لتعديل الجينوم CRISPR-Cas9 المستندة في خلايا الثدييات²⁵. حاليا، العديد من أنواع البرامج والمنصات عبر الإنترنت توفر خدمات لتصميم الحمض النووي الريبي دليل في مختلف الكائنات الحية، مثل CHOPCHOP^26،E-CRISP^27،وEuPaGDT^28. هنا ، يتم استخدام البرمجيات التجارية(جدول المواد)لتصميم sgRNA. بالمقارنة مع البرامج المذكورة سابقا على الانترنت ، وهذا البرنامج يوفر بيئة محلية لتصميم sgRNA. فإنه يحسب النشاط ودرجات التحديد لكل مرشح sgRNA باستخدام خوارزمية نشرت سابقا^25،29.

من الناحية الفنية ، يمكن لأي sgRNA الموجود داخل جين ذو أهمية يحتوي على درجة خصوصية عالية التوسط بكفاءة في انشقاق الحمض النووي الجينومي لإعادة التركيب المعتمد على المصب. في الممارسة العملية، يتم تفضيل sgRNA استهداف منطقة قريبة من بداية أو وقف codon. الجينات ذات الاهتمام يمكن أن تكون داخلية epitope الموسومة باستخدام sgRNA، الذي يولد فجوة تقطعت بهم السبل في نهاية الجين. سيساعد وضع علامات داخلية على جين قبل حذفه في تأكيد فقدان الجينات عن طريق الكشف عن المناعي في حالة عدم توفر جسم مضاد ضد البروتين المهم. يمكن أن يساعد وضع علامات الجين على تحديد الموقع دون الخلوي للبروتين الذي يهم عن طريق المجهر المناعي. وعلاوة على ذلك، إذا كان الجين المستهدف ضروريًا، يمكن استخدام sgRNA الاعتراف بمنطقة البداية للجين لاستبدال مروجه الكوينات إلى مروج مستجيب للتتراسكلين لتوليد ضربة قاضية مشروطة.

بالإضافة إلى ذلك، يصف البروتوكول تقنية لحذف الجينات في توكسوبلازما عن طريق استبدال جين TgCPL بكاسيت مقاومة البيريميثامين. باستخدام قوالب البلازميد مختلفة ترميز أشرطة مقاومة المخدرات الأخرى، يمكن للمحققين تعديل تسلسل التمهيدي لدمج جينات مقاومة المضادات الحيوية الأخرى في قالب الإصلاح عن طريق PCR. وعلاوة على ذلك، يمكن تعديل هذا البروتوكول لإجراء تعديلات الجينوم الأخرى، مثل وضع العلامات الجينية الذاتية، واستبدال المروج، والطفرات الموجهة من الموقع. ومن الجدير بالذكر أن المناطق المتجانسة المستخدمة في هذا البروتوكول لا يتجاوز طولها 50 نقطة في الثانية. استخدمت دراسة منفصلة بنجاح 40-43 تسلسل الحمض النووي متجانسة bp لإدخال الطفرات أحادية النيوكليوتيدات ووضع علامات epitope الجينات في الطفيليات توكسوبلازما ²². تسلسل الحمض النووي المتجانس في مثل هذا الطول القصير يمكن دمجها بسهولة في التمهيديات. على الرغم من أننا لم نقيّم كفاءة HDR بشكل كمي لهذا الطول الخاص للمنطقة المتجانسة ، يبدو أن منطقة 40-50 bp كافية لإعادة تركيب الحمض النووي الفعال في سلالة Toxoplasma المنقوصة TgKu80، كما يتضح من التلاعب الجيني الناجح للعديد من الجينات التي حققت مؤخرًا^15،22.

خلال تحديد فعالية المركبات الكيميائية ، إذا كان الجين المستهدف للمخدرات المحتمل ضروريًا ، فإن مقارنة التحولات في قيم IC₅₀ بين سلالات البرية وسلالات خروج المغلوب ليست عملية. في هذا السيناريو ، يلزم قياس مباشرة قدرة المركبات الكيميائية على تثبيط نشاط البروتين المؤتلف لتقييم فعالية وخصوصية الأدوية. ذكرت الأدبيات الحديثة عشرات اللياقة البدنية من الجينات الفردية في توكسوبلازما من خلال أداء شاشة CRISPR الجينوم واسعة³⁰, التي يمكن أن تكون بمثابة دليل للمساعدة في تقييم صعوبة توليد متحولة خروج المغلوب على التوالي لجين الفائدة.

ويصف البروتوكول، الذي أخذ معاً، الإكمال الناجح لتقويم نمو توكسوبلازما داخل الخلايا القائم على الخلايا واستراتيجية تقييم للمثبطات الكيميائية ضد نمو توكسوبلازما. كما يتم تفصيل بروتوكول تحرير الجينوم المستند إلى CRISPR-Cas9 لحذف الجينات في طفيليات توكسوبلازما ، والذي تم استخدامه على نطاق واسع في هذا المجال. يمكن للمختبرات الفردية تعديل البروتوكول الموصوف وفقًا للاحتياجات التجريبية ، مثل وضع علامات الجينات الذاتية ، وتبديل علامات اختيار الأدوية ، وتغيير فترة التقييم لنمو الطفيليات داخل الخلايا.

وليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه.

يود المؤلفان أن يشكرا الدكتورين سيبلي وكاروثرز على مشاركة pSAG1-Cas9-sgRNA-TgUPRT plasmid وAnti-TgCPL وTgActin. تم دعم هذا العمل من قبل صندوق كليمسون بدء التشغيل (إلى Z.D.) ، فرسان فرسان الطب المنجل مؤسسة طب الأطفال طب العيون الوظيفي مبتدئ منحة البحوث (إلى Z.D.) ، منحة تجريبية من منحة NIH COBRE P20GM109094 (إلى Z.D.) ، وNIH R01AI143707 (إلى Z.D.). لم يكن للممولين أي دور في تصميم الدراسة أو جمع البيانات وتحليلها أو قرار نشر المخطوطة أو إعدادها.