Bu eser hibe Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı Çin (31201086, 31470759 ve 31671219) ve Şangay doğal Bilim Vakfı (12ZR1436900) tarafından desteklenmiştir.

C57BL/6 fareler özel patojen-Alerjik durumlar yetiştirilmiş. Tüm hayvan deneysel hayvan bakım ve ikinci askeri Tıp Üniversitesi Etik Komitesi tarafından onaylanmış yönergelere uygun yöntemlerdir.
 1. diseksiyon, Postnatal gelişmekte olan hipofiz bezi <ol><li>gerçekleştir anestezi: yenidoğan fareler (P0 - P5) hipotermi ikna etmek için ezilmiş buz koyun. 5 günden büyük fareler için %5 üretan (30 µL/g vücut ağırlığının) anestezi ikna etmek için intraperitoneally enjekte et. Kuyruk/Pinch ayak yanıt-e doğru değerlendirmek. Sadece fare için zararlı uyaranlara yanıt vermemesine neden olur sonra devam.</li>
	<li>Yavaşça forepaws taping tarafından fare (yüz yukarı arkasında yatan) sırtüstü pozisyonda güvenli ve hindpaws olma yeteneğine sahip bir çalışma yüzeyinin için pinned (Yani, strafor) bir kimyasal duman başlık içinde.</li>
	<li>Transcardial perfüzyon gerçekleştirmek.
	<ol><li>Fare kafesi kalp (ve torasik diğer organlara) ortaya çıkarmak için cerrahi makasla kesti.</li>
		<li>Kalbi künt Forseps ile güvenli ve 26 G (0,45 mm) iğne sol ventrikül yerleştirin. İğne heparinized fosfat tamponlu tuz ile dolu bir 10 mL şırınga bağlı olduğu (PBS; 5 mg/mL sodyum nitrit ve 10 U/mL heparin ile desteklenmiş, pH 7.4, sıcak kullanmadan önce 37 ° c). Hemen sağ atrium iyi makasla kesmek ve sağ Kulakçık çıkmadan sıvı temizlenene kadar sıcak PBS ile vücut sıvı başlar. 
		Not: yaklaşık 5-10 mL PBS yenidoğan fareler için gereklidir ve 10-20 mL PBS yetişkin fareler için.</li>
		<li>İğne tutmak ve % 4 paraformaldehyde (PFA; pH 7,4) dolu bir şırınga için değiştirin. 10 mL ve sabitleştirici için 20 mL sıvı yenidoğan ve P21 fare, sırasıyla. 
		Dikkat: PFA zehirlidir. Cilt ve solunum tahrişleri ve göz zarar neden olabilir. Eldiven ve iş bir kimyasal başlık altında.</li>
	</ol></li> <li>PFA-sabit fare başını kesmek ve kafatası kemik makasla kesip.
	<ol><li>Yavaşça küçük Forseps ile arka beyin kafatası tabanından kaldırın. Sella turcica ilk belirtisinde durağı kaldırma ama tutun arka beyin, kesme hipofiz sapı ve sinir lifleri beynin tabanına iyi makas ile bağlanma. Bu hipofiz uzakta beyinle kaldırdı değil emin olmak için kritik bir adımdır.</li>
		<li>Sonra beyin kaldırma tutmak ve tüm beyin hipofiz bezi tam olarak ortaya çıkarmak için kaldırın. Hipofiz bezi, yanal trigeminal sinir, dahil olmak üzere tüm sella bölge kesmek ve makas (yaklaşık 3 x 5 mm 2) ile ense kemiği altında.</li>
	</ol></li> <li>Disseke doku içine bir 35 mm çanak ya da bir şey 2 mL soğuk %4 içeren 6-şey plaka koymak PFA (pH 7,4). Saptamak için P0 - P7 pituitaries, P14 pituitaries, P21 - P28 pituitaries ve yetişkin pituitaries için 3 h için 1,5 saat için 1 saat 40 dk 4 ° C'de doku.</li>
	<li>Daha fazla ayrışma, hipofiz <ol><li>sabit doku 10 mL PBS, 5 değişiklikleri, 15 dk ile yıkayın. Yenidoğan hipofiz bezi ile birlikte onun çevre dokular ve ense kemiği altında aşırı su kaybına doğrudan işlenebilir. Ancak, hipofiz bezlerin fareler 5 günden daha eski üzerinden ayrışmış başka bir stereo mikroskop altında.</li>
		<li>Sabit doku 1 mL PBS içeren bir 35 mm çanak içine koymak. P5 - P14 pituitaries, için sinirler ve iyi forseps ve makas ile kemik arasındaki bağ membranlar kaldırmak ve dikkatle yanal trigeminal sinir birlikte hipofiz bezi sella turcica bırakarak ancak bir bütün izole. İzole bezi ve sinirler ile bağ membranlar tarafından bağlı bir &#34; H &#34;-hangi tarihlerde görünüm ( şekil 1B).</li>
		<li>İçin P21 ve yetişkin pituitaries, sinirler ve hipofiz etrafında bağ membranlar kaldırmak ve bezi çevre dokular üzerinden ücretsiz. Hipofiz bezi doku kağıt mendil temizlik lens ile sarın ve gömme bir kaset koy. 
		Not: küçük hipofiz lens temizleme kağıt mendil ile kaydırma örneklerin herhangi bir olası kaybını önlemek ve parafin katıştırma aşağıdaki yordamdaki doku bütünlüğünün korunması için yardımcı olur. Cryo-gömme yordamdaki küçük bir şişe içinde işlense hipofiz kaydırılmasına gerek kalmayabilir.</li>
	</ol></li></ol> 2. Katıştırma ve Sectioning alkol <ol><li>15 dk için % 50, % 65, %75 ve % 95 etanol çözümleriyle kaset katıştırma olarak numuneler kurutmak. Daha sonra saf etanol, 3 dakikadır her P0 - 3 değişikliklerle P4 bezleri, P5 - P14 bezleri ve 5 min için her 4 dk P21 ve büyük bezleri için kurutmak. Ksilen ile net, 3, 3 dakikadır her P0 - P4 bezleri, P5 - P14 bezleri ve 5 min için her 4 dk P21 ve büyük bezleri için değiştirir. Erimiş parafin mum, 3 değişiklikleri, 7 dk P0 - P4 bezleri, sızmak ve 8 min iki kez izledi tarafından 6 dk bir kez P5 ve büyük bezleri için. 
	Not: Doku işleme için en uygun parametreler ampirik olarak ayarlanabilir. Yüksek kaliteli bölümler elde etmek için yaşında veya yetersiz dehidrasyon kaçınılmalıdır. Aynı Ksilen kullanarak doku temizlenmesi için geçerlidir.</li>
	<li>Katıştırırken yönlendirme <ol><li>konsol sistemi, gömme bir doku üzerinde örnek kaset çıkarın ve yarı erimiş parafin mum ile dolu temel bir kalıp içine yerleştirin. Gömme hipofiz bezinin uygun yönlendirmeyi koronal bölümleri tatmin edici esastır.</li>
		<li>İçin P21 ve yetişkin hipofiz bezleri, hipofiz bezi temel kalıp (bölüm uçak) alt yüzeyine dik kısa ekseni ile getirin. Ense kemikler ve trigeminal sinir anatomik yerlerinden P0 - P4 ve P5 - P14 pituitaries, sırasıyla kullanın. Numuneler ile onların trigeminal sinir ya da enine lamina ense kemik bir temel kalıp alt yüzeyine dik orient.</li>
		Balmumu soğutma tabağa yarı katı hale gelene kadar <li>yavaşça doku istenen konumda ısıtılmış ince Forseps ile tutun. Kalıp erimiş parafin mum ile kontör. Balmumu tamamen katılaşmış kadar soğumasını parafin blok izin. 
		Not: Hipofiz (E18.5) embriyonik gün 18,5 yenidoğan hipofiz olarak aynı şekilde tedavi edilebilir. Ama pituitaries (Rathke &#39; s torbalar içinde) E16.5 ile tüm baş gömülü ve temel bir kalıp alt yüzeyine dik sagittal eksen (ağzından occiput) ile odaklı daha genç değil.</li>
	</ol></li> <li>Sonra kesti ve parafin blok için 10-20 dk-20 ° C'de soğuk içine ince dilimleri (4 µm kalınlık tercih edilir) ile bir microtome. Tatmin edici koronal bölümler elde etmek için ince kesit sırasında parafin blok konumunu ayar. Doku dilimleri dilimleri aşağıdaki yordamlar dekolmanı önlemek için polylysine kaplı cam slaytlar üzerine monte. 
	Not: Alternatif olarak, örneklerin % 15, susuz %30 (W/V) Sükroz çözümlerinde (PBS) aynı yönlendirme yöntemini kullanarak bileşik cryo katıştırma katıştırılmış ve hızlı bir şekilde kuru buzda donmuş alt lavabo kadar 4 ° C'de. O zaman donmuş doku bloklar bir cryostat kullanarak 8-10 µm dilimler halinde kesin. Cryo-kesitler, Morfoloji ancak, sık sık alkol bölümleri aşağı kalır yanı yok.</li>
</ol> 3. H &#38; E boyama ve ayirt etiketleme <ol><li>, sıcak bir ısı slaytlarda blok 55 ° C'de ve dewax Ksilen, 2 değişiklik, 4 dk ile her. % 95 etanol iki kez ve % 75 etanol iki kez, 3 dk örnekleriyle kurutmak. Slayt üzerinde bir shaker 5 min için distile su ile yıka.</li>
	<li>H için &#38; E boyama, şap Hematoksilen çözüm için 6 dk bölümlerde leke, durulama runn içindeIng musluk suyu 2 dakika, 45 s ve durulama akan suyun 2 dakika içinde yeniden için % 0,2 amonyaklı su ile ayırt etmek. 1 dk ve leke için 2 min. Eozin ile sırayla kurutmak, Sil ve mount için % 95 etanol bölümlerle kurutmak.</li>
	<li><ol><li>Ayirt etiketleme bölümleri % 3 H 2 O 2 ve % 0,01 NaN 3 endojen peroxidases devre dışı bırakabilirsiniz için oda sıcaklığında 20 dakika içeren metanol ile tedavi. 37 30 dk için engelleme arabellek (%5 keçi serum içinde PBS) bölümlerle bir düdüklü tencere 2 dk. Incubate alma arabellek (1 mM EDTA ve 1 mM Tris-HCl, pH 7,4) bölümlerinde kaynatılarak antijenleri almak ° C.</li>
		<li>Engelleme arabellekte gecede 4'te seyreltilmiş bölümleri tavşan Anti-büyüme hormonu (GH) antikor (1:2, 000) veya tavşan anti-gliyal fibrillary asidik protein (GFAP'nin) antikor (1:2, 000) ile kuluçkaya ° C.</li>
		<li>35 dk. 37 için ikincil antikor (keçi Anti-tavşan IgG-HRP, 1:300 engelleme arabelleği) bölümlerle kuluçkaya ° C.</li>
		<li>15 dakika oda sıcaklığında Biotinyl Tyramide (1:50 Tris arabelleğe alınmış serum fizyolojik içeren %0,3 H 2 O 2) kullanarak sinyalleri yükseltmek ve Streptavidin-Alexa594 veya 488 (kapatmaktır tampon, 30 dk, 37 ° C 1:300) ile görselleştirmek.</li>
		<li>Counterstain DAPI (50 mg/L PBS) ile çekirdeği oda sıcaklığında 5 min için. 
		Not: Tyramide sinyal güçlendirme (TSA) sistemi kullanarak sinyali yükseltmek gerekli olmayabilir. Alternatif olarak, Floresans Birleşik ikincil antikor sinyal görselleştirmek için kullanılabilir.</li>
	</ol></li> <li>Floresan mikroskop kullanarak edinme görüntüleri 40/0,75 hedefleri ve 5,0 megapiksel kamera DAPI, Texas kırmızı ve FITC filtre setleri, × 4/0,13 × ile donatılmıştır. 360, 488 ve 594 nm lazer dalga boyu görüntüleme DAPI, Alexa 488 - ve kesitler, Alexa 594 lekeli için sırasıyla kullanın. Lazer güç en iyi duruma getirme (0,8 genellikle kullanıldı) ve her kanal için istenilen düzeylere çekim hızı. Görüntü alma yazılımı kontrol altında görüntü yakalama ve daha sonra görüntü işleme yazılımı kullanarak floresan görüntü.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Fauquier, T., Lacampagne, A., Travo, P., Bauer, K., Mollard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hidden+face+of+the+anterior+pituitary.">Hidden face of the anterior pituitary.</a> Trends Endocrinol Metab. 13 (7), 304-309 (2002).</li><li>Haedo, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+pituitary+function+by+cytokines.">Regulation of pituitary function by cytokines.</a> Horm Res. 72 (5), 266-274 (2009).</li><li>Zhu, X., Gleiberman, A. S., Rosenfeld, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+physiology+of+pituitary+development:+signaling+and+transcriptional+networks.">Molecular physiology of pituitary development: signaling and transcriptional networks.</a> Physiol Rev. 87 (3), 933-963 (2007).</li><li>Bancalari, R. E., Gregory, L. C., McCabe, M. J., Dattani, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pituitary+gland+development:+an+update.">Pituitary gland development: an update.</a> Endocr Dev. 23, 1-15 (2012).</li><li>Kelberman, D., Rizzoti, K., Lovell-Badge, R., Robinson, I. C., Dattani, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+regulation+of+pituitary+gland+development+in+human+and+mouse.">Genetic regulation of pituitary gland development in human and mouse.</a> Endocr Rev. 30 (7), 790-829 (2009).</li><li>Peker, S., Kurtkaya-Yapicier, O., Kilic, T., Pamir, M. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microsurgical+anatomy+of+the+lateral+walls+of+the+pituitary+fossa.">Microsurgical anatomy of the lateral walls of the pituitary fossa.</a> Acta Neurochir (Wien). 147 (6), 641-648 (2005).</li><li>Wolpert, S. M., Molitch, M. E., Goldman, J. A., Wood, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Size,+shape,+and+appearance+of+the+normal+female+pituitary+gland.">Size, shape, and appearance of the normal female pituitary gland.</a> AJR Am J Roentgenol. 143 (2), 377-381 (1984).</li><li>Carbajo-Perez, E., Watanabe, Y. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+proliferation+in+the+anterior+pituitary+of+the+rat+during+the+postnatal+period.">Cellular proliferation in the anterior pituitary of the rat during the postnatal period.</a> Cell Tissue Res. 261 (2), 333-338 (1990).</li><li>Nantie, L. B., Himes, A. D., Getz, D. R., Raetzman, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Notch+signaling+in+postnatal+pituitary+expansion:+proliferation,+progenitors,+and+cell+specification.">Notch signaling in postnatal pituitary expansion: proliferation, progenitors, and cell specification.</a> Mol Endocrinol. 28 (5), 731-744 (2014).</li><li>Tzou, S. C., Landek-Salgado, M. A., Kimura, H., Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+mouse+pituitary+immunogen+for+the+induction+of+experimental+autoimmune+hypophysitis.">Preparation of mouse pituitary immunogen for the induction of experimental autoimmune hypophysitis.</a> J Vis Exp. (46), (2010).</li><li>Budry, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Related+pituitary+cell+lineages+develop+into+interdigitated+3D+cell+networks.">Related pituitary cell lineages develop into interdigitated 3D cell networks.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (30), 12515-12520 (2011).</li><li>Wilson, D. B., Wyatt, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Histopathology+of+the+pituitary+gland+in+neonatal+little+(lit)+mutant+mice.">Histopathology of the pituitary gland in neonatal little (lit) mutant mice.</a> Histol Histopathol. 7 (3), 451-455 (1992).</li><li>Jonkers, B. W., Sterk, J. C., Wouterlood, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcardial+perfusion+fixation+of+the+CNS+by+means+of+a+compressed-air-driven+device.">Transcardial perfusion fixation of the CNS by means of a compressed-air-driven device.</a> J Neurosci Methods. 12 (2), 141-149 (1984).</li><li>Cao, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ZBTB20+is+required+for+anterior+pituitary+development+and+lactotrope+specification.">ZBTB20 is required for anterior pituitary development and lactotrope specification.</a> Nat Commun. 7, 11121 (2016).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Fare pituitaries geliştirmek için bu küçük ve kırılgan özellikleri ve benzersiz anatomik özellikleri6,8nedeniyle uygun koronal bölümler elde etmek teknik olarak zor oldu. Bazı araştırma grupları böylece embriyonik ve neonatal hipofiz11,12morfolojisi çözümlemek için orta-sagittal bölümleri seçti. Yine de hipofiz orta-sagittal bölümünü de anterior, orta gösterilen yeteneğine sahiptir ve bu üç LOB maksimum bir görünüm gösterebilir posterior LOB tek bir dilim içinde koronal bölüm çok tercih edilir. Özellikle, birimin belirlenmesi ve hipofiz bezi ve apoptotik sayılması ve hücreleri, Proliferasyona alanı gibi miktar Etütler koronal bölümleri, temsilcilerine açısından-sagittal bölümlerine üstündür. Burada, hipofiz bezleri teşrih ve fareler gelişmekte olan hipofiz koronal bölümleri hazırlamak yararlı bir yöntem mevcut.
Hipofiz bezleri işlemi sırasında zarar görmesini önlemek için bu protokol için çeşitli teknikler kullanılmıştır. İlk olarak, fare transcardial perfüzyon formaldehit diseksiyon önce tarafından sabitlenir. Bu sabitleştirici sadece organ mimari korumak için aynı zamanda genellikle otomatik Floresans13' te neden kırmızı kan hücreleri kaldırmak için yardımcı olur. İkinci olarak, herhangi bir cerrahi zor araçlarıyla hipofiz bezi dokunmaktan kaçının için tüm sella bölge kesmiştim. Çevre dokular hipofiz bezi orijinal konumunda tutmak ve aynı zamanda yönlendirme katıştırma için simge olarak hizmet için yardım. İstihdam bu yöntemler ile daha küçük postnatal pituitaries genç hayvanlar üzerinden istenmeyen zarar olasılığını azaltmak iken disseke.
Bu iletişim kuralı diseksiyon yordamda da perfüzyon tarafından önceden sabit değil fare hipofiz yalıtmak için geçerlidir. Bu durumda, herhangi bir istenmeyen zarar önlemek için daha fazla dikkatli alınmalıdır ve bezi de kısa zamanda disseke.
Gelişmekte olan fare pituitaries boyutu çok küçük olduğundan, onları düzgün Katıştırırken yönlendirmek çok zor olmuştur. Bu protokol trigeminal sinir veya ense kemik yönlendirme adımlar çok daha kolay hale yerler kullanır. Düzgün odaklı pituitaries koronal bölümleri tatmin edici ulaşmak için gereklidir.
Özetle, biz gelişmiş bir hipofiz diseksiyon ve farklı geliştirme aşamalarında fareler için uygun iletişim kuralı katıştırma sağlar. Bu yordamlardan birini uygulama rutin Histoloji, immünhistokimya, in situ hibridizasyon ve gelişimsel araştırma14analizi için kullanılmak üzere fare hipofiz bezleri koronal bölümlerini tatmin elde edebilirsiniz.

Önemli bir endokrin organ homeostazı1,2için gerekli hormonlar salgılayan hipofiz bezi veya hypophysis olduğunu. Anatomik olarak, hipofiz bezi, nörohipofiz ve adenohipofiz oluşan bir '' iki-in-one'' yapısıdır. Bu parçaların farklı embriyonik kökenleri ve işlev farklı var. Nörohipofiz sinirsel ektoderm türetilmiştir ve oksitosin ve Antidiüretik hormon salgılar. Adenohipofiz Rathke'nın çantası kaynaklı ve dahil olmak üzere büyüme hormon, prolaktin, tiroid - uyarıcı hormon, folikül - uyarıcı hormon, Lüteinizan, adrenocorticotropic hormon, hormon serbest bırakmak için sorumludur ve melanosit - uyarıcı hormon3,4,5.
Hipofiz bezi fare kafatası ense kemiği (sella turcica) dorsal yüzeye aittir ve beynin tabanına kırılgan bir SAP tarafından eklenir. Yanal trigeminal sinir tarafından ve anteriorly optik hemisferlerine6,7ile çevrilidir. Bezinin uzun ekseni başı dik bir uzun oval şekil vardır. Dorsal yüzeyi nörohipofiz ve adenohipofiz kolayca, dorsal orta bölge ve yanal ve ventrally ikinci uzanan işgal eski ile demarcated. Postnatal geliştirme sırasında ilk ay sonra doğum8,9hipofiz boyutunu hızla artar. Yine de, fare hipofiz hala çok küçük boyutu 1,9 mg bir ortalama ağırlığı ve uzun eksen çapı ~ 3 mm ile yetişkin10, postnatal gün 21 (P21) 2-2.5 mm ve P0 yalnızca 1-1.5 mm uzun eksen çapı.
Koronal bir bölümü adenohipofiz ve nörohipofiz fare hipofiz tek bir dilim içinde görüntülemek için tercih edilir. Ancak, bazı teknik becerileri fareler son derece küçük boyutu ve farklı anatomi nedeniyle gelişmekte olan hipofiz bezlerinin koronal bölümleri tatmin elde etmek için gereklidir. Video bu makalede, biz nasıl fare hipofiz bezleri teşrih ve hipofiz koronal bölümleri farklı geliştirme aşamalarında hazırlayın göstermek.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Tools/Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical scissors-straight</td>
			<td>JinZhong</td>
			<td>J21010</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine scissors-strainght</td>
			<td>JinZhong</td>
			<td>WA1010</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt forceps</td>
			<td>JinZhong</td>
			<td>JD1020</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>RS-5015</td>
			<td>for isolation of the pituitary</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26G (0.45mm) needle</td>
			<td>HongDa</td>
			<td></td>
			<td>for transcardial perfusion</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe (1 mL)</td>
			<td>BD</td>
			<td>300841</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe (10 mL)</td>
			<td>BD</td>
			<td></td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>35mm dish</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430165</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lens cleaning paper</td>
			<td>ShuangQuan</td>
			<td></td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anatomical microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZX-ILLB2-200</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embedding cassette</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>22-272423</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue embedding console system</td>
			<td>KEDEE</td>
			<td>KD-BM11</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>HM315R</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superfrost-Plus slides</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>22-037-246</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cover glass</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>12-543</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>BH2-RFCA</td>
			<td>can be purchased from other vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reagents</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Urethane</td>
			<td>BBI</td>
			<td>EB0448</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S9625</td>
			<td>for PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KCl</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9541</td>
			<td>for PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2HPO4.12H2O</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>71650</td>
			<td>for PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K2HPO4</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P2222</td>
			<td>for PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaNO2</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>237213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Sodium Injection</td>
			<td>SPH</td>
			<td>H31022051</td>
			<td>for perfusion saline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde (PFA)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P6148</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10009218</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene</td>
			<td>SCR</td>
			<td>10023418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>8330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H9627</td>
			<td>for H&#38;E staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eosin Y</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>E4009</td>
			<td>for H&#38;E staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rabbit anti growth hormone (GH)</td>
			<td>National Hormone</td>
			<td></td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>antibody</td>
			<td>Pituitary Program</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rabbit anti-mouse GFAP antibody</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G9269</td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat anti-rabbit IgG, HRP</td>
			<td>Jackson</td>
			<td>111-035-003</td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TSA system</td>
			<td>NEN Life Science Products</td>
			<td>NEL700</td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Streptavidin, Alexa Fluor 594</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>S32356</td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-FITC Alexa Fluor 488</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>A11090</td>
			<td>for immunostaining</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection and coronal slice preparation of developing mouse pituitary gland

Önemli bir endokrin organ homeostazı için gerekli hormonlar salgılayan hipofiz bezi veya hypophysis olduğunu. O oluşmak-in iki bezleri ile ayrı embriyonik kökenleri ve görev — nörohipofiz ve adenohipofiz. Küçük ve narin bir uzun oval şekli ile gelişmekte olan fare hipofiz bezi bulunmaktadır. Koronal bir bölümü adenohipofiz ve nörohipofiz fare hipofiz tek bir dilim içinde görüntülemek için tercih edilir.
Bu iletişim kuralı uygun hipofiz koronal bölümleri fareler gelişmekte olan iyi korunmuş doku mimarileri ile ulaşmak hedeftir. Bu protokol için ayrıntılı olarak incelemek ve hipofiz bezlerinin düzgün üzerinden fare geliştirme işlemek nasıl açıklar. İlk olarak, fare transcardial perfüzyon formaldehit diseksiyon önce tarafından sabitlenir. Daha sonra üç farklı diseksiyon teknikleri sağlam hipofiz bezlerin fareler yaş bağlı olarak elde etmek için uygulanır. Fetal farelerin embriyonik gün (E) 17,5-18,5 ve Yenidoğan Bebeklerin yukarı 4 gün olarak yaşları için ense kemiği, bezi ve trigeminal sinir de dahil olmak üzere tüm sella bölgeleri kesmiştim. Yavrular için bir bütün olarak trigeminal sinir ile bağlı yaşında doğum sonrası gün (P) 5-14, hipofiz bezleri disseke. 3 hafta boyunca fareler için hipofiz bezleri dikkatle ücretsiz çevre dokulardan disseke. Ayrıca nasıl koronal bölümleri tatmin elde etmek için simge çevre dokular kullanarak uygun yönde hipofiz bezleri katıştırmak için görüntüler. Bu yöntemleri fareler gelişmekte olan hipofiz bezlerinin histolojik ve gelişimsel özellikleri analiz yararlıdır.

Bu iletişim kuralı fareler gelişmekte olan hipofiz bezleri incelemek için bir yöntem sunuyor. Yenidoğan fare, hipofiz bezi, trigeminal sinir ve iç çamaşırım içeren tüm sella bölgelerin ense kemik kafatası tabanından dışarı disseke. Küçük ve narin hipofiz bezi (şekil 1A) işlemi sırasında olduğu gibi kaldı. 5 günden daha eski fareler için yanal trigeminal sinir bağlı hipofiz bezleri o zamanlar izole. Fare iyi korunmuş P7 izole hipofiz bezi (şekil 1B) brüt yapısı. P21 fare için hipofiz bezi boyutunu oldukça yenidoğan fare kıyasla arttı. Hipofiz bezi onun çevre dokular (şekil 1 c) kaldırılırken görünmez hasar ile başarılı bir şekilde izole edildi.
En büyük bölge adenohipofiz ve nörohipofiz hipofiz tek bir dilim içinde görüntülemek için koronal bir bölümü tercih edilir. Disseke hipofiz bezleri koronal bölümleri tatmin elde etmek için düzgün odaklı. H &#38; E de gösterdi boyama korunmuş Morfoloji adenohipofiz ve nörohipofiz P0, P7 ve P21 hipofiz bezleri (Resim 2).
İşlenmiş dilimleri de ayirt etiketleme ile uyumlu idi. Örneğin, adenohipofiz ve GH ve GFAP'nin, belirli immunolabeling sırasıyla gösterdi nörohipofiz (şekil 3).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56356/56356fig1.jpg"> 
Şekil 1: Doğum sonrası gelişen hipofiz bezlerinin diseksiyon. Dorsal sayısı disseke hipofiz bezleri ve çevre dokular P0, P7 ve P21 fare üzerinden. A, ön; P, posterior; L, sol; R, doğru; SB, ense kemik; TN, trigeminal sinir; AH, adenohipofiz; NH, nörohipofiz. Ölçek çubukları, 1 mm. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56356/56356fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56356/56356fig2.jpg"> 
Şekil 2: fare hipofiz bezlerinin Histoloji. Temsilcisi H &#38; E P0, P7 ve P21 fareler hipofiz koronal bölümleri üzerinde boyama. (A, Bve C) Koronal pituitaries, düşük büyütme görünümler vardır. (D, Eve F) (A, Bve C) içinde belgili tanımlık çerçeveli alan genişleme sırasıyla vardır. Ölçek çubukları = 1 mm içinde (A, B ve C); ve 20 µm (D, E ve F). <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56356/56356fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56356/56356fig3.jpg"> 
Şekil 3: temsilcisi immünfloresan hipofiz bezleri üzerinde boyama. (A)GH (kırmızı) özellikle adenohipofiz P7 fareler gelen içinde ifade. (B) Magnified görüntü A. (C) GFAP'nin (yeşil) çerçeveli alanında özellikle nörohipofiz P21 fareler gelen içinde ifade. (D) Magnified görüntü C. çekirdeği çerçeveli alanında DAPI (mavi) ile lekeli. Ölçek çubuğu = 300 µm (A ve C); ve 30 µm (B ve D). <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56356/56356fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Dissection and Coronal Slice Preparation of Developing Mouse Pituitary Gland at JoVE.com

Dissection and Coronal Slice Preparation of Developing Mouse Pituitary Gland

Diseksiyon ve fare hipofiz bezi geliştirme koronal dilim hazırlık

Biz hipofiz bezleri teşrih ve fareler gelişmekte olan hipofiz koronal bölümleri hazırlamak için bir protokol mevcut.

The pituitary gland or hypophysis is an important endocrine organ secreting hormones essential for homeostasis. It consists of two glands with separate ...

dissection-coronal-slice-preparation-developing-mouse-pituitary

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

17.1K Görüntüleme.  Second Military Medical University. Biz hipofiz bezleri teşrih ve fareler gelişmekte olan hipofiz koronal bölümleri hazırlamak için bir protokol mevcut.

Video: Dissection and Coronal Slice Preparation of Developing Mouse Pituitary Gland

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical and molecular methods provides information of potential target genes and signaling pathways. To further elucidate specific regulatory mechanisms requires a system allowing the manipulation of only a small number of cells of a specific tissue by either overexpression, ablation or re-introduction of specific genes and follow their fate during development. To achieve this ex utero electroporation of hippocampal structures, especially the dentate gyrus, followed by organotypic slice culture provides such a tool. Using this system to generate mosaic deletions allows determining whether the gene of interest regulates cell-autonomously developmental processes like progenitor cell proliferation or neuronal differentiation. Furthermore it facilitates the rescue of phenotypes by re-introducing the deleted gene or its target genes. In contrast to in utero electroporation the ex utero approach improves the rate of successfully targeting deeper layers of the brain like the dentate gyrus. Overall ex utero electroporation and organotypic slice culture provide a potent tool to study regulatory mechanisms in a semi-native environment mirroring endogenous conditions.

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Here we present a protocol providing a tool to examine regulatory mechanisms of specific genes during hippocampal development. Employing ex utero electroporation and organotypic slice culture allows the up- and down-regulation of the expression of genes of interest in single cells and follow their fate during development.

Fare Hipokampal Doku Ex Utero Elektroporasyon ve Organotipik Dilim Kültür

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical ...

Gelişim Biyolojisi

Methods to Examine the Lymph Gland and Hemocytes in Drosophila Larvae

Many parallels exist between the Drosophila and mammalian hematopoietic systems, even though Drosophila lack the lymphoid lineage that characterize mammalian adaptive immunity. Drosophila and mammalian hematopoiesis occur in spatially and temporally distinct phases to produce several blood cell lineages. Both systems maintain reservoirs of blood cell progenitors with which to expand or replace mature lineages. The hematopoietic system allows Drosophila and mammals to respond to and to adapt to immune challenges. Importantly, the transcriptional regulators and signaling pathways that control the generation, maintenance, and function of the hematopoietic system are conserved from flies to mammals. These similarities allow Drosophila to be used to genetically model hematopoietic development and disease.
Here we detail assays to examine the hematopoietic system of Drosophila larvae. In particular, we outline methods to measure blood cell numbers and concentration, visualize a specific mature lineage in vivo, and perform immunohistochemistry on blood cells in circulation and in the hematopoietic organ. These assays can reveal changes in gene expression and cellular processes including signaling, survival, proliferation, and differentiation and can be used to investigate a variety of questions concerning hematopoiesis. Combined with the genetic tools available in Drosophila, these assays can be used to evaluate the hematopoietic system upon defined genetic alterations. While not specifically outlined here, these assays can also be used to examine the effect of environmental alterations, such as infection or diet, on the hematopoietic system.

Methods to Examine the Lymph Gland and Hemocytes in Drosophila Larvae

Drosophila and mammalian hematopoietic systems share many common features, making Drosophila an attractive genetic model to study hematopoiesis. Here we demonstrate dissection and mounting of the major larval hematopoietic organ for immunohistochemistry. We also describe methods to assay various larval hematopoietic compartments including circulating hemocytes and sessile crystal cells.

Yöntemler Lenf Bezi ve Hemocytes içinde incelemek için<em&gt; Drosophila</em&gt; Larva

Many parallels exist between the Drosophila and mammalian hematopoietic systems, even though Drosophila lack the lymphoid lineage that characterize ...

Live Confocal Imaging of Developing Arabidopsis Flowers

The study of plant growth and development has long relied on experimental techniques using dead, fixed tissues and lacking proper cellular resolution. Recent advances in confocal microscopy, combined with the development of numerous fluorophores, have overcome these issues and opened the possibility to study the expression of several genes simultaneously, with a good cellular resolution, in live samples. Live confocal imaging provides plant biologists with a powerful tool to study development, and has been extensively used to study root growth and the formation of lateral organs on the flanks of the shoot apical meristem. However, it has not been widely applied to the study of flower development, in part due to challenges that are specific to imaging flowers, such as the sepals that grow over the flower meristem, and filter out the fluorescence from underlying tissues. Here, we present a detailed protocol to perform live confocal imaging on live, developing Arabidopsis flower buds, using either an upright or an inverted microscope.

Live confocal imaging provides biologists with a powerful tool to study development. Here, we present a detailed protocol for the live confocal imaging of developing Arabidopsis flowers.

Arabidopsis Çiçek Gelişmekte Konfokal Görüntüleme Canlı

The study of plant growth and development has long relied on experimental techniques using dead, fixed tissues and lacking proper cellular resolution. ...

Dissection of Larval Zebrafish Gonadal Tissue

Although wild zebrafish possess a ZZ/ZW sex-determination system, domesticated zebrafish have lost the sex chromosome. They utilize a polygenic sex determination system, where several genes distributed throughout the genome collectively determine the sex identities of individual fish. Currently, the genes involved in regulating gonad development and how they work remain elusive. Normally, isolating gonadal tissue is the first step to examine the sex developmental processes. Here, we present a procedure to isolate gonadal tissue from 17 dpf (days post fertilization) and 25 dpf zebrafish larvae. The isolated gonadal tissue may be subsequently examined by morphology and gene expression profiling.

Here, we present a protocol for isolating gonadal tissue of larval zebrafish, which will facilitate investigations of zebrafish sex differentiation and maintenance.

Larva Zebra balığı Gonadal Doku Diseksiyon

Although wild zebrafish possess a ZZ/ZW sex-determination system, domesticated zebrafish have lost the sex chromosome. They utilize a polygenic sex ...

Dissection and Culture of Mouse Embryonic Kidney

The goal of this protocol is to describe a method for the dissection, isolation, and culture of mouse metanephric rudiments. 
During mammalian kidney development, the two progenitor tissues, the ureteric bud and the metanephric mesenchyme, communicate and reciprocally induce cellular mechanisms to eventually form the collecting system and the nephrons of the kidney. As mammalian embryos grow intrauterine and therefore are inaccessible to the observer, an organ culture has been developed. With this method, it is possible to study epithelial-mesenchymal interactions and cellular behavior during kidney organogenesis. Furthermore, the origin of congenital kidney and urogenital tract malformations can be investigated. After careful dissection, the metanephric rudiments are transferred onto a filter that floats on culture medium and can be kept in a cell culture incubator for several days. However, one must be aware that the conditions are artificial and could influence the metabolism in the tissue. Also, the penetration of test substances could be limited due to the extracellular matrix and basal membrane present in the explant.
One main advantage of organ culture is that the experimenter can gain direct access to the organ. This technology is cheap, simple, and allows a large number of modifications, such as the addition of biologically active substances, the study of genetic variants, and the application of advanced imaging techniques.

This protocol describes a method for isolating and culturing metanephric rudiments from mouse embryos.

Fare Embriyonik Böbreklerinin Diseksiyonu ve Kültürü

The goal of this protocol is to describe a method for the dissection, isolation, and culture of mouse metanephric rudiments. 
During mammalian kidney ...

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a pupal case. The challenge of dissecting pupal ovaries also lies in their physical location within the pupa: the ovaries are surrounded by fat body cells inside the pupal abdomen, and these fat cells must be removed to allow for proper antibody staining. To overcome these challenges, this protocol utilizes customized Pasteur pipets to extract fat body cells from the pupal abdomen. Moreover, a chambered coverglass is used in place of a microcentrifuge tube during the staining process to improve visibility of the pupae. However, despite these and other advantages of the tools used in this protocol, successful execution of these techniques may still involve several days of practice due to the small size of pupal ovaries. The techniques outlined in this protocol could be applied to time course experiments in which ovaries are analyzed at various stages of pupal development.

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

The Drosophila ovary is an excellent model system for studying stem cell niche development. Though methods for dissecting larval and adult ovaries have been published, pupal ovary dissections require different techniques that have not been published in detail. Here we outline a protocol for dissecting, staining, and mounting pupal ovaries.

Diseksiyon ve Drosophila pupa yumurtalık boyama

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a ...

Immunohistochemical Detection of 5-Methylcytosine and 5-Hydroxymethylcytosine in Developing and Postmitotic Mouse Retina

The epigenetics of retinal development is a well-studied research field, which promises to bring a new level of understanding about the mechanisms of a variety of human retinal degenerative diseases and pinpoint new treatment approaches. The nuclear architecture of mouse retina is organized in two different patterns: conventional and inverted. Conventional pattern is universal where heterochromatin is localized to the periphery of the nucleus, while active euchromatin resides in the nuclear interior. In contrast, inverted nuclear pattern is unique to the adult rod photoreceptor cell nuclei where heterochromatin localizes to the nuclear center, and euchromatin resides in the nuclear periphery. DNA methylation is predominantly observed in chromocenters. DNA methylation is a dynamic covalent modification on the cytosine residues (5-methylcytosine, 5mC) of CpG dinucleotides that are enriched in the promoter regions of many genes. Three DNA methyltransferases (DNMT1, DNMT3A and DNMT3B) participate in methylation of DNA during development. Detecting 5mC with immunohistochemical techniques is very challenging, contributing to variability in results, as all DNA bases including 5mC modified bases are hidden within the double-stranded DNA helix. However, detailed delineation of 5mC distribution during development is very informative. Here, we describe a reproducible technique for robust immunohistochemical detection of 5mC and another epigenetic DNA marker 5-hydroxymethylcytosine (5hmC), which colocalizes with the &#34;open&#34;, transcriptionally active chromatin in developing and postmitotic mouse retina.

The objective of this report is to describe the protocol for robust immunohistochemical detection of epigenetic markers, 5-methylcytosine (5mC) and 5-hydroxymethylcytosine (5hmC) in developing and postmitotic mouse retina.

5-metilsitozin ve gelişmekte olan 5-arasında bakterilerde görülen immunohistokimyasal tespiti ve Postmitotic fare Retina

The epigenetics of retinal development is a well-studied research field, which promises to bring a new level of understanding about the mechanisms of a ...

Assessment of Ultrastructural Neuroplasticity Parameters After In Utero Transduction of the Developing Mouse Brain and Spinal Cord

The present study combines in utero transduction with transmission electron microscopy (TEM) aiming at a precise morphometrical analysis of ultrastructural parameters in unambiguously identified topographical structures, affected by a protein of interest that is introduced into the organism via viral transfer. This combined approach allows for a smooth transition from macrostructural to ultrastructural identification by following topographical navigation maps in a tissue atlas. High-resolution electron microscopy of the in-utero-transduced tissue reveals the fine ultrastructure of the neuropil and its plasticity parameters, such as cross-sectioned synaptic bouton areas, the number of synaptic vesicles and mitochondria within a bouton profile, the length of synaptic contacts, cross-sectioned axonal areas, the thickness of myelin sheaths, the number of myelin lamellae, and cross-sectioned areas of mitochondria profiles. The analysis of these parameters reveals essential insights into changes of ultrastructural plasticity in the areas of the nervous system that are affected by the viral transfer of the genetic construct. This combined method can not only be used for studying the direct effect of genetically engineered biomolecules and/or drugs on neuronal plasticity but also opens the possibility to study the in utero rescue of neuronal plasticity (e.g., in the context of neurodegenerative diseases).

The combination of transmission electron microscopy and in utero transduction is a powerful approach for studying morphological changes in the fine ultrastructure of the nervous system during development. This combined method allows deep insights into changes in structural details underlying neuroplasticity with respect to their topographical representation.

Sonra Ultrastructural nöroplastisite parametrelerinde Utero iletim gelişmekte olan fare beyin ve omurilik değerlendirilmesi

The present study combines in utero transduction with transmission electron microscopy (TEM) aiming at a precise morphometrical analysis of ...

Tissue Preparation and Immunostaining of Mouse Craniofacial Tissues and Undecalcified Bone

Tissue immunostaining provides highly specific and reliable detection of proteins of interest within a given tissue. Here we describe a complete and simple protocol to detect protein expression during craniofacial morphogenesis/pathogenesis using mouse craniofacial tissues as examples. The protocol consists of preparation and cryosectioning of tissues, indirect immunofluorescence, image acquisition, and quantification. In addition, a method for preparation and cryosectioning of undecalcified hard tissues for immunostaining is described, using craniofacial tissues and long bones as examples. Those methods are key to determine the protein expression and morphological/anatomical changes in various tissues during craniofacial morphogenesis/pathogenesis. They are also applicable to other tissues with appropriate modifications. Knowledge of the histology and high quality of sections are critical to draw scientific conclusions from experimental outcomes. Potential limitations of this methodology include but are not limited to specificity of antibodies and difficulties of quantification, which are also discussed here.

Here, we present a detailed protocol to detect and quantify protein levels during craniofacial morphogenesis/pathogenesis by immunostaining using mouse craniofacial tissues as examples. In addition, we describe a method for preparation and cryosectioning of undecalcified hard tissues from young mice for immunostaining.

Fare Kraniyofacial dokularda ve Undecalcified kemik doku hazırlama ve Immünostasyon

Tissue immunostaining provides highly specific and reliable detection of proteins of interest within a given tissue. Here we describe a complete and ...

Dissection, Culture and Analysis of Primary Cranial Neural Crest Cells from Mouse for the Study of Neural Crest Cell Delamination and Migration

Over the past several decades there has been an increased availability of genetically modified mouse models used to mimic human pathologies. However, the ability to study cell movements and differentiation in vivo is still very difficult. Neurocristopathies, or disorders of the neural crest lineage, are particularly challenging to study due to a lack of accessibility of key embryonic stages and the difficulties in separating out the neural crest mesenchyme from adjacent mesodermal mesenchyme. Here, we set out to establish a well-defined, routine protocol for the culture of primary cranial neural crest cells. In our approach we dissect out the mouse neural plate border during the initial neural crest induction stage. The neural plate border region is explanted and cultured. The neural crest cells form in an epithelial sheet surrounding the neural plate border, and by 24 h after explant, begin to delaminate, undergoing an epithelial-mesenchymal transition (EMT) to become fully motile neural crest cells. Due to our two-dimensional culturing approach, the distinct tissue populations (neural plate versus premigratory and migratory neural crest) can be readily distinguished. Using live imaging approaches, we can then identify changes in neural crest induction, EMT and migratory behaviors. The combination of this technique with genetic mutants will be a very powerful approach for understanding normal and pathological neural crest cell biology.

This protocol describes the dissection and culture of cranial neural crest cells from mouse models, primarily for the study of cell migration. We describe the live imaging techniques used and the analysis of speed and cell shape changes.

Nöral Krest Hücre Delaminasyonu ve Göçü Çalışması İçin Fareden Birincil Kranial Nöral Krest Hücrelerinin Diseksiyonu, Kültürü ve Analizi

Over the past several decades there has been an increased availability of genetically modified mouse models used to mimic human pathologies. However, the ...