Method Article
Здесь мы представляем метод доставки векторы экспрессии вирусных в мозга с помощью пленки Фиброин шелка. Этот метод позволяет адресности векторы выражения с использованием шелка/AAV покрытием оптического волокна, коническая оптических волокон и черепной windows.
Стремление понять как нейронных цепей, обрабатывать информацию в целях поведенческих мощность привода значительно способствовало недавно разработанных оптических методов для манипулирования и мониторинга активности нейронов в естественных условиях. Эти типы экспериментов полагаться на двух основных компонентов: 1) имплантируемых устройств, которые обеспечивают оптический доступ к мозгу и 2) светочувствительные белки, которые изменить возбудимости нейронов или предоставить индикация активности нейронов. Существует ряд способов выразить светочувствительные белков, но стереотаксического инъекции вирусных векторов в настоящее время наиболее гибкий подход, потому что выражение может управляться с точностью, генетические, анатомические и временных. Несмотря на большую полезность вирусных векторов доставлять вирус на сайт оптических имплантатов создает многочисленные проблемы. Стереотаксическая вирусом инъекции требуют хирургических операций, которые увеличивают время хирургических, увеличить стоимость исследований и представляют опасность для здоровья животных. Окружающие ткани могут быть физически повреждены путем инъекций шприц и иммуногенные воспаления, вызванного резким доставки болюс высокий титр вируса. Выравнивание инъекции с оптическим имплантаты особенно трудно, при таргетинге малых регионов глубоко в головном мозге. Чтобы преодолеть эти проблемы, мы описываем метод для покрытия различных типов оптических имплантатов с фильмов состоит из Фиброин шелка и аденоассоциированный вирусных векторов (AAV). Фиброин, полимер производный из кокона Тутовый шелкопряд, может инкапсулировать и защищать биомолекул и могут быть обработаны в формах, начиная от растворимых фильмов для керамики. При имплантированных в мозг, шелк/AAV покрытия выпустить вирус на стыке оптических элементов и окружающих мозг, вождение выражение точно, где она необходима. Этот метод легко реализуется и обещает значительно облегчить в vivo исследования нейронной цепи функции.
За последнее десятилетие подготовил взрыв инженерии светочувствительные белков для мониторинга и манипулирования нейронной активности1. Вирусы предлагают непревзойденную гибкость для выражения этих инструментов optogenetic в мозге. По сравнению с трансгенных животных, вирусы являются гораздо проще для производства, транспортировки и хранения, что позволяет быстрое внедрение новейших инструментов optogenetic. Выражение может быть выполнено генетически различных нейрональных популяций, и вирусы, предназначенные для ретроградного транспорта может использоваться даже для выражения на базе нейрональных подключения2.
Вирусы обычно вводятся с стереотаксического инъекции, которые может быть длительным и сложным. Именно против малых регионов может быть трудно, в то время как вождение выражение более широких областей часто требует много инъекции. Кроме того когда оптическое устройство впоследствии имплантированных в мозг, чтобы доставить свет в естественных условиях, имплантат должен быть должным образом выровнен с вирусной инъекции. Здесь мы описываем легко реализован метод доставки вирусных векторов в ткани вокруг имплантированного устройства использование Фиброин шелка фильмы3. Фиброин шелка коммерчески доступных, хорошо переносится нервных тканей и может использоваться для производства материалов с разнообразными свойствами. Шелковые фильмы могут быть применены к имплантатов с использованием общего лабораторного оборудования как микроинъекции пипетки или ручной пипетки. Шелк/AAV фильмы устранить требование о двух хирургических процедур и убедитесь, что вирус опосредованной выражение должным образом выравнивается оптический имплант. Результирующее выражение ограничивается кончик волокон и результаты в менее нежелательных выражение вдоль волокна трек чем стереотаксического инъекции.
В дополнение к производству целевых выражение на кончике мелких волокон, шелк/AAV пленки могут использоваться для привода широко (> 3 мм диаметром) корковых выражение под черепной windows. В естественных условиях 2-Фотон изображений датчиков флуоресцентные деятельность стала незаменимым инструментом для оценки роли нейронной активности в автошколах чувств и когнитивной обработки. Однако диск единообразных выражение более широких областей коры головного мозга, экспериментаторы часто выполняют множественные инъекции. Эти инъекции может быть очень много времени и может привести к несовместимым выражение через поле зрения. В отличие от этого шелк/AAV-покрытием черепной окна являются очень легко производить, значительно сократить время, необходимое для операции, и наиболее удивительно выражение сотен микрон ниже поверхности коры.
Все эксперименты с участием животных были проведены в соответствии с протоколами, утвержденных Постоянным комитетом Гарварда по животных уход следующие руководящие принципы, описанные в низ нас руководство по уходу и использованию лабораторных животных. Взрослых мышей C57BL/6 обоего пола (6-15 недель возраста) были использованы для всех экспериментов.
1. получить водный Фиброин шелка
2. смешать водный шелка с векторы AAV выражение
3. Подготовка оборудования для изготовления и хранения шелк/AAV-покрытием устройств
4. Примените фильм шелк/AAV для устройств
5. хранение шелк/AAV-покрытием имплантатов
6. имплантации устройства
7. оценки выражения и устранение неполадок
Для оценки успеха шелк/AAV фильмов в автошколах выражение, мы увлажненную животных 2-3 недель после имплантации и подготовлен срезы мозга от региона интерес. Флуоресценции изображения с меткой Флюорофор optogenetic белков (ChR2-рекламы ЯФП) предоставил определенную степень самовыражения (рис. 1 d). Типичных световодов (диаметр 230 мкм) может легко вместить 200 nL шелк/AAV. С практикой экспериментаторов можно добиться высоконадежных выражение вокруг кончика имплантированных волокон (рис. 5).
Чтобы оценить выражение, движимый шелк/AAV-покрытием черепной windows, начните изображений, начиная с 7-10 дней после имплантации. Мы использовали два фотонных изображений для визуализации, но также быть использованы другие методы, такие как флуоресценции изображений с CCD. Два возможных проблем с покрытием черепной windows являются недостаточно выражения и шелковые фильмов, которые не растворяются и закрывают поле зрения. Чтобы увеличить выражение, мы предлагаем, выполняя durectomy до имплантации окна, и/или увеличения количества вируса в фильме. Мы достигли лучших выражение, используя смесь 1:4 шелка и фондовая титр AAV, соответственно. Хотя это значительно большее количество вирусных частиц, чем обычно используются в стереотаксического инъекции, сокращение времени хирургических счетчики предельной стоимости дополнительных вируса. Между тем если шелковой фильмов не раствориться под окном, далее уменьшить количество шелка, используется для покрытия окна. Общее количество шелка в покрытых оболочкой windows является 10 - 100 раз больше, чем на имплантатах волокна, и фильм является менее встроенных в ткани и таким образом не могут быть подвержены такого же уровня протеолитической активности чем может распустить шелковые фильмы13. Однако наличие шелка некоторые необходимо достижение выражение под windows3, вероятно, потому, что фильм, снятый вируса только является смыты межклеточной жидкости во время операции.
Рисунок 1: применение фильмы шелк/AAV для оптических волокон. (A) хронический волокна имплантаты помещаются волокна сторону вниз в держатель (вставка) монтируется на XYZ переводчик. Фиксированная microinjector ниже волокна распределяет шелк/AAV на советы волокна. Стереоскоп позволяет визуализировать процесс. (B) применять шелк/AAV для волокна советы в небольших объемах (10-20 nL). После извлечения Болус, отозвать пипетки и позволяют ~ 60 s для капли для сушки Плоская пленка. Повторите процесс, пока необходимый объем был применен к кончику волокна. (C) осмотрите шелковыми покрытия. Оптимального покрытия должна быть центризована на кончике волокна (слева), в то время как ненадлежащее покрытия продлить наружу от лица волокна, делая их более склонными к выбить из волокна (справа). (D) представитель волокон с покрытием 200 nL шелк/AAV и итоговый AAV-приводом ChR2-рекламы ЯФП выражение 2 недель после имплантации. Компактный шелк/AAV покрытие на левой стороне привели к надежной выражения, в то время как покрытие на право торчали мимо лицо волокна и привело к почти не выражение, вероятно потому что шелк/AAV не придерживались оптического волокна во время имплантации. Масштаб бары 0.2 мм (волокна) и 1,0 мм (срезы мозга). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: Установка для покрытия конические волокна имплантаты. (A) microinjector монтируется над держателя конические волокна, и коническая волокна расположены ортогонально к шприцу отстрела. (B) начало в широком точки (вставка) и извлечь небольшие объемы при перемещении отстрела шприц к точки конуса. Это приводит к непрерывной покрытие вдоль длины конуса. (C) представитель конические волокна, покрытые шелка смешанные с быстро зеленый для оказания помощи в визуализации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: покрытие черепной windows. Шелк/AAV может быть прикладной черепной windows, с помощью пипетки руку. Стандартный 3 мм диаметр окна могут быть покрыты с 5 мкл капелька, который будет медленно сухой плоский фильм. Вставка: GCaMP6f выражение результате шелк/AAV-покрытием черепной windows имплантируются с и без durectomies. Этот показатель был адаптирован от Jackman и др. (2018) 3. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: хранение шелк/AAV покрытием имплантатов. (A) для удаления остаточной влаги и сохранить вирусные эффективности, имплантаты должны храниться в вакууме при температуре 4 ° C до тех пор, пока используется. Имплантаты, хранящиеся таким образом оставаться жизнеспособным для по крайней мере 7 дней. (Б) выражение результате 4 шелк/AAV покрытием волокна имплантированы после 7 дней хранения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: оптические волокна шелка/AAV-GFP с покрытием надежно диск выражение. Флуоресцентный изображения срезов от 24 последовательных полосатой имплантатов. Каждый имплантат был покрыт nL 100-400, 1:1 шелк/AAV-GFP. Этот когорты имплантатов указывает шелка способность ограничивать выражение на имплантат сайт (в данном случае спинной стриатума). GFP флуоресценции указывается в зеленый цвет; Пятнать DAPI показаны синим цветом. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Использование шелк/AAV для выражения optogentic белков преодолевает ограничения подходов, которые в настоящее время используются. Хотя многие исследования успешно использовать AAV инъекции, чтобы выразить optogenetic белков, это сложно выровнять выражение кончик оптических волокон, регионы вокруг длины конической волокон и к области просмотра объектив улыбкой. Из-за рассогласования оптических компонентов и optogenetic выражение Стереотаксическая инъекции могут быть недостоверными, и не много экспериментов. Шелк/AAV маркировки метод мы описали здесь решает эту проблему. Она также упрощает процедуру, устраняя второй хирургической шаг и в некоторых случаях, устраняя необходимость вторую операцию. Она также может быть трудно использовать для получения широкое выражение под черепной windows вирусов, и экспериментатор обычно выполняют длинные операции для внедрения вируса в нескольких местах. Возможность получать широкое выражение над большой корковых регионов, просто покрытие черепной windows с шелк/AAV является упрощение, что исключает необходимость для многих инвазивных инъекции.
Другим потенциальным преимуществом метода шелк/AAV является, что она может побудить меньше воспаления в нервных тканях, по сравнению с вирусной инъекции. Впрыскивать AAV высокого титра в мозг может вызвать воспалительные реакции например реактивный astrocytosis, которые имеют потенциал для изменения клеточного и схемы размещения14,15 (хотя, как правило, такие потенциальные осложнения игнорируется). Шелковые фильмов побудить мало иммуногенность ответ на их собственных13 и шелк/AAV фильмы, как ожидается, выпустить вирус в течение многих часов или дней16, который может снизить вирусную нагрузку в окружающие ткани и уменьшить иммуногенность ответы. С традиционные подходы, в которых имплантации устройства предшествует AAV инъекции воспалительные реакции могут возникнуть от имплантации и инъекции. В будущем это будет желательно систематически сравнивать традиционные подходы и шелк/AAV метод, чтобы определить ли фильмы шелк/AAV уменьшает общую воспалительных реакций.
Несколько шагов имеют решающее значение для успешного использования шелка/AAV фильмов. Самое главное покрытие оптических волокон должно быть сделано тщательно, как описано в методах и расположение высушенные пленки следует оценивать тщательно путем визуального осмотра под микроскопом, чтобы обеспечить компактный, фильмы в нужное место, и придерживаться лицо оптического волокна. Любое шёлк/AAV по бокам волоконно-оптических приведет к проявление интереса за пределами региона, и во время имплантации и привести к ненадежной или выражение не может разорвать вырабатывающей фильмов, которые выступают за лицом волокна. Методы, которые мы опишем для применения шелк/AAV имплантируемых устройств могут быть приспособлены для использования любых материалов, которые легко доступны и позволяют точное осаждения небольших объемов шелк/AAV.
Немного практики требуется обеспечить точные и воспроизводимые результаты. Если выражение наблюдается вдоль направления волокон, вполне вероятно, что шелковые фильм сушат на стороне волокна, вместо того, чтобы лицо волокна. Повторите процесс производства и внимательно осмотрите сушеные имплантаты для знаков, которые фильмы сушки на стороне волокна. Потому что шелк/AAV фильмы оптически прозрачным, это может помочь в практике применения шелка смешанные с красителем (быстро зеленый или же краситель), лучше визуализировать форму результирующей фильмов (рис. 2 c). Если выражение не, вполне вероятно, что шелковые фильм выбили из кончик волокна во время имплантации. Мы предлагаем использование запасов титр вируса при принятии имплантатов. Для оптических волокон это уменьшает общий объем, который должен быть применен к малого диаметра волокна. Если размер покрытия озабоченность считают, ждать больше между каждой 10 nL приложению полного высыхания хранение капли. Шелк/AAV капельки сохнут быстрее под лампой теплой. Для черепной windows высокий титр вируса может быть необходимо предоставить адекватные вирусной нагрузки через Пиа или Дура. Некоторые виды имплантатов может распустить шелка и отпустите AAV более легко, чем другие. Мы нашли, что черепных windows имплантирован над поверхностью мозга требуют меньше коэффициент шелк/вирус для достижения надежной выражение, возможно из-за различных мозговой спинномозговой гидродинамики или активности протеаз. Если выражение не может быть увеличена путем увеличения эффективной концентрации AAV, уменьшается объем водной шелк является правдоподобной альтернативой.
Наконец, важно правильно хранить оптических компонентов и имплантировать их довольно скоро после того, как они готовятся. Мы показали, что с покрытием волокна, которые являются холодильные под вакуумом могут храниться в течение многих дней до использования. Вакуумные хранилища удаляет остаточную влагу17 , который может уменьшить растворимость шелка фильмов, а также помогают поддерживать вирусные эффективности. В идеале оптических волокон должно быть имплантированы в течение 24 часов с момента изготовления. Однако мы находим, что волокна шелка/AAV-покрытием хранятся под вакуумного привода аналогичные уровни выражения при имплантации через 7 дней после изготовления (рис. 4B). В отличие от этого покрытые черепной окон и линз улыбкой вынудили самых надежных выражение когда они сушат при комнатной температуре и использовать в течение часов подготовки. Причиной для этого неравенство остается неясным. Дальнейшие исследования могут быть необходимы для уточнения условий подготовки и хранения продлить срок хранения.
Шелк/AAV-покрытием черепной windows имеют значительный потенциал, потому что они резко сократить хирургические раз и чрезвычайно просты в производстве, но в настоящее время этот метод имеет ограничения. Покрытые черепной windows равномерно ярлык большие участки коры и привод достаточно выражение в слое 2/3 для GCaMP обработки изображений, с несколько менее выражение в глубоких слоях. Однако Стереотаксическая инъекции диск более надежные выражение и обеспечивают больший контроль над слоями, предназначенных для выражения. Надежное выражение было достигнуто только когда Дура была удалена. Хотя для многих 2-фотонных изображений экспериментов для улучшения качества изображения8часто удаляется Дура, для многих экспериментов желательно получить маркировки в менее инвазивным способом. Поэтому мы изучили нашу способность использовать шелк/AAV для обозначения корковых регионах без удаления Дура. Мы получили некоторые маркировки, но вполне возможно, что это является следствием повреждения Дура в процессе подготовки краниотомии. Необходимы дальнейшие исследования для покрытием черепной windows должен использоваться для надежно ярлык коры без удаления Дура.
Подготовка водный Фиброин шелка из коконов Тутовый шелкопряд подробно описаны в Rockwood et al. (2011) 18. Водный Фиброин шелка в настоящее время коммерчески доступных (5% w/v). Хотя большинство наших экспериментов были проведены с использованием запасов водных Фиброин шелка, подготовлен в нашей лаборатории (5-7,5% w/v), мы получили аналогичные результаты с использованием коммерческих водный Фиброин. Водный Фиброин стабилизировано на 4 ° C на срок до 3 месяцев, после чего он спонтанно переходит из жидкого гидрогеля18. Мы рекомендуем разделить ~ 1 мл Алиготе Фиброин запасов и хранятся при температуре-80 ° C. 1 мл Рабочая Алиготе (достаточно для покрытия сотни имплантатов) можно хранить при 4 ° C и используется до тех пор, пока он начинает в гель. Будьте осторожны не трясти, вихревые, агитировать или агрессивно Пипетка водный Фиброин, перерезывающих сил может привести к гелеобразования19,20.
Шелк/AAV фильмы позволяют широкий спектр шаблонов выражений, от широко распространенной корковых выражение под черепной windows, точные подкорковых выражение на кончике оптических волокон малого диаметра. Эти методы были разработаны, чтобы воспользоваться общей векторы AAV выражение, но скорее всего могут быть использованы для разгона других векторов выражения как Lentiviruses или вирусы бешенства в мозг. Шелковые фильмов также может быть изготовлен в трехмерные формы для улучшения вирусный выпуска в ткани. Например для того чтобы диск сильное выражение под корковых windows без использования durotomy, черепной windows может покрытием с массивами шелка микроиглы, который бы пробить Дура и выпуска вируса в более глубокие слои коры21. Дальнейшее уточнение, скорее всего, приведет к улучшению свойств вируса выпуска, и новых приложений для шелка/AAV фильмов.
Авторы не имеют ничего сообщать.
Авторы хотели бы поблагодарить J. Васкес для иллюстрации, D. Каплан и C. ПРЕДА для реагентов и полезные рекомендации и в лабораториях B. Сабатини и C. Харви для изображений в естественных условиях . Микроскопия стало возможным M. Ocana и центром визуализации нейробиологии, частично поддержаны центр томографии нейронные как часть Национальный институт неврологических расстройств и инсульта (NINDS) P30 основной центр Грант (NS072030). Эта работа была поддержана путем фонд GVR Ходадад семьи, Нэнси Лурье знаки и низ грантов, NINDS R21NS093498, U01NS108177 и NINDS R35NS097284 для W.G.R и низ докторской стипендии F32NS101889 C.H.C.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Aqueous silk fibroin | Sigma | 5154-20ML | Aqueous Silk Fibroin (5% w/v) for making films |
Microinjector to deposit silk/AAV | Drummond | 3-000-207 | Nanoject III nanoliter injector |
Manipulator to hold implants | Narashige | MM-33 | Micromanipulator |
Stereoscope to visualize silk deposits | AmScope | SM-6TX-FRL | 3.5X-45X Trinocular articulating zoom microscope with ring light |
Vacuum chamber to store implants | Ablaze | N/A | 3.5 Quart Vacuum Vac Degassing Chamber |
Optional, implant holder for storage | N/A | N/A | To store premade optical fibers, drill a grid of ~4 mm-deep holes with a diameter just larger than the ferrule diameter into a plastic block. |
Optical fiber | Thorlabs | FT200EMT | Ø200 µm Core Multimode Optical Fiber for fiber implants |
Ferrules | Kientec | FZI-LC-230 | LC Zirconia Ferrule for fiber implants |
Various materials for manufacturing chronic fiber implants | Various | N/A | For detailed procedure, see Ung K, Arenkiel BR. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of visualized experiments: JoVE. 2012(68). |
Tapered fiber implants | Optogenix | Lambda-B | Tapered fiber implants |
GRIN lenses | GoFoton | CLH-100-WD002-002-SSI-GF3 | GRIN lenses |
Small glass cranial windows | Warner | 64-0726 (CS-3R-0) | Small round cover glass, #0 thickness |
Large glass cranial windows | Warner | 64-0731 (CS-5R-0) | Small round cover glass, #0 thickness |
Various materials for manufacturing cranial windows | Various | N/A | For detailed procedure, see Goldey GJ et al. Removable cranial windows for long-term imaging in awake mice. Nature protocols. 2014 Nov;9(11):2515. |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены