Method Article
This protocol describes simultaneous measurement of electroretinogram and visual evoked potentials in anesthetized rats.
The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the electrical responses of the retina to light stimulation, while the VEP measures the corresponding functional integrity of the visual pathways from the retina to the primary visual cortex following the same light event. The ERG waveform can be broken down into components that reflect responses from different retinal neuronal and glial cell classes. The early components of the VEP waveform represent the integrity of the optic nerve and higher cortical centers. These recordings can be conducted in isolation or together, depending on the application. The methodology described in this paper allows simultaneous assessment of retinal and cortical visual evoked electrophysiology from both eyes and both hemispheres. This is a useful way to more comprehensively assess retinal function and the upstream effects that changes in retinal function can have on visual evoked cortical function.
Измерение электроретинограмму (ЭРГ) и вызванный потенциал зрительного нерва (ВЭП) обеспечивают полезные количественные оценки целостности зрительного пути. ERG измеряет электрические реакции сетчатки к световой стимуляции, в то время как ВЭП измеряет соответствующую функциональную целостность зрительных путей от сетчатки к первичной зрительной коре следующий же светлым событием. Эта рукопись описывает протокол для записи и анализа ЭРГ и ЗВП ответов в широко используемом лабораторной модели, крысы.
ERG обеспечивает индекс функциональной целостности ряда ключевых классов клеток сетчатки путем количественной оценки валовой электрический ответ сетчатки к вспышке света. Согласованный ряд ионных потоков, инициирована света начало и окончание, производства обнаруживаемыми изменения напряжения, которые можно измерить с помощью поверхностных электродов, размещенных вне глаза. Полученный сигнал представляет собой сочетание себеРиз хорошо определенных компонентов, отличающихся по амплитуде, времени и частоте. Значительное число исследований показало, что эти компоненты относительно хорошо сохраняются во многих позвоночной сетчатке и что компоненты могут быть отделены друг от друга. При разумном выборе стимула (вспышки стимула, фон, межстимульный интервал) условий и выбора конкретных особенностей составного сигнала для анализа можно быть уверенным в возврате меру определенной группы клеток сетчатки глаза 1,2. Эти характеристики лежат в основе полезности и, следовательно, широкое применение ЭРГ в качестве неинвазивного измерения функции сетчатки глаза. Эта рукопись посвящена методологии измерения ЭРГ и анализа своих возможностей, чтобы возвратить информацию о некоторых из основных классов клеток в сетчатке, а именно фоторецепторов (компонент PIII), биполярные клетки (компонент PII) и ганглиозных клеток сетчатки (положительный скотопическое порог срабатывания или pSTR).
ВЭП обеспечивает анализ корковой реакции на свет; первых , происходящих из сетчатки , а затем передаваться последовательно через зрительный нерв, зрительный тракт, таламус (боковое коленчатое ядро, ЛГН) и оптического излучения в зоне V1 коры 3. У грызунов, большинство (90 - 95%) волокон зрительного нерва от каждого глаза 4 пересекающийся под прямым углом и иннервируют контралатеральной среднего мозга. В отличие от ERG, это еще не представляется возможным приписать различные компоненты ВЭП к конкретным классам клеток, 5 , таким образом , изменяется в любом месте вдоль зрительного пути может повлиять на форму волны ВЭП. Тем не менее, ВЭП является полезным неинвазивным мерой зрительной эффективности и целостности зрительного пути. ВЭП, при использовании в сочетании с ERG, могут обеспечить более полную оценку зрительной системы (то есть, сетчатка / визуальный путь).
ЭРГ и ЗВП записи могут проводиться отдельно или в комбинации, в зависимости от примекатион. Методология, описанная в данной статье позволяет одновременно оценить и сетчатке корковой зрительных вызванных электрофизиологии от обоих глаз и обоих полушарий у наркотизированных крыс. Это полезный способ более полно оценить функцию сетчатки глаза и вверх по течению эффекты, что изменения в функции сетчатки может иметь на зрительной функции коры головного мозга вызывала.
Все экспериментальные процедуры были проведены в соответствии с австралийским Кодекса практики по уходу и использованию животных в научных целях, установленный Национальным Советом по медицинским исследованиям здравоохранения и в Австралии. Зазор этика была получена из Мельбурнского университета, факультета наук, Комитета по этике животных (номер разрешения 0911322,1).
1. предимплантационной хронического ВЭП электродах
Примечание: Если одновременно ЭРГ и ЗВП сигналы должны быть собраны животные должны быть хирургическим путем имплантировали электроды ВЭП по крайней мере за 1 неделю до сигнала сбора.
2. ЭРГ и ЗВП записи
форма волны | Стимул световой энергии (журнал cd.sm -2) | Количество повторов | межстимульный интервал (сек) |
STR | -6,24 | 20 | 2 |
STR | -5,93 | 20 | 2 |
STR | -5,6 | 20 | 2 |
STR | -5,33 | 20 | 2 |
Род б-волна | -4,99 | 10 | 2 |
Род б-волна | -4,55 | 10 | 2 |
Род б-волна | -4,06 | 5 | 5 |
Род б-волна | -3,51 | 5 | 5 |
Род б-волна | -3,03 | 1 | 15 |
Род б-волна | -2,6 | 1 | 15 |
Род б-волна | -1,98 | 1 | 15 |
Смешанное а- / б-волна | -1,38 | 1 | 30 |
Смешанное а- / б-волна | -0,94 | 1 | 30 |
Вспышка 1: Смешанный A- / B-волны в среднем 20: ВЭП | -0,52 | 20 | 5 |
(90 секунд до следующего) | |||
Вспышка 1: Смешанный A- / B-волны в среднем 20: ВЭП | 0.04 | 20 | 5 |
(120 секунд до следующего) | |||
Вспышка 1: Смешанный A- / B-волны в среднем 20: ВЭП | 0,58 | 20 | 5 |
(180 секунд до следующего) | |||
Flasч 1: Смешанный A- / B-волны в среднем 20: ВЭП | 1.2 | 20 | 5 |
(180 секунд до следующего) | |||
Вспышка 1: Смешанный A- / B-волны в среднем 20: ВЭП | 1,52 | 20 | 5 |
(180 секунд до следующего) | |||
Конус а- / б-волна | 1,52 | 4 | 0,5 |
Таблица 1. ERG и Протокол ВЭП Запись с использованием ряда Стимул энергии. Стимул презентации прогресс от тусклого (сверху) до ярких (внизу) мигает, с достаточным интервалом между стимул для обеспечения темной адаптации. В конце протокола, повторение четырех вспышек с коротким интервалом представлен, чтобы вызвать конус опосредованной реакции.
3. Анализ ЭРГ осциллограмм
Примечание: ЭРГ и ЗВП анализ был подробно описан ранее 3,9,10 The.В следующих разделах содержится краткий обзор.
4. Анализис ЗВП осциллограмм
ERG а-волна (> -1,38 журнал cd.sm -2), б-волны (> - 4,99 журнал cd.sm -2) о подозрительных операциях (<- 4,99 журнал cd.sm -2) и вепсы (> - 0,52 журнал cd.sm -2) записывались одновременно (рис 1 и 3). При очень тусклые вспышки, положительная СТР (pSTR) рассматривается приблизительно 110 мс после вспышки, а отрицательное СТР (НСТР) приблизительно при 220 мс (фиг.1 и 2). ЭРГ с большим б-волны, пики от 50 до 100 мс после начала умеренной вспышки , которая может быть проанализирован на его реакции PII (фиг.1 и 2). На этот стимул энергии, отрицательное а-волны до пика незначительна. При ярче светящихся энергиях отрицательное отклонение а-волна становится более заметным , которая может быть определена количественно с ответом PIII (рисунок 2). Скотопическое ВЭП сигнал показывает отрицательный ответ (p1n1, 15 - 70 мс окна), а затем положительное отклонение (N1P2; 30 - 100 мс) (3 и 4).
Рисунок 1. Группа Средние ERG осциллограмм. ЭРГ изменяет с увеличением интенсивности стимула. Цифры слева от сигнала указывают световой экспозиции, используемый для выявления формы сигнала. Обратите внимание на различные амплитуды и временные шкалы для каждой панели. При тусклых светящихся энергий положительные и отрицательные компоненты скотопического порога реакции может быть вызвана (pSTR, НСТР). Как энергии стимула получить ярче, а и Ь-волны ответ может быть проанализирована и парный вспышка парадигма позволяет ответ конуса необходимо измерить. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
pload / 54158 / 54158fig2.jpg "/>
Рисунок 2. ERG анализ. (A) Rod функция фоторецепторов может быть проанализирована с помощью PIII для моделирования на волну. A-волны в 1,22 и 1,52 журнала cd.sm -2 (незаполненные кружки, ○) подходят как ансамбль с PIII (серые линии, уравнение 1) до 90% от минимума , который возвращает Rm PIII (насыщенный амплитудой, мкВ) S (чувствительность, м 2 .cd -1 .с -3) и тд (задержка синхронизации, мс) параметры. (B) Rod функцию биполярного клеток (среднее ± SEM) могут быть проанализированы с помощью моделирования серии отклика интенсивности на PII стержня (незаполненные кружки ○) с функцией Нака-Раштон (серая линия). Это возвращает V макс (насыщенный амплитуду, мкВ), к (1 / чувствительность, бревенчатый кд см -2) и п (наклон). (С) Ретинальная функция ганглиозных клеток анализируют при тусклом светящихся энергий и количественно пиковой амплитудой pSTR (pSTR ампер) и времени (pSTR него ). (D) Конус биполярное функции клеток выявляется с парного флэш парадигмы количественно конуса PII пиковой амплитуды (конус PII ампер) и времени (конус PII его). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 3. Группа ВЭП Среднее осциллограмм. Форма сигнала ВЭП изменяет с увеличением энергии стимула. Числа слева от сигнала указывают световой экспозиции , используемый для выявления формы сигнала. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
FIGURe 4. ВЭП анализа и функции интенсивности отклика. (A) Amplitude анализ ВЭП берется в качестве пика до корыта (p1n1) и впадины до пика (N1P2) амплитуды. Неявные раз (она) этих ответов также возвращается (P1 это, N1 это, P2 это). (В) Амплитуда ВЭП p1n1 (среднее ± SEM) возрастает с увеличением энергии стимула. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы увидеть увеличенную версию эта фигура.
ЭРГ и ЗВП объективные показатели зрительной функции от сетчатки и коры головного мозга, соответственно. Преимущество одновременной записи является то, что более полное представление всего зрительного пути, обеспечивает ее. В частности, дополнительная информация от их одновременной оценки могли бы обеспечить более четкое разграничение места повреждения в зрительного пути (например, для лечения расстройств с перекрытием ERG еще отличаются ВЭП проявлений 18, когда оптическая невропатия может сосуществовать с первичной атрофии головного мозга 19, 20, или когда потеря ВЭП могут быть искажены проявления травм в нескольких местах в зрительного пути 21,22). Путем измерения ЭРГ и ЗВП одновременно, показатель усиления между сетчатке и корковом ответ также может быть получена. Это может стать полезным инструментом для выявления тонких патологических изменений. Текущий протокол позволяет ЭРГ и ЗВП измерения в наиболее часто используемых лабораторных крыс, но может быть легко объявленияЭптед для других видов млекопитающих 23-25. ЭРГ и ЗВП сигналы от грызунов обеспечивают достаточную доклинические суррогат ответов , наблюдаемых в человеческих глазах 26-28.
При разработке конкретного протокола стимула, как ЭРГ и ЗВП ответ может быть получен в течение одного сеанса записи. Таблица 1 показывает прогрессию в легких уровнях с соответствующим учетом времени восстановления между последовательными вспышками. Этот протокол обеспечивает баланс между необходимостью максимального сигнала к шуму характеристики и ограничения времени записи в окне анестетика, предоставленной одной дозы кетамина: ксилазина. Следовательно, этот метод может быть полезен для объективной количественной меры зрительной функции для исследований в области основы физиологии и болезней.
Комплексная оценка зрительной системы может быть достигнуто при одновременном оценке двусторонних ответов сетчатки глаза и визуально навеянные корковых ответов, Тем не менее, каждый метод может быть также проведена в изоляции и монокулярно вместо бинокулярно для упрощения процедуры. Текущий протокол описывает скотопическими ЭРГ и ЗВП сигналы, выбранные для изоляции и стержневые пути при условии, что у крыс есть стержень с преобладанием сетчатку. Если свет адаптированный ответы больший интерес к изучению, можно также проводить Фотопическое ЭРГ и ЗВП сигналы путем предварительной адаптации к фоновым светом.
Одним из основных ограничений этого метода является необходимость проводить процедуру под наркозом условий для того, чтобы стабильное размещение электрода. Тем не менее этот подход обеспечивает устойчивые характеристики сигнала к шуму позволяет обнаружить тонкие изменения лечения.
Из-за малой амплитуды НТР и ее чувствительности к световой адаптации, несколько шагов, которые должны быть внимательно следили, чтобы обеспечить успешную запись этого ответа. Во-первых, достаточно, темная адаптация должна быть реализована, которая включает в себяночи адаптация к темноте (≥ 8 часов), размещение электродов при слабом красном освещении (17,4 cd.m -2, λ макс = 600 нм), и вновь адаптация к темноте после тусклом тест-вспышки (10 мин для - 0,52 кд журнал. см -2). Кроме того, характеристики сигнал-шум НТР может быть улучшена путем усреднения по множеству сигналов (то есть, 20 сигналов) , собранных с короткими интервалами между раздражитель (то есть, 2 сек). Одним из преимуществ этой комплексной оценки обоих глаз и кортикальных является , чтобы позволить сравнение с контрлатеральной 3 записи. Таким образом , особое внимание должно быть принято в электродной решений (то есть, те же размеры и форму электродов), чтобы обеспечить минимальный среди глаз и между корковой изменчивость.
Принимая во внимание широкое использование обоих методов ЭРГ и ЗВП , чтобы обеспечить в естественных условиях мер зрительного пути и ее процессов , связанных с болезнью, было бы полезно для сопоставления Другой путь конкретного рrotocols (например, ON / OFF или конусной подтипу конкретного), а также одновременно выполнять записи ERG / ВЭП с различными условиями стимулирования (например, мерцание, картины, пилообразных) , чтобы расширить применение этой методики в клинических диагнозов. Еще одним логическим шагом этого приложения в будущем будет также записывать ЭРГ и ЗВП одновременно с осознанной 29, свободно движущихся животных , чтобы избежать влияния на анестезирующие нервной физиологии 30.
The authors have no disclosures relevant to this work.
Funding for this project was provided by the National Health and Medical Research Council (NHMRC) 1046203 (BVB, AJV) and Melbourne Neuroscience Institute Fellowship (CTN).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Alligator clip | generic brand | HM3022 | Stainless steel 26 mm clip for connecting VEP screw electrodes to cables |
Bioamplifier | ADInstruments | ML 135 | For amplifying ERG and VEP signals |
Carboxymethylcellulose sodium 1.0% | Allergan | CAS 0009000-11-7 | Viscous fluid for improving signal quality of the active ERG electrode |
Carprofen 0.5% | Pfizer Animal Health Group | CAS 53716-49-7 | Proprietary name: Rimadyl injectable (50 mg/ml). For post-surgery analgesia, diluted to 0.5% (5 mg/ml) in normal saline |
Chlorhexadine 0.5% | Orion Laboratories | 27411, 80085 | For disinfecting surgical instruments |
Circulating water bath | Lauda-Königshoffen | MGW Lauda | For maintaining body temperature of the anesthetized animal during surgery and electrophysiological recordings |
Dental amalgam | DeguDent GmbH | 64020024 | For encasing the electrode-skull assembly to make it more robust |
Dental burr | Storz Instruments, Bausch and Lomb | #E0824A | A miniature drill head of ~ 0.7 mm diameter for making a small hole in the skull over each hemisphere to implant VEP screws |
Drill | Bosch | Dremel 300 series | An automatic drill for trepanning |
Electrode lead | Grass Telefactor | F-E2-30 | Platinum cables for connecting silver wire electrodes to the amplifier |
Faraday Cage | custom-made | Ensures light proof to maintain dark adaptation. Encloses the Ganzfeld setup to improve signal to noise ratio | |
Gauze swabs | Multigate Medical Products Pty Ltd | 57-100B | For drying the surgical incision and exposed skull surface during surgery |
Ganzfeld integrating sphere | Photometric Solutions International | Custom designed light stimulator: 36 mm diameter, 13 cm aperture size | |
Velcro | VELCRO Australia Pty Ltd | VELCRO Brand Reusable Wrap | Hook-and-loop fastener to secure the electrodes and the animal on the recording platform |
Isoflurane 99.9% | Abbott Australasia Pty Ltd | CAS 26675-46-7 | Proprietary Name: Isoflo(TM) Inhalation anaaesthetic. Pharmaceutical-grade inhalation anesthetic mixed with oxygen gas for VEP electrode implant surgery |
Ketamine | Troy Laboratories | Ilium Ketamil | Proprietary name: Ketamil Injection, Brand: Ilium. Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording |
Luxeon LEDs | Phillips Lighting Co. | For light stimulation twenty 5 W and one 1 W LEDs. | |
Micromanipulator | Harvard Apparatus | BS4 50-2625 | Holds the ERG active electrode during recordings |
Needle electrode | Grass Telefactor | F-E2-30 | Subcutaneously inserted in the tail to serve as the ground electrode for both the ERG and VEP |
Phenylephrine 2.5% minims | Bausch and Lomb | CAS 61-76-7 | Instilled with Tropicamide to achieve maximal dilation for ERG recording |
Povidone iodine 10% | Sanofi-Aventis | CAS 25655-41-8 | Proprietory name: Betadine, Antiseptic to prepare the shaved skin for surgery 10%, 500 ml |
Powerlab data acquisition system | ADInstruments | ML 785 | Controls the LEDs |
Proxymetacaine 0.5% | Alcon Laboratories | CAS 5875-06-9 | For corneal anaesthesia during ERG recordings |
Saline solution | Gelflex | Non-injectable, for electroplating silver wire electrodes | |
Scope Software | ADInstruments | version 3.7.6 | Simultaneously triggers the stimulus via the Powerlab system and collects data |
Silver (fine round wire) | A&E metal | 0.3 mm | Used to make active and inactive ERG electrodes, and the inactive VEP electrode |
Stainless streel screws | MicroFasterners | 0.7 mm shaft diameter, 3 mm in length to be implanted over the primary visual cortex and serve as the active VEP electrodes | |
Stereotaxic frame | David Kopf | Model 900 | A small animal stereotaxic instrument for locating the primary visual cortices according to Paxinos & Watson's 2007 rat brain atlas coordinates |
Surgical blade | Swann-Morton Ltd. | 0206 | For incising the area of skin overlaying the primary visual cortex to implant the VEP electrodes |
Suture | Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co.,Ltd | 3-0 silk braided suture non-absorbable, for skin retraction during VEP electrode implantation surgery | |
Tobramycine eye ointment 0.3% | Alcon Laboratories | CAS 32986-56-4 | Proprietary name: Tobrex. Prophylactic antibiotic ointment applied around the skin wound after surgery |
Tropicamide 0.5% | Alcon Laboratories | CAS 1508-75-4 | Proprietary name: 0.5% Mydriacyl eye drop, Instilled to achieve mydriasis for ERG recording |
Xylazine | Troy Laboratories | Ilium Xylazil-100 | Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording |
Pipette tip | Eppendorf Pty Ltd | 0030 073.169 | Eppendorf epTIPS 100 - 5,000 ml, for custom-made electrodes |
Microsoft Office Excel | Microsoft | version 2010 | spreadsheet software for data analysis |
Lethabarb Euthanazia Injection | Virbac (Australia) Pty Ltd | LETHA450 | 325 mg/ml pentobarbital sodium for rapid euthanazia |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены