화합물 투여 IV

내심 투여는 골암 전이의 동물 모델의 발달뿐만 아니라 심근 경색의 결과에 대한 직접 내심 전달의 효과에 대한 검사를 포함하여 다양한 응용 분야에서 사용되어 왔다. 이 절차는 종종 초음파를 사용하여 바늘을 심장의 올바른 위치로 안내합니다. ² 그러나 적절한 랜드마크를 활용하여 올바르게 수행하면 초음파 시각화를 사용하지 않고 이 절차를 수행할 수 있습니다.

절차의 침략적인 특성 때문에, 심내 주입의 사용은 IACUC 프로토콜에서 과학적으로 정당화되어야 합니다. 단 하나의 생존 주사를 허용해야 한다. 이 절차는 조직 내에 규정 된 지침에 따라 일반 마취제, 흡입제 또는 주사용의 사용을 요구합니다. 바늘 선택은 주입된 물질의 점도를 허용할 가능한 가장 작은 크기여야 합니다. 일반적으로 27-30 게이지 바늘이 사용됩니다. 사출 량은 100 μL에서 최대 300 μL까지 다양합니다.

마우스의 꼬리에 있는 정맥 주사는 도전적이고 수시로 실패합니다. 정맥 투여의 대체 경로는 복고풍 궤도 신경총을 통해입니다. 이 기술은 훈련과 능력을 수행해야하는 동안, 연구는 측면 꼬리 정맥 주입보다 복고풍 궤도 주입과 높은 성공률이 있음을 보여 주었다. ^{3, 4, 5} 마취는 절차 도중 마우스가 이동하지 못하도록 하기 위하여 필요합니다. 종병이나 정밀기화기에 부착된 유도 챔버를 통해 전달되는 일반 흡입제 마취가 효과적입니다. 그러나 흡입제가 사용되는 경우, 동물이 챔버에서 제거되면 신속하게 복구되기 시작하므로 주사를 수행 할 준비가되어 있어야합니다. 국소 안과 마취제 (테트라카인 또는 프로파라카인)는 여러 주사를 수행 할 때 권장됩니다.

마우스와 쥐의 궤도 정맥 구조는 다릅니다. 마우스는 주상혈관 정맥, 등갈비 정맥, 열등한 팔페브랄 정맥, 눈 주위 의 궤도 의 공간을 채우는 피상적 측두정맥을 포함한 여러 선박의 부비동 또는 수렴을 가지고 있습니다. 쥐 궤도 지역에는 혈관의 네트워크 나 신경총이 있습니다. 모든 주사와 마찬가지로, 선택한 바늘은 가능한 가장 작은 크기여야합니다. 일반적으로 27-30 게이지 바늘. 더 큰 부피의 보고가 있었지만, 최대 부피는 눈당 150 μL입니다. ^{3, 4, 5} 눈 당 한 주사, 하루에, 권장, 생존 절차에 대 한 눈 당 총 2 회 주사. 또한, 주사 사이 적어도 하루 간격 이 있어야. 비생존 절차의 경우 최대 500 μL의 부피를 투여할 수 있습니다.

논란에도 불구 하 고, 주입 사이트로 발 패드의 사용은 여전히 일부 연구에 대 한 필요. 발 패드를 통해 주입할 때 일부 마우스 균주에서 항체 반응이 호크에 주입될 때보다 현저히 강하다는 것이 입증되었습니다. ⁶ 모든 동물은 통증의 징후, 음식 소비 수준 및 정상적인 앰비저브를 위해 면밀히 모니터링해야합니다. 발의 자가 절단은 다리가 파괴되는 정도까지 발생할 수 있습니다. 이것은 만성 통증의 표시입니다. 자기 절단을 보여주는 모든 동물은 즉시 수의사의 주의를 기울여야합니다.

풋패드 측정은 명백한 붓기가 발생하자마자 매일 수행되어야 합니다. 최종 점수는 IACUC 지침에 따라 제자리에 있어야 합니다. 일반적으로, 병변이나 종양이 음식과 물을 앰플하거나 도달하는 동물의 능력을 방해할 때 동물은 안락사되어야 합니다. 풋패드에 주입할 수 있는 최대 부피는 50 μL입니다. 주사에 29-30 게이지 바늘을 권장 합니다.

동물로 화합물의 관리 동물의 웰빙과 실험 데이터 및 과학적 가치의 결과 모두에 중요 한 영향을 미칠 수 있습니다. 적절한 전달 방법은 실험의 성공에 필수적입니다. 연구의 과학적 목표, 물질의 pH, 필요한 투여량, 물질의 점도, 동물의 웰빙 등 최상의 경로를 결정하는 데 많은 요소를 고려해야 합니다. 기술 전문 지식은 또한 모든 주입 방법에 대한 요구 사항입니다.