뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트 - 합성에서 생화학 적 특성에

여기에 설명 된 프로토콜은 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트로 이어지는 복잡한 경로의 방법으로 다양한 장애물을 설명하고 요약하다하는 것을 목표로하고있다. 따라서,이 프로토콜은 이러한 활성화 된 빌딩 블록의 합성과 실제 응용 프로그램의 가용성 모두를 용이하게합니다.

화학 작용기의 도입을위한 전통적인 전략은 초기 체인 적절히 변경됨 포스 전구체를 추가하여 고상 합성을 사용하는 것이다. 그러나 오히려 짧은 시퀀스 합성 중에 사용 제한 조건이 방법론의 적용을 방해. 한편, 변형 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트는 핵산, 실제 응용의 광범위한 팔레트 변경됨 핵산의 사용을 위해 도로를 포장 전략으로 수많은 작용기 마일드 도입에 이용 된 빌딩 블록을 활성화 이러한 리보 자임하고 DNAzymes의 기능 태그 및 생성 등. 주요 과제 중 하나는 이러한 뉴 클레오 시드 유사체의 분리 및 특성에 이르는 방법론의 복잡함에 있습니다.

이 비디오 문서에서는, 우리는 살전의 합성에 대한 자세한 프로토콜을 제시한다전자 인 (III) 기반의 시약을 사용하여 유사체를 수정했습니다. 또, 생화학 적 특성 규명을위한 절차는 프라이머 신장 반응 및 TDT 테일링 중합에 중점으로, 누설된다. 이 상세한 프로토콜은 수정의 dNTPs 크래프트 조합 및 화학 생물학에서의 추가 사용을위한 사용이 될 것입니다.

5'-뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트 ((D) NTPS)는 에너지의 보편적 인 통화되는 세포 물질 대사의 규제에 이르기까지 수많은 프로세스와 기능에 관련된 중요한 생체 분자의 종류를 나타냅니다. 이러한 기본적인 생물학적 변환에서의 역할뿐만 아니라, 자신의 수정 된 대응은 올리고 뉴클레오티드에 작용기의 도입에 대한 다양하고 가벼운 플랫폼, 잘 일반적으로 ^1,2 적용되는 자동화 된 고체상 합성을 보완하는 방법으로 전진했다. 사실, (D) NTPS은 RNA와 DNA 중합 효소 ³ 기판, 아미노산 ^4-13, 보론 산 ^{14, 15,} nornbornene ^16, 다이아 몬도와 같은 잔류 ^{17 일에} 대한 사이드 체인 등의 기능 그룹의 풍부한 역할을 할 수 제공 organocatalysis ¹⁸ 담즙산 ^19, 심지어 올리고 뉴클레오티드 ^(20)는 올리고 뉴클레오티드에 도입 될 수있다.

이 의정서의 목적은 (때로는) 복잡한 절차 선도 t으로 빛을 발산하는 것입니다오 합성이 활성화 빌딩 블록 (그림 1B)의 생화학 적 특성. 특별한 강조가 종종 발견하기 어려운 또는 실험 섹션에 존재하지만 순수한 (D) NTPS의 분리 (그림 1)에 이르는 합성 경로의 성공적인 완료에 아직 중요한 모든 합성 세부 사항에 대해 설명하기로한다.

1. 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트의 합성

선택의 합성 방법은이 방법은 일반적으로 신뢰성이 매우 몇 가지 측면 제품 (그림 1A) ³⁹ 리드 이후 루드비히와 에크 스테인에 의해 개발 된 절차를 따릅니다.

1. 회 무수 피리딘 (2 ml)로하고, 밤새 진공 하에서 건조 후 적절 3'-OAC 보호 된 뉴 클레오 시드 (전형적 0.1 밀리몰)으로 공 증발. 동시에, 진공하에 밤새 건조 피로 인산 트리 부틸 암모늄 (0.13 mmol)을 첨가 하였다.
2. 건조 피리딘 (0.2 ㎖)을 최소로 뉴 클레오 시드를 용해 및 공용 ​​매로 건조 디 옥산 (0.4 ml)에 추가합니다. 마지막으로, 2 - 클로로 -1,3,2 - benzodioxaphosphorin -4 - 온 (0.11 밀리몰)을 첨가하고 45 분 동안 실온에서 반응하도록 허용한다.
   주 : 특정 손질 2 - 클로로 -1,3,2 - benzodioxaphosphorin -4 - 온 시약으로 이동해야 주목할 만하다. 실제로, 불활성 가스 atmosp에서이 시약에서도 스토리지여기의 분해를 방지하기에 충분하지 않다. 따라서,이 분해에 형성되는 백색 고체를 사용하기 전에 긁어되어야 할 수있다.
3. 건조 DMF (0.17 ㎖)에 트리 부틸 피로 인산 용액 및 새로 증류 부틸 준비 (58 μl를, 분 자체를 추가하지 않습니다). 반응 혼합물 (백색 침전물이 나타나지만 빨리 사라)로 생성 된 용액을 추가 45 분 동안 실온에서 반응하도록 허용한다.
4. 요오드의 용액을 피리딘 (0.16 밀리몰) (0.98 ㎖) 및 H ₂ O (20 μL)을 준비하고 (III) 중심 Pα를 산화시키기 위해, 반응 혼합물에 추가한다. 생성 된 짙은 용액은 실온에서 30 분 동안 교반하도록 허용.
5. I ₂ 과잉을 해소하기 위해 NAS ₂ O _3의 10 % 수용액을 사용합니다. 진공 하에서 용매를 제거 하였다 (회전 증발기의 수조의 온도는 30 ℃ 이하로 유지되어야한다). H ₂ O (5 ㎖)을 추가하고 MI에게 허용환상 인산 잔기를 가수 분해 실온에서 30 분 동안 서서 xture.
6. 이 단계에서, 보호기는 일반적으로 (3'-OAC 및 핵 염기의 측쇄에 개 즉) 제거된다. 결과적으로, 조 질의에 NH ₄ OH (H ₂ O, 10 ㎖의 30 %)을 추가하고, 실온에서 1.5 시간 동안 교반하고, 진공하에 용매를 제거한다.
7. 2 튜브에 H ₂ O 및 분할의 2 ML을 추가합니다. 30 분 동안 아세톤 원심 분리 (1,000 XG)에서 차아 염소산 나트륨 _4의 2 % 용액의 12 ML을 추가합니다. 이 절차를 한 번 더 반복한다. 침전물을 따라서 실질적으로 계속되는 RP-HPLC 정제를 단순화 (침전 것) 트리 포스페이트로부터 합성에 사용되는 용매 및 시약의 분리를 허용한다.
8. 유성 잔류 공기 건조 후, (표준 절차에 따라 재료 및 그림 3의 또한 목록 참조) 원유의 ³¹ P-NMR 스펙트럼을 기록하고4 ML의 H ₂ O에 용해
   주 :이 합성 절차는 주로 개질 옥시 뉴 클레오 시드 트리 포스페이트의 생성에 초점을 맞추고 있지만, 매우 유사한 절차 (단순히, 3'-비스-O-아세틸 화 된 전구체 '2를 사용하여) 자신의 RNA 대조를 위해 적용될 수있다.

2. 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트의 H​​PLC 정화

1. 트리 에틸 암모늄 바이 카보네이트 (TEAB)의 1 M 스톡 용액의 제조 : ⁴⁰
   1. 증류시키고 여과 H ₂ O.의 ≈ 600 ㎖에 트리 에틸 아민 1 몰 (139 ㎖)의 용액을 준비
   2. 거품 _{이산화탄소} (드라이 아이스와 가스 버블을 통해) 격렬하게 교반하면서 용액에 7.6의 pH가 (이 적어도 10 시간이 소요됩니다)에 도달 할 때까지. 이 원액은 최대 1 달 동안 냉장고에 저장 될 수있다.
2. 정화 :
   1. 초순수에 50 mM의 TEAB 2 L (용출액 A) : 1 M 주식에서 두 개의 버퍼 용액을 준비차 50 %의 MeCN (용출액 B)에서 50 mM의 TEAB 1 L. 두 용리액 진공하에 20 분 동안 교반 드가이 (세심한주의가 탈기 중에 CO _2를 제거하여 pH를 변경하지 않도록 요구된다.)
   2. 300 ㎕의 증류수 H ₂ O의 원유 인산의 10 μl를 용해하여 분석 샘플을 준비하고 반 예비 RP 컬럼 (C18)을 탑재까지 그라데이션을 사용하여 HPLC 시스템에 주입 40 분의 0 ~ 100 % B에서 (그림 4). 인산의 R _티셔츠 (일반적으로 크로마토 그램의 주 피크 인)와 (약간 낮은 R _{티셔츠가)} 인산에 따라 HPLC 프로그램을 조정합니다. 이러한 조건과 약간의 인산을 포함 할 수 있습니다 초기 분수를 제거를 사용하여 조 혼합물을 정제.
   3. 생성물을 포함하는 모든 분획을 합하고 동결 건조 (원하지 diphosph로 가수 분해를 최소화하기 위해, 회전 증발기에서 증발되는 것이 바람직) 먹었다. (용리액에서 남은 트리 에틸 아민을 제거하기 위해) 초순수 여러 번 공 증발. NMR에 의한 인산의 순도 표준 프로토콜의 응용 프로그램 ⁽¹ H와 ³¹ P의 NMR 모두) 및 MALDI-TOF (그림 5 참조) 평가합니다. 이 프로토콜의 애플리케이션에 의해 얻어지는 전형적인 수율은 일반적으로 기판에 따라 30-70 %의 범위에 놓여.

3. 뇌관 확장 반응과 TDT 중합

1. 프라이머의 5'-말단 라벨링
   1. 프라이머 30 pmol의 혼합 (예 : P1, 재료 목록) 배 폴리 뉴클레오티드 키나제 (PNK) 버퍼, ^γ-[32 P] ATP, PNK 1 μL, 그리고 DDH ₂ O 3 μL (용의 4 μL와 40 μl의 총 반응 부피). 30 분 동안 37 ° C에서 반응 혼합물을 품어 후 키나제 (70 ° C에서 10 분) 열 비활성화합니다.
   2. 라벨 반응 준비 중실란 화 된 유리 섬유와 1 ㎖ 피펫 팁을 연결하고 G10 솔루션 (DDH ₂ O 10 %, 멸균)과 팁을 작성하여 G10 세파 덱스 컬럼. 스핀 다운 및 500 μL의 DDH ₂ O 50 μL의 DDH ₂ O. 한 최종 세척로 3 회 세척 (무료 방사성 라벨을 제거하기 위해) G10을 통해 반응 혼합물을 실행합니다.
   3. 젤 (PAGE 20 %) 방사성 동위 원소 표지 된 프라이머를 정화하고 호감을 적용하여 복구 (15)에 대해 72 ° C에서 1 % LiClO _4, 1 mm 순중량 ₃ (산도 8)을 함유하는 수용액 500 μL와 방법 (즉, 용출을 흡수 분). 에탄올 침전 및 G10은 용출 올리고 뉴클레오티드를 탈염.
2. 프라이머 신장 반응
   1. 단련 한 방사성 동위 원소 표지 된 프라이머 P1의 pmol의 10 pmol의 프라이머 P1, 10 (사용되는 효소의 공급 업체에서 제공) 10 배 반응 버퍼에서 템플릿 T1 (자료 목록)의 pmol의 t을 배치하여우베 뜨거운 (90 ~ 95 ° C) 물에 서서히 (45 분 이상) 실온까지 냉각 할 수 있도록하여.
   2. 얼음에 튜브를 넣고 (다시)의 dNTP 칵테일 추가 (수정과를 모두 포함을 자연 트리 포스페이트, 100 μM 최종 농도)와 DNA 중합 효소의 1 U (엑소 (환기 ^- 클레 나우, PWO 또는 11 ° N) _m)와 20 μL의 총 반응 부피를위한 물 ()를 완료하십시오. ^(-)를 사용하고 공기 빼기 (엑소 30 분 동안 예를 들어, 60 ° C) 효소의 최적의 작동 온도에서 배양한다.
   3. 스톱 솔루션 (포름 아미드 (70 %), 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA, 50 mM의), 브로 모 페놀 블루 (0.1 %), 자일 렌 cyanol (0.1 %))의 20 μl를 추가, 샘플 (95 ° C, 5 분) 가열, 냉각 아래로 (0 ° C), 및 폴리 아크릴 아마이드 겔 전기를 변성하여 해결할 수 있습니다. phosphorimager으로 시각화.
3. TDT 중합
   1. 단일 가닥의 7 pmol의 희석레이블이 지정되지 않은 프라이머 P2 (자료 목록), 1 μL의 TDT 버퍼 10 배의 방사성 동위 원소 프라이머 1 pmol의.
   2. 얼음에 튜브를 넣고 (다시) (10 및 200 μM 사이를 포함 적절한 농도)의 dNTP 칵테일 및 TDT 중합 효소 (4 U)를 추가합니다. 1 시간 동안 37 ℃에서 배양한다. 정지 용액 10 μl를 추가, 샘플 (95 ° C, 5 분) 열 (0 ° C)를 냉각, 및 (PAGE 15 %) 폴리 아크릴 아마이드 겔 전기를 변성하여 해결할 수 있습니다. phosphorimager으로 시각화.

4. 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트와 PCR

1. 모두 앞으로의 8 pmol의 혼합 및 증폭되는 템플릿의 0.5 pmol의와 역방향 프라이머. 10X 반응 버퍼 (200 μM 최종 농도)의 dNTP 칵테일을 추가하고 얼음에 튜브를 넣어. 20 μL의 최종 볼륨에 도달 한 DNA 중합 효소의 U와 H ₂ O를 갖춘 추가. PCR 유리 병에 혼합물을 전송하고 30 PCR주기를 실시하고 있습니다.
2. 배 크로스로드 버퍼의 10 μL와 10 μl를 희석하고 전기 영동 (에티 디움 브로마이드로 염색) 아가로 오스로 2 %를 해결할 수 있습니다. phosphorimager으로 시각화.

그들은 핵산 ^(41)에 작용기의 광대 한 배열의 손쉬운 도입을 허용 이후 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트 합성 목표를 매혹됩니다. 그러나, 이러한 활성화 된 빌딩 블록의 분리 및 특성 규명은 종종 힘든 것으로 밝혀진다. 따라서, 여기에 기술 된 결과를 상기 합성, 생화학 적 절차 (그림 1B) 내에서 여러 단계를 수행하기 위해 도움의 손길을 제공 할 것으로 생각된다.

특히,도 3은 인 센터의 특성상 신호 (즉, 관찰 될 수있는 변성의 dNTP 전형적인 조 ⁽³¹⁾ P-NMR 스펙트럼 (특히이 경우 하위 사용자 ^BPU TP (4) ^(18),도 2)을 나타낸다 -5.02 (P의 _γ)에 이중 어, -10.44 (P의 _α)에서 이중선 및 -20.55 (P의 _β) PPM에서 삼중). 또,이야인산 (-4.84 두 이중선과 -10.63 PPM)과 인산염 (-21.02에서 신호 -23.19 ppm)를 높은 인산염과 함께 측면 제품 (-0.18 ppm 이하 중항)에 따른 ignals는 항상이 단계에서 관찰된다. 조 혼합물의 제 RP-HPLC 분석하면서 주요 부산물, 5 DU ^(BPU TP에 대한 (4))의 주요 피크 (R의 _T = 30.78 분), 5'-트리 포스페이트에 해당 위치를 그림 4에 표시됩니다 '- 인산은 약간 낮은 유지 시간 (R의 _T = 30.03 분)을 표시합니다. 마지막으로, 철저한 RP-HPLC 정제 후, 변성의 dNTP는 NMR 및 MALDI-TOF (도 5)에 의해 특징 지어 질 필요가있다. 원하지 않는 디 - 및 모노 - 포스페이트의 존재는 특유의 신호를 제공 이후 ¹ H-NMR, ³¹ P-NMR 스펙트럼은, 개질의 dNTPs의 순도를 평가하기위한 중요한 둘.

nucleos의 순도를 설정 한 후IDE 유사체 및 질량 또는 UV-분광법에 의해 어느 원액의 농도를 평가하는, 변성의 dNTP 여러가지 중합하여 기판의 수용 능력을 평가하기 위해 프라이머 신장 반응에 사용될 수있다. 6은 프라이머 신장 반응의 결과를 도시 한 도표 dU가 ^{t의 P의} TP (2) 다동 ^{안녕하세요!} TP (6), 및 DC ^발 TP (7) 두 개의 수정의 dNTPs (차선 8-10)의 조합으로 고독한 수정 (차선 5-7), 또는 함께 하나 사용 고독한 자연 dGTP를 (레인 11)와 함께.

마지막으로, 그림 7은 다른 수정 된 dUTP 유사체로 대표 TDT-매개 중합 반응을 보여줍니다. 이러한 맥락에서, 뒤 ^{C의 P의} TP (1) 및 ^FP적인 dU TP (3) TDT위한 유용한 기질이다 (레인 1과 4) 테일링 효율은 대등 이후 또는 자연 dTTP (레인 6)의 사람들을 초과. 작은 다 분산 이상 크기의 올리고 뉴클레오티드가 관찰 될 수 있기 때문에, 대신에 하위 사용자 ^BPU TP (4) (레인 5)이 컨텍스트에서 약간 나쁨 기판이다.

그림 1. A) (베이스의 합성 루드비히 Eckstein의 접근 방식은)) 이전에 같은 SELEX 같은 애플리케이션에서의 사용과 수정의 dNTPs의 합성, 생화학 적 특성에 필요한 모든 단계의 도식 표현을 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트 ^39. B를 수정했습니다. 보려면 여기를 클릭하십시오 큰 이미지 .

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그림 2. 뒤 ^{C의 P의} TP (1), 뒤 ^{T의 P의} TP (2) 열화 우라늄 ^FP TP (3) 열화 우라늄 ^BPU TP (4) 열화 우라늄 ^모텔 TP (5), ¹⁸ dA를 ^{안녕하세요!} TP (: 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트의 화학 구조 6), 및 DC ^발 TP (7) ^13. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

그림 3. ³¹ P-NMR 스펙트럼 (121 0.4 MHz의 열화 우라늄 ^BPU TP의 원유 반응 혼합물의 D ₂ O) (4). 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

그림 4. 원유 dU가 ^BPU TP의 RP-HPLC 프로필 (4) : H ₂ O에서 50 mM의 TEAB, 리제 B : 3.5 ㎖ / 분 (리제 A : 40 분의 0 ~ 100 % 용리액 B, 유량 H에서 50 mM의 TEAB ₂ O / CH ₃ CN (1 / 1)). 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

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그림 5. , ¹⁸ B) ¹ H-NMR 스펙트럼 (300 MHz 이상, D ₂ O, 128 스캔 A) ³¹ P-NMR 스펙트럼 (121.4 MHz의 D ₂ O, 128 스캔) : 변성 클레오 시드 삼인산적인 dU ^모텔 TP (5)의 특성 ). C) MALDI-TOF 스펙트럼 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

그림 6. . 다양한 자료 수정의 dNTP 유사체 레인 1 프라이머 확장 반응의 대표적인 젤 이미지 (PAGE 15 %) : 프라이머; 레인 2 : dUTP를하지 않고 자연의 dNTPs; 레인 3으로 dATP없이 자연의 dNTPs; 레인 4 : dCTP없이 자연의 dNTPs; 레인 5 : dU가 ^{T의 P의} TP (2); 레인 6 : 다 ^{안녕하세요!} TP (6); 레인 7 : DC ^발 TP (7); 레인 8 : 다 ^{안녕하세요!} TP (6)과 뒤 ^{T의 P의} TP (2); 레인 9 : 다 ^{안녕하세요!} TP (6) 및 DC ^발 TP (7); 레인 10 : 뒤 ^{T의 P의} TP (2) 및 DC ^발 TP (7); 레인 11 : 뒤 ^{T의 P의} TP (2) 다동 ^{안녕하세요!} TP (6), 및 DC ^발 TP (7); 레인 12. 자연의 dNTPs는 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

그림 7. 다양한베이스 수정 된 dUTP 유사체와 TDT 중합 반응의 젤 이미지 (PAGE 20 %) 레인 1. 뒤 ^{C의 P의} TP (1); 레인 2 : 뒤 ^{T의 P의} TP (2); 레인 3 : dU가 ^모텔 TP (5); 레인 4 : ^FP적인 dU TP (3); 레인 5 : dU가 ^BPU TP (4); 레인 6 : dTTP; 레인 7 : 프라이머. 농도 :. 10 μM, 25 μM, 50 μM, 75 μM, 100 μM는 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .

핵산에 수정이 포함되어 있다고 안티센스 및 antigene 에이전트의 개발 ^{42, 43,} 라벨 및 올리고 뉴클레오티드 ^(41)의 기능 태그 등 다양한 실제 응용 프로그램에 대한 관심, 그리고 유전 알파벳 ^44-46을 확장하기 위해 노력합니다. 화학 변경 및 작용기는 일반적으로 표준 자동화 고체 상 합성 프로토콜을 적용하여 핵산에 도입된다. 그러나, 포스 빌딩 블록은 다시 화학적 기능 ^(47)의 특성에 심각한 제한을 부과하는이 방법에 의해 부과 오히려 가혹한 조건에 반발 할 필요가있다. 유일한 제한은 그들이 중합 효소 ^1,2 기질 역할을하는 것이 있기 때문에 대신 수정 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트의 효소 - 매개 중합, 기능의 넓은 범위를 도입 할 수 있습니다. 세대의 눈에 부족하다하더라도erally 적용 방법론, 신뢰성과 강력한 합성 및 분석 방법이 수정의 dNTPs의 합성을 위해 개발되었습니다. 또한, 때문에 자신의 고유 한 특성으로, 수정 된 트리 포스페이트는 다른 외부 조건 (예를 들어, 산도, 온도) 때문에, 자신의 합성 및 특성에 대한 자세한 프로토콜이 매우 유용에 다소 민감하다.

여기에 제공된 워크 플로는 수정의 dNTPs의 화학 합성, RP-HPLC 정제, NMR 분석하고, 이러한 뉴 클레오 시드 유사체의 생화학 적 특성에 대한 효소 분석을 포함한다. 변성의 dNTPs의 성공적인 합성 및 특성화를위한 가장 중요한 단계는 (NMR에 의해) 조 생성물의 분석, 철저한 HPLC 정제, 정제 된 물질을 분석하고, 적절한 DNA (RNA) 폴리머의 선택이다.

변성의 dNTPs의 합성을 위해 우리는 루트비히 및 에크 의해 개발 된 방법을 적용약간 긴 합성 경로의 비용이라도 다른 과정에 비해 더 적은 부산물을 형성하기 때문에 스타 ^39. 또한, RP-HPLC 정제 확실히 종종 DNA를 강력하게 억제 RNA 중합 효소가 ⁴⁸ 뉴 클레오 시드 디 포스페이트 (dNDPs)의 분리가 발생할 수 있으므로, 전체 합성 경로의 중요한 단계를 나타낸다. 합성 및 정제를 달성 한 후, 생성 된 트리 포스페이트의 순도는 더 중합 저해 포스페이트가 존재하지 않도록 NMR 및 MALDI-TOF에 의해 모두 평가 될 필요가있다.

도 6에 도시 된 내장 분석 깨끗이이 방법의 유용성을 강조한다. 더 빠르고 더 작은 조각에 해당하는 밴드가 관찰 될 수있는 실행 이후 ^- 사실,이 대표적인 예에 사용 된의 dNTPs의 모든 ()이 특별한 경우에 엑소 (환풍) DNA 중합 효소에 대한 좋은 기질로 알 수있다. BES십오, 효소는 카르 복실 산 잔기 (뒤 ^{t의 P의} TP (3) 및 DC ^발 TP (7))과 이상인 39 추가 음전하 베어링 올리고 뉴클레오티드 모두의 dNTPs 결과의 중합으로 장식 된 두 기판을 견뎌. 또 다른 눈에 띄는 기능은 수정의 dNTPs의 결합으로 인한 밴드가 자주 (비교 예 11 및 12 차선) 자연 컨트롤보다 느린 전기 이동도를 표시 할 것입니다. 따라서, 프라이머 신장 반응은 수정의 dNTPs의 기판 수용을 평가 할 수있는 강력한 아직 간단한 방법을 나타냅니다.

또한, 단일 가닥 올리고 뉴클레오티드의 3'-말단에 트리 포스페이트의 TDT-매개 중합이 높은 작용 핵산 ^49-52의 생성을 유혹하는 전략이다. 도 7에 도시 된 대표적인 예 깨끗이 셀렉틴위한 절차를 보여G 공동 ^{2 +에} 의존 TDT ^(53)에 의해 허용되는 기능. 사실, 뒤 ^{C의 P의} TP (1)과 dU가 ^FP TP (3), 이는 α-반페 - 프로, 각각 TDT에 가장 적합한 기판은 proteinogenic 아미노산 L-프롤린과 디 펩티드를 탑재 상승했다됩니다 도 10 μM의 낮은 농도에서, 수정되지 않은 dTTP 컨트롤에 뒤지지 효율성을 미행 (레인 1, 4). 다 분산 이상 크기의 올리고 뉴클레오티드에만 이상에서 관찰되기 때문에 의외로, 아날로그 뒤 ^{t의 P의} TP (2) 프롤린 잔기는 유리 카르 복실 산에 비하여 트랜스있는 링커 아암에 연결되는 경우, 그 시스 상대만큼 좋은 기판 아니다 의 dNTP 농도 (> 100 μM, 레인 2). 또한, 술폰 아미드 수정의 dNTP 5 TDT 및 dU가 비교를 위해 적당한 기판이다 ^{t의 P의} TP (2) (레인 3). 또 하위 사용자 ^BPU TP (4), 강력한 수소 결합 공여 모티프 부담 TDT위한 약간 나쁨 기판이며, 중합 반응은 개질의 dNTP 농도에 무관심 것으로 보인다. 따라서, 기판 수용의 다음 순서는 그림 7에서 해석 할 수 있습니다 뒤 ^{C의 P의} TP (1) 열화 우라늄 ^FP TP (3)> 뒤 ^{T의 P의} TP (2) 열화 우라늄 ^모텔 TP (5)> dU가 ^BPU TP (4 ).

마지막으로, 변형 된 유사체를 사용하여 PCR 조건 하에서 중합 반응에 대해 기재된 절차에 천연의 dNTPs 관련된 것과 다소 유사하다. 그러나, 이들 조건 하에서 폴리머 변성의 dNTPs 호환성 고밀도 functionali의 생성을 위해 매우 중요하다특히 체외 선택 실험에서의 사용에 관해서는 제드 자형의 핵산 ^7.

요약하면, 변형 된 뉴 클레오 사이드 트리 포스페이트의 합성 및 특성화를위한 방법을 강조하고, 그러한 프로토콜의 스타일은 확실히 신규 유사체의 개발 및 크래프트 조합에 도움이 될 것이다. 부수적으로, 이러한 신규의 dNTPs의 출현은 작용 화 된 올리고 뉴클레오티드의 생성을 촉진 할 것이다; 특히, 촉매 핵산.

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

이 작품은 스위스 국립 과학 재단 (보조금 N PZ00P2_126430 / 1 ° 및 PZ00P2_144595)에 의해 지원되었다. 교수 C. Leumann 대해 감사의 실험실 공간 및 장비를 제공뿐만 아니라, 자신의 지속적인 지원에 대해 인정 받고 있습니다. 양 고소 KNECHT는 유익한 토론을위한 인정 받고 있습니다.