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Qui descriviamo un metodo per ridurre le dimensioni degli embrioni di pesce zebra senza interrompere i normali processi di sviluppo. Questa tecnica consente lo studio del ridimensionamento del modello e della robustezza dello sviluppo contro il cambiamento delle dimensioni.
Nel processo di sviluppo, gli embrioni mostrano una notevole capacità di abbinare il loro modello corporeo alle loro dimensioni corporee; la loro proporzione corporea è mantenuta anche in embrioni che sono più grandi o più piccoli, entro certi limiti. Anche se questo fenomeno di scalatura ha attirato l'attenzione di oltre un secolo, la comprensione dei meccanismi di base è stata limitata, a causa in parte di una mancanza di descrizione quantitativa delle dinamiche evolutive in embrioni di varie dimensioni. Per superare questa limitazione, abbiamo sviluppato una nuova tecnica per ridurre chirurgicamente le dimensioni degli embrioni di pesce zebra, che hanno grandi vantaggi per l'imaging Live in vivo. Abbiamo dimostrato che dopo una rimozione equilibrata delle cellule e del tuorlo alla fase Blastula in fasi distinte, gli embrioni possono recuperare rapidamente nelle giuste condizioni e svilupparsi in embrioni più piccoli ma altrimenti normali. Poiché questa tecnica non richiede attrezzature speciali, è facilmente adattabile e può essere utilizzata per studiare una vasta gamma di problemi di ridimensionamento, inclusa la robustezza del patterning mediogeno.
Gli scienziati hanno da tempo saputo che gli embrioni hanno una notevole capacità di formare proporzioni corporee costanti, anche se le dimensioni dell'embrione possono variare notevolmente sia in condizioni naturali che sperimentali1,2,3. Nonostante decenni di studi teorici e sperimentali, questa robustezza alla variazione dimensionale, il ridimensionamento definito, e i suoi meccanismi sottostanti rimangono sconosciuti in molti tessuti e organi. Al fine di catturare direttamente le dinamiche del sistema di sviluppo, abbiamo stabilito una tecnica di riduzione delle dimensioni riproducibile e semplice in pesce zebra4, che ha il grande vantaggio in in vivo di imaging Live5.
Zebrafish ha servito come modello di animale vertebrato per studiare diverse discipline della biologia, compresa la biologia dello sviluppo. In particolare, il pesce zebra è ideale per l'imaging Live in vivo6 perché 1) lo sviluppo può procedere normalmente al di fuori della madre e del guscio d'uovo, e 2) gli embrioni sono trasparenti. Inoltre, gli embrioni possono sopportare alcune fluttuazioni di temperatura e ambientali, che permette loro di essere studiati in condizioni di laboratorio. Inoltre, oltre alla perturbazione convenzionale dell'espressione genica per morfolino e l'iniezione di mRNA7,8, i recenti progressi nella tecnologia CRISPR/Cas9 hanno reso la genetica inversa in pesce zebra altamente efficiente9. Inoltre, molte tecniche classiche in embriologia, come il trapianto di cellule o la chirurgia tissutale possono essere applicate4,10,11.
Le tecniche di riduzione delle dimensioni sono state originariamente sviluppate in anfibi e altri animali non vertebrati12. Ad esempio, in Xenopus laevis, un altro modello popolare di animali vertebrati, la bisezione lungo l'asse animale-vegetale allo stadio Blastula può produrre embrioni di dimensioni ridotte12,13. Tuttavia, nelle nostre mani questo approccio in un solo passaggio provoca embrioni dorsalizzati o ventralizzati nel pesce zebra, presumibilmente perché i determinanti dorsali sono distribuiti in modo non uniforme e non si può conoscere la loro localizzazione dalla morfologia degli embrioni. Qui si dimostra un'alternativa tecnica di taglio a due fasi per il pesce zebra che produce embrioni normalmente in via di sviluppo ma più piccoli. Con questa tecnica, le cellule vengono prima rimosse dal palo animale, una regione di cellule ingenue prive di attività dell'organizzatore. Per bilanciare la quantità di tuorlo e cellule, che è importante per epiboly e successiva morfologenesi, il tuorlo viene quindi rimosso. Qui, dettagliamo questo protocollo e forniamo due esempi di invarianza dimensionale nella formazione del modello; la formazione di somite e il patterning del tubo neurale ventrale. In combinazione con l'imaging quantitativo, abbiamo utilizzato la tecnica di riduzione delle dimensioni per esaminare il modo in cui le dimensioni dei somiti e del tubo neurale sono influenzate in embrioni ridotti.
Tutte le procedure relative ai pesci sono state effettuate con l'approvazione del Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali (IACUC) presso la Harvard Medical School.
1. preparazione degli utensili e dei reagenti
2. preparazione di embrioni di zebrafish per la riduzione delle dimensioni chirurgiche
3. riduzione e recupero delle dimensioni chirurgiche
4. immagini dal vivo della Somitogenesi zebrafish
5. Imaging del patterning del tubo neurale
La riduzione del volume di tuorlo è importante per la morfologia normale
Come recentemente descritto in Almuedo-Castillo et al.17, la riduzione delle dimensioni degli embrioni può essere ottenuta senza ridurre il volume del tuorlo. Per confrontare con e senza riduzione del volume di tuorlo, abbiamo eseguito sia il taglio a due fasi (sia Blastula e tuorlo) che la Blastula-solo taglio (Figura 2 e film supplementare 1). Embrioni tritati in due fasi hanno mostrato una morfologia complessiva apparentemente normale rispetto al controllo (solo dechorionation) embrioni, diversi dalla differenza di dimensione, durante le fasi di sviluppo (Vedi Pannelli superiore e centrale in Figura 2). Dall'altro lato, gli embrioni triturati di Blastula mostravano una morfologia peculiare, soprattutto nelle fasi precedenti. Durante l'epibolia, gli embrioni avevano un aspetto ristretto e rientrato (vedere Pannello inferiore per 70% epiboly in Figura 2). Nella fase somica seguente, le strutture linea mediana sono state trovate appiattite (cioè la lunghezza DV è relativamente più corta della lunghezza ml) a molti livelli assiali (vedere pannelli inferiori per 8 e 20 somite in Figura 2). Nelle fasi successive, le strutture del corpo adiacenti al tuorlo, come la metà e il cervello posteriore, e i primi ~ 10 somiti, mostravano ancora una forma relativamente appiattita, probabilmente a causa di una maggiore tensione dal tuorlo relativamente più grande.
Riduzione delle dimensioni della somite negli embrioni ridotti
I somiti sono strutture segmentali che compaiono transitoriamente durante l'embriogenesi e danno origine a vertebre e muscolo scheletrico. Dal mesodermo presomitico (PSM), i somiti sono formati uno ad uno dalla direzione anteriore a quella posteriore in modo periodico (ad esempio 25 minuti per il pesce zebra, 2 h per i topi) (Figura 3a). Abbiamo eseguito l'imaging time lapse della formazione di somite sia per il controllo che per gli embrioni tritati e misurato la dimensione dei somiti più recentemente formati (Figura 3B). In entrambi gli embrioni di controllo e triturati, le dimensioni dei somiti che si sono formate in fasi successive sono risultate più piccole rispetto a quelle delle fasi precedenti. Inoltre, durante le fasi di formazione della somite, gli embrioni tritati avevano somiti più piccoli di quelli degli embrioni di controllo (Figura 3C).
Le altezze dei tubi neurali sono ridotte dopo riduzione delle dimensioni
Per vedere l'effetto della riduzione delle dimensioni dell'embrione sulle dimensioni del tubo neurale, abbiamo eseguito la nostra tecnica di taglio in due fasi su embrioni iniettati MEM-mCherry e hanno immagine le loro corde spinali a 20 HPF utilizzando il nostro sistema di imaging confocale (Figura 4a, B). In questo DataSet, le altezze dei tubi neurali sono state ridotte dopo la riduzione delle dimensioni del 12,4% ± 3,2%, come misurato manualmente utilizzando il codice di analisi immagine personalizzato (Figura 4C). Presi insieme, questi dati mostrano che la riduzione delle dimensioni riduce l'altezza del tubo neurale. Questa tecnica può essere utilizzata per misurare gli effetti della riduzione delle dimensioni sul patterning neurale.
Figura 1 : Tecnica di riduzione delle taglie. Circa il 30%-40% delle cellule sono stati tagliati dal palo animale (pannelli superiori). La membrana che circonda il tuorlo è stata accuratamente ferita in modo che il tuorlo traeva (pannelli centrali). Per i pochi minuti successivi, il tuorlo si è lizzato e poi le ferite su entrambi i blastodermi e il tuorlo guarirono (pannelli inferiori). Barra di scala = 200 μm. Si prega di cliccare qui per visualizzare una versione più grande di questa cifra.
Figura 2 : Confronto tra due metodi di riduzione delle dimensioni. Embrioni di controllo (pannelli superiori, embrioni superiori per 24 HPF e 30 HPF), dimensioni ridotte di embrioni con taglio a due fasi (Blastula e tuorlo, pannelli medi, embrioni medi per 24 HPF e 30 HPF) e dimensioni ridotte di embrioni con taglio solo Blastula (pannelli inferiori, embrioni inferiori per 24 HPF e 30 HPF) vengono confrontati lungo le fasi evolutive. Si noti che in Blastula-solo embrioni tritati, il volume di blastoderma è molto più piccolo rispetto al tuorlo (a 70% epiboly). Di conseguenza, l'embrione ha una forma sproporzionatamente appiattita a stadi somiti (cioè, l'asse DV è relativamente più breve rispetto all'asse AP in embrioni triturati solo in Blastula, rispetto al controllo o a uno tritato a due fasi). Scala BA = 200 μm. Si prega di cliccare qui per visualizzare una versione più grande di questa cifra.
Figura 3 : La riduzione delle dimensioni riduce la lunghezza dei somiti. A) illustrazione schematica della formazione di somite. (B) campo luminoso immagini di controllo e di embrioni triturati nel tempo. Le punte di freccia gialle indicano la somite più recente formata in ogni fase della somite. C) misurazioni della lunghezza della somite (in asse anteriore-posteriore) nel tempo sia per il controllo che per gli embrioni tritati. Le barre di errore rappresentano la deviazione standard. Si prega di cliccare qui per visualizzare una versione più grande di questa cifra.
Figura 4 : La riduzione delle dimensioni riduce l'altezza del tubo neurale. (A-B) Immagini di esempio delle dimensioni normali (A) e ridotte (B) TG (ptch2: Kaede) embrioni che sono stati iniettati nella fase a singola cellula con mRNA MEM-mCherry. Barra di scala = 20 μm. (C) altezze del tubo neurale estratte dalla segmentazione manuale del tubo neurale in ogni pila z. Differenze statisticamente significative sono osservate in media altezza neurale quando i valori vengono confrontati utilizzando un t-test non accoppiato (p = 0,0397). Si prega di cliccare qui per visualizzare una versione più grande di questa cifra.
Filmato supplementare 1: confronto tra il taglio in due fasi contro la Blastula-solo taglio. Riga superiore = embrioni di controllo, riga centrale = dimensioni ridotte embrioni con due fasi di taglio, riga inferiore = dimensioni ridotte embrioni con Blastula solo taglio. I film sono stati presi ogni 3 min per 12 h. barra di scala = 1 mm. fare clic qui per visualizzare questo video. (Fare clic con il pulsante destro del mouse per scaricarlo).
Storicamente, tra gli animali vertebrati, la riduzione delle dimensioni è stata eseguita principalmente utilizzando embrioni anfibi, bisettrice gli embrioni lungo l'asse animale-vegetale in una Blastula fase12. Tuttavia, ci sono principalmente due differenze tra gli embrioni di rana e di pesce zebra quando si dividere gli embrioni. In primo luogo, nella fase in cui gli embrioni di pesce zebra diventano tolleranti di bisettrice (stadio Blastula), l'organizzatore si trova in una zona ristretta di Blastula margin18,19,20,21. Perché non si può dire la posizione dell'organizzatore dalla morfologia degli embrioni, tagliando casualmente l'embrione lungo l'asse animale-vegetale produce embrioni dorsalizzati o ventralizzati. In secondo luogo, a differenza degli embrioni di rana, gli embrioni di pesce zebra attraversano un processo chiamato epiboly, dove le cellule si muovono verso il palo vegetale intorno a un tuorlo separato fino a quando non è completamente circondata da cellule. Se viene rimossa solo una porzione di blastoderma, rimangono meno cellule per inghiottire un tuorlo di volume relativamente più grande e, di conseguenza, la morfologia appare influenzata dopo l'epibolia. Pertanto, impieghiamo il taglio in due fasi in cui tagliamo le blastule vicino al palo animale, per evitare di tagliare l'Organizzatore e ferire la membrana tuorlo, per rendere la dimensione del tuorlo proporzionale alla Blastula.
Oltre al taglio in due fasi, abbiamo trovato il mezzo in cui viene eseguita la chirurgia di riduzione delle dimensioni è fondamentale per il recupero di embrioni dopo l'intervento chirurgico. Tra diversi media che abbiamo provato (acqua di uovo, acqua uovo + albumina, buffer Danieau, L15, L15 + FBS, 1/3x Ringer, 1x Ringer), solo 1/3x Ringer e 1x Ringer ha prodotto alti tassi di sopravvivenza; in altri media, gli embrioni non sono riusciti a riprendersi dalle ferite.
Un importante suggerimento per la risoluzione dei problemi per un basso tasso di sopravvivenza consiste nell'utilizzare embrioni sani provenienti da pesci genitori sani e giovani. Abbiamo notato che anche quando gli embrioni di controllo non di dimensioni ridotte mostrano quasi il 100% del tasso di sopravvivenza, quando la dimensione è ridotta, gli embrioni provenienti da pesci più anziani tendono a mostrare un tasso di sopravvivenza inferiore. Inoltre, si noti che il tasso di sopravvivenza tende a diminuire quando la riduzione delle dimensioni è combinata con ulteriori perturbazioni, come l'iniezione di morfolino.
La semplicità della tecnica di riduzione delle dimensioni qui descritta consente ai ricercatori di applicare questa tecnica senza attrezzature specializzate o allenamento intensivo. Inoltre, poiché la dimensione ridotta embrioni rimangono più piccoli fino a fasi successive di sviluppo (una volta che iniziano a mangiare, la loro dimensione sembra recuperare il ritardo con il pesce di controllo), questa tecnica può essere applicata per lo studio di scala di molti tessuti e organi. Pertanto, questa tecnica consente di combinare la riduzione delle dimensioni e l'imaging Live quantitativo in vivo per studiare il ridimensionamento e il controllo delle dimensioni di vari sistemi.
Gli autori non dichiarano alcun interesse concorrente o finanziario.
Il lavoro è stato sostenuto dal programma PRESTO dell'Agenzia giapponese per la scienza e la tecnologia (JPMJPR11AA) e da un Istituto nazionale di salute (R01GM107733).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
60 mm PYREX Petri dish | CORNING | 3160-60 | |
Agarose | affymetrix | 75817 | For making a mount for live imaging |
Agarose, low gelling temperature Type VII-A | SIGMA-ALDRICH | A0701-25G | |
CaCl2 | EMD | CX0130-1 | For 1/3 Ringer's solution |
CaSO4 | For egg water | ||
Cover slip (25 mm x 25 mm, Thickness 1) | CORNING | 2845-25 | |
Disposable Spatula | VWR | 80081-188 | |
Foam board | ELMER'S | 951300 | For microscope incubator |
Forcept (No 55) | FST | 11255-20 | |
Glass pipette | VWR | 14673-043 | |
HEPES | SIGMA Life Science | H4034 | For 1/3 Ringer's solution |
INCUKIT XL for Cabinet Incubators | INCUBATOR Warehouse.com | For microscope incubator | |
Instant sea salt | Instant Ocean | 138510 | For egg water |
KCl | SIGMA-ALDRICH | P4504 | For 1/3 Ringer's solution |
Methyl cellulose | SIGMA-ALDRICH | M0387-100G | |
NaCl | SIGMA-ALDRICH | S7653 | For 1/3 Ringer's solution |
Petri dish | Falcon | 351029 | For making a mount for live imaging |
Phenol red | SIGMA Life Science | P0290 | |
Pipette pump | BEL-ART PRODUCTS | F37898 | |
Pronase | EMD Millipore Corp | 53702-250KU | |
Tricaine-S (MS222) | WESTERN CHEMICAL INC | NC0135573 | |
Ultra thin bright annealed 316L dia. 0.035 mm Stainless Steel Weaving Wires | Sandra | The wire we used was obtained ~20 years ago and we could not find exactly the same one. This product has the same material and diameter as the one we use. |
Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE
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