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生长板是发生纵向生长的儿童长骨中的软骨区域。当受伤时,骨组织可能形成并损害生长。我们描述了生长板损伤的大鼠模型,其导致骨修复组织,允许研究修复机制和生长板再生策略。
所有儿科骨折的三分之一涉及生长板,并可能导致骨生长受损。生长板(或分裂)是在所有长骨结束时发现的软骨组织,其负责纵向骨生长的儿童。一旦损伤,生长板内的软骨组织就可能发生过早的骨化,并导致不必要的骨修复组织,形成"骨棒"。在一些情况下,这种骨棒可能导致骨生长畸形,例如角度畸形,或者可以完全停止纵向骨生长。目前没有临床治疗可以完全修复受伤的生长板。使用生长板损伤的动物模型更好地了解骨棒形成的机制,并确定抑制它的方法是开发更好的生长板损伤治疗的好机会。该协议描述了如何使用钻孔缺陷来破坏大鼠近端胫骨生长板。这个sma动物模型可靠地产生一个骨棒,并可能导致类似于在儿童中看到的生长畸形。该模型允许调查骨条形成的分子机制,并且作为测试生长板损伤的潜在治疗选择的手段。
生长板损伤占所有儿科骨折的30%,可能导致骨生长受损1 。除骨折外,生长板受伤可能由其他病因引起,包括骨髓炎2 ,原发性骨肿瘤3 ,放射和化学疗法4以及医源性损伤5 。生长板(或Physis)是儿童长骨结束时的软骨区域,负责纵向骨生长。它通过软骨内骨化促进骨伸长;软骨细胞经历增殖和肥大,然后由进入的成骨细胞重塑以形成小梁骨6 。生长板也是发育骨架的弱区,容易受伤。生长板骨折或损伤的主要问题是生长板内损伤的软骨组织可以be替换为不需要的骨修复组织,也被称为"骨棒"。根据其生长盘中的大小和位置,骨棒可能导致角质畸形或完全生长停滞,对于尚未达到其全身高度的幼儿来说,这是一个破坏性的后遗症7 。
目前没有治疗可以完全修复受伤的生长板。一旦骨髓形成,临床医生必须决定是否手术切除它8 。至少2年或2厘米骨骼生长剩余的患者和跨越小于生长板面积的50%的骨棒通常是骨髓切除术的候选者8 。骨髓移植通常是随机插入自体脂肪移植物,以防止骨组织的重组,并允许周围的未受伤的生长板恢复生长。然而,这些技术是问题激素经常失败,导致骨条复发,对生长持续负面影响9 。迫切需要开发有效的治疗方法,不仅可以防止骨形成,还可以使生长板软骨再生,从而恢复正常的骨伸长。
骨棒形成的分子机制尚未完全阐明。对这些生物学机制的更多了解可以为受损生长板损伤的儿童带来更有效的治疗干预措施。由于在人类中研究这些机制是困难的,所以已经使用动物模型,特别是生长板损伤的大鼠模型10,11,12,13,14,15,16 。本文介绍的方法论文描述了大鼠胫骨生长板中的钻孔缺陷如何导致可预测和可重复的修复组织,其早于损伤后7天开始骨化,并且在损伤后28天形成完全成熟的骨块,重塑。这提供了一种小型动物体内模型,其中研究骨形成的生物学机制,以及评估可以预防骨棒和/或再生生长板软骨的新疗法。例如,该模型可用于测试可以再生生长板软骨的软骨形成生物材料,并为患有生长板损伤的儿童提供有价值的治疗。本文介绍的技术将描述用于产生生长板损伤的手术方法和随后将生物材料递送至损伤部位。我们还将讨论评估骨棒形成和修复组织的方法。
所有动物手术必须得到当地机构动物保护和使用委员会(IACUC)的批准。以下程序的动物方案由科罗拉多大学丹佛IACUC批准。
获得大鼠
注意:除非需要转基因动物,否则在手术时需要6周龄的骨骼不成熟的Sprague-Dawley大鼠。可能使用其他菌株;然而,大多数已发表的研究已经在Sprague-Dawley大鼠上进行。
2.手术用品的准备
麻醉和动物的制备
4.准备胫骨外科手术
5.进入生长板的外科手术
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图1:外科手术程序概述。
A)用于创建成功生长板损伤的几种解剖标记的位置。膝盖胶囊紧靠膝盖后面(白色),将胫骨与股骨分开。胫骨生长板(深红色)可以看到比膝盖骨更差,绕过胫骨。近端生长板是一个大致平面的平面,除了形成对角平面的前四分之一。这两个平面的交点形成生长板角度,用于适当的钻孔角度。半腱肌插入是在后胫骨插入四头肌肌肉的地方。 B)通过胫骨软组织的前内侧切口进入皮质骨。 C)使用与远端半腱插入物对齐的皮质窗口的位置作为参考点。 D)评估通过将牙科刀头上的斜面与皮质窗口对齐,损伤的深度。
6.创造生长板损伤
7.后伤程序
使用该方法成功的生长板损伤涉及胫骨生长板的中心的破坏而不破坏关节软骨表面。据报道,骨修复组织在损伤后约7天开始,并在损伤后28天完全发育,通过微型计算机断层扫描(micro CT)显现( 图2 )。虽然这些时间点在这里被选择以显示基于先前公布的数据的骨形成的开始和成熟,但是可以使用其他时间点来研究修复过程的各个阶段,从术后第1至6个月17 。 表1通过提供(1)在整个生长板内的骨体积分数和(2)bo的三次独立运行后28天的外科手术损伤的大鼠生长板中的骨量形成的概述修复组织区域内的体积分数仅为15 。数据报告为平均百分比±标准偏差,并表明在独立运行之间获得了类似的结果。通过单因素方差分析(ANOVA)分析不同运行之间的差异,运行之间没有统计学差异,表明模型的重现性。使用具有橙色G /曙红复色素18的阿尔辛蓝苏木精(ABH)组织学显示不同阶段的骨形成条件下的多种修复组织( 图2 )。使用这种组织学染色,可以鉴别和量化不同类型的修复组织,包括间充质,软骨,骨小梁和骨髓。
由于错误地遵循上述步骤可能会导致一些问题。不方便钻头深度不会破坏生长板,这将导致很少或没有骨棒形成。关节软骨表面的破坏产生较大的损伤,可引起关节软骨进入生长板损伤部位,使愈合过程复杂化( 图3A )。以不适当的角度或方向破坏生长板会导致非中心损伤( 图3B )。在这种情况下,仍然会发生骨棒形成,尽管它将是所需位置的侧向或内侧。总体来说,修复生长板损伤后的组织可能以多种方式进行分析,包括microCT,定量PCR,组织学染色和免疫组织化学。除了组织学和分子测量之外,肢体长度和生长板测量提供了全骨增长的重要测量。据报受影响的肢体与未受伤的对照肢体相比经历生长减缓> 13。在整个研究过程中,可以在不同的时间点测量肢体长度,使用microCT图像来研究肢体长度差异。以前使用的时间点的例子包括伤后28天和56天。生长板测量,包括总体高度,分区高度和系链形成也可以提供关于组织修复过程13,14,15的重要信息。理想情况下,应在手术前采取肢体长度和生长板测量以获得基线值。为了进一步阐明生物学机制或测试治疗的疗效,应设计适当的对照组,并且包括不受影响的四肢和四肢进行手术但未经治疗。
也可以在生长板损伤模型中测试生物材料。作为一个例子,一个i如步骤7.1所述,将山体微凝胶19注射到生长板损伤部位,并且在图4的损伤部位清楚地看到。随后的分析可能涉及确定生物材料对修复组织组成,肢体长度和生长板测量的影响,如前所述。
图2.成功生长板破碎和骨棒形成。
在微创CT后7天观察到骨形成,并通过阿尔辛蓝苏木精(ABH)染色证实。损伤后第28天,骨块完全成熟,如microCT和ABH染色所见。 请点击此处查看此图的较大版本。
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图3.不正确钻孔的潜在结果。
A)通过胫骨钻孔太远可能会破坏关节面,这会使愈合过程复杂化,并可能导致不确定的结果。 B)钻头的角度不正确会导致非中心生长板损伤。 请点击此处查看此图的较大版本。
图4.用生物材料治疗生长板损伤。
ABH染色显示受损生长板中的壳聚糖微凝胶。
公 | 运行1 | 运行2 | 运行3 | P值 |
整个生长板内骨体积分数 | 9.76 +/- 3.81% | 10.52 +/- 4.06% | 11.93 +/- 2.04% | 0.5493 |
修复组织区域内的骨体积分数 | 41.5 +/- 8.33% | 46.08 +/- 10.12% | 46.77 +/- 8.14% | 0.5128 |
骨量分数数据。
来自三个独立运行的未经治疗的大鼠的损伤后28天的数据来自微CT图像。
增长板损伤动物模型大大增加了我们对这种损伤的生物学机制的理解,从而潜在地导致对患有生长板损伤的儿童的更有效的治疗干预。为了成功创建一个骨棒,并使用本工作中提出的模型研究其体内形成,关键是通过钻孔到足够的深度而不破坏关节软骨来破坏生长板。动物的手术实施变化,以及在较小程度上解剖标志物的变化可能会导致问题的结果。我们建议执行上述关于尸体动物的程序,以确保在进行活动动物研究的程序之前成功生长板损伤。虽然尸体动物缺乏组织柔韧性,不会流血,但这些动物的生长板损伤程序和解剖特征与活体动物相似。 Furt睾丸,可以容易地解剖尸体胫骨生长板,因为骨through通过施加轻力与干ysis分离,并且可以观察钻孔的位置。这种快速分析允许技术修改,以了解对尸体动物的适当的钻孔深度和角度,而不需要成像。
应该指出,存在其他生长板损伤的动物模型。已经在小鼠中进行了类似的透孔缺陷,并导致骨形成20 。尽管其尺寸较小,但也可用于研究骨棒形成所涉及的机制。 Coleman 等人报道了另一种有效的生长板损伤大鼠模型,其中通过穿过关节软骨21钻出在股骨远端产生中心性透视缺损。这种方法也导致形成一个骨棒和肢体长度不平等,如同这里提供的模型。生长板损伤和治疗的其他动物模型包括兔22 ,猪23和羊24 。虽然较大的动物损伤模型可能更密切地代表临床损伤,但是大鼠模型对于植入物损伤的生物学机制的研究是有用的。例如,本文提出的大鼠模型已被广泛用于研究植骨损伤和骨形成过程10,11,12,13,14,15,16的分子机制。此外,大鼠模型可以用于在移动到更大的动物模型之前测试各种植物治疗。然而,这种大鼠生长板损伤模型的挑战是在骨骼内进行钻孔,国王不可能观察钻孔位于生长板内的位置。因此,活体动物生长板的成功破坏只能在手术时使用成像技术或通过在手术后7至28天评估骨棒形成来确认。通过实践,可以实现获得骨形成形成的高度成功,但早期研究可导致许多动物由于未受伤的生长板或生长不足而导致骨形成障碍盘子。
该模型的另一个限制是钻孔损伤不代表儿童正常的生长板损伤,这通常是由于骨折而发生的。生长板内的骨折可以使用Salter-Harris分类系统26进行分类。 III型和IV型生长板骨折最常导致导致的植骨损伤到骨棒形成。这里提出的生长板损伤类型最为密切地涉及VI型生长板损伤,这是一种罕见的损伤类型,其中通过创伤或穿刺伤口除去了分离物。然而,由于生长板损伤后骨形成的病理生理机制仍然难以捉摸,所以大鼠模型对发现这一过程仍然很重要,以便为患有各种生长板损伤的儿童开发新的治疗方案。这里描述的方法可靠地产生一个骨棒,可用于研究体内生长板损伤修复过程的多个方面17,27,28,29,30,31,32 。还显示,这种大鼠模型导致生长板后胫骨生长减少陪审团13 ,这使得它是一个更有趣的动物模型来测试导致生长板再生和潜在恢复骨伸长的新型治疗选择。
总之,本文详细介绍了创建生长板损伤模型的方法,通过该模型调查骨形成和体内生长板损伤的潜在治疗。鉴于骨生长板损伤后28天骨块完全成熟,该大鼠模型允许相对便宜且快速的研究。除了发现我们对体内骨棒形成的分子机制的理解,该模型可用于测试抑制骨形成形成并促进生长板软骨再生的生物材料。
作者没有什么可以披露的。
作者承认美国国家卫生研究院(NIH)国家关节炎和肌肉骨骼和皮肤病国家研究所的资助,授权号为R03AR068087,科罗拉多大学医学院学术浓缩基金和盖茨再生医学中心。这项工作也得到NIH / NCATS科罗拉多CTSA授权号UL1 TR001082的支持。内容是作者的唯一责任,不一定代表NIH的正式观点。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Scalpel handle | McKesson | MCK42332500 | |
Needle holder | Stoelting | RS-7824 | |
Adson tissue forceps | Sklar | 50-3048 | |
Iris Scissors | Sklar | 47-1246 | |
Rotary Tool | Dremel | 7700 | Variable speed rotary tool |
Keyless Rotary Tool Chuck | Dremel | 4486 | |
Dental Burs | Dental Burs USA | FG6 | Round carbide bur, ≤2mm |
Steinmann pins | Simpex Medical | T-078 | |
Hair clippers | Wahl | 5537N | |
3-0 PGA surutes | Oasis | MV-J398-V | |
Sterile gauze 2 x 2" | Covidien | 441211 | |
Povidone Iodine | McKesson | 922-00801 | |
Sterile saline | Vetone | 510224 | |
10 mL luer lock syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
23 gauge needle | Becton Dickinson | 305145 | |
Isopropyl alcohol pads | Dynarex | 1113 | |
Isoflurane | IsoFlo | 30125-2 | |
Caliper | Mitutoyo | 500-196-30 | |
Carprofen | Rimadyl | 27180 | |
Buprenorphine | Par Pharmaceuticals Inc | NDC 42023-179 | |
Fenestrated Surgical Drape | McKesson | 25-517 | |
Surgical Gloves | Uline | S-20204 | |
#15 Scalpel Blade | Aven | 44044 | |
9 mm wound clips | Fine Science Tools | 12032-09 | |
Reflex clip applier | World Precision Instruments | 500345 | |
Absorbant underpads | McKesson | MON 43723110 | |
Tec 3 Iso Vaporizer | VetEquip | 911103 | |
Germinator 500 | Braintree Scientific | GER 5287-120V | |
Warm water recirculator | Kent Scientific | TP-700 | |
Absorbent Underpads | Medline Industries | MSC281230 |
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