Method Article
تقدم هذه المقالة دليلا لأخذ عينات من ستة أعضاء مهمة ومتنوعة في Xenopus للبالغين يمكن الوصول إليها بسرعة وسهولة: بطين القلب وشحمة الكبد والبنكرياس والأجسام الدهنية والكلى المقترنة والجلد.
كان Xenopus كائنا نموذجيا قويا لفهم تطور الفقاريات وأمراضها لأكثر من مائة عام. في حين تم توثيق التحليل التجريبي وتقنيات تشريح الجنين بشكل جيد ، لم يتم تحديث أوصاف هياكل وأعضاء Xenopus البالغة ، جنبا إلى جنب مع تقنيات العمل مع البالغين ، لمراعاة متطلبات الأساليب الحديثة مثل البروتينات الكمية والنسخ أحادي الخلية. تتطلب وجهات النظر من نوع الخلية والجينات ملاحظات متناقضة في المراحل الجنينية لتلك الموجودة في الأنسجة البالغة. تخضع أعضاء اليرقة لتغييرات كبيرة في هيكلها العام ، ومورفولوجيتها ، وموقعها التشريحي على طول انتقال اليرقات إلى البالغين ، وعلى الأخص أثناء إعادة تشكيل التحول الهائل. يعد وضع معايير قوية لتحديد الأعضاء وتشريحها أمرا بالغ الأهمية لضمان اتساق مجموعات البيانات الناتجة عن الدراسات التي أجريت في مختبرات مختلفة. يحدد البروتوكول الحالي ستة من الأعضاء في Xenopus البالغ ، مما يوضح طرق تشريح وأخذ عينات من بطين القلب والكبد والجسم الدهني والبنكرياس والكلى المزدوجة وجلد Xenopus البالغ. اعتمادا على طرق الحفظ ، يمكن استخدام الأعضاء المشرحة للبروتينات الكمية ، ونسخ الخلية المفردة / النوى ، والتهجين في الموقع ، والكيمياء الهيستولوجية المناعية ، والأنسجة ، إلخ. يهدف هذا البروتوكول إلى توحيد أخذ عينات الأنسجة وتسهيل التحقيقات متعددة المختبرات لأنظمة الأعضاء البالغة.
على الرغم من أن "التشريح الرقمي" ل Xenopus البالغ " متاح1 ، إلا أن أخذ عينات الأعضاء والأنسجة القابلة للتكرار من Xenopus البالغ لا يزال يمثل تحديا بدون التعليمات التفصيلية المتاحة لنماذج البالغين الأخرى (مثل الفئران2،3،4). تهدف هذه المقالة إلى توفير إرشادات واضحة لأخذ عينات دقيقة وقابلة للتكرار من أعضاء Xenopus البالغة على غرار ما هو متاح حاليا ليرقاتها5. يتم التركيز على سهولة الإكمال للحفاظ على أقصى قدر من النضارة وجعل البروتوكول في متناول جميع المستخدمين.
على الرغم من وجود دليل تشريح شامل ل Rana sp.6 ، بالإضافة إلى العديد من أدلة تشريح الفصول الدراسية ل anurans7 الأخرى ، لا يتوفر حاليا دليل تشريح وأخذ عينات Xenopus. بالنسبة لأولئك الذين ليسوا على دراية بممارسات أخذ العينات أو تشريح البرمائيات ، فإن الاختلافات الصغيرة بين Xenopus و anurans الأخرى تجعل هذه الموارد دون المستوى الأمثل لأخذ عينات الأنسجة القابلة للتكرار.
لم يتم تضمين العديد من الأنسجة القيمة بل يتم التخلص منها في هذا الدليل ؛ هذا لضمان نضارة الأنسجة. ست عينات محدودة بما يكفي لضمان إمكانية جمع هذه الأنسجة في أقل من ساعة بعد أن يبدأ القلب في النبض ، بغض النظر عن خبرة أو مستوى مهارة المستخدم. ويجري إعداد أدلة أكثر تقدما وتفصيلا لجمع العديد من الأنسجة الأخرى كأوراق مصاحبة منفصلة.
بالنسبة للمستخدمين الأقل خبرة ، يوصى دائما بتجربة هذا البروتوكول أولا على التي يتم قتلها رحيما لأسباب أخرى غير التجريب قبل أخذ عينات من أي يصعب استبدالها (مثل الجينات المحورة ، في سن متقدمة ، وما إلى ذلك). من الناحية المثالية ، ستكون جميع التي تم أخذ عينات منها صحية ، وإذا كانت أنثى ، فلن تكون قد تم التبويض في الأسبوعين الماضيين.
تم إجراء جميع التجارب وفقا لقواعد وأنظمة كلية الطب بجامعة هارفارد IACUC (اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام) (IS 00001365_3). تم عرض النتائج التمثيلية لكل من ذكر ألبينو ناضج غير مثقوب وغير مثقوب Xenopus laevis.
1. التحضير التجريبي
ملاحظة: إذا تم اتباع بروتوكول التروية8 قبل أخذ العينات، فانتقل إلى الخطوة 2.2.
2. أخذ العينات
ملاحظة: إذا تم ترشيح ، فانتقل إلى الخطوة 2.2.
من خلال استخدام الشكل 1 إلى الشكل 20 واتباع جميع خطوات هذا البروتوكول ، تم استئصال البطين القلبي والفص الأيسر من الكبد والبنكرياس والأجسام الدهنية اليسرى والكلى المقترنة وسديلة من الجلد بشكل نظيف في غضون ساعة من القتل الرحيم. خلال هذا الوقت ، يتم شطف العينات وتقليمها بحيث تظهر ، كما هو موضح في الشكل 21.
الشكل 1: زينوبوس مثبت. أنثى ناضجة X. tropicalis مثبتة من خلال كل طرف. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: جدار البطن. يتم قطع الجلد البطني لأنثى X. tropicalis إلى اللوحات ، مما يجعل عظام الخطي والعظم الغرابي مرئية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: قلب التأمور المغلق. يتم إمساك قمة البطين القلبي من خلال التامور. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: بطين القلب وجذع الشرايين. البطين من laevis X perfed ، يجري استيعابها ، وتبين ارتباطها بالجذع الشرياني. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 5: مخطط القلب. رسم تخطيطي للهياكل ذات الصلة للقلب مع خط متقطع يشير إلى مكان أخذ عينة من البطين. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 6: مخطط كبدي أكبداني. رسم تخطيطي ل 3 فصوص من الكبد والبنكرياس والأعضاء المرتبطة بهما. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 7: الأعضاء الكبدية. ذكر ألبينو X. laevis مع 3 فصوص من الكبد والبنكرياس والأعضاء المرتبطة بها. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 8: القنوات الكيسية والكبدية. يتم رفع الفص الأيسر من الكبد لإظهار القنوات الكيسية والكبدية في X. laevis. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 9: أخذ عينات من الكبد. يتم قطع فص الكبد الأيسر من X. tropicalis غير المفعم تحت مرفقات القنوات الكبدية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 10: ارتباط المبيض. مع فصوص المبيض على جانبيها ، تكون استمرارية الظهارة الجرثومية للجدار البريتوني (فوق الكلى) مرئية. يشير خطان متقطعان أبيضان إلى مكان قطع هذه المرفقات. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 11: إزالة المبيض. يتم سحب المبيض من X. laevis غير مثقوب ، بعيدا عن الكلى المقترنة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 12: شقوق المساريق. التجويف القولوني ل X. laevis غير المفعم بالحيوية ، بعد أخذ عينات من بطين القلب والفص الأيسر من الكبد وكذلك إزالة المبيض. يشير الخط الأبيض المتقطع إلى مكان قطع الرباط والقناة الكبدية ، بينما يشير الخط المتقطع الأخضر إلى مكان فصل البنكرياس عن الفص الإنسي للكبد. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 13: أخذ عينات البنكرياس. يتم مضايقة بنكرياس X. laevis غير المفعم بالحيوية من المعدة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 14: إزالة الأعضاء. (أ) تسحب المثانة البولية ل X. laevis غير المثقوبة بعيدا عن العباءة بخط متقطع يشير إلى مكان قطعها. (ب) الأمعاء الغليظة ل X. laevis غير المفرغة ، يتم سحبها بعيدا عن العباءة بخط متقطع يشير إلى مكان قطعها. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 15: أخذ عينات من الجسم الدهني. يتم سحب الأجسام الدهنية ، المرتبطة بالصفاق في الطرف العلوي من الكلى المقترنة ، من تجويف coelomic بخط متقطع يوضح مكان قطعها. لاحظ أنه بجوار هذا المرفق ، يحتوي هذا الذكر X. tropicalis على 1 خصية بالإضافة إلى زوج من قنوات البيض الأثرية المتميزة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 16: إزالة قناة البيض. يتم سحب قناة البيض الخاصة ب X. laevis المثقوبة بعيدا عن الكلية المقترنة ، مما يجعل الصفاق الصافي مرئيا. يشير الخط المتقطع إلى مكان شق الصفاق. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 17: أخذ عينات من الكلى. يتم رفع الكلى المقترنة من X. laevis غير المفعمة من تجويف coelomic. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 18: تقليم الكلى. (أ) منظر بطني لكلية أنثى X. laevis غير مثقوبة مع الأعضاء البريتونية المرتبطة بها. ب: نفس الكلية مع إزالة الأعضاء المرتبطة بها، ولكن مع بقاء بعض الأنسجة البريتونية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 19: إزالة الخصية. الكلى المقترنة من X. tropicalis غير المفعمة مع إزالة خصية واحدة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 20: أخذ عينات من الجلد. أ: الساق اليمنى ل X. tropicalis مع خط متقطع يشير إلى منطقة الجلد المراد أخذ عينات منها. ب: الساق اليمنى ل X. tropicalis مع إزالة عينة من الجلد فوق الشظية الظنبوبية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 21: النتائج التمثيلية لأخذ عينات الأعضاء. عينات من بطين القلب والكبد والبنكرياس والجسم الدهني والكلى المقترنة والجلد مأخوذة من ألبينو X. laevis.
نظرا لأن هذا البروتوكول يهدف إلى زيادة النضارة إلى أقصى حد ، فقد تتضمن بعض العينات أنسجة غير مرغوب فيها. على سبيل المثال ، يتم أخذ عينات من القناة الكبدية وبعض المساريق مع البنكرياس ، وسيتم دائما أخذ عينات من بعض الأنسجة البريتونية والغدد الكظرية والحالب مع الكلى المقترنة. إذا لم تكن النضارة مصدر قلق ، فيمكن تحقيق أخذ عينات أكثر دقة باستخدام تقنيات معدلة.
مظهر وموقع الأعضاء قابلة للمقارنة بين الجنسين وأنواع Xenopus. ومع ذلك ، يختلف لون الأنسجة اختلافا كبيرا بناء على ما إذا كانت قد تم تعطيرها أم لا. ولهذا السبب يتم تضمين صور لكل من المفعمة وغير المعطوبة.
أحد قيود هذا البروتوكول هو إعطاء الأولوية للسرعة والتكاثر على جمع العينات التي تمثل على أفضل وجه كامل الأنسجة المطلوبة. على سبيل المثال، لا يمكن أن يمثل جزء الفص الأيسر من الكبد الذي أخذ عينة منه هنا جميع الفصوص الثلاثة لأنسجة الكبد تمثيلا كافيا. إذا كانت هناك أخطاء في أخذ العينات ، فإن خيارات استكشاف الأخطاء وإصلاحها تتأثر بإمكانية الاختلاف بين أقسام الأنسجة المختلفة. على سبيل المثال ، من غير المعروف ما إذا كان الفص الأيمن من الكبد أو الجسم الدهني الأيمن أو جزء مختلف من الجلد سيكون بدائل وظيفية للأنسجة المرغوبة. في هذه الحالات ، يجب استخدام السلطة التقديرية ، بناء على احتياجات البحث ، قبل استبدال أقسام الأنسجة.
هناك قيد آخر لهذا البروتوكول وهو أنه إذا كانت التي يتم أخذ عينات منها تعاني من عيوب تشريحية جذرية أو مشاكل صحية مهمة سريريا ، فقد لا تظهر الأعضاء الموجودة في التجويف القولوني كما هو موضح هنا. تم العثور على الأورام الحبيبية في أنسجة الضفادع المصابة بالمتفطرة spp.11،12 ، ويبدو أن الحالات السابقة لمتلازمة فرط تنبيه المبيض تؤدي إلى عرض غير طبيعي للأعضاء13.
على الرغم من أن هذه الطريقة قد تم تطويرها لمختبر Xenopus ، إلا أن هناك أوجه تشابه كبيرة في مظهر هذه الأعضاء داخل العديد من البرمائيات غير القيصرية والزواحف ذات الأطراف14. يمكن بسهولة تعديل جزء أخذ العينات من هذا البروتوكول لنماذج أخرى ، مثل axolotls أو anole الأخضر.
يعلن المؤلفون عدم وجود مصالح متنافسة.
تم دعم هذا العمل من خلال منحة التطوير التنظيمي للمعاهد الوطنية للصحة R24OD031956. نشكر سامانثا جالبرت وجيل رالستون وكورا أندرسون على مساعدتهم ودعمهم بالإضافة إلى محررنا والمراجعين الأقران المجهولين على ملاحظاتهم المفيدة
Name | Company | Catalog Number | Comments |
5x Magnifying Glass with LED Light and Stand | amazon.com | B08QJ6J8P1 | light must not produce heat |
Disposable Transfer Pipets | VWR | 414004-036 | |
Dissecting Fine-Pointed Forceps | Fisher Scinetific | 08-875 | |
Dissecting scissors sharp piont, straight 6.5" | VWR | 76457-374 | |
Dissection Tray | Fisher Scinetific | 14-370-284 | styrofoam sheets are an acceptable alternative |
Euthanasia container | US Plastic | Item 2860 | alternative opaque containers acceptable |
Euthanasia container lid | US Plastic | Item 3047 | |
Iridectomy Scissors 6" | vwr | 470018-938 | iris scissors are an acceptable alternative |
MS-222: Syncaine (formerly tricaine) | Pentair AES | TRS1 | |
PBS 1x | Corning | 21-040-CV | |
Sodium Bicarbonate, Powder, USP | Fisher Scientific | 18-606-333 | |
Specimen Forceps, Serrated | VWR | 82027-442 | |
T-Pins for Dissecting | Fisher Scinetific | S99385 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved