تحسين تعداد بوغ العصوية الرقيقة وتحليل التسمية في قياس التدفق الخلوي

يركز هذا البروتوكول على استخدام قياس التدفق الخلوي وعد الخرز لتحديد الجراثيم البكتيرية الموسومة ببروميد الإيثيديوم. هذه الطريقة فعالة أيضا لتحليل الاقتران التساهمي للبروتينات على سطح الجراثيم السليمة.

وقد تم بالفعل اقتراح جراثيم Bacillus subtilis لمختلف تطبيقات التكنولوجيا الحيوية والمناعة. ومع ذلك ، هناك حاجة متزايدة لتطوير منهجيات تعمل على تحسين الكشف عن المستضدات التي تجمد على سطح الجراثيم جنبا إلى جنب مع قياسها الكمي. تم اقتراح التحليلات القائمة على قياس التدفق الخلوي سابقا كنهج سريعة وموثوقة ومحددة للكشف عن الخلايا الموسومة من B. subtilis. هنا ، نقترح استخدام قياس التدفق الخلوي لتقييم كفاءة عرض الجسم المضاد الفلوري (FA) على سطح البوغ وتحديد عدد الجراثيم باستخدام عد الخرز.

لهذا ، استخدمنا بروميد الإيثيديوم كعلامة للحمض النووي وجسم مضاد يحمل علامة allophycocyanin (APC) ، والذي كان مقترنا بالجراثيم ، كعلامة سطحية. تم إجراء القياس الكمي للجراثيم باستخدام عد الخرز لأن هذه التقنية توضح دقة عالية في الكشف عن الخلايا. تم تحليل الجراثيم الموسومة باستخدام مقياس التدفق الخلوي ، والذي أكد الاقتران. نتيجة لذلك ، ثبت أن وضع العلامات على الحمض النووي يحسن دقة القياس الكمي عن طريق قياس التدفق الخلوي ، للكشف عن الجراثيم النابتة. ولوحظ أن بروميد الإيثيديوم غير قادر على تسمية الجراثيم الخاملة؛ ومع ذلك ، توفر هذه التقنية تحديدا أكثر دقة لعدد الجراثيم التي تحتوي على بروتين فلوري مقترن بسطحها ، مما يساعد في تطوير الدراسات التي تركز على استخدام الجراثيم كمنصة للتكنولوجيا الحيوية في تطبيقات مختلفة.

Bacillus subtilis هي بكتيريا إيجابية الجرام على شكل قضيب قادرة على إنتاج جراثيم هادئة عندما لا تسمح الظروف البيئية بنمو الخلايا¹. الجراثيم هي أشكال خلايا مستقرة للغاية وتستخدم تلك الخاصة بالعديد من الأنواع ، بما في ذلك B. subtilis ، على نطاق واسع كبروبيوتيك للاستخدام البشري والحيواني². نظرا لمقاومتها وخصائص سلامتها ، تم اقتراح بوغ B. subtilis ، الذي يعرض بروتينات غير متجانسة ، كمساعد مخاطي ، ونظام توصيل لقاح ، ومنصة تثبيت الإنزيم ^3,4.

للحصول على جراثيم من B. subtilis ، من الضروري تعريضها للحرمان من المغذيات باستخدام وسيط ثقافة خاص. بعد الحصول على هذه الجراثيم وتنقيتها ، يجب على المرء تحديدها كميا لتحسين كفاءة الاختبار ^5,6. وبالتالي ، يتم تطبيق طرق معينة لتحليل تركيز الجراثيم التي تم الحصول عليها. يمكن استخدام عد الألواح وغرفة Petroff-Hausser ، والمعروفة أيضا باسم غرفة العد. تم تطوير هذا الأخير في الأصل لتحديد تركيز خلايا الدم. ومع ذلك ، فمن الممكن استخدامه في مجال علم الأحياء الدقيقة لعد الأبواغ ^7,8. على الرغم من كونها الطريقة القياسية المستخدمة في عد الخلايا ، إلا أن القراءة شاقة لأن هذه الطريقة يدوية تماما وتعتمد دقتها على خبرة المشغل.

تم اقتراح التحليلات القائمة على قياس التدفق الخلوي (FC) سابقا كنهج سريعة وموثوقة ومحددة للكشف عن الخلايا الموسومة ل Bacillus spp. يضمن استخدام حبات عد التدفق الخلوي قابلية التكاثر في عد الخلايا في الفحوصات الروتينية (العدد المطلق للخلايا الليمفاوية CD4 و CD8 T) وفي تطوير الأبحاث التي تتضمن جزيئات يمكن اكتشافها وحسابها باستخدام قياس التدفق^{الخلوي 9}. اقترح جودجافري والشريف استخدام عد الخرز لتحديد كمية FC للجراثيم غير الموسومة¹⁰. تم وصف استخدام قياس التدفق الخلوي لرصد التبويض في Bacillus spp. عن طريق وضع علامات على الحمض النووي للجراثيم^{10،11،12،13}. ومع ذلك ، استخدمت دراسة أخرى FC لتقييم كمية البروتينات الموسومة بالفلورسنت على سطح البوغ¹⁵.

سعت هذه الدراسة إلى استخدام حبات العد التجارية لضمان معيار من التكاثر فيما يتعلق بحساب الأحداث باستخدام قياس التدفق الخلوي. هنا ، نقترح استخدام عد حبات عد الخلايا في FC لتحسين تعداد الأبواغ وتقييم كفاءة اقتران الأجسام المضادة ذات العلامات الفلورية على سطح البوغ.

راجع جدول المواد للحصول على التفاصيل المتعلقة بجميع المواد والأدوات والبرامج المستخدمة في هذا البروتوكول.

1. إعداد قياس التدفق الخلوي

1. محاذاة المعلمات البصرية لمقياس التدفق الخلوي المقترن بجهاز كمبيوتر
   1. قم بتسجيل الدخول إلى برنامج Cytometer.
   2. من مساحة عمل البرنامج، حدد مقياس الخلايا | ابدأ وانتظر بضع دقائق | الوضع النظيف | اجلس السوائل.
      ملاحظة: تمت إزالة فقاعات الهواء والعوائق أثناء عملية بدء مقياس الخلايا، قبل الحصول على العينة.
2. مراقبة الجودة
   1. استخدم كاشف مراقبة الجودة لضبط الفولتية لأنابيب المضاعف الضوئي وتقييم حساسيتها.
      1. تحضير كاشف مراقبة الجودة في أنبوب البوليسترين.
      2. لتحديد خط الأساس ، قم بإعداد حبات التعليق بإضافة 0.5 مل من المادة المخففة (10 مللي متر PBS المصفى ، الرقم الهيدروجيني 7) و 3 قطرات من الخرز إلى الأنبوب المسمى.
      3. اخلطي قارورة الخرزة عن طريق الانقلاب اللطيف.
   2. من مساحة عمل البرنامج، حدد مقياس الخلايا | CST للاتصال بواجهة CST. انتظر بضع دقائق ولاحظ الرسالة مقياس الخلايا مفصول.
   3. قم بتوصيل أنبوب البوليسترين الذي يحتوي على كاشف مراقبة الجودة بمسبار مقياس التدفق الخلوي.
3. التحقق من تكوين مقياس الخلايا
   1. في نافذة ملخص النظام ، تحقق من أن تكوين مقياس الخلايا مناسب للتجربة.
   2. حدد معرف دفعة خرز الإعداد المقابل للتحقق من أن معرف دفعة خرز الإعداد المحدد يطابق المجموعة الحالية من حبات أبحاث CS&T .
4. فحص الأداء
   1. حدد الخيار التحقق من الأداء وانقر فوق تشغيل.
   2. عند الانتهاء من فحص الأداء ، سيتم عرض نتائج الأداء. عرض تقرير أداء مقياس الخلايا. انقر فوق "إنهاء" لإكمال فحص الأداء أو قم بإزالة الأنبوب من مقياس الخلايا ومراجعة النتائج في نافذة ملخص النظام .
   3. لاحظ النتيجة النهائية لتحليل الحساسية المورفومترية والفلورية التي ستظهر في | ملخص النظام | نتيجة أداء مقياس الخلايا | مع الحالة: مرت

2. تحضير الجراثيم

1. بعد التبويض ، اشطف الجراثيم 3x بالماء المثلج عالي النقاء عن طريق الطرد المركزي عند 17949 × جم لمدة 10 دقائق.
2. أعد تعليق الحبيبات التي تم الحصول عليها من جهاز الطرد المركزي الأخير ب 10 مل من الماء عالي النقاء.
3. الأوتوكلاف الجراثيم لمدة 45 دقيقة عند 121 درجة مئوية لتعطيل الخلايا النباتية.
   ملاحظة: أظهرت الاختبارات السابقة التي أجرتها مجموعتنا لمقارنة طرق التعطيل المختلفة أن الظروف المذكورة في الخطوة 2.3 قدمت كفاءة عالية ، ولم تظهر أي تكوين مستعمرة في طريقة تحليل الطلاء على وسط أجار LB.

3. القياس الكمي للجراثيم المعقمة باستخدام قياس التدفق الخلوي

1. خذ 50 ميكرولتر من جراثيم التعقيم واحتضانها محمية من الضوء مع بروميد الإيثيديوم (EtBr ، 10 مجم / مل مخفف في الماء) بعامل تخفيف 0.05٪ v / v لمدة 30 دقيقة (الشكل 1 أ).
2. اغسل الجراثيم 3x بمحلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) عن طريق الطرد المركزي عند 17949 × جم لمدة 10 دقائق وأعد تعليقه في 1x PBS.
3. أضف 10 ميكرولتر من الخرز ، باتباع توصيات الشركة المصنعة للتخفيف.
4. حلل العينة باستخدام مقياس التدفق الخلوي كما هو موضح في الخطوة 4.
   ملاحظة: من المهم التأكيد على أن الخرزات يجب أن تكون متجانسة قدر الإمكان حيث لوحظت تباينات في الحسابات عندما لم يتم تنفيذ هذه الخطوة بشكل جيد.

4. التحليل باستخدام قياس التدفق الخلوي

1. قم بتسجيل الدخول إلى برنامج Cytometer.
2. من مساحة عمل البرنامج، حدد مقياس الخلايا | الوضع النظيف | اجلس السوائل.
3. اضبط على مساحة العمل لتحديد التحليل في قياس التدفق الخلوي.
   1. حدد بوابات التحليلات (الشكل 2).
      1. تحديد استراتيجية البوابات بناء على الخصائص المورفومترية والفلورية للجسيمات بناء على التحكم السلبي (الجراثيم غير المميزة).
   2. لتحديد مورفومترية الخلية، اختر رسم Dotplot لتحليل معلمات FSC-A على المحور السيني وSSC-A على المحور ص.
   3. لتحديد التألق ، اختر مخططات FL3 Dotplot على المحور ص باستخدام FL5 على المحور السيني وقم بإنشاء البوابات في أربعة أرباع.
4. استخدم أنبوب بوليسترين متوقف مقاس 12 × 75 مم يحتوي على عينات غير مصنفة ، تم تسميتها مسبقا ب EtBr أحادي اللون ، و APC أحادي اللون ، و EtBr + APC متعدد الألوان.
5. امزج الأنبوب برفق شديد يحتوي على التحكم السلبي وأرفقه بمسبار مقياس التدفق الخلوي.
6. انقر فوق اكتساب.
7. اضبط قوة الليزر بالانتقال إلى مقياس الخلايا | المعلمات | FSC (375) و SSC (275).
8. اضبط الحد على (500) مقياس خلوي | العتبة.
9. لإزالة التألق الذاتي ، قم بتحليل العينة الخالية من الصبغة التي تحتوي على جراثيم فقط.
10. اضبط الفولتية لكاشفات المرشح: FL3 (603) و FL5 (538) للتمييز بين السكان السالبين والإيجاب فيما يتعلق بالتألق المختار في عناصر التحكم. مقياس الخلايا | المعلمات.
11. مقياس الخلايا | التعويض | اضبط إزاحة إعداد FL5/FL3 على 1.0.
12. بعد قياس التشكل وتحليل الفلورسنت ، قم بتكوين الجهاز لاكتساب 30000 حدث | التجربة | تخطيط التجربة | الاستحواذ |30,000 حدث....
13. بعد ضبط المعلمات ، احصل على بيانات للعينات المصنفة والتي تحتوي على حبات في مقياس التدفق الخلوي.
14. احسب تركيز البوغ كما هو موضح في تعليمات الشركة المصنعة باستخدام المعادلة (1).
    (1)
    ملاحظة: بالنسبة لهذه الدراسة ، تمت مقارنة طريقة القياس الكمي للخرزة بتحليل غرفة العد Petroff-Hausser. بالإضافة إلى ذلك ، تمت مقارنة وضع العلامات على جراثيم التعقيم بوضع العلامات على الجراثيم غير المعقم.

5. تقدير مؤشر اقتران البروتين على سطح بوغ باستخدام قياس التدفق الخلوي

1. الحصاد عن طريق الطرد المركزي من 50 ميكرولتر من الجراثيم (10³ / ميكرولتر) 17949 × جم لمدة 10 دقائق ثم إعادة التعليق باستخدام 25 ميكرولتر من 1-إيثيل -3- (3-ثنائي ميثيل أمينوبروبيل) كاربوديميد (EDC) (300 مللي مول)).
2. احتضان لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
3. أضف 25 ميكرولتر من N-hydroxysulfosuccinimide (NHS) (50 mM) إلى معلق البوغ واحتضانه في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة.
4. اغسل الجراثيم 3x باستخدام 1x PBS عن طريق الطرد المركزي كما هو موضح في الخطوة 5.1.
5. أضف البروتين الفلوري واترك العينات طوال الليل عند 15 درجة مئوية.
   ملاحظة: كان البروتين الفلوري المستخدم في هذا العمل عبارة عن جسم مضاد ل IL-10 يحمل علامة APC. تم استخدام هذا الجسم المضاد كنموذج للدراسة ، على الرغم من أن تطبيق جزيئات الفلورسنت الأخرى ممكن لأن EDC / NHS يعزز الربط التساهمي بين مجموعات -COOH و -NH₂ الموجودة في البروتينات على سطح البوغ.
6. اغسل الجراثيم حسب الخطوة 5.3.
7. أضف 10 ملغم / مل من بروميد الإيثيديوم المخفف في الساعة 1:50 ، ثم اتركيه لمدة ساعة واحدة على الثلج ومحمي من الضوء (الشكل 1 ب).
8. اغسل الجراثيم حسب الخطوة 5.3.
9. كرر الخطوة 4.
10. لتحديد التألق ، قم بتغيير المعلمات FL3 على المحور X و FL5 على المحور Y للمخطط النقط.
11. قم بتحليل العينة باستخدام مقياس التدفق الخلوي باستخدام الليزر الأزرق (488 نانومتر) عند FL3 (مرشح 670 LP) والليزر الأحمر (633 نانومتر) في FL5 (مرشح 660/20) ، كما هو موضح في الخطوة 4.
    ملاحظة: تم تحليل نفس العينات من أجل التألق المناعي على شرائح تحت المجهر ، في نطاق تكبير يبلغ 1000 × ، وباستخدام المرشحات التالية: FITC 480/30 نانومتر (أخضر) و TRITC 540/25 نانومتر (أحمر).

في عينات البوغ المعقمة (AS) ، تم الكشف عن 2 × 10³ جراثيم / ميكرولتر و 1 × 10³ جراثيم / ميكرولتر باستخدام عد الخرز وطريقة بتروف-هوسر ، على التوالي (الشكل 2).

الشكل 1: المخطط العام لقياس الجراثيم. (أ) الجراثيم الموسومة ب EtBr و (ب) الجراثيم ذات التسمية المزدوجة. الاختصارات: EDC = 1-إيثيل-3- (3-ثنائي ميثيل أمينوبروبيل) كربوديميد. NHS = N-هيدروكسي سلفوسوكسينيميد. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: التحليل المورفومتري والنوعي لجراثيم العصوية الرقيقة وعد الحبيبات باستخدام قياس التدفق الخلوي. القياس الكمي لجراثيم B. subtillis باستخدام عد الخرز (عينة غير مخففة). الاختصارات: FSC-A = منطقة ذروة التشتت الأمامية ؛ SSC-A = منطقة ذروة التشتت الجانبي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

أظهر تلطيخ بروميد الإيثيديوم (EtBr) لعينات الجراثيم المعقمة (AS) متوسط كثافة مضان أعلى (MFI) من تلطيخ الجراثيم غير المعقمة (NAS) ، مما يشير إلى تلطيخ أكبر للمادة الوراثية في الحالة الأولى. بالإضافة إلى ذلك ، لوحظ وجود MFI أكبر في مجموعة AS التي تحمل علامة EtBr مقارنة بسكان NAS (الشكل 3 ، الذروة باللون الأحمر والذروة باللون الأسود). لم تظهر عينة التحكم ، غير الموسومة ب EtBr ، مضان كبير (الشكل 3 ، ذروة منقطة).

الشكل 3: الرسم البياني لجراثيم Bacillus subtillis الموسومة ببروميد الإيثيديوم والتعقيم وغير المعقم. الذروة في وضع العلامات الحمراء NAS EtBr ؛ الذروة في وضع العلامات السوداء AS EtBr ؛ التحكم في الذروة المنقطة بدون وضع العلامات على EtBr. الاختصارات: EtBr = بروميد الإيثيديوم. NAS = جراثيم غير معقمة ؛ AS = جراثيم معقم. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

في هذه التجارب ، أظهر MFI على اقتران سطح AS مع الجسم المضاد للإنسان IL-10 المسمى APC كفاءة اقتران أكبر عند مقارنته ب NAS (الشكل 4). لهذا السبب ، تم إجراء التجارب ذات العلامات المزدوجة باستخدام AS. تم تحديد أربع مجموعات أبواغ في تحليل قياس التدفق الخلوي: EtBr + / FA +; EtBr + / FA- ؛ EtBr- / FA + ؛ EtBr- / FA-. يشير وجود جراثيم قابلة للنفاذ إلى العلامة الجزيئية EtBr إلى احتمال وجود جراثيم نابتة في إجمالي السكان. يمكن ملاحظة ذلك بعد تحليل العينة باستخدام المجهر الفلوري (الذي كان من الممكن من خلاله مراقبة وضع العلامات على الجدول 8 EtBr / Fluorescent Anti-Mouse وكلا الفلوروفورين بشكل فردي ، الشكل 5). سمح استخدام طريقة تلطيخ Wirtz-Conklin بتصور وجود جراثيم ذات نفاذية للسافرانين (ملطخة باللون الوردي ، الشكل التكميلي S1). في هذا التحليل نفسه ، لوحظت جراثيم ملطخة فقط باللون الأخضر الملكيت ، مما يشير إلى عدم النفاذية ، كما ورد في الأدبيات الخاصة بالجراثيم الخاملة¹³. يقدم تحليل الأبواغ بواسطة مجهر تباين الطور عددا أكبر من الجراثيم الخاملة في عينة AS عند مقارنتها ب NAS (الشكل التكميلي S2)¹⁴.

الشكل 4: متوسط شدة مضان الأجسام المضادة للإنسان IL-10 التي تحمل علامة APC في الجراثيم المعقمة وغير المعقم. الاختصارات: FA = الأجسام المضادة الفلورية. APC = الوفيكوسيانين. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 5: التصوير المناعي للجراثيم الموسومة ب EtBr والفلورسنت المضاد للفأر. أ: الجراثيم التي تحتوي على مادة وراثية تحمل علامة EtBr (أحمر). (ب) جراثيم ذات سطح موسوم بمضاد للفأر الفلوري (أخضر). (C) جراثيم مزدوجة التسمية ، مع EtBr ومضاد للفأر الفلوري (برتقالي). شريط المقياس = 10 ميكرومتر. الاختصارات: EtBr = بروميد الإيثيديوم. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

أشارت تحليلات قياس التدفق الخلوي التي أجريت هنا إلى نسبة أعلى من اقتران FA بالجراثيم الخاملة (EtBr- / FA +) مقارنة بالجراثيم النابتة (EtBr + / FA +). في الرسم البياني الموضح في الشكل 6 أ ، ب ، يمكن ملاحظة الزيادة في النسبة المئوية للجراثيم المقترنة و MFI مع زيادة تركيز FA. بالإضافة إلى ذلك ، أظهرت مجموعات هذه الجراثيم التي لم تقترن بالبروتين الفلوري (EtBr + / FA- و EtBr- / FA-) انخفاضا تدريجيا مع زيادة تركيز FA (الجدول التكميلي S1).

الشكل 6: تحليل النسبة المئوية لاقتران التألق ومتوسط شدة التألق لمجموعات EtBr- / FA + و EtBr + / FA- . (أ) يمثل المحور السيني التركيزات المختلفة ل FA ، ويمثل المحور y الأسود MFI المكتشف ، ويمثل المحور y الأحمر النسبة المئوية للجراثيم التي تحمل علامة FA من مجموعة EtBr - / FA +. (B) يمثل المحور x التركيزات المختلفة ل FA ، ويمثل المحور y الأسود MFI المكتشف ، ويمثل المحور y الأحمر النسبة المئوية للجراثيم التي تحمل علامة EtBr و FA من مجموعة EtBr + / FA +. الاختصارات: MFI = متوسط شدة التألق ؛ EtBr = بروميد الإيثيديوم. FA = الأجسام المضادة الفلورية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل التكميلي S1: صورة مجهرية لجراثيم B. subtilis المعقمة الملطخة بمنهجية Wirtz-Conklin. الجراثيم الوردية الملطخة هي جراثيم نبتة (نفاذية للسافرانين). باللون الأخضر توجد جراثيم نائمة (غير منفذة للسافرانين). شريط المقياس = 10 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لتنزيل هذا الملف.

الشكل التكميلي S2: مقارنة الصور المجهرية لتباين الطور لجراثيم B. subtilis المعقمة وغير المعقم. (أ، ب) صور لجراثيم B. subtilis قبل وبعد العلاج بالأوتوكلاف. الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.

الجدول التكميلي S1: قيم النسب المئوية للجراثيم المعلمة ، أو غير المعلمة ، بالأجسام المضادة الفلورية وبروميد الإيثيديوم ، بتركيزات مختلفة من FA ، التي لوحظت في قياس التدفق الخلوي. الاختصارات: EtBr = بروميد الإيثيديوم. FA = الأجسام المضادة الفلورية. الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.

الطرق التقليدية ، مثل عد لوحات المستعمرات ، لا تستغرق وقتا طويلا فحسب ، بل تحتاج أيضا إلى خلايا قابلة للحياة ولا تسمح بقياس كمية الجراثيم المعطلة⁵. غرفة بتروف-هوسر هي منهجية بديلة ، لكنها تتطلب مجهريا متمرسا لتنفيذها. أثبت قياس التدفق الخلوي أنه بديل مفيد لهذا الغرض.

وصف Genovese et ^al.12 استخدام قياس التدفق الخلوي للقياس الكمي للخلايا والجراثيم القابلة للحياة من Bacillus sp. باستخدام علامتين للحمض النووي وقدرة تحكم عالية في معدل التدفق (الحجم / الدقيقة) للمعدات المستخدمة ، مما يوفر خيار تحديد الكمية العددية المراد تكوينها. لا تتمتع جميع معدات قياس الخلايا بتحكم صارم في معدل التدفق (الحجم / الدقائق) ، وبعضها قابل للتعديل فقط في خيارات الحد الأدنى والمتوسط والحد الأقصى. في هذه الحالات ، يمكن استخدام عد الخرز لضمان دقة تعداد الخلايا وقابلية التكاثر مقابل معدات قياس التدفق الخلوي الأخرى. من خلال هذه الطريقة ، في هذه الدراسة ، كان من الممكن حساب عدد الجراثيم (النابتة والخاملة) لكل ملليلتر في العينات.

تم تعداد أعداد الأبواغ وتحليلها وفقا للمعايير الموضحة في براءة اختراع جودفري والشريف¹⁰. يصف هؤلاء المؤلفون استخدام هذه المنهجية لتحليل مراحل إنبات Bacillus spp. دون وصف حالة البوغ واستخدام علامات الحمض النووي التجارية عالية التكلفة^11،12،13. في العمل الموصوف هنا ، باستخدام AS ، كان من الممكن تحديد مجموعتين من الجراثيم (نائمة ونابتة) باستخدام EtBr ، وهي علامة مستخدمة على نطاق واسع ويمكن الوصول إليها بسهولة. كان تحديد حالة البوغ ممكنا بسبب نفاذية الجراثيم النابتة إلى EtBr. من المهم تسليط الضوء على أن مجموعة الجراثيم غير الموسومة ب EtBr قد تقدم قطعا أثرية ذات حجم مماثل في نفس العينة. يمكن تخفيف هذا القيد عن طريق غسل وتصفية المخازن المؤقتة المستخدمة.

كما سمح تحليل قياس التدفق الخلوي لعينات AS التي تحمل علامة EtBr إلى جانب FA الموصوفة هنا بتأهيل وقياس اقتران البروتين الفلوري (FPC). يجب إجراء تحليل للعينات الموسومة بالفلورسنت والمقترنة على الفور لتجنب فقدان انبعاث التألق. علاوة على ذلك ، كان من الممكن استنتاج ما إذا كان مورفولوجيا مجموعة الأبواغ وتركيزها قد تأثرا بإجراء الاقتران ، مما يعطي فهما شاملا للعملية ، والذي لم يتم الحصول عليه عند استخدام طريقة اللطخة النقطية. قام Isticato et ^al.15 أيضا بتحليل FPC على سطح البوغ وأظهر صلاحيته من خلال تأكيده باستخدام التألق المناعي وقياس التدفق الخلوي ، اعتمادا على نوع البروتين المستخدم في الاقتران. هنا ، لوحظ أن استخدام AS¹¹ هو الأفضل للاقتران لأن عملية التعقيم مهمة لتعطيل البروتياز الذي قد يؤدي إلى تحلل البروتين المراد اقترانه. من المهم الإشارة إلى أن التقنيات الموصوفة هنا تم إجراؤها باستخدام سلالة B. subtilis KO7 فقط ، مع التطبيق في سلالات أخرى لا يزال يتعين اختبارها.

لا توجد تقارير في الأدبيات تقارن قدرة اقتران الجراثيم وفقا لمرحلتها. في التجارب المعروضة هنا ، لوحظت نسبة أعلى من الجراثيم الخاملة إلى جانب FA (EtBr- / FA +) ¹⁶. في المقابل ، أظهرت الجراثيم النابتة (EtBr + / FA +) ، على الرغم من انخفاض نسبتها المئوية ، MFI أعلى مما لوحظ في الجراثيم الخاملة. يجب إجراء مزيد من الدراسات لتقييم هذا السلوك لتركيزات أعلى من FA (نقطة التشبع) في Bacillus spp الأخرى.

بالنسبة للتطبيقات المستقبلية ، يمكن استخدام الطريقة المعروضة هنا في الدراسات حول استخدام جراثيم B. subtilis كمساعد للقاح ، وتقييم اقتران مستضد مستهدف تم تمييزه في البداية بالتألق. بعد تحديد تركيز التشبع ، يمكن تطبيق القيمة المكتشفة على المستضد المستهدف لاستخدامه في التطعيمات.

وبالتالي ، تقدم هذه الورقة طريقة عملية وحساسة لتعداد الجراثيم النابتة والخاملة وتحليل اقتران البروتين الفلوري لجراثيم Bacillus subtilis باستخدام قياس التدفق الخلوي. يسمح استخدام عد الخرز كمعلمة للقياس الكمي ، بالإضافة إلى وضع العلامات على البوغ EtBr ، بالعد المكرر للجراثيم النابتة وتحديد النسبة المئوية لاقتران البروتين الفلوري. يجب أن تساعد هذه الطريقة في تطوير الدراسات التي تركز على استخدام الجراثيم كمساعد.

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للكشف عنه.

تم تمويل هذه الدراسة جزئيا من قبل Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES) - قانون المالية 001. Governo do Estado do Amazonas بموارد من Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Amazonas-FAPEAM; المجلس الوطني للتنمية العلمية والتكنولوجية (CNPq). يشكر المؤلفون برنامج التطوير التكنولوجي في أدوات الصحة PDTIS-FIOCRUZ على استخدام مرافقه.