تقييم الجدوى من الدهون الإنسان الحقن في الفئران عارية مع مايكرو-التصوير المقطعي

Fat grafting is an essential technique for reconstructing soft tissue deficits. However, it remains an unpredictable procedure characterized by variable graft survival. Our goal was to devise a mouse model that utilizes a novel imaging method to compare volume retention between differing techniques of fat graft preparation and delivery.

Lipotransfer هو أداة حيوية في عتاد الجراح لعلاج العجز الأنسجة اللينة من جميع أنحاء الجسم. الدهون مثالية حشو أنسجة لينة كما هو متاحة بسهولة، يمكن الحصول عليها بسهولة، وغير مكلفة، وحيويا بطبيعتها. ¹ ومع ذلك، على الرغم من شعبيتها المتنامية، ويعوق تطعيم الدهون التي كتبها نتائج غير متوقعة وبقاء الكسب غير المشروع متغير، مع معدلات الاحتفاظ نشرت تتراوح في أي مكان من 10 -80٪. ^1-3

لتسهيل التحقيقات على تطعيم الدهون، وبالتالي قمنا بتطوير نموذج حيواني الذي يسمح للتحليل في الوقت الحقيقي من حقن الاحتفاظ حجم الدهون. لفترة وجيزة، يتم إجراء قطع صغير في فروة الرأس من CD-1 الفأر عارية ويتم وضع 200-400 ميكرولتر من lipoaspirate معالجتها خلال الجمجمة. يتم اختيار فروة الرأس مثل موقع المتلقي بسبب غيابها من الدهون تحت الجلد الأصلي، وبسبب تباين الخلفية الممتاز الذي قدمته القبة، والذي يساعد فيعملية التحليل. ويستخدم التصوير المقطعي الصغيرة المحسوبة (الصغير-CT) لمسح الكسب غير المشروع في الأساس وكل أسبوعين بعد ذلك. وأعيد بناؤها الصور CT، ويتم استخدام برامج التصوير لتحديد حجم الكسب غير المشروع.

تقليديا، وتقنيات لتقييم حجم الكسب غير المشروع الدهون استوجبت القتل الرحيم للحيوان دراسة لتوفير مجرد تقييم واحد من وزنه الكسب غير المشروع وحجم التداول بنسبة قياس البدني خارج الحي. مقارنات البيوكيميائية والنسيجية ويتطلب كذلك الحيوان الدراسة إلى أن الموت الرحيم. هذه التقنية التصوير وصفها تقدم ميزة تصور وموضوعية قياس حجم عند نقاط زمنية متعددة بعد التطعيم الأولي دون الحاجة للتضحية الحيوان الدراسة. وهذه التقنية محدودة بسبب حجم الكسب غير المشروع قادرا ليتم حقنه والجلد خطر الطعوم أكبر ونخر الدهون. هذه الطريقة لها فائدة لجميع الدراسات تقييم الجدوى الدهون الكسب غير المشروع والاحتفاظ الحجم. بشكل خاص مناسبة تماما لprovidiنانوغرام تمثيل مرئي الطعوم الدهون وبعد التغيرات في حجم مرور الوقت.

Soft tissue defects arise from a variety of causes including trauma, tumor resection, aging, and congenital anomaly. They can be debilitating for patients, and represent one of the most common, yet challenging problems for reconstructive surgeons. Many methods exist for addressing soft tissue deficiencies, such as local and free flaps, collagen injections, and synthetic fillers.^4-8 However, since its first documented use by Neuber in 1893¹, autologous fat transfer remains the gold standard for the repair of soft tissue deficits, as it is ready available, easy and safe to harvest, and naturally compatible.^1,2

Despite these advantages, autologous fat grafts suffer from unpredictable and variable survival, with retention rates ranging anywhere from 10-80% over time.^1-3,9 In order to account for this expected loss of volume and symmetry, surgeons must often overcorrect when filling soft tissue defects, or perform multiple follow-up procedures.

Poorly vascularized graft beds are partly to blame for this tissue resorption. Additionally, the lack of a benchmark analysis method to compare graft survival may also contribute to the inconsistency in reported results. A precise method for measuring graft volume would reduce measurement error when evaluating retention rates. This in turn would help researchers more accurately identify the causative factors that affect graft survival. Although many laboratory animal models have facilitated both quantitative and qualitative assessment of human fat graft survival, most are based on histological and biochemical means and require sacrificing the study animal to yield a single measurement.^3,10-12 Little has been reported on the use of imaging techniques to enumerate fat graft volume retention in vivo.

A handful of clinical studies have shown more effective measurement techniques using imaging. Magnetic Resonance Imaging (MRI) was employed by Hörl et al. to measure fat graft survival¹³, and CT was utilized by Har-Shai et al. and Fontdevila et al. in their analyses of volume retention after grafting in patients who suffered from HIV.^14,15 Employing three-dimensional (3D) imaging software, Meier et al. measured volume retention in humans after autologous fat grafting by comparing images from the preoperative and postoperative period.¹⁶

Yet, a standardized method employing imaging to measure fat graft survival is lacking in basic science research. A high resolution imaging approach for assessing the volumes of fat grafts would allow not only for accurate and reproducible volume measurements, but also for repeated measurements allowing visualization of the evolution of fat graft survival in a real time fashion.

ملاحظة: تم استعراض البروتوكولات التجريبية ونماذج موافقة المرضى للحصول على الدهون والموافقة عليها من قبل جامعة المؤسسي مجلس مراجعة ستانفورد (بروتوكول # 2188). وقد وافق جميع الإجراءات الحيوانية من جانب الفريق الإداري ستانفورد على رعاية الحيوان المعملية (APLAC) تحت بروتوكول # 9999. وأجريت جميع التجارب مع الالتزام الصارم سلامة الحيوان والمبادئ التوجيهية الرعاية الإنسانية.

1. الدهون الحصاد

1. باستخدام الإجراء كولمان ^17-19، الحصول على الأنسجة الدهنية لجسم الإنسان من البطن، الجناح، و / أو المناطق الفخذ من المرضى من النساء الأصحاء تمر شفط الدهون انتخابي.
2. لمعالجة lipoaspirate للتطعيم، تبدأ من خلال السماح للدهون ليستقر لمدة 30 دقيقة.
3. Lipoaspirate يستقر عادة إلى ثلاث طبقات، مع النفط في الجزء العلوي، والدهون في الوسط، والدم في الأسفل. نضح وتجاهل طبقة النفط العليا والطبقة السفلى الدم.
4. لمزيد من إزالة أي tumesc المتبقيةالسوائل والأنف والحنجرة أو الحطام الخلية، جهاز طرد مركزي الدهون لمدة 5 دقائق في 350 x ج و 4 ° C، ونضح طبقة المائية أسفل.
5. حساب كمية الدهون اللازمة للتطعيم، والسماح للخطأ تسليم 20٪، ونقل حجم المطلوب من الدهون إلى 50 مل المخروطية (ق). اضرب 400 من قبل عدد من الفئران في الدراسة للحصول ميكرولتر من الدهون اللازمة للتطعيم.
6. عند هذه النقطة، إذا أداء الخلية بمساعدة Lipotransfer ^20،21، وحجم المكان من الدهون للتطعيم على الجليد. ثم حصاد الخلايا الدهنية المشتقة اللحمية (ASCS) من الدهون المتبقية باستخدام تقنية القياسية التي وصفها Zuk وآخرون ^22.

2. الدهون التطعيم

1. الحصول على الإناث، متماثل CD-1 الفئران عارية للدراسة التجريبية. اختيار الفئران بين 8-12 أسابيع من العمر.
2. للحث على التخدير ومكان الماوس في مربع ضربة قاضية مع 2.5٪ خليط الأيزوفلورين / الأكسجين في 2 لتر / دقيقة لحوالي 10 دقيقة. يرجى ملاحظة أن قوات العمليات الخاصة العراقية الموصى بهاجرعة lurane يختلف مع سلالة الماوس.
3. عندما يكون معدل التنفس من الفأرة قد تباطأ، تأكيد التخدير الكافي مع قليل أخمص قدميه. تطبيق البيطري التشحيم مرهم للعين لكلتا العينين من الفأرة.
4. إذا كان الماوس لا تتوانى في استجابة لقرصة أخمص قدميه، وهذا يؤكد طائرة كافية من التخدير. وضع الأنف الماوس، الى الرؤوس تقديم 2.5٪ خليط الأيزوفلورين / الأكسجين في 1-2 لتر / دقيقة. إذا تتراجع الماوس من قرصة أخمص قدميه، والعودة إلى مربع ضربة قاضية وإعادة الاختبار بعد 5 دقائق.
5. إنشاء حقل معقمة تحت الماوس ومن ثم تعقيم فروة الرأس مع 2.5٪ بوفيدون اليود تليها 70٪ محلول الإيثانول. كرر مرتين أخريين.
6. وضع الستائر الجراحية خلال الماوس وتوخي الحذر للحفاظ على حقل معقمة. أدوات معقمة، والقفازات، ومعدات الوقاية الشخصية ينبغي أن تستخدم في جميع الأوقات.
7. إذا حجم الدهون ليتم المطعمة وضعت سابقا على الجليد، والسماح الدهون لضبط أول من RT قبل التسليم.
8. Backload 1 مل بالتركيبة قفل المحاقن مع 1 ملمن الدهون.
9. توصيل 14 G، 8 سم الدهون طويلة تطعيم قنية إلى نهاية الحقنة.
10. نظام رئيس بالضغط على المكبس حقنة حتى بين 200 و 400 ميكرولتر من الدهون لا يزال في المحقنة. في حين تضغط على المكبس حقنة تأكيد أن قنية قد ملأت تماما مع الدهون من خلال مراقبة الدهون الخروج من حفرة قنية البعيدة.
11. باستخدام ملقط غرامة، ورفع الجلد الظهري في خط الوسط تغمر الذيلية أقصى الجانب من الجمجمة. جعل 1.5 مم قطع في الجلد باستخدام مقص غرامة.
12. وضع واحدة خياطة 6-0 النايلون خلال منتصف قطع التي سيتم لاحقا تستخدم لجلب الجرح حواف معا بعد يتم إجراء التطعيم. لا ربط الخيط.
13. إنشاء جيب تحت الجلد فوق الجمجمة عن طريق إدخال قنية من خلال شق الجلد واجتياز قنية ذهابا وإيابا في نمط على شكل مروحة فوق الجمجمة لتحرير أي مرفقات النسيج الضام في الجلد المغطي.
14. مرة واحدة وقد تم إنشاء جيب، ضع جannula في خط الوسط من الماوس مباشرة عبر الجمجمة حتى غيض تقع في منقاري أقصى الجانب من جيب التي ينبغي أن تكون خلف خط مرسوم بين العينين. (الشكل 1A)
15. حقن ببطء الدهون بطريقة الوراء، ودفع المكبس في حين سحب قنية الظهر. باستخدام ملقط، وجلب حواف الجرح معا ورفع عنها للحفاظ على أي الدهون من تسرب من الجيب.
16. ربط الخيط الذي تم وضعه سابقا، والتأكد من أن عقدة الأولى تكمن بخفة على الجلد. ربط ثلاثة عقدة مربعة وقطع الخيط مع 3 مم الذيل. (الشكل 1B)
17. مع تأكيد التصور والجس اليدوي أن جيب لا مملوء والجلد المغطي للجيب ليست متوترة. إذا كان قد تم مملوء الجيب، وقطع الخيط، وإزالة جميع الدهون من داخل الجيب. غسل جيب خارجا مع الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) ودرجة الحموضة 7.4 وإعادة حقن-حجم أصغر من الدهون.
18. إزالة الماوس منnesthesia ومكان على ظهرها أو الجانب في قفص نظيفة في حد ذاته. مراقبة الحيوان للتنفس منتظم، والحركات الطبيعية، وغياب النزيف، وعلامات الألم أو الضيق. إدارة البوبرينورفين 0.1 ملغ / كغ تحت الجلد كل 6 ساعات لمدة تصل إلى 48 ساعة إذا كان الحيوان في الألم.
19. تأكد من أن الحيوان قد استيقظ بما فيه الكفاية للحفاظ على الاستلقاء القصية قبل تركها دون حراسة. لا تضع حيوان في قفص مع غيرها من الحيوانات حتى تعافى بشكل كامل.
20. بعد 4 ساعات، وضمان أن الحيوان قادر على تناول الطعام والشراب، ونقل، والتنفس بشكل طبيعي وأنه لا يوجد نزيف من موقع المنطوق. إعادته إلى مرفق رعاية الحيوان.

3. مايكرو-CT

1. الفئران مسح لحجم خط الأساس التي كتبها يوم 3 بعد الجراحة، ثم كرر بالاشعة في أسابيع 2 و 4 و 6 و 8 ما بعد الجراحة.
2. عندما التصوير الفئران في كل نقطة زمنية، اتبع تخدير ورعاية الحيوان المبادئ التوجيهية قبل وبعد الإجرائية على النحو المبين سابقا في Steps 2،2-2،4 و2،17-2،19.
3. القيام بمسح على الماسح الضوئي الصغير-CT مع حجم فوكسل إعادة بناء 100 ميكرون أو أفضل.
4. مع ذروة kilovoltage الأشعة X 80 KVP وتيار الأنود من 450 أمبير، وإدارة جرعة التموينية ما يقرب من 5 centiGy أثناء الفحص 9 دقيقة لكل الماوس. يرجى ملاحظة هذه القيم تختلف تبعا للبروتوكول المسح الضوئي.
5. قبل إجراء الفحص الأول، ومعايرة الدقيقة CT مع الوهمية التصوير الذي يميز بين الهواء والماء وكثافة العظام.
6. وضع أربعة الفئران في الماسح الضوئي في موقف بطني مع اثنين من الفئران على رأس واثنين على الجزء السفلي. يمكن بسهولة أن شيدت سرير المسح باستخدام 60 مل المحاقن لعقد جسم الفأر و 10 مل الحقن كما الأقماع الأنف. ²³
7. الحفاظ على الفئران تحت التخدير مع 2.5٪ خليط الأيزوفلورين / الأكسجين في 1-2 L لكل دقيقة.
8. تأكيد مع صورة الكشفية ان الجمجمة كاملة من الماوس، من الأنف إلى أول فقرة الرقبية، ومن أعلى الجمجمة لقاعدة SKUليرة لبنانية، سيتم تصويرها.

تحليل 4. مايكرو-CT

1. فتح الصور التي أعيد بناؤها مع CT الجزئي التصوير تحليل البرامج التي تسمح بإنشاء المناطق المهمة (في ROI) عن طريق تحديد voxels باستخدام عتبات كثافة بكسل. البرنامج أيضا يسمح خلق 3D السطوح من خلال الاستيفاء من voxels المحدد، وللتحليل وحدة التخزين.
2. تبدأ من خلال تحميل الصور CT أعيد بناؤها في ثنائي الأبعاد (2D) الإكليلي، محوري، والآراء السهمي. (الشكل 2A)
3. باستخدام شريحة المحورية كدليل، انتقل إلى شريحة السهمي الذي يتوافق مع الجانب الأيسر الأكثر من الكسب غير المشروع الدهون. تحديد عتبة العلوية والسفلية لكثافة بكسل الذي يلتقط كل voxels الموافق الكسب غير المشروع الدهون، ولكن هذا لا يشمل الأنسجة المحيطة والعظام. (الشكل 2B)
4. تعريف العائد على الاستثمار في رأي سهمي الذي يتوافق مع الكسب غير المشروع الدهون باستخدام المحددة سابقا بكسل عتبات كثافة. REPEAT هذا الإجراء كل شريحة السهمي الخامسة، تبحر حتى يتم الوصول إلى أقصى اليمين الجانب من الكسب غير المشروع. (الشكل 2C)
5. أقحم voxels مختارة من كل من 2D ROI إلى واحد، جنبا إلى جنب ROI 3D. (الشكل 2D)
6. حجم العائد على الاستثمار قياسي وتحسب على أساس البرامج.
7. جعل isosurface 3D لتصور نهائي حجم الدهون الكسب غير المشروع. (الشكل 2E)
8. في تحليلات لاحقة، تأكد للحفاظ على أقصى كثافة بكسل والقيم عتبة الحد الأدنى من نفس تلك المستخدمة لتحليل خط الأساس.

5. الدهون الحصاد

1. بعد وقد تم تفحص الفئران للأسبوع 8 ^24،25 نقطة زمنية، تخدير الفئران كما هو موضح سابقا أعلاه في خطوات 2،2-2،4 و2،17-2،19.
2. المبادئ التوجيهية التالية APLAC، الموت ببطء الفئران عن طريق فصل أعمدتها في العمود الفقري.
3. ضع الماوس في حقل من المنطوق. باستخدام مقص بضع الوتر، وفتح بعناية جيب وتشريح رانه المغطي الجلد والمرفقات النسيج الضام من الكسب غير المشروع الدهون.
4. عند هذه النقطة، قد تساعد على استئصال رقعة من الجلد المغطي الظهرية للمساعدة في استخراج الكسب غير المشروع. (الشكل 3A)
5. الحفاظ طفيفة الجر على الكسب غير المشروع مع ملقط وتحويل الكسب غير المشروع من جانب إلى آخر لتصور نقاط متتالية من التوتر التي تحتاج إلى إصدارها مع مقص.
6. البقاء على مقربة من الكسب غير المشروع ممكن عندما استئصال للحد من النسيج الضام التي اتخذت مع الكسب غير المشروع. (الشكل 3B)
7. بعد استئصال الكسب غير المشروع، وقياس كتلة على نطاق وtared هذا هو دقة إلى 0.01 غرام على الأقل.
8. حساب حجم الكسب غير المشروع الدهون باستخدام القيمة الجماعية قياس ومتوسط ​​كثافة من الدهون البشري (0.9 غرام / مل)، ومعدل التحويل.
9. قارن حجم المحسوبة الكسب غير المشروع الدهون إلى أن الحصول عليها باستخدام CT الصغيرة.
10. يمكن معالجة الطعوم الدهون عن الأنسجة أو إجراء مزيد من التحليل إذا لزم الأمر.

انخفض ترقيع الدهون تدريجيا في حجم على مدار الدراسة، مما أدى إلى متوسط ​​البقاء على قيد الحياة 62.2٪ من أسبوع 8. (الشكل 4A) ²⁴ عند الانتهاء من الفحص أسبوع 8، تم استخراج كل الدهون الكسب غير المشروع في قطعة واحدة. تم استخدام اختبار Wilcoxan مبلغ رتبة لمقارنة الفرق بين قياسات حجم الطعوم الدهون التي حصلت عليها إما الصغير-CT أو تحسب من الكتلة الجسدية. لم يوجد فرق كبير بين هاتين الطريقتين (ع الوجهين -value = 0.9362). (الشكل 4B)

مع 5 centiGy في مسح وخمس نقاط الوقت المسح الضوئي، كل فأر يتلق أي أكثر من ما مجموعه 25 centiGy على مدار الدراسة. واتساقا مع ذلك، فإن أيا من الفئران عرض أي دليل الإجمالي الحروق الجلدية الإشعاع.

الشكل 1. (A) A G قنية 14 على حقنة 1 مل المتمركزة في خط الوسط وعلى منقاري أقصى الجانب من جيب قبل بداية حقن الدهون. (B) الماوس عارية على الانتهاء تطعيم الدهون، مع خياطة النايلون واحدة تستخدم لجلب الجرح حواف معا. وقد شغل في الجيب ولكن ليس متوترا.

الشكل 2. (A) عرض الصور التي أعيد بناؤها في البداية في محوري، الاكليلية، والآراء السهمي. (ب) استخدام عرض محوري كدليل للانتقال إلى ترك معظم جوانب الكسب غير المشروع على وجهة نظر سهمي. تحديد الحد الأدنى لكثافة بكسل حتى يتسنى لجميع voxels مختارة ضمن نطاق عتبة سيمثل الأنسجة الدهنية، وبالتالي إتاحة الفرصة لترسيم الحدود من حجم الدهون الكسب غير المشروع. (C) المعرفة على وجهة نظر سهمي بدءا من ترك معظم جوانب من الكسب غير المشروع والعائد على الاستثمار المستمر أبداتم إنشاء سطح ثلاثي الأبعاد ذ شريحة الخامسة الانتقال إلى الطرف الآخر من الكسب غير المشروع. (D) جميع voxels مختارة من محرف إلى واحد ROI 3D 2D ROI ل. (E) باستخدام مكعب خدد الاستيفاء لتصور إجمالي حجم الدهون الكسب غير المشروع .

الشكل 3. (A) الدهون الكسب غير المشروع قبل explantation، مع التصحيح الظهرية من إزالة الجلد. (B) الدهون الكسب غير المشروع بعد explantation.

أظهر تحليل الشكل 4. (A) مايكرو-CT الحجمي الفقدان التدريجي لحجم الكسب غير المشروع الدهون على مدى ثمانية أسابيع. (ب) حجم الدهون الكسب غير المشروع النهائية، مقاسا الدقيقة CT، يتفق بشكل وثيق لكميات محسوبة من جماهير explanted الكسب غير المشروع الدهونالصورة. تم استخدام متوسط ​​كثافة من الدهون البشري (0.9 غرام / مل)، ومعدل التحويل.

الجدول 1. يحسب مايكرو-CT حجم مقابل الفعلي المقاس حجم الدهون ²⁴

حتى هذه النقطة، وقد اعتمدت معظم الباحثين على طرائق غير التصوير لقياس البقاء على المدى الطويل الطعوم الدهون، ولكن هذه الأساليب تتطلب التضحية من الحيوان الدراسة وتسفر عن قياس واحد فقط. تمثل ^3،10-12 دراستنا لتحسين أسلوب التحليل الذي يسمح الهدف، في الوقت الحقيقي الكمي للبقاء الكسب غير المشروع الدهون في نموذج الفأر.

ثقلهم في هذه العملية هو ضمان استخدام الفئران المناعة بما فيه الكفاية للدراسة، حيث أن هذا يمنع رفض الكسب غير المشروع التي يمكن أن تحدث في حالة استخدام الفئران مع الجهاز المناعي سليمة. الحفاظ على سلامة الدهون أمر بالغ الأهمية خلال موسم الحصاد، والتجهيز، ومراحل وضع التطعيم. وفقا للمعايير المقبولة تقليديا، ينبغي الحصول على الدهون للتطعيم عن طريق الشفط يساعد شفط الدهون (SAL). خلال التنسيب، وينبغي حقن الدهون بمعدل تدفق ثابت بسرعة لا تزيد على 0.5 مل / ثانية. ويفضل قنية عيار 14 للتطعيم طغ الماوس، ولكن قنية قطرها أكبر ويمكن استخدامها دون أية إصابة في الدهون. قنية وأصغر الإبر، خصوصا تلك-وقياس تثبيط أضيق من 16 خلال التنسيب لأنها قد تسبب الدهون لانهيار بسبب زيادة إجهاد القص. على الرغم من أن وصفنا تقنية المفضلة لدينا لمعالجة أعلاه، أي مزيج من الترسيب، الطرد المركزي، و / أو الترشيح يمكن استخدامها طالما يتم فصل طبقات النفط والدم على نحو كاف للخروج من الدهون قبل التطعيم.

وينبغي أن تكون ترقيع الدهون لا يقل عن 200 ميكرولتر في الحجم لتقليل التباين في النتائج نظرا لطبيعة تتعارض من تطعيم الدهون. ويمكن استخدام الطعوم أكبر تصل إلى 400 ميكرولتر في الحجم، ولكن فوق هذا الحجم، وضعف إمدادات الأوعية الدموية والتوتر المفرط الجلد قد يؤدي إلى الدهون ونخر الجلد. في نهاية المطاف، وسيتم تحديد الحد الأقصى لحجم الدهون الكسب غير المشروع من حيث المساحة السطحية وحجم الجيب. لزيادة حجم الكسب غير المشروع التي يمكن تسليمها بأمان، وبوcket يمكن توسيع تشريح أكثر اتساعا. ومع ذلك، وهذا قد وضع الدهون خارج حدود الجزء العلوي من الجمجمة، الأمر الذي سيجعل من التناقض بين الكسب غير المشروع والأنسجة المحيطة بها أقل وضوحا. وبالتالي، فإن اختيار فوكسل اللاحقة تصبح أكثر صعوبة.

إذا الأولي شق الجلد صغير بما فيه الكفاية، قد لا تكون هناك حاجة لخياطة طالما بقي الدهون احتواء وليس وينظر تسرب من الجيب. إذا تم وضع خياطة، يجب الحرص على عدم يعقدا قرانهما الأولى بإحكام جدا، وإلا قد يحدث انهيار الجلد. ويفضل خياطة حيدة غير قابل للامتصاص مثل النايلون، كما أنه يحد من تفاعل التهابي وأقل عرضة لإيواء العدوى. سوف إعادة الاندمال بتشكل النسيج الظهاري من شق يحدث في غضون 24 إلى 48 ساعة بعد العملية، ويمكن إزالته خياطة في هذا الوقت. لا ينبغي أن تستخدم الغرز للامتصاص ومضفر. ينبغي دائما أن تعالج الجلد مع أقل القوة اللازمة، والجراح يجب الحرص على عدم سحق الجلدبينما يمسك حواف الجرح.

اعتمادا على التصوير برامج التحليل المحققين، والعلاقة الدقيقة بين كثافة بكسل وكثافة الأنسجة قد تختلف. يجب أن المحققين اختيار عتبات كثافة بكسل للحصول على أقصى مدى والحد الأدنى الذي يميز معظم بدقة الكسب غير المشروع الدهون من الأنسجة المحيطة بها. وينبغي أن تستخدم نفس القيم عتبة الحد الأقصى والحد الأدنى من خلال تحليل كل حجم للحفاظ على التناسق.

وهناك طرق متعددة لتحديد حجم الكسب غير المشروع مرة واحدة تم تعيين قيم عتبة كثافة بكسل. على الرغم من أننا نجد اللوحة مع أداة الفرشاة في الرأي سهمي الأفضل في أيدينا، طرق اختيار فوكسل أخرى لإنشاء ROI يمكن استخدامها مثل الرسم باستخدام أداة سين أو اللوحة في عرض محوري. فمن الأفضل إذا كان شخص واحد يقوم بتحليل كل حجم كما الدوام ممكن من أجل الحد من الخطأ قياس.

وعدمطبيعة الغازية لهذا الأسلوب والتصور في الوقت الحقيقي من تطور الكسب غير المشروع توفر مزايا هامة على التقنيات التقليدية. ومع ذلك، هذه التقنية محدودة في قدرتها على تحديد سلامة والصحة الطعوم المتبقية. وعلاوة على ذلك، فإنه لا يمكن إثبات إعادة التوعي النسبية للترقيع. على الرغم من التغيرات في المظهر وكثافة الكسب غير المشروع قد يلمح في نخر الدهون، والعدوى، وتشكيل الكيس، أو تسييل، فإنه من الصعب التوصل إلى استنتاجات دقيقة من الدقيقة CT وحدها.

نأمل أن هذه التقنية بمثابة الأساس الذي تقوم عليه يمكن إجراء الدراسات المستقبلية إلى فهم أفضل للعوامل المسببة في بقاء الكسب غير المشروع الدهون وخسارة. اختلافات حول هذا الموضوع قد توضيح الدور الذي الخلايا الجذعية، عوامل النمو، السيتوكينات، والجينات، وتلعب علامات سطح الخلية في الحفاظ النهائي لحجم الكسب غير المشروع الدهون. مع هذه الأداة محسنة لاختبار الفرضيات المتناقضة، ونحن نتطلع إلى فهم أفضل لنقل الدهون التي transfoRMS تقنية متقلبة لعلاج العجز الأنسجة الناعمة في أحد أكثر قابلية للتنبؤ.

None of the authors have any competing financial interest to report.

وأيد هذه الدراسة من قبل مؤسسة البلوط، ومختبر Hagey للأطفال الطب التجديدي، والمعهد الوطني للصحة، منح NIHR21DE019274، NIHR01DE019434، NIHR01DE021683، وNIHU01HL099776 إلى MTLDCW كان مدعوما من زمالة أبحاث ACS فرانكلين H. مارتن كلية، وHagey مختبر للطب الأطفال التجديدي الطب، وجائزة معهد بحوث صحة الطفل بجامعة ستانفورد كلية إجابات. وقد أجريت مايكرو-CT في مركز ستانفورد للإبداع في التصوير في الجسم الحي.