Domuz Endotoksemik Şok Modeli Olarak Lipopolisakkarit İnfüzyonu

Lipopolisakkarit infüzyonu ile domuzlarda deneysel bir endotoksemik şok modeli için bir protokol sunuyoruz.

Sepsis ve septik şok, yoğun bakım ünitelerinde (YBÜ) tedavi gören hastalarda sıklıkla karşılaşılır ve bu hastalarda önde gelen ölüm nedenleri arasındadır. Bir enfeksiyona karşı düzensiz bir bağışıklık tepkisinden kaynaklanır. Optimize edilmiş tedavi ile bile, mortalite oranları yüksek kalmaktadır, bu da patofizyoloji ve yeni tedavi seçenekleri hakkında daha fazla bilgi sahibi olmayı gerekli kılmaktadır. Lipopolisakkarit (LPS), genellikle sepsis ve septik şoka neden olan enfeksiyonlardan sorumlu olan gram negatif bakterilerin hücre zarının bir bileşenidir.

Sepsis ve septik şokun şiddeti ve yüksek mortalitesi, insanlarda standardize edilmiş deneysel çalışmaları imkansız kılmaktadır. Bu nedenle, daha ileri çalışmalar için bir hayvan modeline ihtiyaç vardır. Domuz, anatomi, fizyoloji ve boyut olarak insanlara çok benzediği için bu amaç için özellikle uygundur.

Bu protokol, LPS infüzyonu ile domuzlarda endotoksemik şok için deneysel bir model sağlar. Hemodinamik instabilite, solunum yetmezliği ve asidoz dahil olmak üzere septik şok hastalarında sıklıkla gözlenen değişiklikleri güvenilir bir şekilde indükleyebildik. Bu, araştırmacıların bu son derece ilgili durum hakkında değerli bilgiler edinmelerini ve deneysel bir ortamda yeni terapötik yaklaşımları değerlendirmelerini sağlayacaktır.

Sepsis ve septik şok, yoğun bakım tedavisi alan hastalarda önde gelen mortalite nedenleri arasında yer almaktadır ^1,2,3. Sepsis, bir enfeksiyon düzensiz bir bağışıklık tepkisini tetiklediğinde ortaya çıkar ve bu da çoklu organ yetmezliği ile sonuçlanır. Hemodinamik instabilite, solunum sıkıntısı, karaciğer ve böbrek yetmezliği ve bilişsel bozukluk^dahil olmak üzere hayatı tehdit eden semptomlarla karakterizedir ^4,5. Septik şok, mortaliteyi önemli ölçüde artıran özellikle şiddetli semptomları olan bir sepsis alt kümesini temsil eder. Bu semptomlar arasında vazopresör tedavisi gerektiren kalıcı hipotansiyon ve 2 mmol∙^{L-1 4,5'i} aşan bir serum laktat seviyesi bulunur. Septik şoklu hastalarda mortalite oranları, hastanede tedavi ile bile% 40 gibi yüksek bir orana ulaşmıştır ^1,3,5. 

Pseudomonas ve Escherichia coli gibi gram negatif bakteriler genellikle bu düzensiz bağışıklık tepkisini tetikleyen enfeksiyonlara neden olur⁴. Altta yatan patofizyolojik mekanizmalar karmaşıktır ve henüz tam olarak anlaşılamamıştır. İyi tanımlanmış bir yön, tümör nekroz faktörü-alfa (TNFa) veya İnterlökin 1 (IL ^{1) gibi} sitokinlerin salınmasına yol açan patojenle ilişkili moleküler modeller (PAMP'ler) tarafından bağışıklık hücreleri üzerindeki Toll benzeri reseptörlerin aktivasyonunu içerir4. Bu PAMP'lardan biri, gram negatif bakterilerde hücre zarının bir bileşenini oluşturan lipopolisakkarittir (LPS)⁶. LPS, hayvan modellerinde endotoksemi ve endotoksemik şoku indüklemek için kullanılmıştır ^7,8.

Hayvan modelleri, yeni tedavi stratejileri geliştirmek ve araştırmak için kontrollü ve standartlaştırılmış bir ortam sağlar. Benzer anatomisi, immünolojik fizyolojisi ve karşılaştırılabilir hemodinamik parametreleri nedeniyle, domuz modeli özellikle endotoksemik şokun etkilerini incelemek için çok uygundur ^9,10. Ayrıca, insan hastalarda yaygın olarak kullanılan standart tıbbi ekipman, solunum yollarının ve kan damarlarının benzer boyutta olması, enstrümantasyon ve hemodinamik izlemeyi kolaylaştırması nedeniyle domuzlarda kolayca uygulanabilir.

Bu protokolle, E. coli'den türetilen LPS'yi intravenöz olarak infüze ederek domuzlarda endotoksemik şok için deneysel bir model sunuyoruz. Etkileri izlemek için arteriyel kan basıncı, kalp atış hızı, periferik oksijen satürasyonu, pulmoner arter basıncı ve hava yolu basıncı dahil olmak üzere hemodinamik ve pulmoner parametreleri ölçtük. Endotokseminin serebral oksijen kaynağı üzerindeki etkisini değerlendirmek için yakın kızılötesi spektrometri (NIRS) kullandık. Bu yöntemle, serebral oksijen satürasyonu, alnına uygulanan bir yapışkan elektrot aracılığıyla değerlendirilebilir¹¹.

Bu protokoldeki deneyler Devlet ve Kurumsal Hayvan Bakım Komitesi (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Almanya, TVA G21-1-080) tarafından onaylanmıştır. Deneyler ARRIVE yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Bu çalışma için yaşları 2-3 ay arasında ve 30-35 kg ağırlığında altı sağlıklı erkek Alman Landrace domuzu kullanıldı. Deneysel zaman çizelgesi Şekil 1'de özetlenmiştir. Bu protokolde kullanılan tüm malzeme ve aletler ile ilgili detaylar Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

Şekil 1: Deneysel zaman çizelgesi. Temel sağlık ölçümleri, hayvanın hazırlanmasından ve 30 dakikalık bir stabilizasyon süresinden sonra alındı. Endotoksemi, 30 dakika boyunca LPS enjeksiyonu ile indüklendi ve 30 dakika sonra 0 saatlik ölçümler alındı; Bundan sonra, saatlik ölçümler 4 saat boyunca devam etti. Kısaltmalar: BLH = başlangıç sağlıklı; LPS = lipopolisakkarit. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

1. Hayvan hazırlama

1. Stresi en aza indirmek için hayvanları mümkün olduğunca uzun süre normal ortamlarında tutun. Anestezi uygulanmadan önce 6 saat boyunca yiyecekleri saklayın ve suya serbest erişime izin verin.
2. Hayvanları normal ortamlarındayken kas içi azaperon (3 mg∙^kg-1) ve midazolam (0.5 mg ^kg-1) enjeksiyonu ile sakinleştirin.
3. Tipik olarak uygulamadan yaklaşık 15-20 dakika sonra meydana gelen sedasyon etkili olduğunda, domuzları laboratuvara taşıyın.
   NOT: Transfer boyunca sürekli sedasyonun sürdürülmesini sağlamak çok önemlidir; Bölgesel yasama organına bağlı olarak, bu bir veterinerin kalıcı denetimini gerektirebilir.
4. Taşıma sırasında domuzların normal vücut ısısını (~38 °C) korumaya çok dikkat edin. Örneğin, hipotermiyi önlemek için hayvanı bir battaniyeyle örtmeyi düşünün.
   NOT: Taşıma süresini, genellikle 30 dakika ile 60 dakika arasında değişen sedasyon süresini aşmayacak şekilde sınırlamak önemlidir.
5. Dezenfeksiyonu takiben, kulak damarına 22 G'lik bir kateter yerleştirerek intravenöz erişim sağlayın. Domuzun daha fazla hareketine veya anestezi indüksiyonuna geçmeden önce, herhangi bir ani hareketle çıkığı önlemek için kateterin güvenli bir şekilde sabitlendiğinden emin olun.
6. Kuyruğa veya kulağa takılan bir sensör kullanarak periferik oksijen doygunluğunu sürekli olarak izleyin.

2. Anestezi ve mekanik ventilasyon

1. Anesteziyi indüklemek için intravenöz fentanil (4 μg ^kg-1) ve propofol (3 mg ^kg-1) uygulayın.
2. Domuzu sırtüstü pozisyona getirin.
3. Atrakuryumu (0.5 mg ^kg-1) kas gevşetici olarak uygulayın ve hemen bir köpek ventilasyon maskesi kullanarak non-invaziv ventilasyonu başlatın. Maskeyi burnun üzerine yerleştirin ve orta/yüzük parmağını kullanarak alt çeneyi öne doğru çekerken başparmaklarınızla sıkı bir baskı uygulayın. Ventilatörü aşağıdaki parametrelere ayarlayın: inspiratuar oksijen fraksiyonu (F_iO₂ ) =% 100, tidal hacim = 6-8 mL ^kg-1, Pozitif Uç Ekspiratuar Basınç (PEEP) = 5 mbar, tepe inspiratuar basınç ≤ 20 mbar, solunum hızı = 18-20 ^dak-1.
4. Dengeli bir elektrolit çözeltisi (5 mL ^{kg-1 sa-1}), fentanil (10 μg ^{kg-1 sa-1}) ve propofol (6 mg ^{kg-1 sa-1}) sürekli infüzyonunu başlatarak anesteziyi sürdürün.
5. Standart bir endotrakeal tüp (ID 6-7 mm), bir kılavuz tel ve bir Macintosh Blade (boyut 4) ile donatılmış bir laringoskop kullanarak endotrakeal entübasyon gerçekleştirin.
   1. Bir asistanın ağzını açmasını ve dilini sol tarafa tutmasını sağlayın.
   2. Macintosh Blade'i epiglot görünene kadar sokun. Ardından, epiglotu ventral olarak hareket ettirmek ve ses tellerini görselleştirmek için laringoskopu yukarı doğru kaldırın. Bazen, epiglot yumuşak damağa yapışabilir; Bu durumda, tüp veya bir buji ile hafifçe yana doğru kaydırarak harekete geçirin.
   3. Endotrakeal tüpü ses tellerinden dikkatlice yerleştirin ve indükleyiciyi çıkarın. Zorlukla karşılaşırsanız, tüpü aşırı kuvvet uygulamadan döndürmeyi deneyin. Gerekirse, daha küçük bir tüp kullanın. Tüp yerleştirildikten sonra, manşeti 10 mL hava ile şişirin.
6. Endotrakeal tüpü ventilatöre bağlayın ve ventilasyonu başlatın. Ekspirasyon sonu CO_2'yi tespit ederek ve bilateral oskültasyon gerçekleştirerek uygun tüp konumlandırmasını onaylayın. Aşağıdaki ventilasyon ayarlarını kullanın: F_iO₂ =% 40, gelgit hacmi = 6-8 mL ^kg-1, PEEP = 5 mbar, inspirasyon-ekspirasyon oranı = 1: 2, solunum hızı = <45 mmHg'lik bir gelgit sonu CO₂ seviyesi elde etmek için ayarlanır, tipik olarak 30-40 ^dak-1 .
   NOT: Tüp yemek borusuna yanlış yerleştirilmişse, hava mideyi şişirerek gözle görülür bir şişkinliğe neden olur. Bu gibi durumlarda, tüpü hemen çıkarın, 1-2 dakika boyunca non-invaziv ventilasyon uygulayın ve tüpü doğru şekilde yeniden konumlandırın.
7. Reflü veya kusmayı önlemek için bir mide tüpü yerleştirin. Yerleştirme zor olursa, özofagus girişini daha iyi görmek için laringoskop kullanın.

3. Enstrümantasyon

1. Hemodinamik izleme ve intravenöz hacim tedavisi için sırasıyla femoral arter ve ven içine bir arteriyel ve bir merkezi venöz hat yerleştirin.
2. Arka bacakları geri çekmek ve sabitlemek için bandaj kullanın, femoral damarlara daha iyi erişim sağlayın.
3. Enstrümantasyondan önce gerekli tüm malzemeleri hazırlayın. Birden fazla kateterizasyon girişimi ve gereksiz kan kaybı ihtiyacını en aza indirmek için tüm kateterleri salin solüsyonu ile doldurun ve tellere ve kateterlere kolay erişim sağlayın.
4. Kasık bölgesine alkollü bir dezenfektan uygulayın ve steril bir bezle silin. Bu işlemi iki kez tekrarlayın. Dezenfektanı silmeden tekrar uygulayın ve 3 dk bekleyin. Kasık bölgesinin üzerine steril bir fenestre örtü yerleştirin.
5. Femur kan damarlarını tanımlamak için ultrason kullanın. Doku hasarını ve kan kaybını en aza indirmek için kateterizasyon için düzlem içi ultrason kılavuzluğunda Seldinger tekniği kullanın.
6. Femoral arteri uzunlamasına görselleştirin. Sürekli aspirasyon için iğneye bağlı bir şırınga ile arteri delin. Parlak kırmızı, nabız atan kan, arteriyel ponksiyonu doğrular. Şırıngayı çıkarın ve hazırlanan teli yerleştirin. Teli yerinde bırakırken iğneyi çıkarın.
7. Femoral ven için aynı işlemi tekrarlayın. Venöz ponksiyon yavaş akan, koyu kırmızı kan ile doğrulanır.
8. Ultrason kullanarak her iki femoral damarı görselleştirerek her iki telin doğru konumlandırıldığını onaylayın.
9. Önce arteriyel introdüser kılıfını, ardından venöz introdüser kılıfını yerleştirmek için Seldinger'in tekniğini kullanın. İki hattan alınan kan örneklerinin kan gazı analizi yoluyla doğru konumlandırmayı onaylayın.
10. Kanın tüm hatlardan aspire edilebildiğinden emin olun. Pıhtı oluşumunu önlemek için tüm hatları tuzlu su çözeltisiyle yıkayın.
11. Çıkığı önlemek için cerrahi dikişler kullanarak çizgileri cilde güvenli bir şekilde sabitleyin.
12. Hemodinamik parametrelerin ölçümü için arteriyel ve santral venöz hatları transdüserlere bağlayın.
13. Arteriyel introdüser kılıfına bir nabız kontur kardiyak çıkış (PiCCO) kateteri yerleştirin ve bunu PiCCO monitörünün arteriyel basınç dönüştürücüsüne ve sıcaklık arayüz kablosuna bağlayın.
14. Bir Swan-Ganz kateterini bir dönüştürücüye bağlayın.
    1. Basıncı sürekli ölçerken, kateteri merkezi venöz giriş kılıfına yerleştirin. Yaklaşık 30 cm sonra, merkezi venöz basınç eğrisi görünür hale geldiğinde balonu şişirin.
    2. Basınç eğrisini izlerken kateteri yavaşça ilerletin. Kateter sağ ventriküle girerken, yüksek sistolik ve düşük diyastolik değere sahip bir nabız eğrisi arayın. Kateterin daha da ilerlemesi, tutarlı bir sistolik değer ve pulmoner arterdeki yerleşimi gösteren artmış bir diyastolik değer ile sonuçlanacaktır.
    3. Kateteri bu pozisyonda sabitleyin (genellikle 50 ila 70 cm arasında). PiCCO sisteminin enjeksiyon sıcaklık sensörünü Swan-Ganz kateterinin proksimal lümenine bağlayın.
15. Domuzun alnını tıraş edin ve Serebral Bölgesel Oksijen Doygunluğunu ölçmek için yapışkan sensör elektrodunu uygulayın.
16. Anestezi indüksiyonu ve enstrümantasyondan sonra, temel ölçümler yapmadan ve endotoksemik şoku indüklemeden önce hayvanın 30 dakika veya hemodinamik parametreler stabilize olana kadar stabilize olmasına izin verin.

4. Şok indüksiyonu

NOT: LPS ile çalışırken daima eldiven, koruyucu gözlük, maske ve laboratuvar önlüğü giyin. LPS ile doğrudan temastan kaçının.

1. 5 mg LPS'yi 50 mL% 0.9 NaCl içinde çözerek 100 μg ^mL-1 konsantrasyonlu bir LPS çözeltisi hazırlayın.
2. LPS infüzyonuna başlamadan hemen önce başlangıç hemodinamik ölçümlerini alın.
3. 30 dakika boyunca 150 μg ^kg-1 doz LPS uygulayın (30 dakika boyunca 300 μg ^kg-1∙^h-1 sürekli infüzyon hızına eşdeğer).
4. 30 dakika sonra, deneyin geri kalanı için infüzyon hızını 15 μg∙^kg-1∙^h-1'e düşürün.
5. Arteriyel ve pulmoner arteriyel kan basıncı, kalp atış hızı ve ventilasyon parametreleri dahil olmak üzere hemodinamik parametreleri sürekli olarak izleyin. Normotermiyi korumak için vücut ısısını sürekli izleyin.

5. Hemodinamik instabilitenin tedavisi

1. Ortalama arteriyel kan basıncı 60 mmHg'nin altına düştüğünde, kardiyak indeks (CI), Global Diyastolik Sonu Hacim İndeksi (GEDI) ve Ekstravasküler Akciğer Su İndeksini (ELWI) ölçmek için PiCCO'yu kullanın. Düşük tansiyonu Şekil 2'deki akış şemasındaki önerilere göre tedavi edin.
   1. PiCCO monitöründe termodilüsyon düğmesine (TD) basın.
   2. Merkezi venöz basınç (CVP) girişi için düğmeye basın ve mevcut CVP değerini girin.
   3. Başlat düğmesine basın.
   4. Talimat verildiğinde, Swan-Ganz kateterine bağlı enjeksiyon sıcaklık sensörüne 10 mL soğuk salin solüsyonu enjekte edin.
      NOT: PiCCO ölçümünden önce veya ölçüm sırasında doğrudan başka bir şey enjekte etmeyin, çünkü bu ölçümü tehlikeye atar.
2. CI, GEDI ve ELWI için ölçümler aldıktan sonra, Şekil 2'deki akış şemasına göre hemodinamik instabiliteyi tedavi edin. Hacim yüklemesi önerilirse, 200 mL dengeli elektrolit çözeltisini hızla demleyin. Katekolamin tedavisi öneriliyorsa, norepinefrin infüzyon oranını 1 μg ^{kg-1 h-1} arttırın.
3. Ortalama arteriyel kan basıncı 60 mmHg'nin altına düştüğünde bu işlemi tekrarlayın. Şiddetli hemodinamik instabilite durumunda, tedavinin hızlı bir şekilde arttırılmasını tercih edin.

Şekil 2: Hemodinamik instabilitenin PiCCO kılavuzluğunda tedavisi. CI, GEDI ve ELWI için ölçümler alındıktan sonra tabloya göre tedavi uygulayın. Bu rakam PiCCO kullanım kılavuzu^12'den uyarlanmıştır. Kısaltmalar: PiCCO = nabız kontur kardiyak debisi; V+ = hacim yükleme; kedi = katekolamin tedavisi; V- = hacim azaltma; CI = kardiyak indeks; GEDI = küresel diyastol sonu hacim indeksi; ELWI = ekstravasküler akciğer su indeksi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

6. Deneyin sonu ve ötenazi

1. İntravenöz olarak 0.5 mg fentanil enjekte edin. 5 dakika bekleyin. 200 mg propofol enjekte edin.
2. Merkezi venöz hat üzerinden 40 mL 1 M potasyum klorür enjeksiyonu ile domuzu ötenazi yapın.

Bu çalışma için, 2-3 aylık ve 30-35 kg ağırlığındaki altı sağlıklı erkek domuz anestezi altına alındı ve endotoksemiyi indüklemek için bir lipopolisakkarit (LPS) infüzyonu aldı. Şok semptomlarını tutarlı bir şekilde indüklemek için gereken uygun LPS dozajını belirlemek için, domuzlara 30 dakikalık bir süre boyunca 100 μg ^kg-1 ila 200 μg ^kg-1 arasında değişen çeşitli LPS indüksiyon dozları uygulandı, ardından deneyin geri kalanı için saatte başlangıç dozunun 1 / 10'u kadar bir idame dozu uygulandı. Tüm hayvanlar LPS infüzyonundan kısa bir süre sonra şok belirtileri gösterdi. Hemodinamik parametreler PiCCO sistemi kullanılarak izlendi. Hayvanlar, kalp indeksinde bir azalma ve kalp atış hızında bir artış gösterdi, bu da şok durumu sırasında hemodinamik instabiliteyi gösterdi. LPS infüzyonunu takiben ortalama arteriyel kan basıncı azaldı, ancak gerekirse sıvı resüsitasyonu veya norepinefrin infüzyonu ile 60 mmHg'nin üzerinde tutuldu (Şekil 3). Akciğer hasarı, PaO₂ F_iO ^2-1 oranında bir azalma ve pulmoner arter basıncında bir artış ile gösterildi (Şekil 4). Serebral oksijenasyon, yakın kızılötesi spektroskopi (NIRS) kullanılarak ölçüldü ve şok indüksiyonunu takiben azaldı (Şekil 5). Hayvanlar ayrıca asidoz ve artan laktat seviyeleri sergiledi (Şekil 6). Anlamlılığı belirlemek için çoklu karşılaştırmalı tek yönlü varyans analizi (ANOVA) kullanılmıştır.

Şekil 3: LPS infüzyonu sonrası hemodinamik parametrelerin gelişimi. (A) Şok indüksiyonundan sonra ortalama arteriyel kan basıncı azaldı, ancak gerekirse norepinefrin infüzyonu kullanılarak 60 mmHg'nin üzerinde tutuldu. (B) LPS İnfüzyonundan sonra Kardiyak İndeks azaldı ve (C) kalp atış hızı arttı. Ortalama ve standart sapma gösterilir. *P < 0,05 temel ölçümlerle karşılaştırılmıştır. Kısaltmalar: BLH = temel sağlık; LPS = lipopolisakkarit. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 4: LPS infüzyonundan sonra pulmoner parametrelerin gelişimi. (A) PaO2 FiO2-1 oranı, LPS İnfüzyonundan kısa bir süre sonra azaldı. (B) Şok indüksiyonundan sonra sürüş basıncı arttı. (C) Şok sırasında pulmoner arter basıncı da arttı. Ortalama ve standart sapma gösterilir. *P < 0,05 temel ölçümlerle karşılaştırılmıştır. Kısaltmalar: BLH = temel sağlık; LPS = lipopolisakkarit; F_iO₂ = inspiratuar oksijen fraksiyonu; PaO2 = arteriyel kandaki kısmi oksijen basıncı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 5: LPS infüzyonundan sonra serebral oksijenasyon. Yakın kızılötesi spektroskopi ile ölçülen serebral oksijenasyon, LPS ile şok indüksiyonundan sonra azaldı. Ortalama ve standart sapma gösterilir. *P < 0,05 temel ölçümlerle karşılaştırılmıştır. Kısaltmalar: BLH = temel sağlık; LPS = lipopolisakkarit; NIRS = yakın kızılötesi spektroskopisi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 6: LPS'ye bağlı endotoksemi sırasında arteriyel kan gazı analizi. (A) Hayvanlar zamanla daha asidotik hale geldi ve (B) LPS infüzyonundan sonra laktat seviyeleri arttı. Ortalama ve standart sapma gösterilir. *P < 0,05 temel ölçümlerle karşılaştırılmıştır. Kısaltmalar: BLH = temel sağlık; LPS = lipopolisakkarit. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Sepsis ve septik şokta yaygın olarak gözlenen değişiklikleri güvenilir bir şekilde indüklemeyi amaçlayan, LPS infüzyonu yoluyla domuzlarda deneysel endotoksemiyi indüklemek için bir protokol sunuyoruz. Bu protokolde birkaç kritik adımın dikkate alınması gerekir. Taşımadan önce domuzların yeterli sedasyonu, sonuçları potansiyel olarak tehlikeye atabilecek katekolamin seviyelerinin strese bağlı yükselmesini önlemek için çok önemlidir. Domuzların entübasyonu, uzun burunlarının anatomik özellikleri nedeniyle insanlara kıyasla zorluklar yaratabilir. Bunu ele almak için, entübasyon için bir Macintosh bıçağının kullanılmasını öneririz ve endotrakeal tüp düz bir indükleyici ile donatılmalıdır. Epiglotun yumuşak damağa yapışması yaygındır ve bazen, hayvanın trakeasının subglottik daralması nedeniyle daha küçük bir endotrakeal tüp gerekli olabilir, bu nedenle ses tellerinden geçebilen bir tüp hala çok büyük olabilir.

LPS infüzyonundan önce, LPS konsantrasyonunun hassas bir şekilde hazırlanması esastır. Daha yüksek bir LPS dozu uygulamak ciddi hemodinamik instabiliteye ve hatta ölüme neden olabilirken, daha düşük bir doz istenen etkileri üretmeyebilir. Ek olarak, farklı LPS ücretlerinin farklı seviyelerde etkinlik gösterebileceğine dikkat edilmelidir. Her deneme için aynı LPS ücretini kullanmanızı öneririz. Her çalışma için uygun dozu belirlemek için doz bulma denemeleri yapılabilir. LPS infüzyonunun başlamasından sonra, hızlı instabilite potansiyeli nedeniyle hemodinamik parametrelerin sürekli izlenmesi çok önemlidir. Herhangi bir yan etkiyi yönetmek için hızlı müdahale gerekebilir.

İleri hemodinamik ölçümler için PiCCO kullanıldı. Bu teknoloji, yoğun bakım ünitesinde tedavi gören insan hastalarda da sıklıkla kullanılmaktadır. İnsanlar için geliştirilmiştir ve domuzlarda kullanımı bazı zorluklar doğurabilir. Hemodinamik parametrelerin hesaplanmasında vücut yüzey alanı (BSA) kullanılır. Bu, hastanın boyu ve kilosu girildiğinde otomatik olarak hesaplanır. Burada kullanılan formül (insanlar için) domuzların BSA'sını hesaplamak için ideal olmasa da, ne yazık ki BSA'ya girmenin başka bir yolu yoktur. Bu sorun, deneyimlerimizdeki gibi domuzlar için 130 cm yüksekliğe girilerek çözüldü, bu BSA için en uygun sonuçları verdi. Ancak, PiCCO sonuçları yorumlanırken bu sınırlama akılda tutulmalıdır.

Önceki çalışmalar, domuzlarda septik şoku simüle etmek için LPS kullanımını tanımlamıştır. Bu çalışmalarda septik hastalarda sıklıkla gözlenen hipotansiyon, periferik vazodilatasyon, artmış pulmoner arter basıncı ve artmış sistemik oksijen alımı gibi değişiklikler tanımlanmıştır 13,14,15. Domuzlarda deneysel sepsis ve septik şoku indüklemek için alternatif yöntemler de tanımlanmıştır. Bir model, dışkı 16,17,18,19'un intraperitoneal uygulaması yoluyla peritonitin indüklenmesini içerir. Diğer bir yaklaşım, canlı bakterilerin hayvanların kan dolaşımına doğrudan enjekte edilmesidir^19,20. LPS enjeksiyonu ile karşılaştırıldığında, deneysel sepsisi indüklemek için peritonit veya bakteriyemi kullanan protokoller daha fazla gerçekçilik avantajı sunar. Bu yöntemler bakteriyel enfeksiyon yoluyla gerçek bir septik durumu indüklerken, LPS enjeksiyonu altta yatan patogenetik mekanizmaların sadece tek bir yönünü temsil eder.

Bununla birlikte, LPS infüzyon yönteminin de yararları vardır. Peritonit modeline kıyasla bu protokol, intraperitoneal erişime ihtiyaç duymadan sadece intravenöz enjeksiyonu içerdiğinden daha az çaba ve uzmanlık gerektirir. Ek olarak, şok belirtileri diğer modellere göre daha hızlı ortaya çıkar, bu da daha kısa gözlem sürelerine ve daha az kaynak kullanımına izin verir. Ayrıca, her domuz aynı LPS dozajını aldığından sonuçlar yüksek oranda tekrarlanabilir. Buna karşılık, uygulanan dışkının bileşimi önemli ölçüde değişebilir ve bakteri üremesi kontrol edilemeyen faktörlerden etkilenir¹⁹.

Bazı sınırlamalara rağmen, bu protokol sürekli olarak çoklu organ sistemlerini etkileyen endotoksemik şoka neden oldu. LPS ile tedavi edilen tüm hayvanlarda yüksek laktat seviyeleri ile birlikte akciğer fonksiyonunda ve hemodinamikte karakteristik değişiklikler gözlemledik. Deney boyunca sürekli derin anestezi nedeniyle, insanlarda Glasgow Koma Ölçeği kullanılarak SOFA skoruna dahil edilen bilişsel işlevi değerlendiremedik. Bununla birlikte, serebral oksijenasyonda bir azalma gözlemledik, bu da LPS'nin neden olduğu şokun beyin fonksiyonu üzerindeki potansiyel etkisini düşündürdü. Erken evrelerde, sepsis genellikle artmış kardiyak debi ile karakterize hiperdinamik bir faz ile ilişkilidir. Bu modelde semptomların hızlı ilerlemesi nedeniyle, burada sunulan veriler bu hiperdinamik fazı yeterince göstermemektedir. Bu aşama özellikle ilgi çekiyorsa, deneyin erken aşamasında ölçümler daha düzenli olarak yapılmalıdır. LPS dozunun ayarlanması, semptomların gelişimini yavaşlatmaya ve hiperdinamik fazı gözlemlemeyi kolaylaştırmaya yardımcı olabilir.

LPS ve diğer bakteriyel endotoksinler daha önce küçük hayvan modellerinde sepsisi simüle etmek için kullanılmıştır⁸. Bununla birlikte, bu bağlamda domuzların kullanılması, fareler gibi küçük hayvan modellerine kıyasla bazı zorluklar ortaya çıkarmaktadır. Domuzların yetiştirilmesi ve bakımı çok daha fazla zaman ve çaba gerektirir ve deney başına daha az hayvan kullanılabilir. Bununla birlikte, büyük hayvan modelleri, özellikle domuzlar, insan vücudunun daha gerçekçi bir temsilini sağlar. Domuzlar anatomi, genom, diyet ve bağışıklık sistemi duyarlılığı açısından insanlarla benzerlikler gösterir ^9,10. Diğer bir avantaj, tekrarlanan kan örneği analizlerine olanak sağlamasıdır. Küçük hayvan modelleri genellikle özel ekipmana ihtiyaç duyarken, insan hastalarda yaygın olarak kullanılan standart tıbbi ekipman domuzlara uygulanabilir, böylece klinik yoğun bakım ünitesinde enstrümantasyon ve hemodinamik izlemeye benzer. Sonuç olarak, bu protokol LPS infüzyonu yoluyla domuzlarda deneysel bir endotoksemi modeli oluşturur. Septik şok hastalarında sıklıkla gözlenen değişiklikleri tutarlı bir şekilde indüklemek için basit ve standartlaştırılmış bir yöntem sunar.

NIRS cihazı, deneysel araştırma amacıyla ABD'deki Medtronic PLC tarafından koşulsuz olarak sağlanmıştır. Alexander Ziebart, Medtronic PLC'den ders ücreti aldı. Yazarların hiçbiri herhangi bir finansal veya diğer çıkar çatışması bildirmemektedir. Makale, ChatGPT® tarafından kontrol edildi ve düzenlendi (Python Yazılımı, Sürüm: 24 Mayıs 2023).

Yazarlar, mükemmel teknik desteği için Dagmar Dirvonskis'e teşekkür etmek istiyor.