JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نحن نقدم بروتوكولا لنموذج صدمة التسمم الداخلي التجريبي في الخنازير عن طريق ضخ عديد السكاريد الدهني.

Abstract

كثيرا ما تصادف الإنتان والصدمة الإنتانية في المرضى الذين يعالجون في وحدات العناية المركزة (ICUs) وهي من بين الأسباب الرئيسية للوفاة لدى هؤلاء المرضى. وهو ناتج عن استجابة مناعية غير منظمة للعدوى. حتى مع العلاج الأمثل ، تظل معدلات الوفيات مرتفعة ، مما يجعل المزيد من الأفكار حول الفيزيولوجيا المرضية وخيارات العلاج الجديدة ضرورية. عديد السكاريد الشحمي (LPS) هو أحد مكونات غشاء الخلية للبكتيريا سالبة الجرام ، والتي غالبا ما تكون مسؤولة عن العدوى التي تسبب الإنتان والصدمة الإنتانية.

إن شدة الإنتان والصدمة الإنتانية وارتفاع معدل الوفيات فيها تجعل الدراسات التجريبية الموحدة في البشر مستحيلة. وبالتالي ، هناك حاجة إلى نموذج حيواني لمزيد من الدراسات. الخنزير مناسب بشكل خاص لهذا الغرض لأنه يشبه البشر إلى حد كبير في علم التشريح وعلم وظائف الأعضاء والحجم.

يوفر هذا البروتوكول نموذجا تجريبيا لصدمة التسمم الداخلي في الخنازير عن طريق ضخ LPS. تمكنا من إحداث تغييرات موثوقة لوحظت بشكل متكرر في مرضى الصدمة الإنتانية ، بما في ذلك عدم استقرار الدورة الدموية وفشل الجهاز التنفسي والحماض. سيسمح ذلك للباحثين باكتساب نظرة ثاقبة قيمة حول هذه الحالة ذات الصلة للغاية وتقييم الأساليب العلاجية الجديدة في بيئة تجريبية.

Introduction

يصنف الإنتان والصدمة الإنتانية من بين الأسباب الرئيسية للوفيات في المرضى الذين يتلقون علاج العناية المركزة1،2،3. ينشأ الإنتان عندما تؤدي العدوى إلى استجابة مناعية غير منظمة مما يؤدي إلى فشل متعدد الأعضاء. يتميز بأعراض تهدد الحياة ، بما في ذلك عدم استقرار الدورة الدموية ، وضيق التنفس ، والفشل الكبدي والكلوي ، وكذلك الضعف الإدراكي 4,5. تمثل الصدمة الإنتانية مجموعة فرعية من الإنتان مع أعراض حادة بشكل خاص تزيد بشكل كبير من معدل الوفيات. تشمل هذه الأعراض انخفاض ضغط الدم المستمر الذي يتطلب علاجا بخافض للأوعية ومستوى لاكتات المصل يتجاوز 2 مليمول ∙L-1 4,5. قدرت معدلات الوفيات في المرضى الذين يعانون من الصدمة الإنتانية بنسبة تصل إلى 40٪ ، حتى مع العلاج في المستشفى1،3،5. 

غالبا ما تسبب البكتيريا سالبة الجرام ، مثل Pseudomonas و Escherichia coli ، التهابات تؤدي إلى هذه الاستجابة المناعية غير المنظمة4. الآليات الفيزيولوجية المرضية الأساسية معقدة وغير مفهومة تماما بعد. يتضمن أحد الجوانب الموصوفة جيدا تنشيط المستقبلات الشبيهة بالحصيلة على الخلايا المناعية بواسطة الأنماط الجزيئية المرتبطة بمسببات الأمراض (PAMPs) ، مما يؤدي إلى إطلاق السيتوكينات مثل عامل نخر الورم ألفا (TNFα) أو Interleukin 1 (IL 1) 4. أحد هذه PAMPs هو عديد السكاريد الدهني (LPS) ، والذي يشكل مكونا من غشاء الخلية في البكتيريا سالبةالجرام 6. تم استخدام LPS في النماذج الحيوانية للحث على التسمم الداخلي وصدمة التسمم الداخلي 7,8.

توفر النماذج الحيوانية بيئة خاضعة للرقابة وموحدة لتطوير استراتيجيات العلاج الجديدة والتحقيق فيها. نظرا لتشريحه المماثل ، وعلم وظائف الأعضاء المناعي ، ومعلمات الدورة الدموية المماثلة ، فإن نموذج الخنزير مناسب بشكل خاص لدراسة آثار صدمة التسمم الداخلي 9,10. علاوة على ذلك ، يمكن تطبيق المعدات الطبية القياسية المستخدمة بشكل شائع في المرضى من البشر بسهولة في الخنازير نظرا لالحجم المماثل للممرات الهوائية والأوعية الدموية ، مما يسهل الأجهزة ومراقبة الدورة الدموية.

باستخدام هذا البروتوكول ، نقدم نموذجا تجريبيا لصدمة التسمم الداخلي في الخنازير عن طريق حقن LPS المشتق من الإشريكية القولونية عن طريق الوريد. لمراقبة الآثار ، قمنا بقياس المعلمات الديناميكية الدموية والرئوية ، بما في ذلك ضغط الدم الشرياني ومعدل ضربات القلب وتشبع الأكسجين المحيطي والضغط الشرياني الرئوي وضغط مجرى الهواء. لتقييم تأثير التسمم الداخلي على إمدادات الأكسجين الدماغي ، استخدمنا قياس الطيف القريب من الأشعة تحت الحمراء (NIRS). باستخدام هذه الطريقة ، يمكن تقييم تشبع الأكسجين الدماغي عبر قطب كهربائي لاصق مطبق على الجبهة11.

Protocol

تمت الموافقة على التجارب في هذا البروتوكول من قبل لجنة رعاية الحكومية والمؤسسية (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz ، كوبلنز ، ألمانيا ، TVA G21-1-080). أجريت التجارب وفقا لإرشادات ARRIVE. في هذه الدراسة ، تم استخدام ستة خنازير ألمانية سليمة تتراوح أعمارهم بين 2-3 أشهر ووزنها 30-35 كجم. يلخص الشكل 1 الجدول الزمني التجريبي . التفاصيل المتعلقة بجميع المواد والأدوات المستخدمة في هذا البروتوكول مدرجة في جدول المواد.

figure-protocol-563
الشكل 1: الجدول الزمني التجريبي. تم أخذ القياسات الصحية الأساسية بعد تحضير وفترة استقرار مدتها 30 دقيقة. تم إحداث التسمم الداخلي عن طريق حقن LPS على مدى 30 دقيقة وتم أخذ قياسات 0 ساعة بعد 30 دقيقة أخرى. بعد ذلك ، استمرت القياسات بالساعة لمدة 4 ساعات. الاختصارات: BLH = خط الأساس صحي. LPS = عديد السكاريد الشحمي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

1. إعداد

  1. احتفظ بالحيوانات في بيئتها المعتادة لأطول فترة ممكنة لتقليل التوتر. حجب الطعام لمدة 6 ساعات قبل إعطاء التخدير ، مع السماح بحرية الوصول إلى الماء.
  2. قم بتخدير بالحقن العضلي للأزابيرون (3 مجم -1) والميدازولام (0.5 مجم كجم -1) بينما لا تزال في بيئتها الطبيعية.
  3. بمجرد أن يصبح التخدير ساري المفعول ، والذي يحدث عادة في غضون 15-20 دقيقة تقريبا بعد تناوله ، انقل الخنازير إلى المختبر.
    ملاحظة: من الأهمية بمكان ضمان الحفاظ على التخدير المستمر طوال فترة النقل. اعتمادا على الهيئة التشريعية الإقليمية ، قد يتطلب ذلك الإشراف الدائم على طبيب بيطري.
  4. انتبه جيدا للحفاظ على درجة حرارة الجسم الطبيعية للخنازير (~ 38 درجة مئوية) أثناء النقل. على سبيل المثال ، ضع في اعتبارك تغطية ببطانية لمنع انخفاض حرارة الجسم.
    ملاحظة: من المهم تحديد وقت النقل بحيث لا يتجاوز مدة التخدير ، والتي تتراوح عادة من 30 دقيقة إلى 60 دقيقة.
  5. بعد التطهير ، قم بإنشاء مدخل عن طريق الوريد عن طريق إدخال قسطرة 22 G في الوريد الأذني. قبل الشروع في أي حركة أخرى للخنزير أو تحريض التخدير ، تأكد من تثبيت القسطرة بإحكام لمنع الخلع بسبب أي حركات مفاجئة.
  6. راقب باستمرار تشبع الأكسجين المحيطي باستخدام مستشعر مثبت على الذيل أو الأذن.

2. التخدير والتهوية الميكانيكية

  1. تطبيق الفنتانيل الوريدي (4 ميكروغرام كغ-1) والبروبوفول (3 ملغ كغ-1) للحث على التخدير.
  2. ضع الخنزير في وضع ضعيف.
  3. تطبيق الأتراكوريوم (0.5 ملغ كجم -1) كمرخي للعضلات والبدء فورا في التهوية غير الغازية باستخدام قناع تهوية للكلاب. ضع القناع فوق الخطم واضغط بقوة بالإبهام أثناء سحب الفك السفلي للأمام باستخدام الإصبع الأوسط / البنصر. اضبط جهاز التنفس الصناعي على المعلمات التالية: جزء الأكسجين الشهيقي (FiO2 ) = 100٪ ، حجم المد والجزر = 6-8 مل كجم -1 ، ضغط الزفير الإيجابي (PEEP) = 5 ملي بار ، ذروة ضغط الشهيق ≤ 20 ملي بار ، معدل التنفس = 18-20 دقيقة -1.
  4. الحفاظ على التخدير عن طريق الشروع في التسريب المستمر لمحلول إلكتروليت متوازن (5 مل كجم -1 ح-1) ، فنتانيل (10 ميكروغرام كجم -1 ح-1) ، وبروبوفول (6 ملغ كجم -1 ح-1).
  5. إجراء التنبيب الرغامي باستخدام أنبوب القصبة الهوائية القياسي (ID 6-7 مم) ، وسلك توجيه ، ومنظار الحنجرة المجهز بشفرة Macintosh (الحجم 4).
    1. اطلب من مساعد فتح الفم وأمسك اللسان على الجانب الأيسر.
    2. أدخل شفرة ماكنتوش حتى يصبح لسان المزمار مرئيا. ثم ارفع منظار الحنجرة لأعلى لتحريك لسان المزمار بطنيا وتصور الحبال الصوتية. في بعض الأحيان ، قد يلتصق لسان المزمار بالحنك الرخو. في هذه الحالة ، قم بتعبئتها عن طريق التمرير برفق جانبيا باستخدام الأنبوب أو البوجي.
    3. أدخل بعناية أنبوب القصبة الهوائية من خلال الحبال الصوتية وإزالة المحفز. إذا واجهت صعوبة ، فحاول تدوير الأنبوب دون استخدام القوة المفرطة. إذا لزم الأمر ، استخدم أنبوبا أصغر. بمجرد وضع الأنبوب في مكانه ، قم بنفخ الكفة ب 10 مل من الهواء.
  6. قم بتوصيل الأنبوب الرغامي بجهاز التنفس الصناعي وابدأ التهوية. تأكد من وضع الأنبوب المناسب عن طريق الكشف عن ثاني أكسيد الكربون2 الزفيري النهائي وإجراء التسمع الثنائي. استخدم إعدادات التهوية التالية: FiO2 = 40٪ ، حجم المد والجزر = 6-8 مل كجم -1 ، PEEP = 5 ملي بار ، نسبة الإلهام إلى انتهاء الصلاحية = 1: 2 ، معدل التنفس = معدل المعدل لتحقيق مستوى CO2 في نهاية المد والجزر من <45 مم زئبق ، عادة 30-40 دقيقة -1 .
    ملاحظة: إذا تم وضع الأنبوب بشكل غير صحيح في المريء ، فسوف ينفخ الهواء المعدة ، مما يتسبب في انتفاخ مرئي. في مثل هذه الحالات ، قم بإزالة الأنبوب على الفور ، وإدارة التهوية غير الغازية لمدة 1-2 دقيقة ، وإعادة وضع الأنبوب بشكل صحيح.
  7. أدخل أنبوبا معديا لمنع الارتجاع أو القيء. إذا ثبت أن الإدخال يمثل تحديا، فاستخدم منظار الحنجرة للحصول على رؤية أفضل لمدخل المريء.

3. الأجهزة

  1. ضع خطا شريانيا ووريديا مركزيا في الشريان الفخذي والوريد ، على التوالي ، لمراقبة الدورة الدموية والعلاج بالحجم الوريدي.
  2. استخدم الضمادات لسحب وتأمين الساقين الخلفيتين ، مما يوفر وصولا أفضل إلى الأوعية الفخذية.
  3. قم بإعداد جميع المواد اللازمة قبل الأجهزة. املأ جميع القسطرة بمحلول ملحي وتأكد من سهولة الوصول إلى الأسلاك والقسطرة لتقليل الحاجة إلى محاولات قسطرة متعددة وفقدان الدم غير الضروري.
  4. ضع مطهرا كحوليا على المنطقة الأربية وامسحها بمسحة معقمة. كرر هذه العملية مرتين. ضع المطهر مرة أخرى دون مسح وانتظر لمدة 3 دقائق. ضع ثنى معقم على المنطقة الأربية.
  5. استخدم الموجات فوق الصوتية لتحديد الأوعية الدموية الفخذية. استخدم تقنية Seldinger الموجهة بالموجات فوق الصوتية داخل الطائرة للقسطرة لتقليل تلف الأنسجة وفقدان الدم.
  6. تصور الشريان الفخذي طوليا. ثقب الشريان مع حقنة تعلق على الإبرة للطموح المستمر. أحمر مشرق ، الدم النابض يؤكد ثقب الشرايين. أخرج المحقنة وأدخل السلك المحضر. قم بإزالة الإبرة مع ترك السلك في مكانه.
  7. كرر نفس الإجراء للوريد الفخذي. يتم تأكيد البزل الوريدي عن طريق الدم الأحمر الداكن بطيء التدفق.
  8. تأكد من الموضع الصحيح لكلا السلكين من خلال تصور كلا الأوعية الفخذية باستخدام الموجات فوق الصوتية.
  9. استخدم تقنية Seldinger لإدخال غمد المدخل الشرياني أولا ، متبوعا بغمد الإدخال الوريدي. تأكيد الوضع المناسب من خلال تحليل غازات الدم لعينات الدم المسحوبة من الخطين.
  10. تأكد من إمكانية استنشاق الدم من جميع الخطوط. اغسل جميع الخطوط بمحلول ملحي لمنع تكوين الجلطة.
  11. ثبت الخطوط على الجلد بإحكام باستخدام الغرز الجراحية لمنع الخلع.
  12. قم بتوصيل الخطوط الوريدية الشريانية والمركزية بمحولات الطاقة لقياس معلمات الدورة الدموية.
  13. أدخل قسطرة نبض القلب (PiCCO) في غلاف الإدخال الشرياني وقم بتوصيله بمحول الضغط الشرياني وكابل واجهة درجة الحرارة لجهاز PiCCO.
  14. قم بتوصيل قسطرة Swan-Ganz بمحول الطاقة.
    1. أثناء قياس الضغط باستمرار ، أدخل القسطرة في غلاف الإدخال الوريدي المركزي. نفخ البالون بعد حوالي 30 سم ، عندما يصبح منحنى الضغط الوريدي المركزي مرئيا.
    2. تقدم القسطرة ببطء أثناء مراقبة منحنى الضغط. عندما تدخل القسطرة إلى البطين الأيمن ، ابحث عن منحنى نبضي ذو قيمة انقباضية عالية ومنخفضة الانبساطي. سيؤدي المزيد من التقدم في القسطرة إلى قيمة انقباضية ثابتة وزيادة القيمة الانبساطية ، مما يشير إلى وضعها في الشريان الرئوي.
    3. ثبت القسطرة في هذا الوضع (عادة بين 50 و 70 سم). قم بتوصيل مستشعر درجة حرارة الحقن لنظام PiCCO بالتجويف القريب لقسطرة Swan-Ganz.
  15. احلق جبين الخنزير وضع قطب المستشعر اللاصق لقياس تشبع الأكسجين الإقليمي الدماغي.
  16. بعد تحريض التخدير والأجهزة ، اسمح للحيوان بالاستقرار لمدة 30 دقيقة أو حتى تستقر معلمات الدورة الدموية قبل إجراء قياسات خط الأساس وإحداث صدمة التسمم الداخلي.

4. صدمة التعريفي

ملاحظة: عند العمل مع LPS ، ارتد دائما قفازات ونظارات واقية وقناعا ومعطفا للمختبر. تجنب الاتصال المباشر مع LPS.

  1. تحضير محلول LPS بتركيز 100 ميكروغرام mL-1 عن طريق إذابة 5 ملغ من LPS في 50 مل من 0.9 ٪ كلوريد الصوديوم.
  2. احصل على قياسات الدورة الدموية الأساسية مباشرة قبل بدء ضخ LPS.
  3. تطبيق جرعة 150 ميكروغرام كغ-1 من LPS خلال 30 دقيقة (أي ما يعادل معدل تسريب مستمر يبلغ 300 ميكروغرام كغ-1∙h-1 لمدة 30 دقيقة).
  4. بعد 30 دقيقة ، قلل معدل التسريب إلى 15 ميكروغرام ∙ كجم -1∙ ساعة -1 لبقية التجربة.
  5. مراقبة المعلمات الدورة الدموية باستمرار ، بما في ذلك ضغط الدم الشرياني الشرياني والرئوي ، ومعدل ضربات القلب ، ومعلمات التهوية. مراقبة درجة حرارة الجسم باستمرار للحفاظ على الحرارة الطبيعية.

5. علاج عدم استقرار الدورة الدموية

  1. عندما ينخفض متوسط ضغط الدم الشرياني إلى أقل من 60 مم زئبق ، استخدم PiCCO لقياس مؤشر القلب (CI) ، ومؤشر الحجم الانبساطي العالمي (GEDI) ، ومؤشر ماء الرئة خارج الأوعية الدموية (ELWI). عالج انخفاض ضغط الدم وفقا للتوصيات الواردة في مخطط التدفق في الشكل 2.
    1. على شاشة PiCCO ، اضغط على زر التخفيف الحراري (TD).
    2. اضغط على زر إدخال الضغط الوريدي المركزي (CVP) وأدخل قيمة CVP الحالية.
    3. اضغط على زر البدء .
    4. عند طلب منك القيام بذلك ، قم بحقن 10 مل من محلول ملحي بارد في مستشعر درجة حرارة الحقن المتصل بقسطرة Swan-Ganz.
      ملاحظة: لا تحقن أي شيء آخر مباشرة قبل أو أثناء قياس PiCCO لأن هذا من شأنه أن يضر بالقياس.
  2. بعد الحصول على قياسات CI و GEDI و ELWI ، عالج عدم استقرار الدورة الدموية وفقا لمخطط التدفق في الشكل 2. إذا كان يوصى بتحميل الحجم ، فقم بضخ 200 مل من محلول الإلكتروليت المتوازن بسرعة. إذا كان العلاج بالكاتيكولامين موصى به ، فقم بزيادة معدل ضخ النورإبينفرين بمقدار 1 ميكروغرام كجم -1 ساعة -1.
  3. كرر هذه العملية كلما انخفض متوسط ضغط الدم الشرياني إلى أقل من 60 مم زئبق. في حالة عدم استقرار الدورة الدموية الشديد ، اختر التصعيد السريع للعلاج.

figure-protocol-10177
الشكل 2: العلاج الموجه ب PiCCO لعدم استقرار الدورة الدموية. بعد الحصول على قياسات CI و GEDI و ELWI ، قم بتطبيق العلاج وفقا للرسم البياني. تم تكييف هذا الرقم من دليل مستخدم PiCCO12. الاختصارات: PiCCO = نبض كفاف النتاج القلبي. V + = تحميل الحجم ؛ القط = العلاج الكاتيكولامين. V- = تخفيض الحجم ؛ CI = مؤشر القلب. GEDI = مؤشر حجم نهاية الانبساطي العالمي ؛ ELWI = مؤشر مياه الرئة خارج الأوعية الدموية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

6. نهاية التجربة والقتل الرحيم

  1. حقن 0.5 ملغ من الفنتانيل عن طريق الوريد. انتظر 5 دقائق. حقن 200 ملغ من البروبوفول.
  2. القتل الرحيم للخنزير بحقن سريع قدره 40 مل من كلوريد البوتاسيوم 1 متر عبر الخط الوريدي المركزي.

النتائج

في هذه الدراسة ، تم تخدير ستة خنازير ذكور سليمة تتراوح أعمارهم بين 2-3 أشهر ووزنها 30-35 كجم وتلقوا ضخ عديد السكاريد الدهني (LPS) للحث على تسمم الدم الداخلي. لتحديد الجرعة المناسبة من LPS المطلوبة للحث باستمرار على أعراض الصدمة ، تم إعطاء الخنازير جرعات تحريضية مختلفة من LPS تتراوح من 100 ميكروغرام كجم -1 إلى 200 ميكروغرام كجم -1 على مدى فترة 30 دقيقة ، تليها جرعة صيانة 1/10 من الجرعة الأولية في الساعة لبقية التجربة. أظهرت جميع علامات الصدمة بعد وقت قصير من ضخ LPS. تمت مراقبة معلمات الدورة الدموية باستخدام نظام PiCCO. أظهرت انخفاضا في مؤشر القلب وزيادة في معدل ضربات القلب ، مما يشير إلى عدم استقرار الدورة الدموية أثناء حالة الصدمة. انخفض متوسط ضغط الدم الشرياني بعد ضخ LPS ولكن تم الحفاظ عليه فوق 60 مم زئبق من خلال إنعاش السوائل أو تسريب بافراز إذا لزم الأمر (الشكل 3). تمت الإشارة إلى تلف الرئة من خلال انخفاض نسبة PaO2 FiO 2-1 وزيادة ضغط الشريان الرئوي (الشكل 4). تم قياس الأوكسجين الدماغي باستخدام التحليل الطيفي للأشعة تحت الحمراء القريبة (NIRS) وانخفض بعد تحريض الصدمة (الشكل 5). أظهرت أيضا الحماض وزيادة مستويات اللاكتات (الشكل 6). تم استخدام ANOVA أحادي الاتجاه مع مقارنات متعددة لتحديد الأهمية.

figure-results-1394
الشكل 3: تطوير معلمات الدورة الدموية بعد ضخ LPS. (أ) انخفض متوسط ضغط الدم الشرياني بعد تحريض الصدمة، ولكن تم الاحتفاظ به أكثر من 60 مم زئبق باستخدام تسريب النورإبينفرين إذا لزم الأمر. (ب) انخفض مؤشر القلب، وزاد معدل ضربات القلب بعد ضخ LPS. يتم عرض المتوسط والانحراف المعياري. * p < 0.05 مقارنة بقياسات خط الأساس. الاختصارات: BLH = صحة خط الأساس ؛ LPS = عديد السكاريد الشحمي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2161
الشكل 4: تطور المعلمات الرئوية بعد ضخ LPS. (أ) انخفضت نسبة PaO2 FiO2-1 بعد فترة وجيزة من ضخ LPS. (ب) زاد ضغط القيادة بعد تحريض الصدمة. (ج) زاد الضغط الشرياني الرئوي أيضا أثناء الصدمة. يتم عرض المتوسط والانحراف المعياري. * p < 0.05 مقارنة بقياسات خط الأساس. الاختصارات: BLH = صحة خط الأساس ؛ LPS = عديد السكاريد الدهني. FiO2 = جزء الأكسجين الشهيقي ؛ PaO2 = الضغط الجزئي للأكسجين في الدم الشرياني. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2982
الشكل 5: الأوكسجين الدماغي بعد ضخ LPS. انخفض الأوكسجين الدماغي المقاس عبر التحليل الطيفي للأشعة تحت الحمراء القريبة بعد تحريض الصدمة باستخدام LPS. يتم عرض المتوسط والانحراف المعياري. * p < 0.05 مقارنة بقياسات خط الأساس. الاختصارات: BLH = صحة خط الأساس ؛ LPS = عديد السكاريد الدهني. NIRS = التحليل الطيفي للأشعة تحت الحمراء القريبة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-3655
الشكل 6: تحليل غازات الدم الشرياني أثناء التسمم الداخلي الناجم عن LPS. (أ) أصبحت أكثر حمضية بمرور الوقت، و(ب) زادت مستويات اللاكتات بعد ضخ اللاكتات LPS. يتم عرض المتوسط والانحراف المعياري. * p < 0.05 مقارنة بقياسات خط الأساس. الاختصارات: BLH = صحة خط الأساس ؛ LPS = عديد السكاريد الشحمي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Discussion

نقدم بروتوكولا لإحداث تسمم داخلي تجريبي في الخنازير من خلال ضخ LPS ، بهدف إحداث تغييرات موثوقة شائعة في الإنتان والصدمة الإنتانية. يجب النظر في العديد من الخطوات الحاسمة في هذا البروتوكول. يعد التخدير الكافي للخنازير قبل النقل أمرا بالغ الأهمية لمنع ارتفاع مستويات الكاتيكولامين الناجم عن الإجهاد ، مما قد يضر بالنتائج. قد يشكل تنبيب الخنازير تحديات مقارنة بالبشر بسبب السمات التشريحية لأنفهم الممدود. لمعالجة هذا الأمر ، نوصي باستخدام شفرة Macintosh للتنبيب ، ويجب أن يكون الأنبوب الرغامي مزودا بمحفز مستقيم. من الشائع أن يلتصق لسان المزمار بالحنك الرخو ، وفي بعض الأحيان ، قد يكون من الضروري وجود أنبوب قصبة هوائية أصغر بسبب التضيق تحت المزمار في القصبة الهوائية للحيوان ، لذا فإن الأنبوب القادر على المرور عبر الحبال الصوتية قد لا يزال كبيرا جدا.

قبل ضخ LPS ، يعد التحضير الدقيق لتركيز LPS أمرا ضروريا. يمكن أن يؤدي إعطاء جرعة أعلى من LPS إلى عدم استقرار الدورة الدموية الشديد وحتى الموت ، في حين أن الجرعة المنخفضة قد لا تنتج التأثيرات المرجوة. بالإضافة إلى ذلك ، تجدر الإشارة إلى أن رسوم LPS المختلفة قد تظهر مستويات متفاوتة من الفعالية. نوصي باستخدام نفس رسوم LPS لكل إصدار تجريبي. يمكن إجراء تجارب تحديد الجرعة لتحديد الجرعة المناسبة لكل دراسة. عند بدء ضخ LPS ، تعد المراقبة المستمرة لمعلمات الدورة الدموية أمرا بالغ الأهمية بسبب احتمال عدم الاستقرار السريع. قد يكون التدخل الفوري ضروريا لإدارة أي آثار ضارة.

تم استخدام PiCCO لقياسات الدورة الدموية المتقدمة. وكثيرا ما تستخدم هذه التكنولوجيا أيضا في المرضى من البشر الذين يعالجون في وحدة العناية المركزة. تم تطويره للبشر وقد يشكل استخدامه في الخنازير بعض التحديات. تستخدم مساحة سطح الجسم (BSA) لحساب المعلمات الدورة الدموية. يتم حساب هذا تلقائيا عند إدخال طول ووزن المريض. على الرغم من أن الصيغة المستخدمة هنا (للبشر) ليست مثالية لحساب BSA للخنازير ، إلا أنه لا توجد ، للأسف ، طريقة أخرى لدخول BSA. تم حل هذه المشكلة عن طريق إدخال ارتفاع 130 سم للخنازير كما في تجربتنا ، وهذا يعطي النتائج الأكثر ملاءمة ل BSA. ومع ذلك ، يجب مراعاة هذا القيد عند تفسير نتائج PiCCO.

وصفت الدراسات السابقة استخدام LPS لمحاكاة الصدمة الإنتانية في الخنازير. في هذه الدراسات ، يتم وصف التغييرات التي لوحظت بشكل متكرر في مرضى الإنتان مثل انخفاض ضغط الدم ، وتوسع الأوعية المحيطية ، وزيادة الضغط الشرياني الرئوي ، وزيادة امتصاص الأكسجين النظامي13،14،15. كما تم وصف طرق بديلة لإحداث الإنتان التجريبي والصدمة الإنتانية في الخنازير. يتضمن أحد النماذج إحداث التهاب الصفاق من خلال إعطاء البراز داخل الصفاق16،17،18،19. نهج آخر هو الحقن المباشر للبكتيريا الحية في مجرى الدم للحيوانات19،20. بالمقارنة مع حقن LPS ، فإن البروتوكولات التي تستخدم التهاب الصفاق أو تجرثم الدم للحث على الإنتان التجريبي توفر ميزة واقعية أكبر. تحفز هذه الطرق حالة إنتانية فعلية من خلال العدوى البكتيرية ، في حين أن حقن LPS لا يمثل سوى جانب واحد من الآليات المسببة للأمراض الأساسية.

ومع ذلك ، فإن طريقة ضخ LPS لها أيضا مزاياها. بالمقارنة مع نموذج التهاب الصفاق ، يتطلب هذا البروتوكول جهدا وخبرة أقل لأنه يتضمن فقط الحقن في الوريد دون الحاجة إلى الوصول داخل الصفاق. بالإضافة إلى ذلك ، تظهر أعراض الصدمة بسرعة أكبر مما كانت عليه في النماذج الأخرى ، مما يسمح بأوقات مراقبة أقصر وتقليل استخدام الموارد. علاوة على ذلك ، فإن النتائج قابلة للتكرار بشكل كبير لأن كل خنزير يتلقى نفس جرعة LPS. في المقابل ، يمكن أن يختلف تكوين البراز المعطى بشكل كبير ، ويتأثر نمو البكتيريا بعوامل لا يمكن السيطرة عليها19.

على الرغم من بعض القيود ، تسبب هذا البروتوكول باستمرار في حدوث صدمة تسمم الدم الداخلي ، مما يؤثر على أنظمة أعضاء متعددة. لاحظنا تغيرات مميزة في وظائف الرئة وديناميكا الدم ، إلى جانب ارتفاع مستويات اللاكتات في جميع المعالجة ب LPS. بسبب التخدير العميق المستمر طوال التجربة ، لم نتمكن من تقييم الوظيفة الإدراكية ، والتي تم دمجها في درجة SOFA باستخدام مقياس غلاسكو للغيبوبة في البشر. ومع ذلك ، لاحظنا انخفاضا في الأوكسجين الدماغي ، مما يشير إلى وجود تأثير محتمل للصدمة التي يسببها LPS على وظائف المخ. في المراحل المبكرة ، غالبا ما يرتبط الإنتان بمرحلة مفرطة الديناميكية تتميز بارتفاع النتاج القلبي. بسبب التقدم السريع للأعراض في هذا النموذج ، فإن البيانات المقدمة هنا لا تظهر بشكل كاف هذه المرحلة الديناميكية المفرطة. إذا كانت هذه المرحلة ذات أهمية خاصة ، فيجب إجراء القياسات بشكل أكثر انتظاما في المرحلة المبكرة من التجربة. قد يساعد تعديل جرعة LPS على إبطاء تطور الأعراض وتسهيل مراقبة المرحلة الديناميكية المفرطة.

تم استخدام LPS والسموم الداخلية البكتيرية الأخرى سابقا لمحاكاة الإنتان في نماذج الصغيرة8. ومع ذلك ، فإن استخدام الخنازير في هذا السياق يطرح بعض التحديات مقارنة بالنماذج الحيوانية الصغيرة مثل الفئران. تتطلب تربية الخنازير وصيانتها مزيدا من الوقت والجهد ، ويمكن استخدام عدد أقل من لكل تجربة. ومع ذلك ، فإن النماذج الحيوانية الكبيرة ، وخاصة الخنازير ، توفر تمثيلا أكثر واقعية لجسم الإنسان. تظهر الخنازير أوجه تشابه مع البشر من حيث التشريح والجينوم والنظام الغذائي واستجابة الجهاز المناعي 9,10. ميزة أخرى هي فرصة لتحليل عينات الدم المتكررة. في حين أن النماذج الحيوانية الصغيرة غالبا ما تحتاج إلى معدات متخصصة ، يمكن تطبيق المعدات الطبية القياسية المستخدمة بشكل شائع في المرضى من البشر على الخنازير ، وبالتالي تشبه الأجهزة ومراقبة الدورة الدموية في وحدة العناية المركزة السريرية. في الختام ، ينشئ هذا البروتوكول نموذجا تجريبيا للتسمم الداخلي في الخنازير من خلال ضخ LPS. إنه يوفر طريقة بسيطة وموحدة لإحداث التغييرات التي يتم ملاحظتها بشكل متكرر في مرضى الصدمة الإنتانية.

Disclosures

تم توفير جهاز NIRS دون قيد أو شرط من قبل Medtronic PLC ، الولايات المتحدة الأمريكية ، لأغراض البحث التجريبي. تلقى ألكسندر زيبارت رسوم محاضرة من شركة ميدترونيك PLC. لم يبلغ أي من المؤلفين عن أي تضارب في المصالح المالية أو غيرها. تم تدقيق المخطوطة وتحريرها بواسطة ChatGPT® (برنامج Python ، الإصدار: 24 مايو 2023).

Acknowledgements

يود المؤلفون أن يشكروا داغمار ديرفونسكيس على دعمها الفني الممتاز.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Atracurium Hikma 50 mg/5mLHikma Pharma GmbH, Martinsried
Azaperone (Stresnil) 40 mg/mLLilly Deutschland GmbH, Bad Homburg, Germany
BD Discardit II Spritze 2, 5, 10, 20 mLBecton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Spainsyringe
BD Luer Connecta Becton Dickinson Infusion Therapy, AB Helsingborg, Schweden3-way-stopcock
Curafix i.v. classicsLohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, GermanyCannula retention dressing
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finlandhemodynamic monitor
Engström CarestationGE Heathcare, Madison USAventilator
Fentanyl-Janssen 0.05 mg/mLJanssen-Cilag GmbH, Neussfentanyl
Führungsstab, Durchmesser 4.3Rüschendotracheal tube introducer
Incetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Deutschland, GmbHperfusor line
Intrafix PrimelineB. Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyInfusion line
Introducer sheath 5 Fr.Terumo Healthcarearterial introducer 
INVOSMedtronic, Dublin, Irelandnear infrared spectrometry
JOZA Einmal Nitril Untersuchungshandschuhe JOZA, München, Germanydisposable gloves
Laryngoscope, 45.48.50, KL 2000MediconLaryngoscope handle
Littmann Classic III Stethoscope3M Deutschland GmbH, Neuss, Germanystethoscope
LPS (E. coli; Serotype O111:B4)Sigma-Aldrich, Switzerland
MAC Two-Lumen Central venous access setArrow international inc. Reading, PA, USAvenous introducer
Maimed VlieskompresseMaimed GmbH, Neuenkirchen, GermanyFleece compress to fix the tongue
Masimo LNCS Adtx SpO2 sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAsaturation clip for the tail
Masimo LNCS TC-I SpO2 ear clip sensorMasimo Corporation Irvine, Ca 92618 USASaturation clip for the ear
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAperiphereal oxygen saturation   
Midazolam 15 mg/3 mLB.Braun Melsungen AG, Germany
Midmark Canine Mask Small Plastic with Diaphragm FRSCM-0005Midmark Corp., Dayton, Ohio, USAdog ventilation mask
Monocryl surgical sutureJohnson & Johnson, Belgium
B.Braun Melsungen AG, Germanysaline solution
NaCl 0.9 %Sanofi- Aventis, Seutschland GmbH
Octeniderm farblosSchülke & Mayr GmbH, Nordenstedt, GermanyAlcoholic disinfectant
Original Perfusor syringe 50 mLB.Braun Melsungen AG, Germanyperfusor syringe
PA-Katheter Swan Ganz 7.5 Fr 110 cmEdwards Lifesciences LLC, Irvine CA, USASwan-Ganz catheter
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, Germanysyringe pump
PiCCO catheterPULSION Medical Systems SE, Feldkirchen, DE
Potassium chloride 1 MFresenius, Kabi Germany GmbH
Propofol 2% 20 mg/mL (50 mL flasks)Fresenius, Kabi Deutschland, GmbH
Pulse-contour continous cardiac output System PiCCO2PULSION Medical Systems SE, Feldkirchen, DE
Rüschelit Super Safety Clear >ID 6/6.5 /7.0 mmTeleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysiaendotracheal tube
Sonosite Micromaxx UltrasoundsystemSonosite Bothell, WA, USA ultrasound 
Stainless Macintosh Größe 4Welch Allyn69604blade for laryngoscope
SterofundinB.Braun Melsungen AG, Melsungen, GermanyBalanced electrolyte solution
Vasco OP sensitive B.Braun Melsungen AG, Germanysterile gloves
Vasofix Safety 22 G-16 GB.Braun Melsungen AG, Germanyvenous catheter
VBM Cuff ManometerVBM Medizintechnik GmbH, Sulz a.N., Germany cuff pressure gauge

References

  1. Vincent, J. -. L., Jones, G., David, S., Olariu, E., Cadwell, K. K. Frequency and mortality of septic shock in Europe and North America: a systematic review and meta-analysis. Critical Care. 23 (1), 196 (2019).
  2. Reinhart, K., et al. Recognizing sepsis as a Global Health Priority - A WHO Resolution. New England Journal of Medicine. 377 (5), 414-417 (2017).
  3. Cecconi, M., Evans, L., Levy, M., Rhodes, A. Sepsis and septic shock. The Lancet. 392 (10141), 75-87 (2018).
  4. Font, M. D., Thyagarajan, B., Khanna, A. K. Sepsis and septic shock - basics of diagnosis, pathophysiology and clinical decision making. Medical Clinics of North America. 104 (4), 573-585 (2020).
  5. Singer, M., et al. The Third International Consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3). JAMA. 315 (8), 801 (2016).
  6. Jerala, R. Structural biology of the LPS recognition. International Journal of Medical Microbiology. 297 (5), 353-363 (2007).
  7. Copeland, S., Warren, H. S., Lowry, S. F., Calvano, S. E., Remick, D. Inflammation and the host response to injury investigators acute inflammatory response to endotoxin in mice and humans. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 12 (1), 60-67 (2005).
  8. Dickson, K., Lehmann, C. Inflammatory response to different toxins in experimental sepsis models. International Journal of Molecular Sciences. 20 (18), 4341 (2019).
  9. Bassols, A., Costa, C., Eckersall, P. D., Osada, J., Sabrià, J., Tibau, J. The pig as an animal model for human pathologies: A proteomics perspective. PROTEOMICS - Clinical Applications. 8 (9-10), 715-731 (2014).
  10. Meurens, F., Summerfield, A., Nauwynck, H., Saif, L., Gerdts, V. The pig: a model for human infectious diseases. Trends in Microbiology. 20 (1), 50-57 (2012).
  11. Ali, J., Cody, J., Maldonado, Y., Ramakrishna, H. Near-infrared spectroscopy (NIRS) for cerebral and tissue oximetry: analysis of evolving applications. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 36, 2758-2766 (2022).
  12. . Getinge Deutschland GmbH PiCCO Technologie Erweitertes hämodynamisches Monitoring auf höchstem Niveau Available from: https://www.getinge.com/dam/hospital/documents/german/picco_haemodynamisches_monitoring_broschuere-de-non_us.pdf (2023)
  13. Breslow, M. J., Miller, C. F., Parker, S. D., Walman, A. T., Traystman, R. J. Effect of vasopressors on organ blood flow during endotoxin shock in pigs. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 252 (2), H291-H300 (1987).
  14. Fink, M. P., et al. Systemic and mesenteric O2 metabolism in endotoxic pigs: effect of ibuprofen and meclofenamate. Journal of Applied Physiology. 67 (5), 1950-1957 (1989).
  15. Lado-Abeal, J., et al. Lipopolysaccharide (LPS)-induced septic shock causes profound changes in myocardial energy metabolites in pigs. Metabolomics. 14 (10), 131 (2018).
  16. Park, I., et al. Characterization of fecal peritonitis-induced sepsis in a porcine model. The Journal of Surgical Research. 244, 492-501 (2019).
  17. Jarkovska, D., et al. Heart rate variability in porcine progressive peritonitis-induced sepsis. Frontiers in Physiology. 6, 412 (2015).
  18. Kohoutova, M., et al. Vagus nerve stimulation attenuates multiple organ dysfunction in resuscitated porcine progressive sepsis. Critical Care Medicine. 47 (6), e461-e469 (2019).
  19. Vintrych, P., et al. Modeling sepsis, with a special focus on large animal models of porcine peritonitis and bacteremia. Frontiers in Physiology. 13, 1094199 (2022).
  20. Stengl, M., et al. Reduced L-type calcium current in ventricular myocytes from pigs with hyperdynamic septic shock. Critical Care Medicine. 38 (2), 579-587 (2010).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

202

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved