Method Article
Простой и эффективный метод для преобразования Physcomitrella pantens Протопластов описано. Этот метод адаптирован из протоколов Physocmitrella Protonemal протопластов и Arabidopsis Мезофильных протопластов преобразования 1.
Простой и эффективный способ превратить Physcomitrella pantens протопластов описано. Этот метод адаптирован из протоколов для Physocmitrella protonemal протопласта и Arabidopsis трансформация протопластов мезофилла 1. Из-за его способности пройти эффективный митотической гомологичной рекомбинации, Physcomitrella patens стала важной модельной системой в последние годы 2. Эта способность позволяет высоких частот генов таргетинга 3-9, которые не видели в других растениях, таких как модель Arabidopsis. Чтобы воспользоваться всеми преимуществами этой системы, нам нужна эффективная и простой метод доставки ДНК в клетки мха. Наиболее распространенные способы, чтобы преобразовать эту мох бомбардировки частицами 10 и PEG-опосредованного поглощения ДНК 11. Хотя бомбардировки частицами может привести к высокой эффективности преобразования 12, ген пушки не доступны для многих лабораторий и протокол трудно стандартизировать. С другой стороны, ПЭГ опосредованной трансформации не требует специализированного оборудования, и может быть выполнена в любой лаборатории со стерильной капотом. Здесь мы покажем, простой и очень эффективный метод для трансформации протопластов мха. Этот метод может генерировать более 120 переходных трансформантов на микрограмм ДНК, что является улучшением по сравнению с наиболее эффективный протокол сообщалось ранее 13. Из-за своей простоты, эффективности и воспроизводимости, этот метод может быть применен к проектов, требующих большого числа трансформантов, а также для рутинных преобразований.
1. Создание Протопласты
2. Преобразование
3. Представитель Результаты:
Пример преобразования показан на рисунке 2. ДНК используется в этом примере была суперспиральной 7,8 кб плазмиды проведения кассету гигромицину устойчивостью. Количество протопластов покрытием был сокращен до 50% на фотографии. Фотографии были сделаны через две недели после растения были перенесены на выбор пластин. Эффективность трансформации не зависит от концентрации ДНК до 60 мкг. Более высокие концентрации ДНК наносят ущерб эффективности преобразования. Данные показали, что этот метод обеспечивает последовательное результат в широком диапазоне ДНК количествах. Этот метод может также генерировать стабильные трансформанты эффективно, как показано в таблице 1, мы можем получить около 4 стабильные трансформанты на микрограмм линеаризованной ДНК, что значительно выше, чем сообщалось ранее 14.
Мы также проверили влияние теплового шока на эффективность трансформации путем преобразования суперспиральной плазмиды проведения ген флуоресцентного белка в качестве маркера. Теплового шока было проведено через 10 минут после комнате температуры инкубации (в пределах Шаг 2.6) путем инкубирования смеси в 45 ° С водяной бане в течение 3 минут. Смесь выдерживают на водяной бане комнатной температуры сразу после теплового шока в течение 17 мин. Результаты были записаны 22 часов после преобразования. Отношения трансформантов с и без теплового шока, были очень похожи (~ 25%), но мы наблюдали негативное влияние теплового шока на жизнеспособность протопластов (данные не приведены).
Рисунок 1. Посмотреть протопластов в гемоцитометра. Разделе необходимо для протопластов подсчета обозначается красным квадратом. Обратите внимание на 16 квадратов, необходимых для подсчета протопластов (см. 1.11), изображение показывает количество протопластов 24 (240 000 клеток / мл).
Рисунок 2. Картинки из 18 дневных переходных трансформантов. Протопласты были трансформируется с указанным количеством суперспиральной плазмиды. : 15μg; B: 30μg; C: 60μg; D: 120μg.
Количество ДНК (мкг) | Эффективность (tranformants / мкг ДНК) |
15, суперспиральной плазмиды | 120 ± 24 |
30, суперспиральной плазмиды | 145 ± 54 |
60, суперспиральной плазмиды | 121 ± 60 |
120, суперспиральной плазмиды | 71 ± 38 |
60, линеаризованной плазмиды | 4 ± 1 |
Таблица 1. Преобразование эффективности в различных количествах ДНК.
Метод позволяет представленные здесь просты и последовательны ДНК превращение в Physcomitrella протопластов patens. Этот метод был первоначально разработан для Arabidopsis 1, но здесь мы продемонстрировали, что он хорошо работает с протопластов Physcomitrella patens, проще и различные растения. Поэтому этот метод может быть применен к другим видам растений с незначительными изменениями. Возможные изменения для оптимизации включают протопластов концентрация в ММГ, время инкубации в растворе ММГ и PEG / Ca. Мы решили использовать 60 мкг ДНК в наших рутинных экспериментов, так как количество трансформантов линейно возрастает с концентрацией ДНК до этого момента (табл. 1). Мы могли бы получить примерно 7000 трансформантов переходных или 200 стабильных трансформантов на одном 60 мкг ДНК трансформации, что позволяет для дальнейшего обследования и анализа большого числа растений.
Преобразовано протопластов может быть либо распространяются с жидкой средой покрытие или PRM-T. Хотя эффективность регенерации ниже при жидкой среде покрытия используется, мы выбираем этот метод, когда протопластов были преобразованы с суперспиральной плазмид. Как показали в таблице 1, преобразования сделано с суперспиральной плазмидной ДНК генерировать много трансформантов и, таким образом, мы можем получить большое количество растений с жидкой средой обшивки. Кроме того, распространение протопластов с жидкой средой покрытие позволяет ускорить регенерацию, что очень важно для экспериментов с участием переходных фенотипов, таких как RNAi сбить экспериментов 9,15. Кроме того отсутствие верхней агар позволяет легко изоляции завод по иммунной и RT-PCR 9,15.
Л. В. поддерживается NSF (IOS 1002837)
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Название реагента | Ингредиент | ||
PPNH 4 | 1,84 мМ KH 2 PO 4 3,4 мМ Ca (NO 3) 2 1 мМ MgSO 4 2,72 ммоль диаммония тартрат 54 мкМ FeSO 4 .7 H 2 O 9,93 мкМ H 3 BO 3 1,97 мкМ MnCl 2 0,4 H 2 O 0,23 мкМ CoCl 2 0,6 H 2 O 0,19 мкМ ZnSO 4. 7H 2 O 0,22 мкм CuSO 4. 5H 2 O 0,10 мкМ Na 2 MoO 4 · 2H 2 O 0,168 мкМ К. И. Добавить 0,7% агар на твердой среде. | ||
PRM-B | PPNH 4 с 6% маннита и 0,8% агара. Добавьте 10 мл 1М CaCl 2 до 1 л до заливки плиты. | ||
PRM-T | PPNH 4 с 6% маннита и 0,6% агара. Добавить 0,5 мл 1М CaCl 2 до 50 мл перед использованием. | ||
Покрытие жидкой среде | PPNH 4 с 8,5% маннита без агара. Добавить 0,5 мл 1М CaCl 2 до 50 мл перед использованием. | ||
2% Driselase | Добавить 4 г Driselase (Sigma D9515-25G) до 200 мл на 8% маннита. Движение на медленном огне 30 мин. при комнатной температуре, инкубировать 30 мин. при 4 ° С, и перемешать на медленном огне 5 мин. при комнатной температуре. Спиновые 2500 г в течение 10 мин, отбросить гранул. Фильтр с 0,22 мкм, и хранить замороженные в 10 мл аликвоты. Оттепель в ванну с водой комнатной температуры перед использованием. | ||
ММГ | 0,4 М маннитол 15 мМ MgCl 2 4 мМ MES (рН 5,7) | ||
PEG / Ca | 4 г PEG4000 3 мл H 2 O 2,5 мл 0,8 М маннитол 1 мл 1М CaCl 2 | ||
W5 | 154 мМ NaCl 125 мМ CaCl 2 5 мМ KCl 2 мМ MES (рН 5,7) |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены