Name: high fat diet feeding and high throughput triacylglyceride assay in drosophila melanogaster
Uploaded: 2017-09-13T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
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우리는 에리카 테일러가이 원고를 편집 하는 것을 감사 하 고 싶습니다. 이 작품은 부여는 건강의 국가 학회 (P01 HL098053, P01 AG033561 R01 HL054732) R.B., 박사 후 연구 보충 (R01 HL085481)와 친목 (AAUW)에서 S.B.D., 및 S.B.D.에는 미국 심장 협회에서 교부 금에 의해 투자 되었다 그리고 R.T.B.

1. 프로토콜을 먹이 HFD <img alt="Table 1" src="/files/ftp_upload/56029/56029table1.jpg" /> 표 1. 비행 음식 레시피. 
이 표에서 우리의 제어 음식을 준비 하는 데 사용 하는 다른 재료를 요약 합니다. 일단, 음식의 10 mL 작은 유리병에 부 어 냉각 이며, 장기 저장을 위한 4 ° C에 저장.
<ol><li>HFD 준비 <ol><li>높은 지방 식품의 1kg를 만들기 위해 미리 만든 정상 비행 음식의 700 g의 무게 (표 1 참조) 및 분석 균형을 사용 하 여 두 개의 별도 용기에 코코넛 오일의 300 g.</li>
		<li>는 내용을 완전히 용 해 될 때까지 각 컨테이너는 전자 레인지에서 개별적으로 열. 비행 음식 컨테이너에 코코넛 오일 붓으십시오. 기름은 비행 거리 음식으로 잘 혼합 때까지 털 다를 사용 하 여 저 어. 
		참고: 아무 음식이 나 기름 덩어리는 표시 되어야 합니다. 날 식품은 전자 레인지에 때, 음식을 혼합 끓는 방지를 1 분 간격으로 중지.</li>
		<li>다시 높은 지방 음식 무게. 총 중량 1kg (음식 + 코코넛 오일의 300 g 700 g) 미만의 경우 추가 물 (약 10ml) 난방 중 증발에 대 한 보상 하 고 다시을 무게 1 kg.</li>
		<li>부 어 잘 혼합된 약 10 mL 유리병 (유리병 볼륨의 약 25%) 당 높은 지방 음식. 다음으로, 투박한 파리를 방지 하기 위해 커버 &#39; 오염. 실 온에서 1 시간을 기다린 다음 4 주 스토리지에 대 한 4 ° C에 튜브까지 전송. 
		참고: 일반 음식 (NF) 제어 음식으로 사용 됩니다. 또한 유리병 당 NF의 10 mL (유리병 볼륨의 약 25%)를 붓는 다. HFD 음식에 대 한 NF의 30%를 코코넛 오일 바꿉니다. 제어 및 실험 조건, 파리 NF와 HFD (10 mL 유리병 당 음식의)의 동일한 금액을 부여 했다.</li>
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56029/56029fig1.jpg" /> 그림 1 . 초파리 먹이 HFD. 
체계는 (와 코코넛 오일의 추가) 제어 식품 (코코넛 오일-NF의 추가 없이 일반 다이어트) 또는 HFD 파리에 대 한 다른 먹이 단계를 보여 줍니다. 전체 과정 초기 성인 파리 컬렉션 후 10 일 소요 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56029/56029fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<ol start="2"> <li>HFD D. melanogaster의 먹이 참고:이 프로토콜 제어 음식과 HFD 먹이 어떤 비행 라인와 호환 되는 절차를 포함. 제어 및 실험 파리 같은 금액 음식 NF (HFD)를 포함 하는 튜브에 배치 됩니다.
	<ol><li>파리 anesthetize를 사용 하 여 CO 2. 
		참고: 새로운 일에 대 한 읽기를 참조 하십시오 모금에 D. melanogaster 처리에 대 한 21.</li>
		<li>0-5를 수집 튜브 및 (튀기)에 의해 전송에서 하루 오래 된 파리 NF (실 온에서 이전 예 열)를 포함 하는 새로운 튜브에 파리. 21 5 추가 일에 대 한 파리 시대 하자 ° c.</li>
		<li>5 일의 끝에, 4에서 HFD와 NF를 포함 된 튜브에 밖으로 ° c. 
		참고: 찬 온도, 파리 생활 스트레스 수로 튜브를 사용 하기 전에 따뜻하게 실 온에서 30 분 동안 앉아 보자.</li>
		<li>물티슈를 사용 하 여, 깨끗 하 고 튜브의 측면에서 과잉 액체를 제거.</li>
		<li>에 대 한 필터 종이의 작은 조각을 삽입 1 cm x 3 cm, 어떤 과잉 액체를 흡수 하 고 지방 음식으로. 
		참고:이 단계는 파리 HFD 음식에 집착 하는 것을 방지 하는 것이 중요.</li>
		<li>그런 다음 전송 높은 지방 음식에 파리 (튀기). 5 일 동안 가로 그들 측에, (서 안) 21-22 ° C에서 튜브를 하다. 
		참고: 방지이 부분적으로 높은 지방 음식, 막대기 음식 및 다이를 파리를 일으키는 녹아 수로 높은 온도.</li>
		<li>후 5 일, (튀기)에 의해 전송 그들의 용기를 30 분 동안 비어 있도록 음식 없이 새로운 튜브에 NF를 HFD 파리. 다음으로, 무게는 파리를 진행. 
		참고:이 HFD 먹이 프로토콜에에서 중요 한 단계 중 하나는 잘 혼합된 HFD, 무료로 비행 음식이 나 압축 된 오일의 어떤 덩어리를 준비 하는. 균질 혼합 및 HFD 45-30 ° C에 냉각 하는 것이 좋습니다, 튜브에 붓는 고 4 ° C. 적절 한 나이에 음식을 저장 하기 전에 제어 및 실험 파리의 정합은 제어 영양 및 환경 조건 사전 뿐만 아니라 중요 한 HFD 먹이 하. 단계에서 먹이, 제어 및 실험 파리 제공 되어야 합니다 NF와 HFD의 동일한 금액. 결코 밀된 튜브 또는 병 (transgenerational 효과 피하기 위해)에서 파리를 수집 합니다. 항상 NF와 HFD 식이 제한이 나 다른 crowding 효과 피하기 위해 먹이 동안 유리병 당 최대 25 파리를 넣어. HFD는 30%의 코코넛 오일으로 구성 되어, 따라서 22 ° C의 위 온도 일으키는 기름진 음식에 다 막대기 파리 HFD 녹아 부분적으로 수 있습니다. HFD는에 파리를 놓기 전에 어떤 잔여 기름 제거 하는 음식에서 어떤 초과 액체를 흡수 하는 필터 종이 삽입 튜브 청소. HFD에 파리의 인큐베이션 기간 동안 튜브 파리에 대 한 지방 없는 수평 표면을 제공 하기 위해 그들의 측면에 누워 있다.</li>
	</ol></li> <li>파리 무게 <ol><li>각 유전자 형 및 성별 테스트를 사용 하 여 매우 민감한 규모 미리 레이블, 빈 1.7 mL 튜브 무게를 기록 하.</li>
		<li>비행 마 취 또는 CO 2를 사용 하 여 anesthetize의 동일한 유전자 형, 성별, 36 파리 수집 및 1.7 mL 튜브 무게 중 하나로 브러시로 상태를 먹이.</li>
		<li>같은 매우 민감한 규모와 파리를 포함 하는 튜브 무게.</li>
		<li>결정이 수식에 따라 평균 비행 무게: 
		<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/56029/56029eq1.jpg" /> 참고:이 프로토콜에서 파리의 수는 36.</li>
		<li>플래시 동결 1.7 mL 튜브 2 분 수집에 대 한 액체 질소에 폭락에 의해 파리를 포함 하 고 상자에 튜브를 넣어. 그런 다음 전송 상자-80 ° C (바람직 온도)를 스토리지에 대 한 태그 분석 결과 함께 사용 될 때까지. 
		주의: 매우 낮은 온도에서 액체 질소가 이다. 적절 한 개인 보호 장비를 사용 하십시오.</li>
	</ol></li></ol> 2. 태그 분석 결과 <ol><li>태그 표준 농도의 준비 <ol><li>PBT의 500 mL를 준비 (PBS 1 X 0.05% 트리톤).</li>
		<li>사용 0.5 mL 튜브와 태그 솔루션 (자료 테이블), 준비의 공백 (PBT만) 100 µ L (2 µ g / µ L, 1 µ g / µ L, 0.5 µ g / µ L, 0.25 µ µ g/L는; 6 표준 태그 농도의 100 µ L 0.125 µ µ g/l는; 0.0625 µ µ g/L는)는 PBT와.</li>
		<li>얼음에 튜브를 놓고 파리를 연 삭 진행.</li>
	</ol></li> <li>파리를 연 삭 <ol><li>-80 ° C (1.3 단계)에서 냉동된 파리를 꺼내. 얼음에 파리를 포함 하는 튜브를 전송</li>
		<li>첫째, 96-잘 볼 디스펜서로 분쇄 볼 2mm 금속, 작은 붓을 사용 하 여 추가 공 제거.</li>
		금속 알갱이 접시에 직접 전송 공 디스펜서와 플립 위에 거꾸로 <li>장소 96 잘 연마 플레이트. 잘 당 한 공 이어야 한다.</li>
		<li>PBT의 600 µ L 96 잘 연마 플레이트의 각 행에 추가 멀티 채널 피 펫을 사용 하 여.</li>
		<li>집게, 추가 3 당 잘 난다. 파리 각 행/96-잘이 격판덮개의 우물에서의 유전자 형, 성별 및 식품 상태를 나타냅니다.</li>
		<li>단단히 모자가 96 잘 접시에 놓습니다. 테이프는 누설을 상단에 배치 될 수 있습니다.</li>
		<li>제대로 연 삭 기계 연 삭 96 잘 접시를 놓습니다. 최고 속도와 프레스 기계를 설정 &#34; 실행 &#34;을 3 분에 대 한 파리</li>
		<li>후 3 분, 연 삭을 중지 하 고 격판덮개 원심 분리 진행: centrifu4000 x g, 4 ° c.에서 15 분 동안 ge 원심, 후 관리는 상쾌한 펠 릿 혼합 하지 않도록 신중 하 게 연 삭 접시.</li>
	</ol></li> <li>샘플 로드 및 태그 콘텐츠 결정 <ol><li>새로운 분 광 광도 계 96 잘 접시를 가져가 라. 접시의 각 행에 태그 시 약의 200 µ L 로드 다중 채널 피 펫을 사용 하 여.</li>
		<li>빈을 만들려면 첫 번째 행의 첫 번째 우물에 PBT의 부하 20 µ L. 아래로 pipetting으로 혼합. 거품 형성 방지.</li>
		<li>나머지에 (2.1.2 단계)에서 각 표준 희석의 부하 20 µ L 웰 스의 첫 번째 행과 아래로 pipetting으로 믹스. 거품 형성 방지.</li>
		<li>상쾌한의 20 µ L을 연 삭 플레이트의 각 행에서 분 광 광도 계 96 잘 접시에 해당 하는 행 전송 다중 채널 피 펫을 사용 하 여. 여기저기 잘 혼합 플라스틱. 거품 형성 방지.</li>
		<li>다음, 가스 투과성 호 96 잘 접시 위에 배치.</li>
		<li>품 어 10 분 동안 37 ° C에서 접시 
		참고: 우물에 거품 경우 원심에서 모든 거품을 제거 하려면 2000 x g 2 분 접시. 거품의 존재는 흡 광도 읽기에 방해가 됩니다.</li>
		<li>읽기 550 플레이트의 각의 흡 광도 nm 호환 microplate 리더를 사용 하 여. 다음, 표준 곡선을 추적 하 고 알 수 없는 샘플의 농도 [µ g / µ L] 결정.</li>
		<li>태그 콘텐츠 당 평균 비행 중량의 양을 결정 하는 다음 수식을 사용 하 여: 
		<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/56029/56029eq2.jpg" /> 참고:이 프로토콜 3 파리의 PBT 600 µ L에 다진 했다; 결과, 비행 당 평균 볼륨 200 µ L.</li>
	</ol></li> <li>Bradford 분석 실험 그리고 단백질 콘텐츠 태그 콘텐츠의 정규화 <ol><li>7을 준비 하는 것은 소 혈 청 알 부 민 (BSA) 표준 희석의 100 µ L (75 µ g/mL, 100 µ g/mL, 150 µ g/mL, 200 µ g/mL; 250 µ g/mL; 500 µ g/mL; 1000 µ g/mL)는 PBT와.</li>
		<li>새 96 잘 접시 하 고 접시의 각 행에 1 X Bradford 시의 200 µ L 로드.</li>
		<li>에 첫 번째 행의 첫 번째 잘 만들 빈 PBT의 10 µ L를 추가. 아래로 pipetting으로 혼합. 거품 형성 방지.</li>
		<li>나머지에 각 표준 희석의 추가 10 µ L 웰 스의 첫 번째 행과 아래로 pipetting으로 믹스. 거품 형성 방지.</li>
		<li>96 잘 접시에 해당 하는 행에 연마 플레이트의 각 행에서의 표면에 뜨는 10 µ L을 전송 다중 채널 피 펫을 사용 하 여. 여기저기 잘 혼합 플라스틱. 거품 형성 방지.</li>
		<li>96 잘 접시 위에 가스 투과성 호 장소.</li>
		<li>품 5 분 동안 실내 온도에 격판덮개. 우물에 거품 경우 원심에서 그들을 제거 하려면 2000 x g 2 분 접시. 
		참고: 거품의 존재는 흡 광도 읽기에 방해가 됩니다.</li>
		<li>읽기 빈의 흡 광도, 표준, 595에서 알 수 없는 샘플을 분 광 광도 계를 사용 하 여 nm. 표준 곡선을 사용 하 여 각 행에 있는 샘플의 농도 [µ g / µ L] 결정.</li>
		<li>정상화 단백질 수준 다음 수식을 사용 하 여 콘텐츠 태그: 
		<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/56029/56029eq3.jpg" /></li></ol></li></ol>

<ol>
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저자는 공개 없다.

생쥐에서 비만 유도 개월19,20걸릴 수 있습니다. 파리에서 프로토콜을 먹이이 HFD 과잉 지방 축적의 문제에 일의 또는 더 적은, 18 h ( 그림 2참조) 후 지방 축적 증가 일으키는 유도 수 있습니다. HFD 설명 프로토콜 먹이 포도 당 콘텐츠 12 증가 하 고 Bmm lipase와 PGC-1 식24감소. 이것은 지방 질 및 포도 당 내용25,26 모두 증가 Bmm 식24빠른 감소 되도록 성인 초파리 의 금식과 달리. 또한, Bmm 또는 PGC-1 레벨을 올리는 HFD 유도 비만14,24보호 합니다. 30 %HFD 사용 되었습니다이 프로토콜에 3%, 7% 또는 15% 지방 질으로 파리를 먹이 복용량-의존에 유도 된 비만 다이어트 하는 동안 패션12, HFD (그림 3) 먹이의 기간을 증가지 않습니다. 우리는 또한 그 먹이의 코코넛 오일, 즉, 14 %lauric 산 또는 5 %myristic 산의 주요 구성 요소는 단일 지방산, 원인 크게 상승 된 지방 축적12을 발견.
감소 된 수명27 HFD 처방에이 파리와 가속된 변화 응답 연관 포유류28, 관찰 하지만 &#62; 파리의 80%는 지난 20 일 HFD27에 생존. 지방 축적의 급속 한 유도 제어 지질 보존된 세포질과 분자 과정에 의해 중재 및 포도 당 대사에 많은 비만 관련 된 당뇨병 또는 lipotoxic 심근10, 같은 유리 하다 12,,1314,,1516. 신진 대사 불균형과 관련된 심장 장애의 결과에 주요 조사 결과 인간에서 비교 변환 연구 하면 가능성이 있습니다.
프로토콜을 먹이 HFD D. melanogaster비슷한 다이어트를 공유할 다른 초파리 종과 곤충 모델 사용에 대 한 호환 됩니다. 프로토콜을 먹이이 HFD C. 선 충 또는 또한 다른 '정상적인' 식품 미디어를 요구 하는 다른 곤충과 같은 유기 체에 대 한 적절 하 게 적응 될 수 있었다. HFD는 적합 하지 않다 30%; 높은 온도 요구 하는 실험에 사용 그러나, 코코넛 기름이 나 단일 지방산의 농도 감소 적절 한 대안12수 있습니다.
이 태그 프로토콜은 PBS를 기반, 비 독성 수 있는 버퍼를 쉽게 처리와 연기 후드 없이 실험 달리 이전 지질 추출 및 정량화15 (메탄올/클로 프롬 또는 에테르 diethyl) 유기 용 매를 사용 , 29 , 30.이 버퍼의 또 다른 이점은 단백질 콘텐츠 같은 초기 homogenate, 결정은 지방 작은 조직 샘플에서 오르간을 공부 하기 쉽게 달성 및 제공 새로운 기회에 따라 태그 레벨을 정상화 수 이다 organismal 대사 항상성에 간 이야기. 또한, 연 삭, 후 얻은 동일한 초기 비행 homogenate 병렬 포도 당을 glycogen 분석 실험, 동일한 생물학 견본에서 지질과 포도 당 대사에 변화의 연구를 허용 하도록 사용할 수 있습니다. 이 태그 프로토콜 덜 힘 드는 또는 이전 프로토콜15,,2930보다 시간이 많이 걸리는 이며 오히려 높은 처리량, 100 샘플 가까이 빠른 테스트를 위해 허용 하는 96-잘 형식을 사용 하 여 내 한 시간. 이 프로토콜도 계량 지방 콘텐츠 높은 설탕 다이어트13,31, 식이 제한 및 기아를 포함 하 여 다른 식이 조건 뿐만 아니라 노화 연구 나이 관련 된 변화를 이해 하 게 사용 될 수 있습니다. 지방 대사.
비만, 대사 증후군과 관련된 pathologies 인간의 건강1,2에 비참 한 결과와 최고치에 있습니다. 결합 된 HFD 프로토콜 및 높은 처리량 분석 결과 제공 모델 생물, 초파리, 등을 사용 하 여 비만 유전적 요인에 대 한 화면을 빠르게 유도 하는 독특한 플랫폼 태그 또는 천연 및 합성 화합물, 더 나은 이해 불균형은 대사 궁극적으로이 크게 새로운 치료법이 나 대사 질환에 대 한 치료약을 개발 하기 위한 과학적 발견의 발전에 기여할 수 있습니다.

우리는 비만, 및 그것의 관련된 경제적 부담이는 세계적인 문제1시간 에입니다. 매 3 미국인 중 2 개는 체중 또는 비만 관련된 심장 병 리, 성인 인구2내에서 죽음의 주요 원인으로. 새로운 효율적인 방법은 적절 하 게 구성 요소 유전 및 분자 모형 유기 체를 사용 하 여 변화 증후군의 규칙에 연루 조사 필요 합니다. 이러한 이유로, 우리 과일 파리 초파리 모델 생쥐와 인간3,4,,56을 포함 한 포유류와 함께 가장 기본적인 생물 학적 프로세스를 공유 하기 때문에 선택 합니다. 초파리의 게놈은 높게 진화 하는 동안 보존 하지만 전반적으로 훨씬 더 작은 적은 유전자 복제와 대사 복잡성,4 많은 인간 질병 내포 하는 근본적인 메커니즘을 이해 하기에 적합 , 7 , 8. 또한, 특성 프로세스 지방 조직, 창 자에 의해 실시 하 고 췌 비행에 포도 당 및 지질 물질 대사에, 예를 들어 인간9, 와 유사한 규제 기능을 중재 10,11. 또한, 비만, 인슐린 저항 및 당뇨병 인간에서의 제어에 관련 된 기본적인 분자 경로 초파리 melanogaster12,,1314 보존 기능 , 15 , 16. 같은 더 높은 유기 체 초파리 는 포유류 심장3,17의 유사한 과정에 의해 개발 하는 동안 형성 되는 뛰는 심장. 따라서, 안정적인 HFD 프로토콜 및 높은 처리량 태그 분석 결과, 초파리의 유전 도구 상자를 사용 하 여 효율적인 심사 목적에 맞게 먹이의 개발 연구 하 고 근본적인 유전 기초를 이해 하는 중요 한 수단을 제공 기본 복잡 한 대사 질환입니다.
HFD 음식 자체 포화 지방산 대사 증후군18와 관련 된 것으로 알려진의 주로 구성 되는 코코넛 오일 보충 표준 실험실 비행 음식에서 이루어집니다. 귀하는 초파리 에서 프로토콜 먹이 되는 것을 효과적으로 그리고 reproducibly 우리의 최적화 HFD organismal 지방 함량의 문제에 증가 유도 비만 모델 포유류, 설치류, 개월19,20걸릴 수 있습니다, 일12,14. 이 프로토콜, 높은 처리량 태그 분석 결과와 함께에서 유전적 요인, 환경 영향과 새로운 변조기의 뚱뚱한 물질 대사를 마약 후보자의 효과 대 한 효율적인 대량 검사를 수 있습니다. 이러한 프로토콜은 가능성이 결과 이해 및 비만 비만 관련 된 인간의 병 리 전투 관련.
먹이 프로토콜 다목적 이며 단일 포화 또는 불포화 지방산의 신진 대사와 기능 효과 연구에 적용할 수 있습니다. 이 높은 처리량 태그 분석 결과 사용 하 여 D. melanogaster에 국한 되지 않습니다 하지만 작은 모형 유기 체 표 피와 거친 세포 외 매트릭스 (예를 들어, 다른 초파리 종, C. 선 충의 다양 한 적응 수 있습니다. 다른 신흥 무척 추 동물 모형 유기 체) 개발, 성인 또는 변화 질병의 단계의 모든 단계에서 다른 환경, 유전적 또는 생리 적인 조건 하에서 지방 콘텐츠를 측정 하. 태그 분석 결과 무료 지방산, 글리세롤, 글리세롤 3 인산 염 그리고 마지막으로 H2O2 와 4-aminoantipyrine (4-AAP) 3, 5-반응으로 태그 저하 효소 반응의 일련의 색채 측정에 기반 dichloro-2-hydroxybenzene 된 (3, 5 DHBS) 96-잘 분 광 광도 계를 사용 하 여 측정 된 빨간 색된 제품을 생산 하

<table><tbody><tr><td>Talboys Ball dropper/bead Dispenser</td><td>Talboys</td><td>#: 930150</td><td></td></tr><tr><td>Talboys High Throughput Homogenizer</td><td>Talboys</td><td>#: 930145</td><td></td></tr><tr><td>Grinding Balls, Stainless Steel&amp;nbsp;</td><td>OPS Diagnostics, LLC</td><td># GBSS 156-5000-01</td><td>5000 balls</td></tr><tr><td>Masterblock 96 Well deep Microplates</td><td>Greiner Bio-One</td><td># T-3058-1</td><td>case of 80 plates</td></tr><tr><td>Greiner&amp;nbsp; 96 well microplate flat bottom</td><td>Sigma Aldrich</td><td># M4436</td><td>40 plates</td></tr><tr><td>Greiner CapMat for sealing multiwell plates</td><td>Sigma Aldrich</td><td># C3606</td><td>50 sealing plates</td></tr><tr><td>Reagent Reservoirs&amp;nbsp;</td><td>Thomas Scientific</td><td># 1192T71</td><td>12/PK</td></tr><tr><td>Thermo Scientific Finnpipette 4661040</td><td>Thermo Scientific</td><td># 4661040</td><td>1-10 ul multipipette</td></tr><tr><td>Thermo Scientific Finnpipette 4661070</td><td>Thermo Scientific</td><td># 4661070</td><td>30-300ul multipipette</td></tr><tr><td>Thermo Scientific Finnpipette 4661020</td><td>Thermo Scientific</td><td>#4661020</td><td>10-100ul multipipette</td></tr><tr><td>Multichannel tips</td><td>Denville Scientific Inc</td><td># P3131-S</td><td>for 10 uL pipette</td></tr><tr><td>Multichannel tips</td><td>Denville Scientific Inc</td><td># P3133-S</td><td>for 200 uL pipette</td></tr><tr><td>Multichannel tips</td><td>Denville Scientific Inc</td><td>#P1125</td><td>for 100 uL pipette</td></tr><tr><td>Forceps&amp;nbsp;</td><td>Roboz Surgical</td><td># 5 Dumonts</td><td>Super fine forceps</td></tr><tr><td>Mettler Toledo Excellence XS Analytical Balance Mfr# XS64</td><td>Cole-Parmer scientific experts</td><td># EW-11333-00</td><td></td></tr><tr><td>Metler Toledo Excellence XS Toploading Balance</td><td>Cole-Parmer scientific experts</td><td># EW-11333-49</td><td></td></tr><tr><td>96-Well microplate Centrifuge</td><td>Hettich Zentrifugen</td><td># Rotina 420R</td><td></td></tr><tr><td>Microplate Reader</td><td>Molecular devices</td><td># SpectraMax 190</td><td></td></tr><tr><td>Lab-Line Bench Top Orbit Environ Shaker Incubator</td><td>Biostad</td><td># 3527</td><td></td></tr><tr><td>Infinity Triglycerides reagent</td><td>Thermo Scientific</td><td># TR22421</td><td></td></tr><tr><td>Triglyceride Standard</td><td>Stanbio</td><td>#2103 - 030</td><td></td></tr><tr><td>Quick Start Bradford Protein Assay</td><td>Bio-RAD</td><td># 500-0205</td><td>1x dye Reagent</td></tr><tr><td>Coconut oil</td><td>Nutiva</td><td># 692752200014</td><td>15 0z jar</td></tr><tr><td>PBS 10X</td><td>Thermo Scientific</td><td># AM9625</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td># 9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>Gas-permeable Foil</td><td>Macherey-Nagel</td><td># 740675</td><td>50 pieces</td></tr><tr><td>filter Paper</td><td>VWR</td><td># 28317-241</td><td>Pack of 100</td></tr><tr><td>Drosophila vials</td><td>Genesee Scientific</td><td>Cat #: 32-116SB</td><td></td></tr><tr><td>Quick Start Bovine Serum Albumin Standard</td><td>Bio-Rad</td><td># 5000206</td><td></td></tr><tr><td>FlyNap Anesthetic</td><td>Carolina</td><td># 173025</td><td>100 mL</td></tr><tr><td>Kimwipes Low-Lint</td><td>Uline</td><td># S-8115</td><td>1-Ply, 4.4 x 8.4&quot;</td></tr></tbody></table>

high fat diet feeding and high throughput triacylglyceride assay in drosophila melanogaster

심장 질환은 인간의 죽음은 전세계의 번호 하나 원인이 다. 수많은 연구 비만 심장 기능 상실 사이 강한 연결 인간, 하지만 더 많은 도구 및 연구 노력 하는 데 필요한 더 관련 된 메커니즘을 명료 하 게. 세기 동안, 초파리 의 유전자 매우 온순한 모델이 되었습니다 핵심 유전자 및 분자 경로 매우 종에 걸쳐 보존 될 입증의 발견에. 많은 생물학 과정 및 질병 메커니즘 기능 개발 (예를 들어, 몸 계획, 심장), 암, 신경 질환 등 즉석에서 보존 하 고. 최근, 비만 심장 질환 모형 유기 체에서와 같은 보조 병 리의 연구는 인간의 신진 대사 증후군에 관련 된 주요 레 귤 레이 터의 식별에 매우 중요 한 역할을 했다.
여기, 우리는 비만, 즉, 과도 한 지방 축적을 유발 하 고 태그 축적의 형태로 지방 콘텐츠를 모니터링 하는 효율적인 프로토콜을 개발 하는 효율적인 도구로이 모델 유기 체를 사용 하 여 제안 합니다. 높은 보존 뿐만 아니라, 하지만 덜 복잡 한 게놈 비행 또한 빠른 실험, 비용 효율성과 결합에 대 한 짧은 수명이 있다. 높은 지방 다이어트 (HFD) 비만 지방 콘텐츠에 높은 재현할 것을 목표로 관련된 증가 측정 하기 위한 높은 처리량 triacylglyceride (태그) 분석 결과 유도 하기 위해 초파리 에서 먹이 기를 위한 상세한 프로토콜을 제공 하는이 종이 대규모 유전자 또는 화학 심사에 대 한 효율적인. 효율적으로 규제 메커니즘 비만에 참여 조사 뿐 아니라 신약 개발에 약물의 효과의 빠른 테스트를 위해 발견에 대 한 표준화 된 플랫폼을 제공 하는 새로운 기회를 제공 하는 이러한 프로토콜 또는 비만, 당뇨병 및 대사 관련된 질환의 예방.

D. melanogaster, 다른 종족과 경우는 성적인이 형태 성 남성 및 여성22사이. 그것은 잘 알려진 여성은 남성22보다 그들의 인체에 더 많은 지방, 더 큰입니다. 우리의 프로토콜의 효율성을 테스트 하려면 우리 차이 태그 콘텐츠 남성과 여성 표준 실험실 wildtype (w1118)의 파리 확인 하려면 태그 분석을 수행 합니다. 데이터는 여성의 그들의 남성 대조 물 (그림 2A, B) 보다 더 몸 전체 지방을 보여줍니다. 데이터는 또한 분석 결과 안정, 시간이 지남에 태그 정량화에 아무 변화를 보여주었다 (부 화 후 최대 50 분)와 아무 생물학 견본 크기 (3 또는 5 파리)에 따라.
HFD 소비 인간의 비만 마우스19,,2023되도록 표시 되었습니다. 우리의 먹이 프로토콜의 효능을 테스트 하기 위해 우리는 우리의 HFD와 여성 파리를 먹이 하는 제어 태그 분석 수행. 우리는 초파리 에서 HFD의 소비 증가 지방 함유량 (그림 3A-C) 시간이 지남에 따라 점차적으로 축적 원인 발견. 또 다른 중요 한 후 (그림 3C), 우리이 파리에서 지방 함유량의 상당한 증가 일으킬 수 있었다 먹이 HFD의만 18 h는을 찾는. 이러한 연구 결과이 유전자 모델 시스템 HFD 유도 비만의 소설 레 귤 레이 터를 찾기로 가속된 연구를 위한 이상적인 도구는 것이 좋습니다.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56029/56029fig2.jpg"> 
그림 2 . 남성과 여성의 파리에 분석 실험 태그. 2 주 오래 된 정상적인 식단에 파리 수집, 성별 (남성과 여성)로 그룹화, 무게 되었고 분석 태그에 대 한 (우물 당 3 또는 5 파리)을 지상. 태그 분석은이 문서에 설명 된 절차에 따라 수행 했다. 550에 각 샘플의 흡 광도 nm 읽 었는 데 다른 시간-점 (0 분 5 분, 20 분, 50 분) 최종 변동 태그 정량화에 결정 하에 의의 시간, 지방 콘텐츠 변화 다른 인구 크기 (3과 5 파리)에 위로 w1118 파리, 그리고 남성과 여성의 태그 내용 사이 다름. 결과 나타났다 여성 그들의 남성 대조 물 (A-B) 보다 더 많은 지방을 축적, 태그 측정 37 ° C (A-B)에서 반응 부 화 후 최대 50 분까지를 변동 하지 않습니다. 또한, 평균 태그 레벨 3 또는 5 파리 (A-B)를 사용 하 여 태그 분석 실험 사이 변경 되지 않습니다. 데이터 평균 ± SEM. 통계로 제공 됩니다: 큰 차이. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56029/56029fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56029/56029fig3.jpg"> 
그림 3 . 지방 축적에 HFD의 효과. 
A-b: 2 주 오래 된 여성 파리 5 일 동안 일반 또는 HFD 제기 모였다 고 태그 분석 지방의 수준을 결정 하 수행 했다. 태그 콘텐츠는 무게 (A) 또는 단백질 수준 (B) 정규화 되었다. 데이터는 HFD 소비 증가 지방 콘텐츠를 정규화의 두 방법으로 리드 했다. C: 2 주 오래 된 여성 파리 일반/제어 음식 (NF)와 18 h, 1 일 또는 2 일 HFD에 태그 내용에 대 한 분석입니다. 결과는 HFD에 노출의 2 일 18h에서 태그 레벨의 중요 하 고 진보적인 증가 보여. 데이터는 평균 ± SEM. 통계로 제시: 학생 t-검정. * p &#60; 0.05, * * p &#60; 0.01, * * * p &#60; 0.001. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56029/56029fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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High Fat Diet Feeding and High Throughput Triacylglyceride Assay in Drosophila Melanogaster

높은 지방 다이어트 먹이 초파리 Melanogaster 의 높은 처리량 Triacylglyceride 분석 결과

이것은 높은 지방 다이어트를 먹이 초파리, 이해 기본적인 분자 메커니즘 lipotoxicity에 연루에 대 한 모델에서에서 비만 유발 하는 프로토콜 이다. 초파리 와 다양 한 식이, 환경, 유전적 또는 생리 적인 조건 하에서 (곤충) 잠재적으로 다른 모델에 지방 축적을 측정 하기 위한 높은 처리량 triacylglyceride 분석 결과를 제공 합니다.

Heart disease is the number one cause of human death worldwide. Numerous studies have shown strong connections between obesity and cardiac malfunction in ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Genetics

High Fat Diet Feeding and High Throughput Triacylglyceride Assay in Drosophila Melanogaster

11.2K 조회수.  Sanford Burnham Prebys Medical Discovery Institute. 이것은 높은 지방 다이어트를 먹이 초파리, 이해 기본적인 분자 메커니즘 lipotoxicity에 연루에 대 한 모델에서에서 비만 유발 하는 프로토콜 이다. 초파리 와 다양 한 식이, 환경, 유전적 또는 생리 적인 조건 하에서 (곤충) 잠재적으로 다른 모델에 지방 축적을 측정 하기 위한 높은 처리량 triacylglyceride 분석 결과를 제공 합니다.

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The TreadWheel: Interval Training Protocol for Gently Induced Exercise in Drosophila melanogaster

The incidence of complex metabolic diseases has increased as a result of a widespread transition towards lifestyles of increased caloric intake and lowered activity levels. These multifactorial diseases arise from a combination of genetic, environmental, and behavioral factors. One such complex disease is Metabolic Syndrome (MetS), which is a cluster of metabolic disorders, including hypertension, hyperglycemia, and abdominal obesity. Exercise and dietary intervention are the primary treatments recommended by doctors to mitigate obesity and its subsequent metabolic diseases. Exercise intervention, in particular aerobic interval training, stimulates favorable changes in the common risk factors for Type 2 Diabetes Mellitus (T2DM), Cardiovascular Disease (CVD), and other conditions. With the influx of evidence describing the therapeutic effect exercise has on metabolic health, establishing a system that models exercise in a controlled setting provides a valuable tool for assessing the effects of exercise in an experimental context. Drosophila melanogaster is a great tool for investigating the physiological and molecular changes that result from exercise intervention. The flies have short lifespans and similar mechanisms of metabolizing nutrients when compared to humans. To induce exercise in Drosophila, we developed a machine called the TreadWheel, which utilizes the fly&#39;s innate, negative geotaxis tendency to gently induce climbing. This enables researchers to perform experiments on large cohorts of genetically diverse flies to better understand the genotype-by-environment interactions underlying the effects of exercise on metabolic health.

The TreadWheel: Interval Training Protocol for Gently Induced Exercise in Drosophila melanogaster

The TreadWheel uses rotational motion to gently induce exercise in adult Drosophila melanogaster by exploiting flies&#39; innate, negative geotaxis. It allows for analysis of the interactions between exercise and factors, such as genotype, sex, and diet, and their effect on physiological and molecular assays to assess metabolic health.

초파리 melanogaster 운동을 부드럽게 유도 위한 TreadWheel: 간격 훈련 프로토콜

The incidence of complex metabolic diseases has increased as a result of a widespread transition towards lifestyles of increased caloric intake and ...

연구

유전학

Combining Quantitative Food-intake Assays and Forcibly Activating Neurons to Study Appetite in Drosophila

Food consumption is under the tight control of the brain, which integrates the physiological status, palatability, and nutritional contents of the food, and issues commands to start or stop feeding. Deciphering the processes underlying the decision-making of timely and moderate feeding carries major implications in our understanding of physiological and psychological disorders related to feeding control. Simple, quantitative, and robust methods are required to measure the food ingestion of animals after experimental manipulation, such as forcibly increasing the activities of certain target neurons. Here, we introduced dye-labeling-based feeding assays to facilitate the neurogenetic study of feeding control in adult fruit flies. We review available feeding assays, and then describe our methods step-by-step from setup to analysis, which combine thermogenetic and optogenetic manipulation of neurons controlling feeding motivation with dye-labeled food intake assay. We also discuss the advantages and limitations of our methods, compared with other feeding assays, to help readers choose an appropriate assay.

Combining Quantitative Food-intake Assays and Forcibly Activating Neurons to Study Appetite in Drosophila

Quantitative food-intake assays with dyed food provide a robust and high-throughput means to evaluate feeding motivation. Combining the food consumption assay with thermogenetic and optogenetic screens is a powerful approach to investigate the neural circuits underlying appetite in adult Drosophila melanogaster.

양이 많은 음식 섭취 량 분석을 결합 하 고 강제로 초파리 에서 식욕을 공부 하는 뉴런을 활성화

Food consumption is under the tight control of the brain, which integrates the physiological status, palatability, and nutritional contents of the food, ...

행동분석학

A High Throughput Microplate Feeder Assay for Quantification of Consumption in Drosophila

Quantifying food intake in Drosophila is used to study the genetic and physiological underpinnings of consumption-associated traits, their environmental factors, and the toxicological and pharmacological effects of numerous substances. Few methods currently implemented are amenable to high throughput measurement. The Microplate Feeder Assay (MFA) was developed for quantifying the consumption of liquid food for individual flies using absorbance. In this assay, flies consume liquid food medium from select wells of a 1536-well microplate. By incorporating a dilute tracer dye into the liquid food medium and loading a known volume into each well, absorbance measurements of the well acquired before and after consumption reflect the resulting change in volume (i.e., volume consumed). To enable high throughput analysis with this method, a 3D-printed coupler was designed that allows flies to be sorted individually into 96-well microplates. This device precisely orients 96- and 1536-well microplates to give each fly access to up to 4 wells for consumption, thus enabling food preference quantification in addition to regular consumption. Furthermore, the device has barrier strips that toggle between open and closed positions to allow for controlled containment and release of a column of samples at a time. This method enables high throughput measurements of consumption of aqueous solutions by many flies simultaneously. It also has the potential to be adapted to other insects and to screen consumption of nutrients, toxins, or pharmaceuticals.

A High Throughput Microplate Feeder Assay for Quantification of Consumption in Drosophila

The microplate feeder assay offers an economical, high throughput method for quantifying liquid food consumption in Drosophila. A 3D-printed device connects a 96-well microplate in which flies are housed to a 1536-well microplate from which flies consume a feeding solution with a tracer dye. The solution volume decline is measured spectrophotometrically.

드로소필라에서 소비의 정량화를 위한 높은 처리량 마이크로 플레이트 피더 분석

Quantifying food intake in Drosophila is used to study the genetic and physiological underpinnings of consumption-associated traits, their environmental ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. When selecting sites to deposit their eggs, female flies are capable of ranking the relative attractiveness of their options and choosing the &#34;greater of two goods.&#34; However, most egg-laying preference assays are not practical if one wants to take a systematic genetic screening approach to search for the circuit basis underlying this simple decision-making process, as they are population-based and laborious to set up. To increase the throughput of studying of egg-laying preferences of single females, we developed custom chambers that each can simultaneously assay egg-laying preferences of up to thirty individual flies as well as a protocol that ensures each female has a high egg-laying rate (so that their preference is readily discernable and more convincing). Our approach is simple to execute and produces very consistent results. Additionally, these chambers can be equipped with different attachments to allow video recording the egg-laying animals and to deliver light for optogenetics studies. This article provides the blueprints for fabricating these chambers and the procedure for preparing the flies to be assayed in these chambers.

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

This protocol describes a high throughput assay for testing egg-laying preferences of Drosophila melanogaster at single-animal resolution. This assay provides a simple, efficient, and scalable platform to identify genes and circuit components that control a simple decision-making process.

높은 처리량 분석은 개인의 알을 낳는 환경 설정을 검사합니다<em&gt; 노랑 초파리</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

신경과학

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

사용 보상 추구 행동의 변화를 측정하는 간단한 방법<em&gt; 노랑 초파리</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of the right type and quantity of food therefore has a major influence on quality of life. Research on feeding behavior focuses on the underlying processes that ensure actual feeding and unravels the role of factors regulating internal energy homeostasis and the neuronal bases of decision-making. The model organism Drosophila melanogaster, with its great variety of genetically traceable tools for labeling and manipulating single neurons, allows mapping of neuronal networks and identification of molecular signaling cascades involved in the regulation of food intake. This report demonstrates the CApillary FEeder assay (CAFE) and shows how to measure food intake in a group of flies for time spans ranging from hours to days. This easy-to-use assay consists of glass capillaries filled with liquid food that flies can freely access and feed on. Food consumption in the assay is accurately determined using simple measurement tools. Herein we describe step-by-step the method from setup to successful execution of the CAFE assay, and provide practical examples to analyze the food intake of a group of flies under controlled conditions. The reader is guided through possible limitations of the assay, and advantages and disadvantages of the method compared to other feeding assays in D. melanogaster are evaluated.

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

The CApillary FEeder (CAFE) assay is a simple, budget-friendly, highly reliable method for investigating mechanisms underlying food intake. Used with the highly versatile genetic model organism Drosophila melanogaster, it provides a powerful means of gaining new insights into regulatory mechanisms of food intake.

모세관 공급 분석은 식품 섭취를 측정<em&gt; 노랑 초파리</em

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of ...

Metabolic Analysis of Drosophila melanogaster Larval and Adult Brains

This protocol describes a method for measuring the metabolism in Drosophila melanogaster larval and adult brains. Quantifying metabolism in whole organs provides a tissue-level understanding of energy utilization that cannot be captured when analyzing primary cells and cell lines. While this analysis is ex vivo, it allows for the measurement from a number of specialized cells working together to perform a function in one tissue and more closely models the in vivo organ. Metabolic reprogramming has been observed in many neurological diseases, including neoplasia, and neurodegenerative diseases. This protocol was developed to assist the D. melanogaster community&#39;s investigation of metabolism in neurological disease models using a commercially available metabolic analyzer. Measuring metabolism of whole brains in the metabolic analyzer is challenging due to the geometry of the brain. This analyzer requires samples to remain at the bottom of a 96-well plate. Cell samples and tissue punches can adhere to the surface of the cell plate or utilize spheroid plates, respectively. However, the spherical, three-dimensional shape of D. melanogaster brains prevents the tissue from adhering to the plate. This protocol requires a specially designed and manufactured micro-tissue restraint that circumvents this problem by preventing any movement of the brain while still allowing metabolic measurements from the analyzer&#39;s two solid-state sensor probes. Oxygen consumption and extracellular acidification rates are reproducible and sensitive to a treatment with metabolic inhibitors. With a minor optimization, this protocol can be adapted for use with any whole tissue and/or model system, provided that the sample size does not exceed the chamber generated by the restraint. While basal metabolic measurements and an analysis after a treatment with mitochondrial inhibitors are described within this protocol, countless experimental conditions, such as energy source preference and rearing environment, could be interrogated.

Metabolic Analysis of Drosophila melanogaster Larval and Adult Brains

We present a protocol for measuring oxygen consumption and extracellular acidification in Drosophila melanogaster larval and adult brains. A metabolic analyzer is utilized with an adapted and optimized protocol. Micro-tissue restraints are a critical component of this protocol and were designed and created specifically for their use in this analysis.

초파리 melanogaster Larval 및 성인 두뇌의 변화 분석

This protocol describes a method for measuring the metabolism in Drosophila melanogaster larval and adult brains. Quantifying metabolism in whole organs ...

Biochemical and High Throughput Microscopic Assessment of Fat Mass in Caenorhabditis Elegans

The nematode C. elegans has emerged as an important model for the study of conserved genetic pathways regulating fat metabolism as it relates to human obesity and its associated pathologies. Several previous methodologies developed for the visualization of C. elegans triglyceride-rich fat stores have proven to be erroneous, highlighting cellular compartments other than lipid droplets. Other methods require specialized equipment, are time-consuming, or yield inconsistent results. We introduce a rapid, reproducible, fixative-based Nile red staining method for the accurate and rapid detection of neutral lipid droplets in C. elegans. A short fixation step in 40% isopropanol makes animals completely permeable to Nile red, which is then used to stain animals. Spectral properties of this lipophilic dye allow it to strongly and selectively fluoresce in the yellow-green spectrum only when in a lipid-rich environment, but not in more polar environments. Thus, lipid droplets can be visualized on a fluorescent microscope equipped with simple GFP imaging capability after only a brief Nile red staining step in isopropanol. The speed, affordability, and reproducibility of this protocol make it ideally suited for high throughput screens. We also demonstrate a paired method for the biochemical determination of triglycerides and phospholipids using gas chromatography mass-spectrometry. This more rigorous protocol should be used as confirmation of results obtained from the Nile red microscopic lipid determination. We anticipate that these techniques will become new standards in the field of C. elegans metabolic research.

Biochemical and High Throughput Microscopic Assessment of Fat Mass in Caenorhabditis Elegans

We present robust biochemical and microscopic methods for studying Caenorhabditis elegans lipid stores. A rapid, simple, fixing-staining procedure for fluorescent lipid droplet imaging leverages the spectral properties of the lipophilic dye Nile red. We then present biochemical measurement of triglycerides and phospholipids using solid phase extraction and gas chromatography-mass spectrometry.

에서 지방 질량의 생화학 및 높은 처리량 미세 평가<em&gt; Caenorhabditis Elegans</em

The nematode C. elegans has emerged as an important  model for the study of conserved genetic pathways regulating fat metabolism as  it relates to human ...

생물학

Quantification of Macronutrients Intake in a Thermogenetic Neuronal Screen using Drosophila Larvae

Foraging and feeding behaviors allow animals to access sources of energy and nutrients essential for their development, health, and fitness. Investigating the neuronal regulation of these behaviors is essential for the understanding of the physiological and molecular mechanisms underlying nutritional homeostasis. The use of genetically tractable animal models such as worms, flies, and fish greatly facilitates these types of studies. In the last decade, the fruit fly Drosophila melanogaster has been used as a powerful animal model by neurobiologists investigating the neuronal control of feeding and foraging behaviors. While undoubtedly valuable, most studies examine adult flies. Here, we describe a protocol that takes advantage of the simpler larval nervous system to investigate neuronal substrates controlling feeding behaviors when larvae are exposed to diets differing in their protein and carbohydrates content. Our methods are based on a quantitative colorimetric no-choice feeding assay, performed in the context of a neuronal thermogenetic-activation screen. As a read-out, the amount of food eaten by larvae over a 1 h interval was used when exposed to one of the three dye-labeled diets that differ in their protein to carbohydrates (P:C) ratios. The efficacy of this protocol is demonstrated in the context of a neurogenetic screen in larval Drosophila, by identifying candidate neuronal populations regulating the amount of food eaten in diets of different macronutrient quality. We were also able to classify and group the genotypes tested into phenotypic classes. Besides a brief review of the currently available methods in the literature, the advantages and limitations of these methods are discussed and, also, some suggestions are provided about how this protocol might be adapted to other specific experiments.

Quantification of Macronutrients Intake in a Thermogenetic Neuronal Screen using Drosophila Larvae

Described here is a protocol that enables the colorimetric quantification of the amount of food eaten within a defined interval of time by Drosophila melanogaster larvae exposed to diets of different macronutrient quality. These assays are conducted in the context of a neuronal thermogenetic screen.

드로소필라 애벌레를 사용하여 열유전학 신경 화면에서 다량 영양소 섭취의 정량화

Foraging and feeding behaviors allow animals to access sources of energy and nutrients essential for their development, health, and fitness. Investigating ...

A Rapid Food-Preference Assay in Drosophila

To select food with nutritional value while avoiding the consumption of harmful agents, animals need a sophisticated and robust taste system to evaluate their food environment. The fruit fly, Drosophila melanogaster, is a genetically tractable model organism that is widely used to decipher the molecular, cellular, and neural underpinnings of food preference. To analyze fly food preference, a robust feeding method is needed. Described here is a two-choice feeding assay, which is rigorous, cost-saving, and fast. The assay is Petri-dish-based and involves the addition of two different foods supplemented with blue or red dye to the two halves of the dish. Then, ~70 prestarved, 2-4-day-old flies are placed in the dish and&#160;allowed to choose between blue and red foods in the dark for about 90 min. Examination of the abdomen of each fly is followed by the calculation of the preference index. In contrast to multiwell plates, each Petri dish takes only ~20 s to fill and saves time and effort. This feeding assay can be employed to quickly determine whether flies like or dislike a particular food.

A Rapid Food-Preference Assay in Drosophila

We present a protocol for a two-choice feeding assay for flies. This feeding assay is fast and easy to run and is suitable not only for small-scale laboratory research, but also for high-throughput behavioral screens in flies.

드로소필라의 신속한 식품 선호 분석

To select food with nutritional value while avoiding the consumption of harmful agents, animals need a sophisticated and robust taste system to evaluate ...

높은 지방 다이어트 먹이 초파리 Melanogaster 의 높은 처리량 Triacylglyceride 분석 결과

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초파리 melanogaster 운동을 부드럽게 유도 위한 TreadWheel: 간격 훈련 프로토콜

양이 많은 음식 섭취 량 분석을 결합 하 고 강제로 초파리 에서 식욕을 공부 하는 뉴런을 활성화

드로소필라에서 소비의 정량화를 위한 높은 처리량 마이크로 플레이트 피더 분석

높은 처리량 분석은 개인의 알을 낳는 환경 설정을 검사합니다

사용 보상 추구 행동의 변화를 측정하는 간단한 방법

모세관 공급 분석은 식품 섭취를 측정

초파리 melanogaster Larval 및 성인 두뇌의 변화 분석

에서 지방 질량의 생화학 및 높은 처리량 미세 평가

드로소필라 애벌레를 사용하여 열유전학 신경 화면에서 다량 영양소 섭취의 정량화

드로소필라의 신속한 식품 선호 분석