The authors would like to thank Katrin Bossmann, Anett Neumann and Eike Wolter (German Environment Agency) for their valuable preparatory work.

참고 :이 프로토콜은 이차 항체를 표지 된 베팅 1 절, 주요 자작 나무 꽃가루 항원 성분, 플러스 알로 피코 (APC)에 대한 단클론 항체와 PM10 입자의 간접 염색 (단일 클론 마우스의 IgG1 항체, 클론 MA-3B4)에 대해 설명 (항 - 마우스의 IgG1 항체, 클론 A85-1) 및 유세포 분석에 후속. 적절한 다른 가능한 항체로,이 방법은 대기 입자에 결합 된 다른 항원의 검출로 확장 될 수있다. 1. PM10 샘플링 <ol><li> 폴리 테트라 플루오로 에틸렌 (PTFE)의 외기로부터 PM10 수집 2.3 m 3 / 시간 (도 1)의 유량을 갖는 저 부피 샘플러를 사용하여 필터링한다. 여기서 설명하는 실험에 사용되는 샘플러의 특성 (16)에서 발견된다. 시간을 실행하면 필요한 PM10의 양 (보통 사이 일 10 일)에 따라 달라집니다. </li><li> 배양 시간의 끝에서, 샘플러에서 필터를 제거하고, 그것을 동결-20 ° C까지 사용. </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54721/54721fig1.jpg" /> 그림 1. 낮은 볼륨 PM10 샘플러. 낮은 볼륨 PM10 샘플러의 예. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54721/54721fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 2. PM10 제거 및 입자 수 <ol><li> 약 5 분 동안 PTFE 필터 해동을 할 수 있습니다. 그런 다음, 깨끗한 폴리스티렌 페트리 접시 (그림 2A)에 필터를 넣어. 하나 이상의 필터가 처리 될 경우, 각 필터에 대한 새로운 배양 접시를 가져 가라. </li><li> 다음에, 인산 완충 용액 (PBS)와 PTFE 필터를 중첩. 이 프로토콜을 8x10 ml의 당 6 입자의 최종 농도 PM10 설립된다 (단계 3.3 참조). 적어도 그 농도를 얻기 위해 필터와 오버레이 PBS 다음 경험적 볼륨을 사용하여 다음 PM10 콜렉션 시간 이었다면 &lt;<html> 2 일, 2 ml에 사용합니다. 배양 시간 ≥2 일 동안, 4 ml에 사용합니다. 주 :이 적절한 경우 PM10 현탁액의 입자 농도를 증가시키기 위해, 다른 필터의 현탁액 풀링 될 수있다. </li><li> 1 분 동안 민감한 브러쉬 헤드 (도 2B, 2C)와 전기 칫솔 핀셋과 브러시로 PTFE 필터를 잡으십시오. 깨끗한 반응 관에, 입자-PBS-서스펜션, 이하라고 PM10 현탁액을 전송합니다. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/54721/54721fig2.jpg" /> 전기 칫솔도 2 PM10 제거. 샘플링 PM10과 폴리 테트라 플루오로 에틸렌 필터는 폴리스티렌 배양 접시 (A)에 배치되고, 4 ml의 PBS로 중첩된다. 그런 다음, PM10은 전기 칫솔로 제거 (B : 1 분 동안 칫솔질 후 : 닦고 C 전).= &quot;https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54721/54721fig2large.jpg&quot;대상 = &quot;_ 빈&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <ol start="4"><li> 입자 계수기를 이용하여, 예 PM10 입자의 농도를 측정한다. , PM10 현탁액 10 ㎖ 측정 등장 완충액 50 μL 같은 적절한 부피를 희석 세 번 측정 용액 당 입자의 평균 수를 계산한다. 해당 크기의 입자를 검출 할 수있는 입자 계수기를 사용하십시오. </li></ol> 3. 베팅 1 절 염색 <ol><li> 시료의 분석에 필요한 반응 튜브의 수를 계산하는 적어도 세 개의 반응 튜브가 요구된다 : (Ⅰ) 시료 만 (기본 제어) 한 튜브 샘플 플러스 이차 항체 (대조군)과 (ⅱ) 하나의 튜브 및 ( ⅲ) 샘플 플러스 일차 및 이차 항체 (특정 샘플) 하나의 튜브. 처음으로 측정 된 경우, (ⅰ) 적어도 두 개의 반응 관을 준비 (II),및 (iii) 적절히 설정 사이토 조정하기에 충분한 재료를 갖고 (단계 4.1 참조). </li><li> 반응 튜브의 수에 필요한 PM10 현탁액의 양을 계산한다. 각각의 반응 관은 현탁액의 50 μl를 필요로한다. </li><li> PBS를 적당량 첨가하여 용액 당 8x10과 6 입자의 최종 농도는 단계 3.2에서 계산 된 현탁액의 볼륨 단계 2.4에서 측정 된 입자 농도를 조정한다. 참고 :이 프로토콜에 대한 갓 준비 PM10 서스펜션을 권장하지만 나머지 PM10 현탁액, 미래의 실험 -20 ° C에서 동결 할 수있다. </li><li> 블록 예컨대 1 % BSA를 PBS로 제조 원액을 사용하여, 0.02 %의 최종 농도로 우 혈청 알부민 (BSA)과 PM10 현탁액을 보충하여 비특이적 결합. 소용돌이 간략하고 실온에서 20 분 동안 배양한다. </li><li> 각 샘플은 유동 세포 계측법에 의해 분석 될 경우, 교류 단계 3.4에서 서스펜션의 50 μl를 전송린 반응 관. 간단히 특정 염색 와류 대해 지정된 반응 튜브에 0.02 μg의 / μL 최종 농도 내기 V 1에 대해 모노클로 날 마우스 항체를 첨가하고 실온에서 60 분 동안 배양한다. <ol><li> 기본 대조군과 음성 대조군은 또한 실온에서 60 분 동안 체류에 지정된 PM10-BSA 서스펜션 반응 튜브하자. </li></ol></li><li> PBS가 실온에서 5 분 동안 4,700 XG에서 샘플이어서 각 반응 관 와류 간단히 원심 0.02 % BSA로 보충 된 500 μl를 첨가하여 모든 샘플을 세척한다. 진공 펌프를 이용하여 조심스럽게 상층 액을 제거한다. </li><li> 단계를 반복 3.6. </li><li> PBS는 반응 관 당 0.02 %의 BSA와 보충 50 μL에 녹인 1 μg의 항체 : 필요 APC 표지 보조 안티 - 마우스의 IgG1 항체의 총량을 결정합니다. 0.02 %의 BSA로 보충 PBS의 각 볼륨 항체의 적절한 양을 희석. </li><li> 기본 제어를 위해 지정된 반응 관을 제외한 모든 반응 튜브로 희석 차 항체의 50 μl를 추가합니다. PBS는 0.02 % BSA로 보충 된 50 μL와 후자를 보완. 소용돌이 몇 초 동안 모든 샘플. </li><li> 어둠 속에서 30 분 동안 모든 샘플을 품어. </li><li> 단계를 반복 3.6 배. </li><li> 각각의 반응 관, 소용돌이에 50 μl의 PBS를 추가하고 흐름 cytometer에 샘플을 분석 할 수 있습니다. </li></ol> 4. 유세포 분석 <ol><li> 매개 변수 사이토 다음, 기본 컨트롤을 조정 사용하여 데이터 분석을 최적화 할 수 있습니다. <ol><li> 디바이스 제어 보드에 표시되는 전방 산란 (FSC) 임계 컨트롤러를 이용함으로써, 낮은 값 (200)에 FSC 임계 값을 설정하고, 분석을 시작한다. </li><li> 캐터 전압 제어기를 사용함으로써, 모든 PM10 입자를 검출 할 수 있도록하는 방식으로 FSC 및 측방 산란 (SSC)를 조정하여 입자 집단은 일 대략 위치하도록금감위 축 및 SSC 축의 아래쪽의 E 중간. </li><li> 형광 전압 제어기를 사용함으로써, APC 전압이 필요한 경우, APC와 같은 동일한 파장에서 방출하지 않는 형광 염료 (FITC)와 같은 다른 형광 전압을 조정한다. 모든 입자는 모두 형광 축의 하단에 볼 수 있습니다 것을 확인하십시오. </li></ol></li><li> 연속적으로, 기본 컨트롤을 포함하여 각 샘플을 검사하고 샘플 당 최소 10,000 입자의 FSC, SSC, APC 및 FITC 데이터를 저장합니다. </li><li> 각각의 소프트웨어와 데이터를 평가합니다. 특정 시료에 흡착 된 항원의 콘텐츠는 두 가지 방법으로 정량화 할 수있다 : <ol><li> 모든 PM10 입자 위에 내기 V 1 하중 계수로서 모든 입자 (중앙값)의 APC 형광 강도를 분석한다. 참고 : 특정 샘플이 알레르기 항원을 포함하는 경우, APC 형광 강도가 대조군에 비해 특정 샘플 증가한다. 한편, 다른 불소escence 강도 (예., FITC 형광 강도)를 크게 변경하지 않아야합니다. </li><li> 바운드 안티 내기 1 절 항체 PM10 입자의 비율을 계산합니다. 이에 따라, 음성 대조군에 복사하여 특정 샘플에이 문을 붙여 특정 샘플에서 APC 긍정적 인 입자의 비율에서 대조군에 APC 긍정적 인 입자의 비율을 빼기, APC는 긍정적 인 생각 입자 주위에 게이트를 설정합니다. </li></ol></li></ol>

<ol>
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V., Lovik, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+allergens+adsorbed+to+ambient+air+particles+collected+in+four+European+cities.">Detection of allergens adsorbed to ambient air particles collected in four European cities.</a> Toxicol Lett. 165 (1), 71-78 (2006).</li><li>S&#252;ring, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PM10+contains+particle-bound+allergens:+Dust+analysis+by+Flow+Cytometry.">PM10 contains particle-bound allergens: Dust analysis by Flow Cytometry.</a> Env Technol Inn. 5, 60-66 (2016).</li><li>Schappi, G. F., Suphioglu, C., Taylor, P. E., Knox, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concentrations+of+the+major+birch+tree+allergen+Bet+v+1+in+pollen+and+respirable+fine+particles+in+the+atmosphere.">Concentrations of the major birch tree allergen Bet v 1 in pollen and respirable fine particles in the atmosphere.</a> J Allergy Clin Immunol. 100 (5), 656-661 (1997).</li><li>Buters, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+allergen+Bet+v+1+in+fractions+of+ambient+air+deviates+from+birch+pollen+counts.">The allergen Bet v 1 in fractions of ambient air deviates from birch pollen counts.</a> Allergy. 65 (7), 850-858 (2010).</li><li>Buters, J. T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Release+of+Bet+v+1+from+birch+pollen+from+5+European+countries.+Results+from+the+HIALINE+study.">Release of Bet v 1 from birch pollen from 5 European countries. Results from the HIALINE study.</a> Atmos Environ. 55, 496-505 (2012).</li><li>Ormstad, H., Johansen, B. V., Gaarder, P. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Airborne+house+dust+particles+and+diesel+exhaust+particles+as+allergen+carriers.">Airborne house dust particles and diesel exhaust particles as allergen carriers.</a> Clin Exp Allergy. 28 (6), 702-708 (1998).</li><li>Brough, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peanut+protein+in+household+dust+is+related+to+household+peanut+consumption+and+is+biologically+active.">Peanut protein in household dust is related to household peanut consumption and is biologically active.</a> J Allergy Clin Immunol. 132 (3), 630-638 (2013).</li><li>Jochner, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Seasonal+variation+of+birch+and+grass+pollen+loads+and+allergen+release+at+two+sites+in+the+German+Alps.">Seasonal variation of birch and grass pollen loads and allergen release at two sites in the German Alps.</a> Atmos Env. , (2015).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

프로토콜의 중요한 단계는 대기에서 PM10 입자의 수집을위한 적절한 필터를 사용하는 것이다 (단계 1.1 참조). 필터는 전기 칫솔 칫솔질 견딜만큼 튼튼해야하고, 모든 필터 재료는 이러한 요건을 충족. 염색 프로토콜 ml의 당 8x10과 6 입자의 PM10 입자 농도가 설립되었다. 재료가 제한되고 샘플 풀링 적절하지 그러나 경우, 메소드는 아마 잘 작동되지만, 항체 농도가 조절 될 수있다 (단계 3.5 및 3.8 참조). PM10 입자의 베팅 1 절 염색 긍정적 및 부정적 스테인드 입자의 별개의 집단 발생하지 않았다. 이것은 최대 아주 작은에서 많은 양에 이르기까지 입자의 각 흡착 내기 V 1 알레르기 항원의 다양한 양의에 의해 발생 될 수 있습니다. 이는 따라서 인구를 향해 시프트 APC 신호의 확장을 초래할 수APC 양성. 모든 입자의 평균 APC 형광 강도를 측정하여 (I)의 상대적인 정량 : 그것은 음의 입자의 양을 분리하는 것이 곤란하기 때문에, 두 개의 정량 방법은 PM10&gt; 0.5 시험편 배팅 V 한 내용의 차이를 결정하기 위해 사용 된 및 (ⅱ) APC 대상 입자의 비율을 결정하는 단계를 포함한다. 저 높은 꽃가루 시즌 PM10&gt; 0.5 입자의 베팅 1 절 부하에 대해서는 두 방법 모두 비슷한 결과를 한 것으로 밝혀졌습니다. 이 때문에 게이트를 배치의 독립과 같이 아직도, 모든 입자의 평균 형광 강도에 의해 상대 정량을 권장 아마 덜 오류가 발생하기 쉬운. 지금까지 많은 연구 ELISA 5,12-14,17와 각각의 알레르겐과 이후의 정량화를 추출하여 대기 입자상 물질의 알레르기 항원 함량을 검사합니다. 여기에 기술 된 절차와 quantificatio 간의 기본적인 차이가N ELISA에 : 유동 세포 계측법은 입자 - 결합 된 항원을 분석하면서 ELISA는 추출 용해 항원 정량화. ELISA를 통해 테스트 PM10 샘플의 BET V 1 부하 (N = 8) 1.2 ng를 / ㎖의 검출 한계 미만이었다 (데이터는 보이지 않음). 마찬가지로, Buters 등은 PM &lt;2.5 μm의 분수와 10 μm의에서 약 7 %&gt; PM&gt; 2.5 μm의 일부지만, PM 대기 13&gt; 10 μm의 비율에 93 % 이상에 더 베팅 1 절을 확인하지 않습니다. 한편, 다른 한편으로는 FACS 분석에 대한 ELISA의 대조 결과를 발산 감도와 결합 검출 방법의 차이에 의해 야기 될 수있다. 또한 연구 그러나 완전히 차이를 이해하는데 필요하다. 방법은 입자 - 결합 항원은 전자 현미경을 스캔 10,14 시각화된다. 전자 현미경을 스캔하여, Ormstad 외. 부유 입자 매트의 표면 상에 가시 내기 V 1r에 매연 입자는 높은 꽃가루 시즌과 낮은 꽃가루 시즌 15 샘플 입자에 조금 적게 샘플링. 또한, 화분, 라텍스, 또한 β 글루칸에서 알레르겐은 대기 (10)에서 연소 된 입자에 흡착되는 것으로 밝혀졌다. 그러나,이 방법은 입자 - 결합 항원의 정량화를 허용하지 않는다. 유동 세포 계측법을 사용하여, 입자 결합 내기 1 절 알러지 유발 물질은 정량 할 수있다. 따라서, 한편으로 다른 적절한 항체로 PM10의 10-0.5 μm의 생물학적 부분을 특성화하는 새로운 방법을 제공 할 수 유세포,이 방법은 대기 입자, 예를 들면, 곰팡이, 진드기의 다른 항원의 검출로 확장 될 수도 알레르기 또는 LPS. PM10 입자를 아주 쉽게 또한 화학 및 금속뿐만 아니라 생체 물질을 흡착하지만 같이, 항체의 비특이적 결합하지만, 문제를 제기 할 수있다. 새로운 항체를 시험하는 경우 중요한 단계는 특정 바인딩을 증명하는 것이다ING. 이것은 11 염색 전에 대응하는 항원과 특이 적 항체의 결합을 차단하는 능력, 예를 들어, 수행 될 수있다. 14, 18를 계산 내기 V로 주변 공기의 한 내용이 자작 나무 꽃가루 수 12,13,18과 다를 수 있습니다, 알레르기 증상은 아마도 꽃가루보다 알레르기 수준이 더 상관 관계가 있습니다. 따라서, 임상 데이터와 함께 제시된 방법은 자작 나무에 알레르기 반응이 PM10&gt; 0.5의 베팅 1 절 알레르겐 부하에 해당하는지 여부 미래의 실험에서 검사 할 수 있습니다.

대기 오염은 최근 수십 년간 1-3에서 관찰 호흡기 알레르기의 증가 빈도와 심각도의 중요한 환경 적 원인으로 간주되고있다. 또한, 먼지 4,5 일반적인 알러지 유발 물질의 분포에 대한 관심이 있었다. 자작 나무 꽃가루는 꽃가루 알레르기를 유발 할 수 있습니다뿐만 아니라 알레르기 성 천식 6-8의 중요한 트리거 할 수 있습니다. 항목 자작 나무 꽃가루 하부 호흡기를 입력 또는 크기 (직경 22 μm의)의 결과로서 PM10에서 발견 될 가능성이 없다. 그러나 베팅 1 절, 주요 자작 나무 꽃가루 알레르기 성분, 같은 자작 나무 꽃가루 알레르기는 꽃가루 파열 구 이후에 출시 될 수 있으며, 하부 호흡기기도를 따라서 가능, 대기 입자 (10)에 결합 입력 할 수 있습니다. 실제로,이 꽃가루 알레르기 proband (11) basophiles의 체외 활성화에 의해 입증 된 바와 같이 PM10은 생물학적 활성 알레르기가있는 것으로 나타났다 </suP&gt;. PM10 샘플에 베팅 1 절 알레르기 항원 함량은 ELISA 12-14로 각각의 알레르겐과 이후의 정량화를 추출하여 연구되어왔다. ELISA 법으로 용해 알레르겐을 측정했지만, 알레르겐 - 로딩 된 입자의 양이 아직 알려지지. 주사 전자 현미경은 알레르기로드 입자를 밝혀 있지만, 정량 10, 15를 허용하지 않았다. 이 연구는 주변 공기 샘플에 베팅 1 절로드 PM10 입자의 비율을 정량화하는 유동 세포 계측법 사용한다. 유량의 검출 한계로 인해뿐만 초과 0.5 μm의 조사가 가능 입자 사이토. PM10의&gt; 0.5 μm의 비율은 더 PM10으로&gt; 0.5로 언급 될 것이다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="645">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Teflon filter</td>
			<td style="width:143px;">Pall Life Sciences, USA</td>
			<td style="width:119px;">R2PL047</td>
			<td style="width:167px;">47 mm, 1.0 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">low volume sampler&#160;</td>
			<td>Sven Leckel Ingenieur B&#252;ro GmbH, Germany</td>
			<td style="width:119px;">LVS3</td>
			<td>air flow of 2.3 m3/h</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Phosphate-buffered saline</td>
			<td style="width:143px;">Biochrom, Germany</td>
			<td style="width:119px;">L1825</td>
			<td>without Ca/Mg, low endotoxin</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">electrical toothbrush&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Braun, Germany</td>
			<td style="width:119px;">Oral-B Vitality Sensitive</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Casy cell counter&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Sch&#228;rfe System GmbH, Germany</td>
			<td style="width:119px;">Model TTC</td>
			<td>range of detectable particle size: 0.7 &#181;m to 45 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">FACSCanto II&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Becton Dickinson, USA</td>
			<td style="width:119px;">3-laser, 8-color (4-2-2)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">FACS Diva Software v6.1.3&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">bovine serum albumin (BSA)&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Sigma-Aldrich, USA</td>
			<td style="width:119px;">A2153-10G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">monoclonal mouse IgG1 antibody against Bet v 1</td>
			<td style="width:143px;">Indoor Biotechnologies, UK</td>
			<td style="width:119px;">&#160;MA-3B4</td>
			<td style="width:167px;">clone MA-3B4</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">APC (Allophycocyanin)-labeled secondary anti-Mouse IgG1 antibody&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:119px;">560089</td>
			<td>clone A85-1</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">SPSSTM software version 18&#160;</td>
			<td style="width:143px;">PASW Statistics 18, Hongkong, China</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Petri Dish</td>
			<td style="width:143px;">Gosselin, France</td>
			<td style="width:119px;">BP50-02</td>
			<td>D 55mm, H 15mm&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">FACS Tube&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Becton Dickinson, USA</td>
			<td style="width:119px;">REF 352054</td>
			<td>5ml Polystyrene</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">CASYton</td>
			<td style="width:143px;">Roche 
			Germany</td>
			<td style="width:119px;">REF 05651808001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Matrix Blank Tubes</td>
			<td style="width:143px;">Thermo Scientific, USA</td>
			<td align="right" style="width:119px;">4140</td>
			<td>1,4 ml, PP</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Centrifuge</td>
			<td style="width:143px;">Heraeus, Thermo Scientific</td>
			<td style="width:119px;">Megafuge 40R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Vacuum Pump</td>
			<td style="width:143px;">INTEGRA Biosciences AG, Switzerland</td>
			<td style="width:119px;">Model 158 320</td>
			<td>Inetrgra Vacusafe</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">recombinant Bet v 1a antigen&#160;</td>
			<td style="width:143px;">Indoor Biotechnologies, UK</td>
			<td style="width:119px;">LTR-BV1A-1</td>
			<td>Concentration:&#160; 2.0 mg/ml</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

flow cytometric analysis of particle-bound bet v 1 allergen in pm10

유동 세포 계측법은 널리 0.5 직경 수십 ㎛을 크기 범위에있는 세포 또는 박테리아 등의 현탁 물질을 정량화하기 위해 사용하는 방법이다. 전방 및 측방 산란 특성의 특성에 더하여, 그 각 구성을 검출하기 위해 항체와 같은 형광 표지 마커의 사용을 가능하게한다. 간접 항체 염색법을 사용하여, 자작 나무 꽃가루 알레르기를 정량화하기 위해 세포 계측법 여기에 사용된다 흐름 흡입 입자상 물질 (PM10, 입자 크기 직경이 ≤10 μm의)에 직경 0.5 μm의 10의 입자를 -loaded (정확하게 1 절 내기). 흡착 알러지 유발 물질의 운반 가능성이 그들이 알레르기 반응을 트리거 할 수있는 하부 호흡기, 그들을 수송으로 PM10 입자 작용할 수있다. 지금까지 PM10의 알레르겐의 함량은 효소 결합 면역 분석법 (ELISA를) 주사 전자 현미경을 이용하여 연구되었다. ELISA는 입자를 용해하지 측정-bound 알레르겐. 알레르겐 - 로딩 입자를 시각화 별도로이를 정량화 할 수있다 유세포 수 사형 전자 현미경에 비해. 주변 공기의 알레르기 항원 함량은 자작 나무 꽃가루 카운트에서 벗어날 수 있듯이, 알레르기 증상은 아마도 꽃가루 개수보다 알레르겐 노출 더 상관 관계가 있습니다. 임상 데이터와 함께, 제시된 방법은 알레르기 반응 꽃가루 항원이 PM10 입자&gt; 0.5 μm의의 베팅 1 절 알레르기 콘텐츠와 관련된 자작 나무할지 여부를 미래의 실험에서 테스트 할 수있는 기회를 제공합니다.

PM10&gt; 0.5 입자에 베팅 1 절 알레르기 흡착는 사이토의 흐름에 간접적 인 항체 염색 및 후속 분석에 의해 정량 하였다. 높은 꽃가루 시즌에서 PM10 샘플 템플릿을 역임. 단계 3.1에 기재된 바와 같이, 음성 대조군은 이차 항체를 전용 (도 3a)에 표시된 APC 배양 PM10 입자로 이루어져 있었다. 안티 베팅 1 절 항체 플러스 이차 항체로 염색 PM10 입자는 알레르기로드 입자 (그림 3B)를 표시. 단계 4.3에 기재된 바와 같이, 알레르겐 부하를 정량화하는 두 가지 방법을 사용 하였다 : 한편, 모든 입자의 APC 형광 강도 중앙값은 특정 샘플의 대조군 대 (137) 및 (904) 인 분석 하였다. 한편, 결합 된 항 - 내기 V 1 항체와 입자의 백분율을 측정 하였다 : 게이트는 음성 대조군에서 APC 대상 입자 주변에이어서 하였다 CO얼룩덜룩 및 특정 샘플에 붙여. 음성 대조군으로, PM10&gt; 0.5 입자의 3 %가 APC 양성으로 간주 하였다. 가양 입자의이 비율은 따라서 77.5 %의 APC 긍정적 인 PM10의 결과로 특정 샘플에서 긍정적 인 입자의 비율&gt; 특정 샘플에서 0.5 입자에서 제외되었다. 관찰 방지 베팅의 결합 1 절 항체가 특정 것을 증명하기 위해, 결합 용량은 염색하기 전에 해당 항원과 차단되었습니다. 베팅 1 절 긍정적 인 PM10&gt; 0.5 입자 (그림 3C)의 비율에 의해 정량화 경우, APC의 형광 강도에 의해 정량화, 84 %의 경우는 69 %로 반 내기 1 절 항체의 결합을 감소. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/54721/54721fig3.jpg" /> 그림 3. 입자 바인딩 1 알레르기가 높은 포에서 PM10 샘플의 유동 세포 계측법. APC의 형광 강도에 의해 가시화 될 수있다 내기 V단지 APC로 염색 llen 시즌, 그리고 재조합 내기 1 절 항원 차 항체를 차단 한 후 이차 항체 (B)에 표시된 항 내기 V 1 차 항체 및 이후 APC와 염색 차 항체 (A)를 표지 (C ). 게이트 P의 APC +는 APC의 긍정적 인 생각 입자의 주위에 설정된 (빨간색으로 표시) 및 각각의 비율이 주어진다. 이 수치가 약간 (11)에서 수정되었습니다. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54721/54721fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 이 방법은 높은에서 낮은 꽃가루 시즌 PM10&gt; 0.5 시료의 흡착 내기 1 절 내용의 양의 차이를 나타 내기 위해 채택 할 수 있는지 여부를 테스트하려면 높은 13 PM10 샘플과 낮은 꽃가루 시즌 6 PM10 샘플을 분석 하였다. 그림 4은 APC 형광 강도 및 베팅 1 절 긍정적 인 PM10&gt; 낮은 꽃가루 시즌 PM10 샘플에 비해 높은 꽃가루 시즌 PM10 샘플의 0.5 입자의 비율에 유의 한 차이를 보여줍니다. 두 정량화 방법은 이에 유사한 결과를 보였다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/54721/54721fig4.jpg" /> 저 높은 꽃가루 시즌 그림 4. PM10 샘플 (1. 낮은 꽃가루 시즌 PM10은 가을 / 겨울 2013 년 표본 (N = 6), 높은 꽃가루 시즌 PM10 5 월 2012 2013 년 한 흡착 내기 V의 자신의 양에 차이가 N = (13)). (A) PM10의 APC 형광 강도&gt; 높은 꽃가루 시즌 0.5 입자는 낮은 꽃가루 시즌 (평균 / 최소 / 최대 높은 꽃가루 시즌보다 훨씬 높았다 : 796/313/1097, 평균 / 최소 / 최대 낮은 꽃가루 계절 : 197 / 277분의 85). (B) PM10 높은 꽃가루 시즌 significan 포함낮은 꽃가루 시즌 PM10보다 TLY 더 내기 1 절 양성 PM10이&gt; 0.5 입자 (평균 / 최소 / 최대 높은 꽃가루 시즌 : 45.2 / 18.5 / 74.5, 평균 / 최소 / 최대 낮은 꽃가루 계절 : 11.8 / 4.4 / 19.8). 박스 플롯은 각각 중간 값 (박스의 내부 선), 25 및 75 백분위 수 (박스의 하부 및 상부 테두리)과 최소값과 최대 값 (수염)를 보여줍니다. *** 낮은 꽃가루 시즌 대 P &lt;0.001, 맨 휘트니 U 테스트. 이 수치가 약간 (11)에서 수정되었습니다. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54721/54721fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Flow Cytometric Analysis of Particle-bound Bet v 1 Allergen in PM10

여기서는 유동 세포 계측법에 의해 알레르겐 - 로딩 입자를 정량 할 수있는 프로토콜을 제시한다. 주변 미립 입자 흡착 알레르겐의 담체로서 작용할 수있다. 우리는 유동 세포 계측법, 방법은 널리 직경이 0.5㎛가 이러한 알레르겐 - 로딩 입자를 측정 할 수있다&gt; 부유 물질을 특성화하는 데 사용 여기 나타낸다.

PM10의 입자 바인딩 베팅 1 절 알레르기의 유세포 분석

Flow cytometry is a method widely used to quantify suspended solids such as cells or bacteria in a size range from 0.5 to several tens of micrometers in ...

flow-cytometric-analysis-of-particle-bound-bet-v-1-allergen-in-pm10

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

7.5K 조회수.  Federal Environment Agency.  여기서는 유동 세포 계측법에 의해 알레르겐 - 로딩 입자를 정량 할 수있는 프로토콜을 제시한다. 주변 미립 입자 흡착 알레르겐의 담체로서 작용할 수있다. 우리는 유동 세포 계측법, 방법은 널리 직경이 0.5㎛가 이러한 알레르겐 - 로딩 입자를 측정 할 수있다> 부유 물질을 특성화하는 데 사용 여기 나타낸다. 

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Murine Model of Allergen Induced Asthma

Asthma is a major cause of morbidity and mortality, affecting some 300 million people throughout the world.1 More than 8% of the US population has asthma, with the prevalence increasing.2 As with other diseases, animal models of allergic airway disease greatly facilitate understanding of the underlying pathophysiology, help identify potential therapeutic targets, and allow preclinical testing of possible new therapies. Models of allergic airway disease have been developed in several animal species, but murine models are particularly attractive due to the low cost, ready availability, and well-characterized immune systems of these animals.3 Availability of a variety of transgenic strains further increases the attractiveness of these models.4 Here we describe two murine models of allergic airway disease, both employing ovalbumin as the antigen. Following initial sensitization by intraperitoneal injection, one model delivers the antigen challenge by nebulization, the other by intratracheal delivery. These two models offer complementary advantages, with each mimicking the major features of human asthma.5
The major features of acute asthma include an exaggerated airway response to stimuli such as methacholine (airway hyperresponsiveness; AHR) and eosinophil-rich airway inflammation. These are also prominent effects of allergen challenge in our murine models,5,6 and we describe techniques for measuring them and thus evaluating the effects of experimental manipulation. Specifically, we describe both invasive7 and non-invasive8 techniques for measuring airway hyperresponsiveness as well as methods for assessing infiltration of inflammatory cells into the airways and the lung. Airway inflammatory cells are collected by bronchoalveolar lavage while lung histopathology is used to assess markers of inflammation throughout the organ. These techniques provide powerful tools for studying asthma in ways that would not be possible in humans.

Experimental mouse models of allergic asthma offer new possibilities for studying disease pathogenesis and developing new therapeutics. These models are well suited to measuring factors governing the allergic immune response, airway inflammation, and pulmonary pathophysiology.

Asthma is a major cause of morbidity and mortality, affecting some 300 million people throughout the world.1 More than 8% of the US population has asthma, ...

연구

면역학 및 감염병학

Whole-animal Imaging and Flow Cytometric Techniques for Analysis of Antigen-specific CD8+ T Cell Responses after Nanoparticle Vaccination

Traditional vaccine adjuvants, such as alum, elicit suboptimal CD8+ T cell responses. To address this major challenge in vaccine development, various nanoparticle systems have been engineered to mimic features of pathogens to improve antigen delivery to draining lymph nodes and increase antigen uptake by antigen-presenting cells, leading to new vaccine formulations optimized for induction of antigen-specific CD8+ T cell responses. In this article, we describe the synthesis of a &#8220;pathogen-mimicking&#8221; nanoparticle system, termed interbilayer-crosslinked multilamellar vesicles (ICMVs) that can serve as an effective vaccine carrier for co-delivery of subunit antigens and immunostimulatory agents and elicitation of potent cytotoxic CD8+ T lymphocyte (CTL) responses. We describe methods for characterizing hydrodynamic size and surface charge of vaccine nanoparticles with dynamic light scattering and zeta potential analyzer and present a confocal microscopy-based procedure to analyze nanoparticle-mediated antigen delivery to draining lymph nodes. Furthermore, we show a new bioluminescence whole-animal imaging technique utilizing adoptive transfer of luciferase-expressing, antigen-specific CD8+ T cells into recipient mice, followed by nanoparticle vaccination, which permits non-invasive interrogation of expansion and trafficking patterns of CTLs in real time. We also describe tetramer staining and flow cytometric analysis of peripheral blood mononuclear cells for longitudinal quantification of endogenous T cell responses in mice vaccinated with nanoparticles.

We describe whole-animal imaging and flow cytometry-based techniques for monitoring expansion of antigen-specific CD8+ T cells in response to immunization with nanoparticles in a murine model of vaccination.

나노 입자 백신 접종 후 분석 항원 특이 CD8 + T 세포 반응에 대한 전체 동물 이미징 및 유세포 기술

Traditional vaccine adjuvants, such as alum, elicit suboptimal CD8+ T cell responses. To address this major challenge in vaccine development, various ...

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Immune Cells from the Ischemic Mouse Brain

Ischemic stroke initiates a robust inflammatory response that starts in the intravascular compartment and involves rapid activation of brain resident cells. A key mechanism of this inflammatory response is the migration of circulating immune cells to the ischemic brain facilitated by chemokine release and increased endothelial adhesion molecule expression. Brain-invading leukocytes are well-known contributing to early-stage secondary ischemic injury, but their significance for the termination of inflammation and later brain repair has only recently been noticed.
Here, a simple protocol for the efficient isolation of immune cells from the ischemic mouse brain is provided. After transcardial perfusion, brain hemispheres are dissected and mechanically dissociated. Enzymatic digestion with Liberase&#160;is followed by density gradient (such as Percoll) centrifugation to remove myelin and cell debris. One major advantage of this protocol is the single-layer density gradient procedure which does not require time-consuming preparation of gradients and can be reliably performed. The approach yields highly reproducible cell counts per brain hemisphere and allows for measuring several flow cytometry panels in one biological replicate. Phenotypic characterization and quantification of brain-invading leukocytes after experimental stroke may contribute to a better understanding of their multifaceted roles in ischemic injury and repair.

Inflammation plays a central role in the pathogenesis of ischemic stroke. Increasing evidence suggests that it acts as a double-edged sword which exacerbates early brain injury, but also contributes to later repair. This protocol describes the isolation of immune cells from the ischemic brain and their subsequent flow cytometric phenotyping.

허혈성 마우스 뇌에서 면역 세포의 분리 및 유세포 분석

Ischemic stroke initiates a robust inflammatory response that starts in the intravascular compartment and involves rapid activation of brain resident ...

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Glioma-infiltrating Peripheral Blood Mononuclear Cells

Our laboratory has recently demonstrated that natural killer (NK) cells are capable of eradicating orthotopically implanted mouse GL26 and rat CNS-1 malignant gliomas soon after intracranial engraftment if the cancer cells are rendered deficient in their expression of the &#946;-galactoside-binding lectin galectin-1 (gal-1). More recent work now shows that a population of Gr-1+/CD11b+ myeloid cells is critical to this effect. To better understand the mechanisms by which NK and myeloid cells cooperate to confer gal-1-deficient tumor rejection we have developed a comprehensive protocol for the isolation and analysis of glioma-infiltrating peripheral blood mononuclear cells (PBMC). The method is demonstrated here by comparing PBMC infiltration into the tumor microenvironment of gal-1-expressing GL26 gliomas with those rendered gal-1-deficient via shRNA knockdown. The protocol begins with a description of&#160;how to culture and prepare GL26 cells for inoculation into the syngeneic C57BL/6J mouse brain. It then explains the steps involved in the isolation and flow cytometric analysis of glioma-infiltrating PBMCs from the early brain tumor microenvironment. The method is adaptable to a number of in vivo experimental designs in which temporal data on immune infiltration into the brain is required. The method is sensitive and highly reproducible, as glioma-infiltrating PBMCs can be isolated from intracranial tumors as soon as 24 hr post-tumor engraftment with similar cell counts observed from time point matched tumors throughout independent experiments. A single experimentalist can perform the method from brain harvesting to flow cytometric analysis of glioma-infiltrating PBMCs in roughly 4-6 hr depending on the number of samples to be analyzed. Alternative glioma models and/or cell-specific detection antibodies may also be used at the experimentalists&#8217; discretion to assess the infiltration of several other immune cell types of interest without the need for alterations to the overall procedure.

Presented here is a straightforward method for the isolation and flow cytometric analysis of glioma-infiltrating peripheral blood mononuclear cells that yields time-dependent quantitative data on the number and activation status of immune cells entering the early brain tumor microenvironment.

분리 및 신경 교종-침투 말초 혈액 단핵 세포의 유세포 분석

Our laboratory has recently demonstrated that natural killer (NK) cells are capable of eradicating orthotopically implanted mouse GL26 and rat CNS-1 ...

Isolation and Flow Cytometric Characterization of Murine Small Intestinal Lymphocytes

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both microbial and dietary. Given an increasing understanding that these luminal antigens help shape the immune response and that education of immune cells within the intestine is critical for a number of systemic diseases, there has been increased interest in characterizing the intestinal immune system. However, many published protocols are arduous and time-consuming. We present here a simplified protocol for the isolation of lymphocytes from the small-intestinal lamina propria, intraepithelial layer, and Peyer&#39;s patches that is rapid, reproducible, and does not require laborious Percoll gradients. Although the protocol focuses on the small intestine, it is also suitable for analysis of the colon. Moreover, we highlight some aspects that may need additional optimization depending on the specific scientific question. This approach results in the isolation of large numbers of viable lymphocytes that can subsequently be used for flow cytometric analysis or alternate means of characterization.

There is growing interest in the quantitative characterization of intestinal lymphocytes owing to increasing recognition that these cells play a critical role in a variety of intestinal and systemic diseases. In this protocol, we describe how to isolate single cell populations from different small-intestinal compartments for subsequent flow cytometric characterization.

쥐 소장 림프구의 분리 및 유세포 특성

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both ...

Flow Cytometric Analysis of Natural Killer Cell Lytic Activity in Human Whole Blood

NK cell cytotoxicity is a widely used measure to determine the effect of outside intervention on NK cell function. However, the accuracy and reproducibility of this assay can be considered unstable, either because of user&#39;s errors or because of the sensitivity of NK cells to experimental manipulation. To eliminate these issues, a workflow that reduces them to a minimum was established and is presented here. To illustrate, we obtained blood samples, at various time points, from runners (n = 4) that were submitted to an intense bout of exercise. First, NK cells are simultaneously identified and isolated through CD56 tagging and magnetic-based sorting, directly from whole blood and from as little as one milliliter. The sorted NK cells are removed of any reagent or capping antibodies. They can be counted in order to establish an accurate NK cell count per milliliter of blood. Secondly, the sorted NK cells (effectors cells or E) can be mixed with 3,3&#39;-Diotadecyloxacarbocyanine Perchlorate (DiO) tagged K562 cells (target cells or T) at an assay-optimal 1:5 T:E ratio, and analyzed using an imaging flow-cytometer that allows for the visualization of each event and the elimination of any false positive or false negatives (such as doublets or effector cells). This workflow can be completed in about 4 h, and allows for very stable results even when working with human samples. When available, research teams can test several experimental interventions in human subjects, and compare measurements across several time points without compromising the data&#39;s integrity.

This work describes an advanced workflow for the accurate and fast determination of NK (Natural Killer) cell count and NK cell cytotoxicity in human blood samples.

인간의 전체 혈액 자연 살해 세포 용 균성 활동의 유세포 분석

NK cell cytotoxicity is a widely used measure to determine the effect of outside intervention on NK cell function. However, the accuracy and ...

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Human Endocervical Gamma Delta T Cells

The female reproductive tract (FRT) mucosal immune system serves as the first line of defense. Better knowledge of the genital mucosa is therefore essential for understanding pathogenicity of different pathogens including HIV. Gamma delta (GD) T cells are the prototype of &#39;unconventional&#39; T cells and represent a relatively small subset of T cells defined by their expression of heterodimeric T-cell receptors (TCRs) composed of gamma and delta chains. This sets them apart from the classical and much better known CD4+ helper T cells and CD8+ cytotoxic T cells that are defined by alpha-beta TCRs. GD T cells often show tissue-specific localization and are enriched in epithelium. GD T cells orchestrate immune responses in inflammation, tumor surveillance, infectious disease, and autoimmunity.
Here, we present a method to reproducibly isolate and analyze human endocervical intraepithelial GD T lymphocytes. We have used endocervical cytobrush samples from women participating in the Women&#39;s Interagency HIV Infection Study (WIHS). Knowledge about GD T cells interactions during conditions in which there is an insult to the vaginal mucosal could be applied to any clinical study in which mucosal vulnerability is addressed, including the development of vaginal microbicides.In addition, knowledge about mucosal GD T cell responses has potential for application of GD T cell-based immune therapy in treating infectious diseases.

We describe here an isolation method to obtain human endocervical intraepithelial lymphocytes for the analysis of intraepithelial gamma delta T cells. This protocol can be extended for the purification of endocervical gamma delta T cells by magnetic beads or by cell sorting.

인간의 자궁 경부 감마 델타 T 세포의 분리 및 유세포 분석

The female reproductive tract (FRT) mucosal immune system serves as the first line of defense. Better knowledge of the genital mucosa is therefore ...

Digestion of the Murine Liver for a Flow Cytometric Analysis of Lymphatic Endothelial Cells

Within the liver, lymphatic vessels are found within the portal triad, and their described function is to remove interstitial fluid from the liver to the lymph nodes where cellular debris and antigens can be surveyed. We are very interested in understanding how the lymphatic vasculature might be involved in inflammation and immune cell function within the liver. However, very little has been published establishing digestion protocols for the isolation of lymphatic endothelial cells (LECs) from the liver or specific markers that can be used to evaluate liver LECs on a per cell basis. Therefore, we optimized a method for the digestion and staining of the liver in order to evaluate the LEC population in the liver. We are confident that the method outlined here will be useful for the identification and isolation of LECs from the liver and will strengthen our understanding of how LECs respond to the liver microenvironment.

The goal of this protocol is to identify lymphatic endothelial cell populations within the liver using described markers. We utilize collagenase IV and DNase and a gentle mincing of tissue, combined with flow cytometry, to identify a distinct population of lymphatic endothelial cells.

림프 내 피 세포의 흐름 Cytometric 분석 Murine 간 소화

Within the liver, lymphatic vessels are found within the portal triad, and their described function is to remove interstitial fluid from the liver to the ...

Flow Cytometric Measurement Of ROS Production In Macrophages In Response To Fc&#947;R Cross-linking

The oxidative or respiratory burst is used to describe the rapid consumption of oxygen and generation of reactive oxygen species (ROS) by phagocytes in response to various immune stimuli. ROS generated during immune activation exerts potent antimicrobial activity primarily through the ability of ROS to damage DNA and proteins, causing death of microorganisms. Being able to measure ROS production reproducibly and with ease is necessary in order to assess the contribution of various pathways and molecules to this mechanism of host defense. In this paper, we demonstrate the use of fluorescent probes and flow cytometry to detect ROS production. Although widely used, fluorescent measurement of ROS is notoriously problematic, especially with regards to measurement of ROS induced by specific and not mitogenic stimuli. We present a detailed methodology to detect ROS generated as a result of specific Fc&#947;R stimulation beginning with macrophage generation, priming, staining, Fc&#947;R cross-linking, and ending with flow cytometric analysis.

This study demonstrates the use of flow cytometry to detect reactive oxygen species (ROS) production resulting from activation of the Fc&#947;R. This method can be used to assess changes in the antimicrobial and redox signaling function of phagocytes in response to immune complexes, opsonized microorganisms, or direct Fc&#947;R cross-linking.

선생님 FcγR Cross-linking에 대 식 세포에서 생산의 흐름 Cytometric 측정

The oxidative or respiratory burst is used to describe the rapid consumption of oxygen and generation of reactive oxygen species (ROS) by phagocytes in ...

Multi-scale Analysis of Bacterial Growth Under Stress Treatments

Analysis of the bacterial ability to grow and survive under stress conditions is essential for a wide range of microbiology studies. It is relevant to characterize the response of bacterial cells to stress-inducing treatments such as exposure to antibiotics or other antimicrobial compounds, irradiation, non-physiological pH, temperature, or salt concentration. Different stress treatments might disturb different cellular processes, including cell division, DNA replication, protein synthesis, membrane integrity, or cell cycle regulation. These effects are usually associated with specific phenotypes at the cellular scale. Therefore, understanding the extent and causality of stress-induced growth or viability deficiencies requires a careful analysis of several parameters, both at the single-cell and at the population levels. The experimental strategy presented here combines traditional optical density monitoring and plating assays with single-cell analysis techniques such as flow cytometry and real time microscopy imaging in live cells. This multiscale framework allows a time-resolved description of the impact of stress conditions on the fate of a bacterial population.

This protocol allows a time-resolved description of bacterial growth under stress conditions at the single-cell and the cell population levels.

스트레스 치료하에 세균 성장의 다단계 분석

Analysis of the bacterial ability to grow and survive under stress conditions is essential for a wide range of microbiology studies. It is relevant to ...