Method Article
이 프로토콜은 지속적인 비디오 뇌전도(EEG) 모니터링과 병행하여 수행된 간질 쥐의 반복적인 뇌척수액 및 혈액 수집을 보여줍니다. 이는 다양한 체액 분자의 변화와 발작 활동 사이의 가능한 연관성을 탐구하는 데 도움이 됩니다.
체액의 조성은 많은 생리학적 및 병리학적 역학을 반영하기 때문에 생물학적 액체 샘플은 일반적으로 호르몬, 성장 인자, 단백질 또는 작은 비암호화 RNA와 같은 관심 분자를 측정하기 위해 많은 실험 맥락에서 얻어집니다. 구체적인 예는 간질에 대한 바이오마커 연구에서 생물학적 액체의 샘플링입니다. 이러한 연구에서는 뇌척수액(CSF)과 혈장 내 분자 수준을 비교하고, 뇌척수액과 혈장을 병렬로 채취하고, 발작 시 샘플링까지의 시간 거리를 고려하는 것이 바람직합니다. 뇌척수액과 혈장 샘플링을 결합한 이 연구는 뇌전증 동물의 비디오-EEG 모니터링과 결합되어 추정 진단 및 예후 바이오마커의 검증을 위한 유망한 접근법입니다. 여기에서, 지속적으로 비디오 EEG를 모니터링하는 간질 쥐의 수조 마그나에서 뇌척수액을 채취하고 측면 꼬리 정맥에서 혈액을 샘플링하는 과정을 결합하는 절차를 설명합니다. 이 절차는 일반적으로 사용되는 다른 기술에 비해 상당한 이점을 제공합니다. 통증이나 침습을 최소화하고 마취 시간을 단축하면서 신속한 샘플링이 가능합니다. 또한 테더 및 원격 측정 EEG 기록 쥐 모두에서 CSF 및 혈장 샘플을 얻는 데 사용할 수 있으며 여러 날의 실험에 걸쳐 반복적으로 사용할 수 있습니다. 이소플루란 마취를 단축하여 샘플링으로 인한 스트레스를 최소화함으로써 생체 유체에서 조사된 분자의 실제 수준을 보다 정확하게 반영할 수 있을 것으로 기대됩니다. 적절한 분석 분석의 가용성에 따라 이 기술은 EEG 기록을 동시에 수행하면서 여러 개의 다른 분자 수준을 측정하는 데 사용할 수 있습니다.
뇌척수액(CSF)과 혈액 채취는 전임상 및 임상 연구 모두에서 뇌전증의 바이오마커를 식별하고 검증하는 데 중요합니다 1,2. 오늘날 뇌전증의 진단과 뇌전증 바이오마커에 대한 대부분의 연구는 EEG 및 신경영상에 초점을 맞추고 있습니다 3,4,5. 그러나 이러한 접근 방식에는 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 일상적인 두피 측정 외에도 많은 경우 EEG는 깊이 전극6과 같은 침습적 기술을 필요로 한다. 뇌 영상 기법은 시간적, 공간적 해상도가 낮고 상대적으로 비용과 시간이 많이 든다 7,8. 이러한 이유로, 비침습적, 저비용, 생체유체 기반 바이오마커의 식별은 매우 매력적인 대안을 제공할 것입니다. 또한 이러한 생체 유체 바이오마커를 사용 가능한 진단 접근법과 결합하여 예측성을 높일 수 있습니다.
뇌전증 진단을 받은 환자는 일상적으로 EEG 9,10 및 혈액 샘플링 11,12,13,14 을 시행하며, 많은 경우 생명을 위협하는 원인(예: 급성 감염, 자가면역 뇌염)을 배제하기 위해 뇌척수액 중단을 시행한다15. 이 혈액 및 CSF 샘플은 간질에 대한 바이오마커를 식별하기 위한 임상 연구에 사용할 수 있습니다. 예를 들어, Hogg와 동료들은 인간 간질에서 발작이 일어나기 전에 3개의 혈장 tRNA 단편이 증가한다는 것을 발견했다14. 마찬가지로, 인간 뇌척수액과 혈청의 인터루킨-1베타(IL-1β) 수치는 혈청 대비 뇌척수액의 IL-1β 수치의 비율로 표현되며, 외상성 뇌손상 후 외상 후 뇌전증 발병을 예측할 수 있다16. 이러한 연구는 뇌전증 바이오마커 연구를 위한 생체유체 샘플링의 중요성을 강조하지만, 혈액 내 항간질제(AED)의 공동 설립 인자, 병인 정보의 빈번한 부족, 부적절한 대조군, 적당한 수의 환자 수 등 임상시험에 내재된 여러 가지 한계에 직면해 있습니다17,18.
전임상 연구는 뇌전증에 대한 잠재적인 바이오마커로서 생체 유체의 분자를 조사할 수 있는 다른 기회를 제공합니다. 실제로, EEG 기록을 수행하는 동안 동물에서 혈장 및/또는 CSF를 추출할 수 있습니다. 또한, 샘플링은 실험의 여러 날에 걸쳐 반복적으로 수행될 수 있으며, 연구의 견고성을 향상시키기 위해 여러 연령, 성별 및 간질 모욕 일치 대조군을 사용할 수 있습니다. 여기에서, EEG 모니터링 쥐의 꼬리 정맥에서 혈장을 병렬로 인출하여 수조 마그나에서 CSF를 얻는 유연한 기술이 자세히 설명되어 있습니다. 제시된 기술은 대체 방법에 비해 몇 가지 장점이 있습니다. 나비 바늘 접근법을 사용하면 뇌파 전극 또는 이와 유사한 머리 임플란트의 기능을 손상시키지 않고 뇌척수액을 여러 번 채취할 수 있습니다. 이는 상대적으로 높은 감염 위험과 관련된 척수강내 카테터 제거 절차의 개선을 나타냅니다. 또한, 채혈에 사용되는 보고된 자유 낙하 접근 방식은 혈액이 튜브를 통과하지 않고 진공 압력이 가해지지 않기 때문에 용혈 위험이 크게 감소하기 때문에 꼬리 정맥 혈액 인출의 다른 접근 방식보다 우수합니다. 세균이 없는 엄격한 조건에서 수행하면 동물의 감염 위험이 특히 낮습니다. 또한 동물의 꼬리 끝에서 혈액 채취를 시작하여 샘플링을 여러 번 반복할 수 있습니다. 이러한 기술은 마스터하기 쉽고 중추 신경계 장애에 대한 많은 전임상 연구에 적용될 수 있습니다.
모든 실험 절차는 실험 및 기타 과학적 목적으로 사용되는 동물의 보호에 관한 1986년 11월 24일 유럽 공동체 위원회 지침(86/609/EEC)에 설명된 지침에 따라 페라라 대학교 기관 동물 관리 및 사용 위원회와 이탈리아 보건부(승인: DM 603/2022-PR)의 승인을 받았습니다. 이 프로토콜은 쥐 CSF의 작은 비코딩 리보핵산(sncRNA) 및 간질 동물의 EEG 제어 하에 얻은 혈장의 추가 정량적 중합효소연쇄반응(qPCR) 분석을 위해 특별히 조정됩니다. 선택에 따라 수술에 대한 더 나은 이해와 개선을 위해 관련 JoVE 비디오를 참조하십시오 19,20,21.
1. 전극 또는 텔레미터의 외과적 이식을 위한 동물의 준비
참고: 입체 수술 기법은 사용되는 EEG 시스템에 따라 다릅니다. 다음 방법 섹션에서는 두 가지 유형의 수술에 공통적으로 적용되는 단계에 대해 설명합니다.
2. 테더 전극의 외과적 이식
참고: 이 프로토콜의 천자 뇌척수액 인출 절차를 수립하기 전에(자세한 내용은 9단계 참조), 자유롭게 움직이는 마취되지 않은 쥐 몇 마리에서 가이드 캐뉼라를 통해 뇌척수액 인출을 반복했습니다. 다중 CSF 샘플링과 결합된 장기 EEG 기록에 대한 이중 머리 임플란트의 영향을 평가하기 위해 테더 전극이 이식된 캐뉼레이션 동물을 사용했습니다. 이러한 특정 실험에서, 쥐는 이전에 발표된 프로토콜22에 따라 정위적으로 7mm 깊이로 삽입된 더미 가이드 캐뉼라를 수조 마그나에 이식했습니다. 이중 임플란트 수술 접근법은 과거에 미세투석 가이드 캐뉼라 및 테더 전극 이식을 위해 일부 작업자가 채택한 것과 유사했다23,24.
3. 텔레미터의 외과적 이식
알림: 멸균 텔레미터만 사용하십시오. 원격 측정기를 재사용하는 경우 제조업체 지침에 따라 수술 전에 세척하고 멸균하십시오. 이 프로토콜에서는 EEG 기록을 위한 DSI(Data Science International) 텔레미터가 사용되었습니다.
4. 수술 후 관리
5. 쥐의 상태 간질 유도
참고: 쥐에서 간막 측두엽 간질(mTLE)을 재현하는 데 필요한 상태 간질(SE) 유도에 대한 자세한 프로토콜은 Guarino et al.25를 참조하십시오.
6. 간질 쥐의 테더 비디오 EEG 및 발작 활동 분석
참고: 이 섹션에서는 표준 조건에서 자유롭게 움직이는 단일 하우징 쥐의 EEG 신호를 기록하는 실험 절차에 대해 설명합니다. 케이지에는 동물이나 녹음 케이블이 끼일 수 있는 물체가 포함되어서는 안 됩니다. 해결해야 할 과학적 질문에 따라 몇 가지 매개변수를 분석할 수 있습니다. 간질 연구의 경우 전기 및 운동 발작을 인식하기 위해 EEG 흔적을 검사합니다. 발작을 식별하는 데 사용되는 가장 일반적인 매개변수는 발작성 전기 활동의 진폭, 빈도 및 지속 시간입니다.
7. 간질 쥐의 원격 측정 비디오 EEG 및 발작 활동 분석
참고: 이 섹션에서는 표준 조건에서 자유롭게 움직이는 단일 하우징 쥐에서 방사선 원격 측정 EEG 신호를 기록하는 실험 절차에 대해 설명합니다. 이 프로토콜은 상업적으로 이용 가능한 텔레메트리 시스템을 기반으로 합니다. 그러나 여러 원격 측정 시스템은 기능 및 기술 사양이 약간 다릅니다. 시스템은 실험실 요구 사항 및 연구 목표에 따라 선택해야 합니다.
8. 꼬리 정맥에서 혈액을 채취하는 절차
메모. 진공 채혈 시스템은 나비 바늘(23G x 3/4 x 12(0.8mm x 19mm x 305mm))로 구성됩니다. 채혈 기술은 한 명의 작업자가 쉽게 수행할 수 있으며 절차는 약 5분이 소요됩니다.
9. 뇌척수액 채취 절차
메모. 이 기술은 한 명의 작업자가 쉽게 수행할 수 있으며 절차에는 약 2-4분이 소요됩니다. 뇌척수액 채취에 사용되는 재료는 저렴한 일회용 진공 버터플라이 바늘과 추출 튜브입니다. 이 프로토콜에서는 진공을 생성하기 위해 멸균 주사기에 연결된 나비 날개 주입 세트가 사용됩니다(그림 2A).
10. 샘플의 품질에 대한 분광 광도계 분석
참고: CSF 및 혈장 시료를 적절하게 채취한 후 시료는 분광광도계 분석을 위한 준비가 되었으며 특정 취급이 필요하지 않습니다. 414nm에서 UV 분광광도계로 헤모글로빈 흡광도를 측정하여 샘플의 용혈 위험을 평가합니다. 쥐 샘플에서 0.25의 차단 흡광도 값을 사용합니다. 이 한계의 선택은 후속 qPCR 분석 및 sncRNA 정량화에 대한 특정 요구 사항에 따라 달라질 수 있습니다.
9명의 대조군과 18마리의 만성 간질 쥐에서 수행된 다양한 CSF 및 혈액 인출 절차의 결과는 모두 SE 후 1개월에 전극을 이식한 것으로 성공률 측면에서 보고됩니다. 이식 후, 모든 쥐는 1개월 동안 비디오 EEG를 모니터링했으며, 그 동안 실험의 마지막 2주 동안(즉, SE 후 52, 55, 58, 61 및 64일, dpSE) 3일마다 CSF와 혈액을 5회 인출했습니다. 서로 다른 동물에서 여러 번 인출한 데이터를 사용하여 쌍두종 임플란트 부여 쥐(뇌척수액 인출을 위해 캐뉼레이션)의 뇌척수액 채취 성공률과 테더 또는 원격 측정 전극을 이식한 동물에서만 뇌척수액 채취 성공률(수조 마그나 천자에 의해 수행)을 비교했습니다(표 1). 다른 동물에서 진공 채혈 또는 꼬리 착유가 혈장 샘플의 품질에 미치는 영향을 평가했습니다(표 2). 이를 위해 유리 헤모글로빈의 검출을 위해 414nm의 UV 분광 광도법 분석이 사용되었습니다. 통계 분석에는 상용 소프트웨어가 사용되었으며, Kruskal-Wallis 또는 사후 Tukey의 다중 비교 검정을 사용한 일원 분산 분석이 사용되었습니다(p<0.05는 통계적으로 유의한 것으로 간주됨). 데이터는 평균 ± SEM으로 표현됩니다.
캐뉼라 및 천공된 쥐에서 다중 CSF 샘플링의 성공률
뇌척수액은 3개의 쥐 그룹에서 2주 이내에 5회 샘플링되었습니다: (i) 캐뉼레이션 및 테더링 전극 이식 쥐(CT 그룹 동물); 이들에서, 뇌척수액 인출은 마취되지 않고 비디오 EEG 하에서 자유롭게 움직일 때 더미 가이드 캐뉼라 및 PTFE 튜브 조인트를 통해 1mL 주사기로 수행되었습니다. (ii) 천공(단계 9) 및 테더링된 전극 이식 쥐(PT 그룹); (iii) 천공 및 원격 측정 전극 이식 쥐(PTe 그룹). 그룹당 총 9마리의 동물(간질 쥐 6마리, 대조군 쥐 3마리)을 사용하였다. 5회 이상 성공한 컬렉션 수를 평가했습니다. 성공률은 구멍이 뚫린 쥐에서 비슷했다: 묶인 쥐에서는 86.7% ± 5.8%, 원격 측정 전극 이식 동물에서는 88.9% ± 4.8%였다. 대신, 통조림에 갇힌 쥐에서는 유의한 차이가 없더라도 비율이 감소했습니다(71.1% ± 8.9%, 표 1). 이러한 결과는 동물의 머리에 있는 캐뉼라가 반복적인 뇌척수액 샘플링을 방해하고 종단 연구를 손상시킬 수 있음을 나타냅니다. 펑크 기술은 전극을 이식한 동물의 여러 뇌척수액 인출에 더 적합합니다.
진공 및 꼬리 착유가 플라즈마 수집 방법에 미치는 영향
혈액은 SE 후 52, 55, 58, 61 및 64 일에 9 마리의 쥐 (6 마리의 간질 쥐와 3 명의 대조군 쥐)로부터 5 배 수집되었으며 혈장 품질은 414nm에서 육안 및 UV 분광 광도계에 의해 용혈에 대해 평가되었습니다. 각 쥐에서 첫 번째 샘플을 얻기 위해 1mL 주사기에 부착된 21G 버터플라이 바늘을 통한 진공 인출을 사용했습니다. 두 번째 샘플에서는 꼬리를 동시에 착유할 때 드롭 인출과 21G 버터플라이 바늘 시스템을 사용했습니다. 3-5번째 샘플을 얻기 위해, 꼬리를 착유하지 않고 드롭 철회 절차(단계 9에서 설명)를 사용하였다.
진공을 사용했을 때, 육안 검사에서 혈장은 분홍색이었고, 9마리의 쥐 샘플의 평균 흡광도 값은 0.647 ± 0.067이었다(표 2, 그림 3). 절차 도중 꼬리 젖을 짜는 것을 이용하는 경우에 유사한 결과가 얻어졌다: 0.620 ± 0.043 평균 흡광도를 가진 분홍색 플라스마는 (표 2, 도 3). 대조적으로, 중력 활성화 방울 인출 및 21G 버터플라이 바늘 시스템을 사용하면 평균 플라즈마 흡광도 값이 크게 감소했습니다(58dpSE에서 0.226 ± 0.017, 61dpSE에서 0.223 ± -0.09, 64dpSE에서 0.226 ± 0.018; 표 2, 그림 3) 진공 또는 꼬리 착유 방법과 관련하여. 또한, 방울 혈장 샘플은 주로 투명했습니다. 흡광도 값이 높을수록(52 및 55 dpSE) 샘플의 분홍색과 상관관계가 있습니다(데이터는 표시되지 않음). 이러한 결과는 마지막 방법이 분석을 위해 매우 높은 품질의 샘플을 얻는 데 가장 적합하다는 것을 시사할 수 있습니다.
그림 1: 혈장 샘플링 워크플로우의 주요 단계. (A) 채취 준비가 된 입체 프레임의 혈액 인출 및 쥐에 필요한 재료; (나, 씨) 21G 나비 바늘을 측면 꼬리 정맥에 삽입한 꼬리와 항응고제로 채취 튜브의 벽을 따라 떨어지는 핏방울의 확대. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 뇌척수액(CSF) 샘플링 워크플로우의 주요 단계. (A) 채취 직전의 입체 프레임에서 CSF 인출 및 쥐에 필요한 재료; (B) 수조 마그나로의 정확한 침투를 보장하기 위해 맨 바늘의 끝이 7mm 동안 노출되도록 플라스틱 슬리브 보호 장치를 절단하여 23G 나비 바늘 준비; (C) 쥐 머리는 철수하는 동안 아래쪽으로 45° 기울어져 있습니다. (D) cisterna magna에 삽입된 나비 바늘로 마름모꼴 부위의 확대. 마커 끝으로 표시된 튜브에서 상승하는 CSF에 유의하십시오. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 혈장 샘플의 품질 평가. 다른 방법을 사용하여 5개의 시점(52, 55, 58, 61 및 64일의 간질 후 상태, dpSE)에서 9마리의 동물의 혈장 샘플에서 UV 분광법에 의해 유리 헤모글로빈에 대해 414nm에서 측정된 용혈 정도: 52일 - 진공 기술; 55 일째 - 꼬리 착유; 58-64일째 낙하 기법이 사용되었다. 진공 및 꼬리 착유 방법에 비해 방울 기술로 얻은 혈장 내 유리 헤모글로빈의 감소는 유의했습니다(*편도 분산 분석 및 사후 Tukey의 다중 비교 테스트에 따른 <0.05). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
표 1: CSF 인출 성공률. 5일 동안 성공적인 금단 횟수의 백분율로 표현된 3개의 실험 동물 그룹에서 반복적인 CSF 금단의 성공률 비교. 값 1은 > 100μL의 투명 CSF의 성공적인 회수에 할당되었습니다. 0 값은 100μL 및/또는 불분명한 CSF< 인출에 할당되었습니다. 약어: N/A - 샘플링 절차 중 캐뉼라 손실로 인한 수집 부재(CT 동물만 해당); CT - 캐뉼러형 테더링; PT - 구멍이 뚫린 테더링; PTe - 구멍이 뚫린 원격 측정 전극이 이식되었습니다. 이 표를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
표 2: 혈장 샘플의 용혈 평가. 세 가지 다른 혈액 샘플링 방법을 사용하여 5개의 시점에서 용혈 측정 결과: 52일 - 진공 기술; 55 일째 - 꼬리 착유; 58-64 일 드롭 기술. 흡광도 값 >0.3은 샘플의 분홍색과 상관 관계가 있습니다. 이 표를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
본 연구는 쥐의 뇌척수액 및 채혈 기술을 쉽게 습득할 수 있는 방법을 보여주며, 이는 간질 모델뿐만 아니라 알츠하이머, 파킨슨 또는 다발성 경화증과 같은 다른 신경학적 상태 또는 질병의 연구에도 유용할 수 있습니다. 간질 연구에서 비디오 EEG와 결합된 샘플링 절차는 서로 다른 용해성 분자의 수준과 발작 활동 사이의 상관 관계를 추구할 때 이상적입니다. 이러한 특별한 이유로, i) 간질을 정확하게 진단하기 위해, ii) 질병 진행의 여러 단계를 모니터링하기 위해, 및/또는 iii) 샘플링과 자연 발작의 발생을 연관시키기 위해 연속적인 비디오 EEG 기록이 사용되었습니다. 이러한 샘플링 기술은 마취된 쥐에서 수행될 수 있으며, 따라서 최소한의 스트레스를 유발합니다.
중요한 단계, 문제 해결, 방법 제한 사항
프로토콜에는 몇 가지 중요한 기술 단계가 있습니다. 첫째, 첫 번째 시도에서 CSF 채취를 위한 올바른 장소를 찾기가 어려울 수 있습니다. 작업자가 첫 번째 시도에서 수조 마그나를 놓치면 동물이 바늘 상처에서 피를 흘리기 때문에 후속 시도는 혈액에 오염됩니다. 이러한 관점에서 컬렉션의 성공은 운영자의 기술에 크게 좌우됩니다. 둘째로, 혈액 채취의 일부 단계에는 특별한 주의가 필요합니다. 특히, 작업자가 꼬리를 에탄올로 너무 세게 문지르거나, 꼬리 정맥 혈관 확장에 사용되는 물의 온도가 42°C 이상이거나, 채취 튜브의 혈액이 항응고제와 너무 정력적으로 혼합되면 용혈의 위험이 높습니다. 만성 간질 동물에서 혈액 수집의 또 다른 특징은 꼬리 정맥에서 혈액이 떨어지는 속도에 대한 서맥의 영향이다33. 이것이 너무 느리면 혈액이 채취 튜브의 벽에 응고될 수 있습니다. 이 문제를 피하기 위한 한 가지 옵션은 샘플링을 두 개의 수집 튜브로 분할하여 혈액/튜브의 부피를 줄이는 것입니다. 마지막으로, 간질 연구에 내재된 한 가지 함정이 있습니다. 샘플링 전에 동물 조작에 의해 유발된 스트레스는 발작을 유발할 수 있으며, 이는 차례로 조사 하에 있는 분자의 수준을 방해할 수 있다(34). 가능할 때마다 마취 유도 챔버를 가정용 케이지에 놓고 동물이 자발적으로 들어갈 수 있도록 합니다. 제안된 프로토콜의 수정으로서, 억제제는 이소플루란 마취 없이 혈액 회수를 수행하는데 사용될 수 있다. 그러나 이것은 원격 측정에서 수행할 수 있지만 묶인 동물에서는 수행할 수 없는데, 묶인 쥐는 이 절차 중에 머리 임플란트를 잃을 수 있기 때문입니다.
잘 훈련된 작업자를 두고 스트레스를 피하기 위해 최대한의 노력을 기울이는 현재 프로토콜의 유일한 한계는 동물의 건강을 손상시키지 않고 인출할 수 있는 최대 부피입니다. 현행 기준에 따르면, 한 마리의 동물에서 15일 동안 4배에 걸쳐 최대 100μL의 뇌척수액을 채취하는 것이 권장된다32. 유사하게, 단일 샘플링에서 총 혈액 체적의 10% 미만을 수집하고 28일 동안 총 혈액 체적의 15% 미만을 수집하는 것이 좋습니다30,31.
다른 기법과 방법 비교
제안된 시간 분해 CSF 및 혈장 샘플링 접근법은 기존 대체 방법과 관련하여 몇 가지 장점이 있습니다. 첫째, 간질이 있는 쥐에서 뇌척수액을 채취하는 데 사용되는 수조 마그나 천자는 테더링된 EEG와 결합할 경우 캐뉼레이션 시스템에 비해 머리 임플란트 손실 위험이 낮습니다. 천자 절차와 달리 치과용 시멘트(동물의 머리에 비해 부피가 크고 무거움)로 전극에 부착된 캐뉼라는 뇌척수액 인출에 대한 반복적인 부착/분리에 의해 요청되지만 며칠 간의 샘플링을 통해 손실되기 훨씬 더 쉽습니다. 실제로, 성공률 결과는 일부 캐뉼라 동물(N/A)이 고급 샘플링 시점에 도달하지 못하여 해당 샘플이 손실되는 방법을 보여줍니다(표 1). 또한, 천자 방법은 이전에 다른 22,35,36에 의해 문서화된 바와 같이 뇌척수액에서 세포 및 알부민 함량의 제한된 증가와 함께 더 나은 무균성 및 감소된 수막 반응 측면에서 캐뉼레이션 접근법보다 우수한 것으로 보입니다. 뇌척수액 백혈구 및 알부민 오염의 정도는 간질 바이오마커 정량화에 사용되는 방법의 타당성에 중요할 수 있다35. 둘째, 반복 측정에 사용되는 혈장 채취의 자유낙하 방법은 참수, 심장 천자, 복부/흉부 혈관 또는 후안와 철수와 달리 말기(비회복)가 아니며 다중 혈액 채취가 가능하기 때문에 다른 어떤 인출 방법보다 우수합니다. 이는 튜빙(tubing) 28,37을 필요로 하지 않고, 간질 형성(epileptogenesis)의 추정 바이오마커를 식별하는 데 초점을 맞춘 추가 sncRNA 분석을 위한 고품질의 용혈이 없는 혈장 샘플을 생산하기 때문에 많은 꼬리 정맥 혈액 진공 인출 기술보다 간단하다(38). 방울 샘플링 기술을 사용하거나 꼬리 착유를 피할 때 샘플에서 유리 헤모글로빈이 없다는 것은 sncRNA 혈장 함량39,40의 평가에 적합한 이전에 발표된 절차에 따라 혈장 샘플의 낮은 흡광도 결과(표 2)에 의해 확인되었습니다.
적용 및 향후 방향
상술한 방법들은 임의의 신경학적 질환 모델에서 관심의 용해성 분자를 측정하는데 적용될 수 있다. 구체적인 예는 잠재적/추정적 간질 바이오마커의 식별을 위한 생물학적 액체의 샘플링입니다. 뇌전증 환자를 위한 이러한 바이오마커, 특히 예후 및 감수성/위험 바이오마커는 아직 존재하지 않기 때문에 발견해야 할 긴급한 미충족 의학적 필요성이 있습니다.
결론적으로, 본 프로토콜은 간질 쥐를 포함한 쥐에서 실현 가능하며, 훈련된 개인을 위해 작동하기 쉽다. 또한 3R(즉, 교체, 축소 및 정제)41의 원칙에 따라 종단 연구에서 여러 고품질 샘플링을 허용합니다.
저자는 공개할 것이 없습니다.
이 연구는 보조금 계약 964712(PRIME, M. Simonato)에 따라 유럽 연합의 Horizon 2020 Work Programme(H2020-FETOPEN-2018-2020)의 보조금으로 지원되었습니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Blood collection set BD Vacutainer Safety-Lok | BD Italy SpA, Milan, Italy | 367246 | Material |
Blood Collection tubes (Microtainer K2E) | BD Italy SpA, Milan, Italy | 365975 | Material |
Butterfly Winged Infusion Set 23G x 3/4'' 0.6 x 19 mm | Nipro, Osaka, Japan | PSY-23-ET-ICU | Material |
Centrifuge refrigerated ALC PK 130R | DJB Labcare Ltd, Buckinghamshire, England | 112000033 | Material |
Cotton suture 3-0 | Ethicon, Johnson & Johnson surgical technologies, Raritan, New Jersey, USA | 7343H | Material |
Diazepam 5 mg/2ml, Solupam | Dechra Veterinary Products, Torino, Italy | 105183014 (AIC) | Solution |
Digital video 8-channel media recorder system of telemetry EEG set up | Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA | PNM-VIDEO-008 | Equipment |
Digital video surveillance system of tethered EEG set up | EZVIZ Network, Hangzhou, Cina | EZVIZ (V5.3.2) | Equipment |
Disinfectant based on stabilized peroxides and quaternary ammonium activity | Laboratoire Garcin-Bactinyl, France | LB 920111 | Solution |
Dummy guide cannula 8 mm | Agn Tho's, Lindigö, Sweden | CXD-8 | Material |
Electrode 3-channel two-twisted | Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA | MS333/3-B/SPC | Material |
Electrode holder for stereotxic surgery | Agn Tho's, Lindigö, Sweden | 1776-P1 | Equipment |
Eppendorf BioSpectrometer basic | Eppendorf AG, Hamburg, Germany | 6137 | Equipment |
Eppendorf PCR Tubes 0.2 mL | Eppendorf Srl, Milan, Italy | 30124332 | Material |
Eppendorf μCuvette G1.0 | Eppendorf AG, Hamburg, Germany | 6138 | Equipment |
Feeding needle flexible 17G for rat | Agn Tho's, Lindigö Sweden | 7206 | Material |
Grass Technology apparatus | Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA | M665G08 | Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40) |
Isoflurane 100%, IsoFlo | Zoetis, Rome, Italy | 103287025 (AIC) | Solution |
Ketamine (Imalgene) | Merial, Toulouse, France | 221300288 (AIC) | Solution |
Lithium chloride | Sigma-Aldrich, Milan, Italy | L9650 | Material |
Microinjection cannula 31G 9 mm | Agn Tho's, Lindigö Sweden | CXMI-9 | Material |
MP150 modular data acquisition and analysis system | Biopac, Goleta, California, USA | MP150WSW | Equipment |
Ophthalmic vet ointment, Hylo night | Ursapharm, Milan, Italy | 941791927 (AIC) | Material |
Pilocarpine hydrochloride | Sigma-Aldrich, Milan, Italy | P6503 | Material |
PTFE Tube with joint | Agn Tho's, Lindigö, Sweden | JT-10 | Material |
Saline | 0.9% NaCl, pH adjusted to 7.0 | Solution | |
Scopolamine hydrobromide trihydrate | Sigma-Aldrich, Milan, Italy | S2250 | Material |
Scopolamine methyl nitrate | Sigma-Aldrich, Milan, Italy | S1876 | Material |
Silver sulfadiazine 1% cream | Sofar, Trezzano Rosa, Milan, Italy | 025561010 (AIC) | Material |
Simplex rapid dental methacrylic cement | Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom | ACR811 | Material |
Stereotaxic apparatus | David Kopf Instruments, Los Angeles, CA, USA | Model 963 | Equipment |
Sucrose solution | 10% sucrose in distilled water | Home-made | Solution |
Syringe 1 mL | Biosigma, Cona, Venezia, Italy | 20,71,26,03,00,350 | Material |
Telemeters | Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA | CTA-F40 | Material |
Telemetry EEG traces analyzer | Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA | NeuroScore v3-0 | Equipment |
Telemetry system | Data Sciences International (DSI), St Paul, MN, USA | Hardware plus software Ponemah core 6.51 | Equipment |
Xylazine hydrochloride | Sigma-Aldrich, Milan, Italy | X1251 | Material |
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