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여기에 우리가 작은 동물에 게 효율적인 adeno 관련 바이러스 전달 되도록 하 여 중앙에서 변환 효율 예측 점수 시스템 구축 바이러스 솔루션에서 1 %lidocaine 염 산 염을 사용 하 여 직접 intrathecal 사출 기법 제시 lidocaine에 의해 유도 된 과도 함의 정도 따라 신경 시스템.
Adeno 관련 바이러스 (AAV)의 Intrathecal (IT) 주사는 CNS에 CNS 유전자 치료의 안전, noninvasiveness, 그리고 우수한 전달 효능 덕에 상당한 관심을 받고 있다. 이전 연구는 관리 그것에 의해 신경 장애에서 AAV 전달 유전자 치료의 치료 효능 입증. 그러나, 작은 동물에서 IT 관리의 기술적 제한으로 인해 예측할 수 없는 실패의 높은 속도 보고 되었습니다. 여기, 우리는 주입 솔루션으로 1 %lidocaine 염 산을 추가 하 여 작은 동물에 허리 빵 꾸의 성공 정도 나타내는 점수 시스템 설립. 우리는 추가 주입 다음 과도 함의 정도 AAV의 변환 효율을 예측할 수 있습니다 보여줍니다. 따라서,이 IT 주입 방법 CNS의 넓은 영역을 괴롭히다 CNS 질병 마우스 모델에서 치료 실험을 최적화 하기 위해 사용할 수 있습니다.
AAV 몇 가지 부작용, CNS 변환에 장기적이 고 광범위 한 유전자 발현을 중재할 수 및 따라서 루 경화 증 (ALS), 헌팅턴의를 포함 하 여 CNS 질병을 치료 하는 유전자 치료에 대 한 가장 유망한 차량 중 하나 되고있다 (HD) 질병, Alzheimer의 질병 (광고), lysosomal 저장 질병 (LSD), Gaucher 질환 (GD), 그리고 신경 ceroid lipofuscinosis (NCL)1 현재, 이상의 100 AAV serotypes 인간과 동물에서 분리 되었습니다. 이러한 가운데, 적어도 12 전 임상에서 사용 되 고 AAV1, 2, 4, 5, 6, 8, 9, 같은 유전자 벡터를 사용 하는 가장 일반적으로 포함 하는 임상 시험, rAAVrh.8, 및 rAAVrh.10,12,3,4, 5,6.
다른 CNS 질병 때문에 다양 한 영향을 받는 CNS 영역 및 세포 유형 다른 AAV 배달 전략 필요합니다. CNS 영역 및 셀 AAV transduce 수 종류는 serotype에 따라 전달 방법 뿐만 아니라. 예를 들어 rAAVrh10 transduce 주로 조직의 정 맥 주사 (IV)에 의해 전달 하는 때 이다 그것은 신경 및 명과 intrathecal 주입4,7에 의해 전달 될 때 불리고 반면에 표시 되었습니다. 또한, 실질 주입 결과 사출 사이트의 부근을 로컬 변환 반면 intraventricular 통해 뇌 척추 액체 (CSF)에 주입 또는 intrathecal 주입 결과 광범위 한 CNS 변환8 . 연구는 또한 신경 장애에서 AAV 전달 유전자 치료의 치료 힘에 의해 증명 그것 관리9,,1011. ALS 같은 CNS의 넓은 영역에 영향을 주는 질병에 CSF에 intrathecal 주입 체계 배달 방법4,10에 비해 낮은 복용량으로 질병에 의해 시달리는 대부분 영역을 커버 하 표시 되었습니다. 최근 연구는 또한 ALS laminectomy 및 intrathecal catheterization4와 관련 된 잠재적인 부상 방지에 대 한 마우스 모델에서 AAV를 주입 하는 허리 빵 꾸를 사용할 수 있습니다 나타났습니다.
실험적인 직접 요 추 찔린 에이전트, 특히 마 취약, 진통 및 188512,13마 취 척수에 전달 하 처음 사용 되었다. 이 보고서에서 우리 허리 빵 꾸 1 %lidocaine 염 산 염는 지역 아 미드 파생 취 평가 하 고 사출 품질 모니터링 주입 솔루션에서의 도움으로 성인 쥐에 주입 방법으로 그것을 설명 합니다. 반면 실패 한 주사는이 동작을 보여주지 않았다 성공적인 주사 일시적인 마비 lidocaine 유도 의해 표를 했다. 우리는 주입 효율을 예측할 수 있도록 다섯 등급 중 하나로 과도 약점의 수준을 분류. 마지막으로, 우리는 rAAVrh10 변환 수준 마비의 급료에 의해 예측 될 수 있습니다 보여줍니다. 따라서,이 intrathecal AAV 전달 방법 AAV 중재 CNS 질환의 실험적 치료를 위한 유전자 납품을 향상 시키기 위해 사용할 수 있습니다.
FVB/뉴저지 쥐 허베이 신경과 키 실험실의 동물 시설에서 자란 했다. 모든 마우스 실험에 의해 두 번째 병원의 허베이 의료 대학 윤리 위원회 승인 되었고 실험실 동물 관리 과학과의 인민 공화국의 기술에 의해의 규정에 따라 실시 중국입니다.
1. 20 %Lidocaine 염 산 염 재고 솔루션의 준비
2. 깨어 있는 마우스에 직접 Intrathecal AAV 배달
3. 조직 Immunohistochemical 얼룩을 위한 준비
4입니다. Immunohistochemistry
마우스 과도 약점의 다른도 바로 뒤 AAV 솔루션의 주사로 intrathecal 주입의 다양 한 품질 1 %lidocaine 염 산 염 보였다. 시스템에 따라 반 양적 5 학년 점수 우리는 설립, 우리 AAV의 변환 패턴에에서 테스트 쥐 lidocaine 유도 사지 약점의 다른도로 (점수 0, n = 2; 1, n 점수 = 1; 4, n 점수 = 4; 점수 5, n = 3). 척수의 EGFP immunostaining 보였다 중 "없음" 또는 "작은 0를 득점 하는 쥐의 요 추 척수에 전달, 마우스 1, 점수에 약간 향상 된 변환 및 강력 하 고 광범위 한 transductions 마우스 4 또는 5 (그림 1A) 점수. 우리 계량 GFP 과도 사지 약점 (그림 1B)의 다양 한 학위를 표시 하는 그 쥐의 강렬을 얼룩이 지 고 결론을 척수의 범위와 밀접 하 게 상관 주입 후 약점의 심각도 변환입니다.
우리 더 전체 CNS에 rAAVrh10의 상세한 변환 프로필을 탐험 척수의 전체 길이 발견 하 고 두뇌의 넓은 영역 4 또는 5 득점 잘 주입 된 쥐에 잘 불리고 있었다. 뇌에서 강력한 EGFP 신호 후 각 전구 (그림 2A), dorsolateral 전 두 엽 피 질 (그림 2B)가 뇌 (그림 2C 및 2D), 해 마의 CA3 영역에서 발견 된 소 뇌 피 질 (그림 2E), 그리고 brainstem 얼굴 핵 (그림 2F), 衣 상피 세포 (그림 2G), 맥락 막 신경 총 등의 한계 영역. 그러나, 적은 EGFP 긍정적인 세포는 뇌의 깊은 지역에서 발견 했다. 척수에 복 부와 등 쪽 뿔, 유출 모터 축 삭 복 부와 등 풍요로운 감각 축 삭 강하게 GFP-긍정적인 했다. 앞쪽 뿔에 모터 신경 척수 (인물 2 H-2J)의 서로 다른 수준에서 불리고 강하게 했다. 또한, 피라미드 세포를 포함 하 여 피 질 신경 세포 GFP-긍정적인 발견 되었습니다 (그림 3A 와 3B). Microglia, 이다 그리고 oligodendrocytes를 포함 하 여 다양 한 glial 세포 유형 또한 EGFP 양성 (그림 3 C-3E) 것을 발견 했다.
그림 1 : Lidocaine 유도 약점 범위 예측 변환 효율. 1 %lidocaine AAV 또는 PBS (제어) 직접 IT 주사로 주입 했다. 마우스 희생 되었고 immunohistochemistry에 의해 GFP 식에 대 한 검사를 3 주 후 (점수 0, n = 2; 1, n 점수 = 1; 4, n 점수 = 4; 점수 5, n = 3). 표시는 (A) GFP 경부 (CSC)와 요 추 척수 (LSC) 섹션의 얼룩. (B) GFP LSC에 CSC 강도 얼룩 과도 함의 정도 직접 상관 했다. 각 마크 한 마우스에서 (평균 ± SD) 값을 나타냅니다. 이 그림은 이전 게시4에서 적응 되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2 : 뇌와 척수에 rAAVrh10의 광범위 한 변환. (A) 후 각 전구; (B) 피 질; (C)가 이랑4; 그리고 (D) 해 마;의 CA3 (E) 소 뇌 피 질; (F) 얼굴 핵; (G) 측면 뇌 실; (H) 자 궁 경부 앞쪽 호른4; (나) 흉부 앞쪽 호른4; 그리고 (J) 허리 앞쪽 혼4. 바 규모 = 100 µ m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3 : 직접 intrathecal rAAVrh10 주입 후 다양 한 종류의 세포는 두뇌에 있는 변환. (A) 피라미드 세포; (B) 다 극 신경; (C) microglial 셀; (D) 사이토; 그리고 (E) oligodendrocyte입니다. 바 규모 = 100 µ m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
기술적으로, 깨어 있는 쥐의 IT 주입 하는 동안 몇 가지 중요 한 단계가 있다. 첫째, 적절 한 제스처 및 회사 전체 작업을 통해 쥐의 관리는 배달 하기 위해 필수. 둘째, 그것은 저항 없이 너무 깊게 삽입 하거나 동물 부상 또는 절곡 바늘 팁의 경우 강력한 저항에서 강제로 삽입 하지 필요한 가장 어려운 포인트 바늘 팁과 척추 공간을 느낌입니다. 셋째, lidocaine 인해 일시적인 마비 제공 하지만 객관적인 지표로 그것에 대 한 사출 품질, 더 많은 연습 일관 되 고 성공적인 결과 달성 하기 위해 필요 합니다.
이 보고서에서 AAV, lidocaine 역할 IT 주입 성공의 정도 대 한 지표로 서, 유전자 치료의 효율성에 대 한 예측으로의 배달을 위해 깨어 마우스에 직접 intrathecal 주입 방법을 개발 했습니다. 실험적인 직접 요 추 찔린 처음 에이전트, 특히 마 취약, 진통 및 마 취, 척수에 전달 하기 위해 사용 그리고 CNS 질병에 대 한 유전자 치료에 매우 권장 되었습니다. 쥐 같은 작은 동물에서 IT 주입의 어려움을 감안할 때 우리는 직접 허리 빵 꾸의 두 개의 응용 프로그램을 결합 하 고 현지 마 취약 (리도 카 인, 사용 되었습니다 클리닉에서 광범위 하 게 사출 품질의 객관적인 지표로 서 평가 하 여 선택 과도 하 고 복원 마비)입니다. 또한, 우리 마비 레벨을 통해 AAV의 배달 효율성을 예측 하는 표준 정의 하 고 immunostaining에 의해 이것을 확인 했다. 우리는 잘 주입 된 동물 성인 쥐에서 CNS에 rAAVrh10 EGFP 변환의 높은 수준을 했다 설명 했다.
이전 intrathecal 전달 방법 포함 laminectomy14,15동물과 intrathecal catheterization의 깊은 마 취에 비해, 우리의 현재 메서드는 몇 가지 장점이 있습니다. 첫째, 간단한 허리 빵 꾸 절차 이전 절차 동물 당 ~ 1 시간 걸립니다 반면 각 동물에 대 일 분 안에 완료할 수 있습니다. 둘째, 현재 메서드 마 취와 수술을 고용 하지 않습니다 하 고 따라서 부상4의 위험을 감소 시킨다. 셋째, AAV 솔루션 1 %lidocaine 염 산 염의 추가에 의해 우리 순위 일시적인 마비 다음 주사를 5 포인트 득점 시스템 설립 및 lidocaine에 의해 유도 된 약점의 정도 CNS의 정도 예측 하기 위해 사용할 수 있습니다 입증 각 주사로 변환입니다. 우리의 데이터 잘 주입 된 동물 성인 쥐의 CNS에 rAAVrh10 EGFP 변환의 높은 수준을 입증. 변환 포함 laminectomy 및 intrathecal catheterization 이전 방법의 비슷한 정도로 광범위 한 이기도 합니다. 에 비해 우리 lidocaine을 사용 하 여 사출 품질의 객관적인 지표를 제공 깨어 있는 쥐 펑크 방법 기존, 그리고 실패 한 주입 및 치료 효능에 대 한 후속 간섭에 실명을 방지.
합쳐 1% 포함 된 현재 intrathecal 배달 lidocaine은 쥐에 있는 유전자 또는 약물을 제공 함으로써 CNS 질병에 대 한 실험적인 치료에서 유망한 방법입니다. 또한, 쥐 같은 작은 동물에 주사 그것을 실천 하는 실용적이 고 편리한 접근 이다.
저자는 공개 없다.
이 작품 허베이 지방 부의 인적 자원 및 사회 보장 (CY201605)에서 부여와 자연 과학 재단의 허베이 성 (H2017206101)에서 교부 금에 의해 투자 되었다 그리고 우리는 Guangping가 오, AAV에 대 한 제공에 대 한 박사에 게 매우 감사 이 연구는.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
FVB/NJ mice | Charles River Laboratories China | ||
Lidocaine hydrochloride monohydrate | HEOWNS | 73-78-9 | |
AAV | Viral Vector Core of the Gene Therapy Center at University of Massachusetts Medical School | ||
25 µL Hamilton syringe/27-30 G needle | GASTIGHT | 1702 | |
O.C.T compond | SAKURA | 4583 | |
H 2O 2 | SHUI HUAN PAI | 170401 | |
Goat serum | Solarbio | S9070 | |
Triton X-100 | LIFE SCIENCES | T8200 | |
Rabbit anti-GFP | Life tech | G10362 | 1:333 dilution |
The second antibody (goat-anti rabbit) | Jackson Immuno Research | 111-005-144 | 1:1,000 dilution |
VECTASTAIN ABC REAGENT | Vector Lab | PK-6100 | |
ImmPACT DAB Peroxidase Substrate Kit | Vector Lab | SK-4105 | |
Mounting medium for fluorescence with DAPI | Vectorshield | H-1200 | |
NaCl | Yong Da Chemical | ||
NaH2PO4·2H2O | Yong Da Chemical | ||
Na2HPO4·12H2O | Yong Da Chemical | ||
Paraformaldehyde | Yong Da Chemical | 307699 | |
Adhesion Microscope Slides | CITOGLAS | 17083 | 25 mm x 75 mm |
SUPER-SLIP MICRO-GLAS | Electro Microscopy Siences | 72236-60 | 24 mm x 60 mm |
15 mL Centrifuge tube | CORNING | 430790 | |
96 well cell culture cluster | Coster | 3599 | |
24 well cell culture cluster | Coster | 3524 | |
70% Ethanol | WEN ZHI | ||
Gauze | Wei AN | 05171112 | 8 cm x 10 cm x 12 cm |
1 mL syringe | Hong Da | ||
Microtubes | Plasmed | ||
Micropipet | eppendorf | ||
Peppet tips | Rainin | ||
Centirifuge | eppendorf | 5427R | |
Regerator | Haier | BCD-539WT | |
Filter | MILLEX GP | R4PA42342 | |
Pump | LongerPump | BT-100-2J/YZ1515X | |
Microscope | Olympus | BX53 | |
Freezing-microtome | Leica | CM1520 |
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