Method Article
このプロトコールでは、サンプル膨張ハイドロゲル化学とラベルフリーの化学特異的刺激ラマン散乱顕微鏡を組み合わせることで、生体サンプルでラベルフリーの超解像体積イメージングを実現する方法を説明しています。追加の機械学習画像セグメンテーションアルゴリズムにより、抗体標識のない組織でタンパク質特異的な多成分画像が得られました。
蛍光顕微鏡、特に超解像顕微鏡の普遍的な利用は、現代生物学に関する知識を大きく進歩させました。逆に、蛍光法における蛍光色素の標識要件は、蛍光プローブの光退色や不均一な標識、サンプル処理の長期化など、大きな課題をもたらします。このプロトコルでは、腫れた組織の振動イメージングと分析(VISTA)の詳細な作業手順が提示されます。VISTAは、蛍光色素に関連する障害を回避し、78nmまでの空間分解能で生体サンプルのラベルフリー超解像体積イメージングを実現します。この手順は、細胞や組織をハイドロゲルに埋め込み、ハイドロゲルサンプルハイブリッドを等方的に拡大し、刺激ラマン散乱顕微鏡による振動イメージングにより内因性タンパク質分布を可視化することで確立されます。この方法は、細胞とマウスの脳組織の両方で実証されています。相関性の高いVISTA画像と免疫蛍光画像が観察され、イメージング特異性のタンパク質起源が検証されました。このような相関関係を利用して、機械学習ベースの画像セグメンテーションアルゴリズムを訓練し、ラベルフリーのマウス脳画像から核、血管、神経細胞、樹状突起の多成分予測を実現しました。この手順は、細胞内の病理学的ポリグルタミン(polyQ)凝集体および脳組織中のアミロイドベータ(Aβ)プラークを高スループットで調査するためにさらに適応され、大規模な臨床サンプルの可能性を正当化しました。
光学イメージング法の開発は、細胞内タンパク質から臓器全体まで、さまざまなスケールの標的について前例のない空間的および時間的情報を提供するため、現代生物学の理解に革命をもたらしました1。その中でも、蛍光顕微鏡法は最も確立されており、高い吸光係数と量子収率2を持つ有機色素の大規模なパレット2、使いやすい遺伝学的にコードされた蛍光タンパク質3、ナノメートルスケールの構造をイメージングするためのSTED、PALM、STORMなどの超解像法4,5があります.さらに、膨潤性ポリマーハイドロゲル6,7,8に埋め込まれた標本を拡大するサンプルエンジニアリングと保存化学の最近の進歩により、従来の蛍光顕微鏡での回折限界以下の分解能が可能になります。例えば、一般的な膨張顕微鏡(ExM)は、4倍の等方性サンプル膨張7により、画像の解像度を4倍に効果的に向上させます。
その利点にもかかわらず、超解像蛍光顕微鏡は、蛍光色素の標識に由来する制限を共有しています。まず、蛍光色素の光退色と不活性化は、反復的および定量的な蛍光評価の能力を損ないます。光退色は、光が電子を電子的に励起した状態に送り続けるときに避けられないイベントです9。次に、蛍光色素を目的のターゲットに標識することは、必ずしも簡単な作業ではありません。例えば、免疫染色は長くて手間のかかるサンプル調製プロセスを必要とし、イメージングのスループットを妨げます10。また、不均一な抗体標識、特に組織の深部11によるアーチファクトを導入する可能性もあります。さらに、目的のタンパク質の蛍光色素を標的とする適切な標識戦略は未発達である可能性があります。例えば、Aβプラーク12に対する有効な抗体を見つけるためには、広範なスクリーニングが必要でした。コンゴレッドのような小さな有機色素は、特異性が限られていることが多く、Aβプラークの芯のみを染色します。したがって、蛍光色素標識の欠点を回避し、細胞から組織、さらには大規模なヒトサンプルまで補完的な高解像度イメージングを提供するラベルフリーの超解像モダリティを開発することが非常に望ましいです。
ラマン顕微鏡は、化学特異的な構造に対してラベルフリーのコントラストを提供し、励起された振動遷移13を調べることにより、他の方法では見えない化学結合の分布をマッピングします。特に、ラベルフリーまたは微小標識サンプル上の誘導ラマン散乱(SRS)イメージングは、蛍光顕微鏡法と同様の速度と分解能を有することが実証されています14,15。例えば、健康な脳領域は、ヒトおよびマウス組織において腫瘍浸潤領域から容易に区別されている16,17。Aβプラークは、標識なしで新鮮凍結脳切片上のタンパク質CH3振動(2940cm-1)およびアミドI(1660cm-1)を標的とすることによりも明確に画像化されました18。したがって、ラマン散乱は、蛍光色素の限界を克服する堅牢なラベルフリーコントラストを提供します。そこで問題となったのは、ラマン散乱を使用して超解像能力をどのように達成できるかということであり、これにより、生体試料のナノスケールの構造詳細と機能的意味を明らかにすることができました。
エレガントな光学機器を用いたラマン顕微鏡の超解像を達成するために広範な努力が払われてきたが、生物学的サンプルの分解能向上はかなり限られてきた19,20,21。ここでは、最近の研究22,23に基づいて、サンプル拡張戦略と誘導ラマン散乱を組み合わせた超解像ラベルフリー振動イメージングのためのプロトコル、Vibrational Imaging of Swelled Tissues and Analysis(VISTA)を紹介します。まず、細胞および組織を、最適化されたタンパク質-ヒドロゲルハイブリダイゼーションプロトコルを通じてハイドロゲルマトリックスに包埋した。次に、ハイドロゲル組織ハイブリッドを界面活性剤が豊富な溶液でインキュベートして脱脂し、続いて水中で膨張させました。次に、拡大したサンプルを、保持された内因性タンパク質からのCH3振動を標的とすることにより、通常のSRS顕微鏡でイメージングしました。VISTAは、ラベルフリーのイメージング機能により、蛍光色素の標識から生じる光退色や不均一な標識を回避し、サンプル処理のスループットが大幅に向上します。これは、報告された最初のサブ100 nm(78 nmまで)のラベルフリーイメージングでもあります。典型的なSRSセットアップ22,24以外の追加の光学計装は必要なく、容易に適用できます。相関VISTA画像と免疫蛍光画像を用いて、確立された機械学習画像セグメンテーションアルゴリズムを学習させ、シングルチャネル画像からタンパク質特異的なマルチプレックス画像を生成した25,26。さらに、マウス脳組織におけるAβプラークの探索にも応用し、細胞核と血管に囲まれたプラークコアと末梢フィラメントの微細な観察から、サブフェノタイピングに適した全体像を得ることができました。
この研究で実施されたすべての動物手順は、カリフォルニア工科大学の施設用動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認され、プロトコル手順は関連するすべての倫理規則に準拠していました。
1. 固定およびサンプルの増殖のための原液の調製
2. 哺乳動物細胞サンプルの調製
3. マウス脳サンプルの調製
4. 細胞および組織サンプルのハイドロゲル包埋、変性、および増殖
5. 拡大した細胞および組織サンプル中の内因性タンパク質分布のラベルフリーイメージング
6. 免疫標識および拡大組織サンプルの相関VISTAおよび蛍光イメージング
7. U-Netアーキテクチャの構築・訓練・検証
注: Linux でのインストールをお勧めします。>10GBのRAMを搭載したグラフィックカードが必要です。
8. VISTAとU-Netの併用によるラベルフリー画像におけるタンパク質特異的多重性
イメージングおよび分析法の動作原理を確立した後、膨張率を評価し、サンプル処理中の等方性膨張を確保するために、画像レジストレーションが行われました(図1A、B)。未処理のサンプルとVISTAサンプルの両方を、内因性タンパク質のCH3に由来する2940 cm-1の結合振動を標的にしてイメージングしました。未処理のサンプルでは、核のようなタンパク質に富む構造は、周囲の組織からの圧倒的な脂質含有量のために暗かった22(図1A)。脱脂処理を含むサンプル処理後、得られた画像は、コントラストが逆になった同じ特徴を示しました(図1B)。核と血管の形状と相対的な位置はまったく変更されておらず(図1A、B、番号付き構造)、処理が等方性プロセスであることが確認されました。対応する核のサイズを比較することにより、この方法は、未処理のサンプルと比較して脳組織サンプルの3.4倍の拡大を達成すると結論付けました22,23。
脳組織の拡大率を知ることで、VISTAは、以前は解決できなかったラベルフリーのSRS画像の新機能を解決できるようになりました。アクチンおよびチューブリン構造は超解像デモンストレーションのゴールドスタンダードでしたが、アクチンおよびチューブリン構造の分解能向上は、同様のハイブリダイゼーションケミストリーを使用した蛍光ベースのサンプル膨張戦略によって十分に特徴付けられています28。さらに、この手法では、シグナルが内因性タンパク質の全アンサンブルから来ているため、特定のアクチン/チューブリン構造のイメージングは、チューブリンのような細胞骨格構造を明確に区別するのに十分なコントラスト(シグナル対バックグラウンド比)を持たないため、実現性が低くなります。そこで、他のナノスケール構造のイメージングを追求することにしました。マウスの皮質から150 nmまで特徴を捕捉できることを示しました(図1C、D)。ニューロン樹状突起の周りの分散パターンに基づいて、観察された小さな構造は、146nmのサイズを持つ樹状突起脊椎頭部7である可能性が高い(図1D)。さらに、この方法は、厚さが約100 nm29,30であると考えられているAβプラークの線維構造を画像化するために使用されました。実際、この方法を用いて、代表的な拡散性Aβプラークにおいて~130 nmの線維構造を分解できることが実証されました(図1E、F)。
VISTAは効果的なタンパク質保持とタンパク質イメージングを可能にするため22、核内のタンパク質リッチ核小体と培養HeLa細胞のサイトゾル内のリボン状細胞骨格構造を明確に区別できます(図2A、矢印)。この方法は、哺乳類細胞で一過性に発現するポリグルタミン(polyQ)凝集体の研究にさらに適用されました(図2B、C)。その結果、凝集体は、予想通り高密度に充填された構造として、複数の反復サンプル23にわたって膨張前後の同じ凝集構造を比較することにより、等方的に膨張したことが確認された。この方法により、通常解像度のSRS画像にはない/ぼやけている高解像度の構造が得られました。VISTA凝集体画像では、polyQ凝集体の周辺に線維様の突起があり、中央に中空構造があることが明らかになりました(図2B、矢印)。突起が細胞質の内容物にシームレスに付着するという観察は、凝集体が細胞質の機能タンパク質と関与していることを示唆している可能性があります。後から考えると、固定試薬のホルムアルデヒドとヒドロゲルモノマーのアクリルアミドおよびアクリル酸ナトリウムはすべて、タンパク質凝集体に出入りする小さな分子であるため、高密度の凝集体を膨張させる能力も妥当になります。凝集体がモノマーと共重合してヒドロゲルになると、膨張プロセスは通常どおり進行するはずです。
その後、この手法をマウスの脳組織に適用し、さらにその範囲を広げました。組織サンプルには、透過性の減少、厚さの増加、不均一な機械的強度などの課題がありますが、この方法を使用してマウスの脳サンプルをうまくイメージングすることができました(図2D)。細胞サンプルと同様に、細胞核、血管、ニューロンプロセスなどのタンパク質に富む構造が観察されました(図2D、矢印)。脳組織の限界は、3.4倍の拡大しか達成されなかったため、脳サンプルの有効分解能は99nm22になることです。SRSシグナルの構造起源は、相関色素と抗体染色により検証し、DAPIは核を染色し、レクチンは血管を染色しました(図2E、F)。ニューロンの細胞体とプロセスは、NeuNおよびMAP2からの免疫蛍光法によっても描写されました22。相関蛍光画像をグラウンドトゥルースとして利用する訓練された畳み込みニューラルネットワーク(CNN)アルゴリズムにより、シングルチャネル画像は、マルチプレックス画像22のために特定のタンパク質構造チャネルに分割された。
最後に、アルツハイマー病の動物モデルとしてよく知られている5xFADマウスの脳内の病理学的Aβプラークを調べることを目指しました31。手順に従った後、脳組織に沈着したアミロイドプラークの3次元SRS画像を取得しました(図2G)。高タンパク質濃度の点が観察され(図2G、オレンジ色の矢印)、Aβプラークのコアを表しています。このような画像は、Aβコアのみを標的とする従来のコンゴレッド染色では見過ごされがちな周辺Aβプラーク(図2G、マゼンタの矢印)も明らかにしました。訓練されたセグメンテーションアルゴリズムと組み合わせると、ラベルフリー画像を標的特異的なマルチプレックス画像に変換でき(図2F)、免疫蛍光法23 と共同で実施して、プラーク-アストロサイトおよびプラーク-ミクログリア微小環境相互作用32 を包括的かつハイスループットな方法で研究することができる。
図1:サンプル拡大戦略により、マウス脳組織における超解像ラベルフリーイメージングが可能に (A) マウス海馬のCH3 周波数でのSRS画像。(B)マウス海馬の同じ視野内のVISTA画像。ラベル付き領域は、治療前と治療後に対応する特徴を示しています。(C)より細かい特徴を示す正常なマウス皮質のVISTA画像。挿入図は、関心領域を示します。(D)膨張したサンプルで観察された微細構造の分解能定量化。497nmのFWHMは、3.4倍の膨張で146nmの有効分解能に相当します。(E)マウス脳組織におけるアミロイドベータ(Aβ)プラークのVISTA画像。挿入図は、拡大された関心領域を示しています。(F)膨張したアミロイドベータプラークの押出繊維構造の分解能定量化。442nmのFWHMは、3.4倍の膨張で130nmの有効分解能に相当します。スケールバー = 20 μm. この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:VISTAによって可能になった細胞および組織におけるラベルフリーの超解像体積イメージング(A)正常なHeLa細胞の体積画像。アローヘッド:細胞骨格様構造。(B)HeLa細胞で発現したpolyQ凝集体の単一のzスライス画像。矢印:中空構造とフィブリル押出成形。(C)x-y、x-z、およびy-z方向の最大強度投影は、polyQ凝集体含有セルの体積ビューを示しています。(D)マウス脳の冠状切片の体積画像。矢印:ニューロンのプロセス。(E)同じサンプル領域での核の蛍光画像(DAPI染色)は、VISTA画像の核と1対1の相関を示しています。(F)同じ試料領域の血管(抗レクチン)の蛍光画像は、VISTA画像の血管構造と1対1の相関を示しています。(G)脳組織を含むAβ(オレンジ色の矢印)の体積画像。ピンクの矢印:周辺のAβプラーク。(H)訓練された画像セグメンテーションアルゴリズムによって予測された(G)からの多重画像。v-congo redはAβプレートのコアを表しています。v-GLUT1は血管を表します。v-DAPIは原子核を表します。v末梢プラークは、コンゴレッド色素で染色されていないAβプラークを表しています。スケールバー = 10 μm。長さのスケールは、拡張前の距離で表されます(さまざまな拡張比率に合わせて調整されます)。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
要約すると、細胞や組織のタンパク質に富む細胞および細胞内構造を画像化するためのラベルフリーモダリティであるVISTAのプロトコールを紹介します。この方法は、ハイドロゲルに包埋された細胞や組織のタンパク質から内因性CH3を標的とすることにより、生体サンプル中の78 nmまでの効果的なイメージング分解能を達成し、Aβプラーク中のハンチンチン凝集体およびフィブリルのわずかな押し出しを解決します。この技術は、ラベルフリーイメージングモダリティ22で100nm未満の解像度を報告した最初の例です。既存の拡張方法6,7,8,28,33,34と比較して、この技術はラベルフリーSRSイメージングのメリットを継承しているため、レーザー照明による光退色、不活性化、または消光がありません。さらに、ラベルフリーの方法として、DISCO 12,35 や ExM33,34 などの方法に常に関与する、要求が厳しく、非効率的で、アーティファクトを引き起こす可能性のある抗体標識を回避し、ハイスループットなサンプル調製と組織全体の均一なイメージングを提供します。ラベルフリーアプローチにおける多重性の欠如に対処するために、CNNベースの画像セグメンテーションアルゴリズム25で実装されたVISTAは、脳組織22に任意の標識なしでタンパク質特異的な多成分画像を提供する。この方法はさらに5xFADマウス脳に適用され、凝集体、コアおよび末梢線維、核、および血管の全体像の体積ビューを可能にした23。私たちは、VISTAが霊長類やヒトの脳スライスなどのより大きなサンプルに対しても十分にスケールアップし、最終的には臨床研究に役立つと想定しています。
この方法を成功させるためには、3つの重要なステップがあります。まず、ハイドロゲルサンプルハイブリッドにおける最大タンパク質保持が重要であり、必要である22。この目標を達成するために、固定条件を高濃度のアクリルアミド28を含有するように変更し、タンパク質消化手順を高濃度の界面活性剤脱脂処理に置き換えることで、タンパク質消化によるタンパク質損失を大幅に防ぎました。AAの添加は、タンパク質の分子間架橋を消光し、タンパク質消化を伴わない等方性拡大を可能にする28。以前の研究では、アクリルアミドハイドロゲル中の脂肪族CH結合が一定のバックグラウンドのみを生じさせることを証明するために、重水素化モノマーが使用されました22。次に、SRSと免疫標識との間の適切な相関関係、および異なるタンパク質標的間の区別を確立する必要があります。この手法は、モノクロSRS画像に多重性を追加するために画像セグメンテーションアルゴリズムに依存しているため、免疫蛍光法における異なるタンパク質ターゲット間のクロストークは、画像の品質を大幅に損なうことになります。SRS画像で明らかなタンパク質に富む構造を細心の注意を払って選択し、それらに対応する免疫蛍光特性を検証しました。第 3 に、モデルを使用して新しい SRS データ セットから蛍光パターンを予測する前に、トレーニング済みの機械学習モデルの有効性と信頼性を証明する必要があります。トレーニング セットに含まれていない個別の特徴は、予測に問題を引き起こす可能性があります。予測結果が満足のいくものでない場合、ユーザーはトレーニングにより多くのデータを含めるようにし、トレーニング セットに含まれていないパターンの予測を避ける必要があります。Pearsonのテストセットと検証セットの相関も、予測22,23の品質を確保するために監視する必要があります。トレーニングには、少なくとも 100 個の対応する画像セットを用意することをお勧めします。
この方法は生物学的研究に計り知れない可能性を秘めていますが、創造的な解決策を待っている一定の制限があります。何よりもまず、感度をさらに向上させる必要があります。ラベルフリーの模擬ラマン散乱の検出限界は低ミリモル範囲であり、サンプルの3次元での等方性膨張は化学結合を大幅に希釈し、シグナルを弱めます。したがって、私たちは内因性タンパク質の全アンサンブルをイメージングすることに限定されており、特異性と多重性に欠けています。VISTAと超高感度SRSを組み合わせると、これを低存在量のタンパク質を画像化し、直交する化学結合を標的とすることにより超解像レベルで凝集構造と組成を研究するために拡張できる可能性があります37。第二に、現在の脳組織の3.4倍の拡張比では、解像度は中程度の改善にとどまります。以前は区別できなかったAβプラークの小さな押し出しをすでに解決していますが、より高い分解能が常に望まれます。この場合、タンパク質アンカーとハイドロゲル化学の革新が大きな恩恵を受けるでしょう。例えば、異なるゲル配合により、さらに高い画像解像度38,39,40に対してより大きな膨張比を可能にすることができる。サンプル処理の新しい手順により、広く利用可能なFFPE組織学サンプル38,41に適用できるようになり、大規模な臨床研究にさらに適しています。
著者は、競合する利益を宣言しません。
私たちは、ソフトウェアサポートについてCaltech Biological Imaging Facilityに感謝します。L.W.は、国立衛生研究所(NIH Director's New Innovator Award、DP2 GM140919-01)、アムジェン社(Amgen Early Innovation Award)、およびカリフォルニア工科大学からのスタートアップ資金の支援に感謝しています。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.0 M Tris pH 8 | Sigma-Aldrich | 648314 | |
16% Paraformaldehyde | Electron microscopy science | 15710 | diluted to 4% in PBS |
25x water immersion objective | Olympus | XLPLN25XWMP2 | NA 1.05 |
5XFAD Mice | Mutant Mouse Resource and Research Centers and the Jackson Laboratory | B6SJL-Tg (APPSwFlLon, PSEN1*M146L*L286 V) 6799Vas/Mmjax | Alzheimer brain |
60x water immersion objective | Olympus | UPLSAPO60XWIR | NA 1.2 |
Acrylamide | Sigma-Aldrich | A9099 | |
ammonium persulfate | Sigma-Aldrich | A3678 | |
anti-MAP2 | Cell Signaling Technology | 8707 | |
anti-NeuN | Cell Signaling Technology | 24307 | |
borosilicate coverslip #1.5 | Fisher Scientific | 1254581 | |
C57BL/6J Mice | Jackson Laboratory (JAX) | 664 | Normal mice |
D2O | Sigma-Aldrich | 151882 | for SRS calibration |
DAPI | Thermo Fisher | D1306 | |
DMEM | GIBCO | 10566-016 | |
FBS | GIBCO | A4766 | |
glass slide 3" x 1" x 1 mm | VWR | 16004-430 | |
goat anti-chicken IgY, Alexa Fluor 647 | Invitrogen | A-21449 | |
goat anti-mouse IgG, Alexa Fluor 647 | Invitrogen | A-21236 | |
goat anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A-11034 | |
goat anti-rat IgG, Alexa Fluor 568 | Invitrogen | A-11077 | |
Grace Bio-Labs Press-To-Seal silicone isolators | Sigma-Aldrich | GBL664108 | microscope spacer |
Htt-97Q-GFP Plasmid | Gift from Prof. R. Kopito and Prof. F.-U.Hartl. | ||
Laser scanning microscope | Olympus | FV3000 | laser scanning confocal microscope |
lipofectamine 3000 | Thermo Fisher | L3000001 | transfection agent |
Lycopersicon Esculentum Lectin DyLight®594 (lectin) | Vector Laboratories | DL-1177-1 | |
Microscope spacer | Grace Bio-Labs | 621502 | |
N,N′-methylenebisacrylamide (BIS) | Sigma-Aldrich | M1533 | bought as 2% solution in water |
Nuclease free water | Thermo Fisher | 10977-015 | |
Penicillin-Streptomycin | GIBCO | 15140-122 | |
poly-strene beads | Sigma-Aldrich | 43302 | for resolution characterization |
Sodium Acrylate | Sigma-Aldrich | 408220 | |
sodium dodecyl sulfate | Sigma-Aldrich | 71725 | |
soft-wool paint brush #3 | TANIS | 000333 | |
SRS Laser | A.P.E | picoEmerald | 2ps pulse width |
tetramethylethylenediamine | Sigma-Aldrich | T9281 | |
Tissue culture flask 25 cm2 | Corning | 430639 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | |
Tween-20 | Sigma-Aldrich | P9416 | |
tweezer | Fine Science Tool | 11295-51 | |
Vibrotome | Leica | VT1200S | the vibratome |
このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します
許可を申請This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved