Method Article
このプロトコルは、カエネラブディティスエレガンスの腸透過性を測定する方法を記述します。この方法は、腸内細菌とその宿主との相互作用に関連する腸の健康に関する基礎生物学的研究や、漏出性腸症候群および炎症性腸疾患を治癒するためのプロバイオティクスおよび化学薬品を同定するためのスクリーニングに役立ちます。
生体では、腸の透過性が多くの炎症性腸疾患(IBD)につながる深刻な症状です。カエノラブディティス・エレガンスは、寿命が短く、透明性、費用対効果、動物倫理の問題がないため、アッセイシステムとして広く使用されている非哺乳動物モデルです。本研究では、高スループット画像解析システムを用いたC.エレガンスの腸透過性に対する異なる細菌および3,3'-ジインドリルメタン(DIM)の影響を調べる方法を開発した。ワームは異なる腸内細菌に感染するか、DIMで48時間治療し、一晩フッ素セインイソチオシアネート(FITC)-デキストランを供給した。次いで、虫体内部の蛍光画像と蛍光強度を比較して腸透過性を調べた。この方法はまた、動物モデルの腸透過性に影響を与えるプロバイオティクスおよび病原性腸細菌を同定する可能性があり、腸の透過性および腸の健康に有害または健康増進化学物質の影響を調べるのに有効である。しかし、このプロトコルはまた、この方法は主にフェトチピック決定に使用されるため、特に病気を制御するために変更される遺伝子を決定するために、遺伝的レベルでいくつかのかなりの制限を有する。さらに、この方法は、どの病原性基質が炎症を引き起こすか、感染中にワームの腸の透過性を高めるかを正確に決定することに限定される。そこで、変異型細菌や線虫を用いた分子遺伝機構の調査や細菌の化学成分分析など、さらに詳細な研究が必要であり、腸透過性を決定する上で細菌や化学物質の機能を十分に評価することが求められている。
腸透過性は、腸内微生物叢および粘膜免疫に関連する主要な障壁の1つと考えられており、腸内微生物叢修飾、上皮障害、または粘液層変化1などのいくつかの要因によって影響を受ける可能性がある。最近の論文では、腸細胞層2全体の蛍光フラックス率を分析して培養したヒト腸細胞の腸透過性を測定する有効なプロトコルが報告されているが、FITC-dextran染色を用いて、特にC.エレガンスにおいて線虫の腸透過率を測定するのに適した手順を提示する研究論文は少ない。
ナイル赤3とエリオグラウシン二ナトリウム(またはスマーフアッセイ)4、5を用いてC.エレガンスにおける腸透過性を測定するための代表的なプロトコルが2つあります。このプロトコルでは、ナイル赤(MW = 318.37)およびエリオグラウシン二ナトリウム(MW = 792.85)よりもはるかに高い分子量を有するFITC-dextran(平均分子量10,000)を使用しました。FITC-デキストランは、ナイル赤やエリオグラシン二ナトリウム染料よりも、腸層を通して吸収される炭水化物などの実際の高分子栄養素に似ています。エリオグラウシン二ナトリウム(青スマーフ色素)を供給するC.エレガンスの腸透過性は、蛍光顕微鏡なしで容易に評価することができる。しかしながら、スマーフアッセイでは、標準化の欠如により腸透過性の定量分析が困難であり、手動で評価されるべきである4、5。ナイル赤アッセイの場合、ナイル赤色はまた、細胞内の脂質液滴を染色し、C.エレガンス6における腸透過性の正確な決定を妨げる可能性がある。本プロトコルは、非特異的脂質染色を回避しながら、様々な腸内細菌および化学物質で処理されたC.エレガンスにおける腸透過性の迅速かつ正確な定量分析を可能にする。
C.エレガンスは、その手頃な価格、簡単な操作、限られた動物倫理の問題、および迅速な実験7のために有益である短寿命のために生物学的分野の典型的なモデルです。特に、C.エレガンスゲノム全体が公表された後、C.エレガンスゲノム中の遺伝子の40%近くがヒト疾患を引き起こす遺伝子に対して正交的であることが判明した8.さらに、透明体は、細胞イベントの研究や細胞生物学における蛍光用途、例えばDAPIまたは免疫組織化学9による幹細胞染色に有利である生物内部の観察を可能にする。C.エレガンスは、腸内微生物叢と宿主との相互作用を研究するための実験動物としてしばしば使用される。加えて、C.エレガnsは、腸の健康を促進する食物化学物質10、11、12ならびに腸の健康を促進する食事化学物質をスクリーニングするために使用される。
緑膿菌および腸球菌は、消化管系に悪影響を及ぼすよく知られた腸内細菌であり、特に腸管15、16の大腸上皮細胞である。したがって、これらの細菌によって引き起こされる腸透過性を測定することは、細菌の炎症や感染によって引き起こされる損傷を回復し、軽減することができる新薬のスクリーニングおよび開発のために必要である。このプロトコルでは、これらの腸内細菌がC.エレガンスの腸透過性に及ぼす影響を試験した。
我々はまた、C.エレガンスの腸透過性に関する化学物質をテストするための最適化されたプロトコルを報告する。この目的のために、DIMはブラッシカ食品植物に存在するインドール-3-カルビノール由来の生理活性代謝産物化合物であり、マウス17、18におけるIBDに対する治療効果を有することが報告されているため、モデル化学薬品として3,3'-ジインドリルメタン(DIM)を使用した。また、最近、DIMが培養したヒト腸細胞およびモデル線虫C.エレガンス19の両方において腸透過性機能障害を改善することを発見した。
本研究では、3つの異なる実験条件を用いった。まず、異なる細菌、P.エルギノーサおよびE.フェカリスが腸透過性に及ぼす影響を測定した(図1)。次に、生きた熱不活性化P.エルギノーサが腸透過性に及ぼす影響を測定した(図2)。第3に、P.エルギノーサを与えたC.エレガンスの腸透過性に対するDIM(モデル化学物質)の影響を測定した(図3)。
本研究の目的は、様々な腸内細菌や化学物質による治療によって変化するC.エレガンスの腸透過性を測定する最適化されたプロトコルを開発することであった。
1. P.アルギノーサPAO1および大腸菌OP50培養の調製
2.腸球菌フェカリスKCTC 3206培養の調製
3. 熱不活性化大腸菌OP50及び熱不活性化P.緑膿菌PAO1培養物の調製
4. C.エレガンスの腸透過性に対する異なる細菌の影響を試験するための線虫増殖培地(NGM)プレートの調製
5. P.エルギノーサを用いったC.エレガンスFRBの腸透過性に対する化学物質(DIM)の影響を試験するためのNGMプレートの調製
6. 年齢同期C.エレガンスの調製
7. 細菌またはDIMおよびFITC-デキストラン供給の治療
8. オペレッタイメージングシステムによるイメージングC.エレガンスとFITC-デキストラン蛍光取り込みによる腸透過性の測定
注:蛍光ステレオ顕微鏡は、オペレッタシステムの代わりに画像解析に使用できます。
9. C.エレガンスのFITC-デキストラン蛍光の統計的解析
P.アルギノーサPAO1でインキュベーションした後、C.エレガンスは、他の2つの細菌株とインキュベーションした後に示された蛍光と比較して、ワーム体内におけるFITC-デキストラン蛍光の有意な増加を示した(図1)。大腸菌OP50、P.アルギノーサPAO1、およびE.ファカリスKCTC3206を供給したワームの蛍光強度は、それぞれ100.0±6.6、369.7±38.9、および105.6±10.6%であった。このデータは、P.エルギノーサが上皮腸関門により重要な損傷を引き起こしたことを強調し、従って、ワームは腸の透過性の劇的な増加を示した。この結果に基づいて、FITC-dextranは腸層を容易に貫通することができるので、P.エルギノーサはDIMの効果をスクリーニングするための潜在的な病原体として選ばれた。E.faecalisは、大腸上皮細胞DNA15に損傷を与える細胞外スーパーオキシドおよび過酸化水素を産生することができる腸病原体であるが、場合によっては、E.faecalisは、いくつかの病原体25、26に対してバクテリオシンを産生する能力による潜在的なプロバイオティクス細菌としても知られている。プロバイオティクスの機能は、上皮表面への付着、ヒト消化管における持続性、腸病原体26に対する免疫刺激および拮抗活性を含む。したがって、E.フェカリスでインキュベートされたワームの腸透過性は、車両制御ワームのそれと比較して変わらなかった。この結果は、蛍光強度の増加によって感染量を研究できることを示し、そしてP.エルギノーサは、他の株よりも腸透過性が高いことを引き起こす。
図2は、ワーム体内におけるFITC-デキストラン蛍光の強度に基づく生きたP.エルギノーサPAO1との違いを示す。蛍光画像と統計データの両方は、病原体が熱不活性化後に線虫に対する毒性を引き起こさなかったことを示しています。P. 緑膿性は、エキソトキシンAを産生することができる — 多くの動物のために致死的である強力な細胞外細胞毒素27.エキソトキシンAは、45°C〜60°28で加熱することにより急速に廃止することができる。したがって、熱不活性化P.エルギノーサは、ワームの腸上皮の透過性を損なうことができなかった。P.エルギノーサPAO1培養の上清は腸透過性に著しく損傷を与え、従って、P.エルギノーサ細胞全体の代わりに培養上清を使用して腸透過性機能障害19を誘導することができる。上清には、内毒素、エキソトキシンA、およびリポ多糖類29が含まれており、これらの成分は細胞毒性30、31を誘導することが知られている。従って、上清のこれらの成分は腸透過性に影響を及ぼす可能性があり、C.エレガンスにおける腸透過性に対するエキソトキシン及びリポ多糖類の直接的な影響は確認しなかった。
48時間のDIM共処理は、P.アルギノーサ単一治療と比較して、ワームの腸内のFITC-デキストラン蛍光強度を有意に減少させた(図3C,D)。一方向ANOVAとTukeyの多重比較試験による統計分析は、DIMで処理した後、P.アルギノーサの蛍光強度と比較して平均蛍光強度が有意に減少したことを示した。P.アルギノーサ-のみ、P.アルギノーサプラスDIMで処理したワームの蛍光強度は、それぞれ486.3±41.7および414.2±25.0%であった(図3E)。この結果に基づいて、DIMは細菌感染によって引き起こされる腸透過性機能障害を治癒するための良好な天然物と考えることができる。この結果は、DIMが腸細胞における細胞炎症を減衰させることができ、腸19の透過性を低下させることを示した。この結果は、マウスモデルで得られた結果と同様であり、DIMは結腸32における炎症の有意な減少を示した。
図1:C.エレガンスの腸透過性に対する異なる細菌の影響明視野、FITC蛍光(緑チャネル)、およびマージされた画像を含むワームの顕微鏡画像。FITC-デキストラン供給を伴わない(A)大腸菌OP50からのワームの顕微鏡画像、(B)FITC-デキストラン供給を伴う大腸菌、(C)P.P.セルギノサPAO1、FITC-デキストラン供給を有する(D)E.フェカリスKCTC3206。 スケール バー = 1 mm (白)、および 200 μm (黒) です。年齢同期L4幼虫を大腸菌(A,B)、P.エルギノーサ(C)、およびE.フェカリス(D)で播種したNGMプレートで48時間インキュベートした。次いで、車両制御(A)を除き、FITC-デキストラン(B-D)を含むプレートにワームを移した。(E)異なる細菌処理のFITC蛍光強度。FITC蛍光の割合が高いほど、腸透過性が高いことを示した。列と誤差範囲は、車両制御との有意差の平均 ± SD. ***P < 0.001 を示します。###P < 0.001 P. アルギノーサPAO1 (ANOVA, n = 5) を与えられた FITC デキストラン処理ワームとの有意差。このグラフは、2つの独立した実験を表しています。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:C.エレガンスの腸透過性に対する生熱および熱不活性化P.エルギノーサPAO1の影響(A)FITC-デキストラン供給なしの生きた大腸菌OP50からのワームの顕微鏡画像、(B)FITC-デキストラン供給を伴うライブ大腸菌、(C)FITC-デキストラン供給を伴うライブP.アルギノーサPAO1、および(D)熱不活性化P.アルギノーザとFITC-デキステロスキナ供給。スケール バー = 1 mm (白)、および 200 μm (黒) です。年齢同期L4幼虫を、生きた大腸菌(A、B)、生きたP.エルギノーサ(C)、熱不活性化P.エルギノーサ(D)で播種したNGMプレートで48時間インキュベートした。次いで、車両制御(A)を除き、FITC-デキストラン(B-D)を含むプレートにワームを移した。(E)FITC蛍光強度は、生と熱不活性化P.アルギノーサPAO1を比較する。列と誤差範囲は、車両制御との有意差を示す平均 ± SD. ***P < 0.001 および **P < 0.01 を示します。###P < 0.001 生きたP. アルギノーサPAO1 (ANOVA, n = 5) を与えられた FITC デキストラン処理ワームとの有意差。このグラフは、2つの独立した実験を表しています。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3:C.エレガンス供給P.エルギノーサの腸透過性に対するDIMの影響FITC-デキストラン供給を伴わない(A)大腸菌OP50からのワームの顕微鏡画像、(B)FITC-デキストラン供給を伴う大腸菌、(C)P.P.アルギノーサPAO1(FITC-デキストラン供給)、および(D)P.アルギノーザおよびDIM(100μM)をFITC-デキストラン供給によるコトリートメント。スケール バー = 1 mm (白)、および 200 μm (黒) です。年齢同期L4幼虫は、生きた大腸菌(A、B)、ライブP.エルギノーサ(C)、ライブP.エルギノーザおよびDIM(D)で播種されたNGMプレートで48時間インキュベートされた。次いで、車両制御(A)を除き、FITC-デキストラン(B-D)を含むプレートにワームを移した。(E)FITC蛍光強度は、C.エレガンスの腸透過性がDIMの影響を受けたことを示す。列と誤差範囲は、車両制御との有意差の平均 ± SD. ***P < 0.001 を示します。###P < 0.001 および##P < 0.01 P.アルギノーサPAO1 (ANOVA, n = 5) を与えられた FITC デキストラン処理ワームとの有意差。このグラフは、2つの独立した実験を表しています。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
自動化された蛍光顕微鏡と定量画像分析を組み合わせたC.エレガンスにおける腸透過性を決定するこの新しい方法を利用することにより、腸内微生物または化学物質によって引き起こされる差異を、特にC.エレガンス腸で生体内で決定することができます。このプロトコルは、腸の透過性の調査に役立ち、その利便性と操作が容易なため、ストレス条件下での活性酸素種(ROS)決定や形態検査など、多くのタスクに適用できます。さらに、この方法は、C.エレガンスにおける複数の病原体に対する治療および予防方法の効果を決定するために使用することができる。特に、有害な細菌および有用な細菌の両方を含む異なる細菌株のメカニズムを調査するための効率的なプロトコルであり得る。類似した構造を有するいくつかの病原体およびプロバイオティクス細菌は、宿主33、34に異なる効果を発揮する。この手順は、細菌が利用しているメカニズムと、標的となる基質が細胞外または細胞内に分泌できる場所を評価する際に役立つ。さらに、この方法は、熱処理が病原体不活性化に重要な役割を果たすという仮説を強化するのにも役立ちます。
ただし、この手順ではいくつかの問題もあります。まず、各プレート内のワームの数は、統計的に意味のある結果と堅牢なワーム検出に重要であるため、70 ~ 90% のコンフルエンシー (ウェルあたり少なくとも 50 個のワーム) をお勧めします。したがって、適切なワームを得るために試験実験を行う必要があります。第二に、プレート特性は、特に底部材料の画像および強度決定の品質に影響を与える重要な要因の1つである。いくつかの高度な実験では、ガラス底は、その優れた光学品質のために蛍光の測定のための最良のオプションです。しかし、価格が高いため、ガラス底ほど品質は高くはありませんが、ポリスチレンボトムがよく使用されます。最後に、C.エレガンスのプレートコーティング方法は最適化を必要とします。この実験では、蛍光取り付け媒体は、組織切片の標識を保存・増強することができるが、板底部のワームを適切に固定することはできないため、塗布した。
このプロトコルには制限があります。C.エレガンスは線虫であるため、ヒト腸細胞単層および哺乳動物における評価などのさらなる実験を行うべきである。この方法では、C.エレガンスのフェチピック変化が病原性細菌および化学物質を供給して決定した。したがって、腸内細菌の病原性またはプロバイオティクス効果の基礎となる分子および遺伝的メカニズムならびに化学物質の治療効果をさらに解明すべきである。病原性細菌感染および化学物質の治療効果によって発揮される特異的シグナル伝達経路は、種々の変異細菌および変異型ワームの両方を用いて評価することができる。さらに、腸内細菌の病原性およびプロバイオティクス効果を担う化学成分を同定するさらなる詳細な研究が有益であろう。
ここでは、FITC-デキストラン摂食を用いて異なる細菌や化学物質で処理されたC.エレガンスにおける腸透過性を測定するための実験プロトコルを報告する。これらのプロトコルは、腸内微生物叢と腸の健康との相互作用を研究するなどの基礎生物学的研究や、腸の健康問題の予防・治療のためのプロバイオティクスや栄養補助食品の開発に役立つと考えています。
著者たちは何も開示する必要はない。
この研究は、韓国科学技術大学院大学の壁内研究助成金(2E29563)によって支援された。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
3,3’-diindolylmethane | Sigma | D9568 | |
90×15 mm Petri dishes | SPL Life Sciences, South Korea | 10090 | |
60×15 mm Petri dishes | SPL Life Sciences, South Korea | 10060 | |
Bactor Agar | Beckton Dickinson | REF. 214010 | |
Formaldehyde solution | Sigma | F1635 | |
Brain Heart Infusion (BHI) | Becton Dickinson | REF. 237500 | |
Caenorhabditis elegans N2 | Caenorhabditis Genetics Center (CGC) | Wild type | |
Cholesterol | Sigma | C3045 | |
Costa Assay Plate, 96 Well Black With Clear Flat Bottom Non-treated, No Lid Polystyrene | Corning Incorporated | REF. 3631 | |
Dimethyl sulfoxide | Sigma | D2650 | |
Enterococcus faecalis KCTC 3206 | Korean Collection for Type Culture | KCTC NO. 3206 | Falcutative anaerobic |
Escherichia coli OP50 | Caenorhabditis Genetics Center (CGC) | ||
Fluorescein isothiocyanate - dextran | Sigma | FD10S | |
Harmony software | PerkinElmer | verson 3.5 | |
Luria-Bertani LB medium | Merck | VM743185 626 1.10285.5000 | |
Magnesium sulfate heptahydrate | Fisher Bioreagents | BP2213-1 | |
Fluoromount aqueous mounting medium | Sigma | F4680 | |
Operetta CLS High-Content Analysis System | PerkinElmer | HH16000000 | |
Peptone | Merck | EMD 1.07213.1000 | |
Pseudomonas aeruginosa PA01 | Korean Collection for Type Culture | KCTC NO. 1637 | |
Sodium Chloride | Fisher Bioreagents | BP358-1 | |
Stereo Microscope | Nikon, Japan | SMZ800N | |
Yeast extract | Becton Dickinson | REF. 212750 |
このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します
許可を申請This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved