単離されたミトコンドリアのフローサイトメトリーによる外膜タンパク質の免疫検出

ここで説明するフローサイトメトリーによりげっ歯類組織分析から単離されたミトコンドリアの免疫標識によってミトコンドリア外膜タンパク質を検出および定量するための方法である。この方法は、ミトコンドリア亜​​集団の機能的側面を評価するために拡張することができる。

動物組織内のミトコンドリア外膜タンパク質成分を検出し、監視するための方法は、ミトコンドリアの生理学および病態生理学を研究するために不可欠である。このプロトコルは、齧歯類の組織から単離されたミトコンドリアは、免疫標識およびフローサイトメトリーによって分析する技術が記載されている。ミトコンドリアは、齧歯類脊髄から単離され、ミエリン、神経組織から調製されたミトコンドリア画分の主要な汚染物質を除去するために急速な濃縮工程に供される。単離されたミトコンドリアは、その後、選択した抗体と、蛍光結合二次抗体で標識する。フローサイトメトリーによる分析は、免疫標識タンパク質の検出および定量に続いて、ミトコンドリア特異的色素で染色することにより、ミトコンドリア調製物の相対的な純度を検証します。この技術は、サンプルあたりのミトコンドリアの数十万の分析を可能にする、迅速な定量化及びハイスループットである。それは、新規なpを評価するために適用され正常な生理的条件下で、ミトコンドリアの表面でroteinsだけでなく、病理中にこの細胞小器官にmislocalizedなる可能性がタンパク質。重要なことに、この方法は、ミトコンドリア亜​​集団の特定の活動を報告する蛍光指示薬色素に結合され、中枢神経系（脳および脊髄）、ならびに肝臓からミトコンドリアに対して実行可能であることができる。

ミトコンドリアは、高エネルギー需要部位に輸送され、生理的刺激¹に迅速に対応している、核分裂と核融合の複数のラウンドを受ける非常にダイナミックな細胞小器官である。それはますます異なる組織内のミトコンドリア、さらには異なる細胞区画には、異なる機能プロファイルを有することが認識されているので、新しい方法は、これらの異なるミトコンドリアのサブセットを識別するために必要とされる。

顕微鏡検査は、個別のミトコンドリアを視覚化することができ、ミトコンドリアでのまたは中のタンパク質の存在が免疫蛍光²によって決定することができる手段を提供する。しかしながら、この方法による定量分析は、労働集約的であり、不死化または初代細胞株を用いた実験に適している。組織に由来する個別のミトコンドリアの研究が著しく困難であり、ほとんどの方法はevaluと同時にミトコンドリアのサブセットを容易に識別を可能にしないミトコンドリア機能³のation。

このハードルに対処するために、ミトコンドリアげっ歯類組織から単離し、続いてフローサイトメトリーにより分析を免疫標識するための新規な方法が開発されている。これは、顕微鏡による分析に比べてミトコンドリア外膜に局在するタンパク質の迅速な検出および定量を可能にする、はるかに少ない労働集約的であり、単一のサンプル中のミトコンドリアの数千の分析を可能にする。このアッセイは、ミトコンドリアにおいて構成的に存在すると考えられているミトコンドリア外膜タンパク質の運命および相対量を監視するために適用することができ、ミトコンドリアの表面へのタンパク質の補充、または病理学的状態におけるミトコンドリアにmislocalizedタンパク質の検出。また、従来の蛍光指示色素の取り込みは、異なるミトコンドリアにおけるミトコンドリア機能の特定の側面の同時評価を可能にする亜集団。

本研究で用いた動物は、カナダ人によって概説されるように国の基準に従って動物の保護のためのセンター·デ·ルシェルシュ·デュ·センターHospitalierドゥモントリオール大学（CRCHUM）制度委員会により承認されたプロトコル（N08001CVsr）に厳密に従って処理した。動物管理評議会（CCAC）。

このプロトコール（ 表1）を実行するために必要な全ての試薬 ​​を準備する。機器、消耗品や仕入先に関する他のすべての詳細は、材料のリストに記載されています。

表1バッファー組成。

ラット脊髄の1集

1. 深く4％イソフルランでラット（ドーリー）を麻酔し。目のピンチの際に反射の欠如によってanaesthetizationを確認する電子の前足。ギロチンを経由して断頭によりラットを安楽死させる。安楽死のこの方法は、脊髄を歪めるかもしれない他のものよりも好ましい。
2. 背骨を露出させるために背中の皮膚をカット。ちょうど骨盤骨の上に骨ハサミで脊柱をカット​​。脊柱の開口部を可視化。
3. 脊柱に、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で満たされ、（炎の上にわずかに融解を介して結合）を200μlピペットの先端で、10ミリリットルの注射器を挿入します。
4. プランジ​​ャーに圧力媒体量を適用することにより、脊髄を洗い流す。
5. いずれかの血液が脊髄に存在する場合、次の手順に進む前に、PBSですすいでください。
   注：このメソッドはまた、脳や肝臓のために検証されています。これらの組織を含めた場合は、半分に安楽死させたラットからの脳や脊髄への重量の等しい肝臓の一部を収集します。他のすべての手順は同じままである。

脊髄ミットの2の単離（ヴァンデヴェルデらから適応^{。4）ochondria}

1. 5ボリューム（〜3.25ミリリットル）均質化バッファー（HB）と5ミリリットルガラスホモジナイザー中の全無傷の脊髄と場所を収集します。単離されたミトコンドリアの最適な回復のために、氷の上または低温室ですべての手順を実行します。組織の大きな片がなくなるまで、手で約8ストロークを、組織をホモジナイズする。 2（2 ml）または3（1.7ミリリットル）マイクロ遠心チューブにホモジネートを置きます。卓上型マイクロ遠心4℃で10分間遠心1300×gで。
2. 5ミリリットルの超遠心管に上清と場所を回復します。ペレットを含むマイクロ遠心チューブに750μlの（〜0.5容量）HBを加え、穏やかにペレットを再懸濁します。繰り返し遠心分離および再懸濁をさらに2回繰り返します。上記と同じ5ミリリットル超遠心チューブにプールのすべての上清（S1aとS1bとして）。このステップは、小さな破片を除去するのに役立つ。
3. 遠心分離機は、S1はスイングバケット腐敗を装備した超遠心機を使用してプールされたまたは4℃で15分間、17000×gで遠心する。
4. 細胞質ゾル画分（ウエスタンブロット分析のためなど）興味がある場合は、さらなる処理のために上清（S2）を保つ。 4ミリリットルのHB + 50mMのKClで、ペレット（P2）、粗製のミトコンドリア分画を再懸濁します。スイングバケットローター中4℃で15分間遠心17000×gで。上清を捨て、軽く800μlのHBでペレット（P3）を懸濁します。
   NOTE：ミトコンドリアは、任意の非特異的ミトコンドリア関連汚染物質を除去するHB + 50mMのKClで洗浄する。
5. 新しい5ミリリットル超遠心管中で、再懸濁したペレット（P3）のちょうど800μlを添加する。
6. この管に、それによって12％イオジキサノールの最終濃度を作成し、イオジキサノール（密度勾配培地）を200μlを追加。優しく、しかし徹底的にP1000とピペッティングを経由してチューブの内容を混ぜる。最初のイオジキサノールを加え、その後、ペレット（P3）は、完全な混合を容易にすることが好ましい場合がある。 ULT遠心し4°Cで15分間17000×gで、スイングバケットローターを備えracentrifuge。
7. 注：肝臓は、ミエリンが含まれていないとだけ肝臓が処理されている場合は、そのため、この手順は必要ありません。肝臓は中枢神経系のミトコンドリアと同時に処理されている場合は、それは平等にすべての組織を治療することをお勧めします。
8. 管の上部にあるミエリンの層を吸引し、慎重に取り外し、上清を捨てる。ペレットがゆるんでいる可能性があり。 4ミリリットルのHBでペレットを再懸濁。 4℃で10分間、17000×gで再び遠心分離します。上澄みを捨て、4ミリリットルのHBでペレットを再懸濁します。遠心分離を繰り返し、上清を除去します。
9. 100-200μlのHBで最終ペレット（P7）を再懸濁し、1.7ミリリットルマイクロ遠心チューブに移す。このサンプルでは、​​単離されたミトコンドリアが含まれています。
10. タンパク質の定量に進みます。ミトコンドリア対応時間の適切な可溶化を確実にするためにサンプルを、2％ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）で標準曲線を希釈ngのタンパク質の定量。

フローサイトメトリー用単離されたミトコンドリアの3。免疫標識

1. 試験対象の各染色ミックス1.7 mlマイクロ遠心チューブに単離されたミトコンドリアのピペット25μgのために。各実験で染色されていないサンプルを含める。そして各抗体について、適切なアイソタイプコントロールのためのサンプルを含めるようにしてください。
2. 卓上型マイクロ遠心において、4℃で2分間17000×gで遠心分離します。
3. 上清を除去し、4℃（ブロッキング工程）で15分間、10％の脂肪酸フリーのBSAを添加した50μlのミトコンドリアバッファー（Mバッファ）で単離されたミトコンドリアを懸濁します。
   注：ラベルの間に、4℃の冷蔵庫でインキュベーションを行う。
4. 管に一次抗体（ウサギ抗MFN2、1mlあたり20μgの）を追加し、4℃で30分間インキュベートする。
   注：滴定により実験的に各抗体の最適濃度を決定する。により濃度の変動性および/またはpへurity、同一メーカーの同一の抗体の異なるロットは、異なる結果になる場合があります。したがって、滴定は、抗体のそれぞれの新しいロットのために必要とされる。
5. 4℃で2分間17000×gで遠心分離：バインドされていない一次抗体を洗浄する。上清を除去し、穏やかに200μlのM緩衝液にペレットを再懸濁します。 4℃で2分間17000×gで遠心分離します。上清を除去し、50μlのMバッファーでペレットを再懸濁します。
6. 管に二次抗体（ロバ抗ウサギIgGをフィコエリトリン（PE）1mlあたり、0.5μgの）を追加し、光から保護し、4℃で30分間、サンプルをインキュベートする。
7. 4℃で2分間17000×gで遠心分離：未結合の二次抗体を洗浄する。上清を除去し、200μlのM緩衝液にペレットを再懸濁します。 4℃で2分間17000×gで遠心分離します。上清を除去し、500μlのM緩衝液にペレットを再懸濁します。
8. イベントは実際にはミトコンドリア内にあることを確認するために、と汚れ単離されたミトコンドリア光から保護し、室温で15分間、ミトコンドリア特異的な蛍光色素。他の機能のパラメータ（ミトコンドリア膜電位またはスーパーオキシド産生）の染色が必要な場合は、そうでない場合は、取得のために、手順5に進み、ステップ4に進みます。
   注：二次抗体の発光スペクトルは、機能性染料のそれと互換性があることを確認することが重要です。例えば、テトラメチルローダミンメチルエステル（TMRM）とFITC及び膜電位に類似のスペクトル特性を有する市販の色素でミトコンドリアの純度を確認した場合、実行可能な二次抗体は、（：元は650nm /エム660nmのAPC）アロされることになる。適用可能な場合、すなわち 、単一のフルオロフォアで免疫標識または染色された標本を補償コントロールを追加します。
9. ロードフローサイトメーターに適したチューブに移します。 （小さなサンプルサイズを容易にするために、マイクロタイターチューブは3がチューブフローサイトメーターミリリットルの内側に配置されます。）サンプルを氷上に保ち、直ちに進める取得のためのフローサイトメーター。

フローサイトメトリーによる4のアッセイミトコンドリア膜電位およびミトコンドリアスーパーオキシド生産

1. 単離されたミトコンドリアは、光から保護し、室温で15分間、のために、ステップ3.8で、100 nMのTMRM（例548 nmの/エム574 nm）を⁵で染色することにより無傷の膜電位を持っていることを確認します。サンプル集団間の膜電位、TMRM（1nMの30）の下側/非消光濃度の使用を比較するために^、6より適切であるかもしれない。
   1. TMRM染色、100μMのカルボニルシアニドmのクロロフェニルヒドラジン（CCCP）の存在下で100 nMのTMRMで染色する単離されたミトコンドリア、ミトコンドリアを脱分極しますミトコンドリア脱共役剤の対照として。染料のより低い濃度が使用される場合、ミトコンドリアを脱分極するために必要なCCCPの濃度は、少なくてもよい。
2. 単離されたミトコンドリアがSTによってミトコンドリアのスーパーオキシドを生成することを確認してください光から保護して室温で15分間、のために、また、ステップ3.8において、適切なミトコンドリアのスーパーオキシドインジケータ⁷ aining。
   1. ミトコンドリアのスーパーオキシド産生のための対照として、汚れを10μMアンチマイシンA、ミトコンドリアのスーパーオキシド産生を増大させるであろう呼吸鎖の複合体IIIの阻害剤の存在下で染料とミトコンドリアを単離した。

5。フローサイトメトリーによる免疫標識単離されたミトコンドリアの取得と解析に

1. インストゥルメントを設定：リニアから切り替え電圧は、単離されたミトコンドリアの分析を容易にするためにモードを記録し、電圧（FSC：450; SSC：250）を設定する。イベントはFSC-A（面積）モードと同様に、FSC-W（幅）に回収されていることを確認し、FSC-H（高さ）、ダブレット（ すなわち、2つのイベントを除外することができるように、同時に検出器を通過する）分析後のデータ収集中。 100,000収集されるイベントの数を設定します。補償のコントロールを取得（該当する場合）。
2. データ収集：データ収集の前に、サンプルをボルテックス避ける。代わりに優しくチューブをタップして混ぜる。当初ゲー中に、低圧でイベントを収集。総人口上のゲート。それに応じてヒストグラムの電圧を調整し、通常は無染色サンプルのピークが2番目の10年（10 ^2）に対応することになる。ゲートが確立され、そしてサンプルが処理されると、圧力が高いに切り替えることができる。
3. 分析：FSC対FSC-Wをプロットしてダブレットを可視化。シングレットダブレットを特定します。シングレット上のゲート。ミトコンドリア選択性色素で陽性に染色されたイベントにゲーティングすることによってミトコンドリアの人口を選択します。
4. アイソタイプコントロールから背景ラベルを決定します。アイソタイプコントロールサンプルを使用して、MFN2抗体に対して陽性のミトコンドリアの人口ラベリングの割合を決定。

ラット脊髄から派生ミトコンドリアはMitofusin2（MFN2）、ミトコンドリア⁸の外膜の融合に関与するタンパク質を標的とした抗体で免疫することができます。 MFN2特異的な抗体と、蛍光結合二次抗体を用いて単離およびラベリングの後、ミトコンドリアは、フローサイトメトリー（ 図1）によって処理される。データ収集後、試料を第1のドットプロット（ 図2A）上のすべての収集されたイベントを視覚化することによって、解析ソフトフローサイトメトリーを用いて分析する。イベントはFSC、幅（W）対面積（A）（ 図2B）にプロットされている場合ダブレットとシングレットが区別される。シングレットを選択したら、ゲートFSC / SSC経由ミトコンドリア人口（ 図2C）、およびミトコンドリア-SPEで染色した試料を用いて染色していないサンプルのヒストグラムを共同プロットすることによってミトコンドリア特有の色素が陽性染色イベントの数を確認するcific色素。ミトコンドリアのイベントを判別するには、二つのピーク（ 図2D）の交差点にゲートを配置します。脊髄調製のために、典型的に>イベントの90％は、ミトコンドリア特異的な色素に陽性である。イベントの98％が色素で標識するであろう〜肝臓のような他の組織については（データは示さず）。唯一のミトコンドリア特有の色素のために積極的に標識するイベントを選択した後、1％以下アイソタイプ標識（ 左 図2Eを 、）が含まれたゲート（MFN2 ^+）を選択して、アイソタイプコントロールと背景のラベル付けを決定する。ミトコンドリア外膜に存在するMFN2とミトコンドリアの百分率（ 図2E、 右 ） を決定するために抗体MFN2で標識されたすべてのサンプルに対して均一に、このゲートを適用します。この実験では、ミトコンドリアの30％がMFN2について陽性脊髄標識に由来する。それは、MFN2は遍在的に発現MITであると考えられているがあることを、ここで注意することは重要であるochondrial外膜タンパク質は、それが以前に定量化されていない。また、培養細胞におけるMFN2の免疫細胞化学分析は、個別のミトコンドリア⁹の非均質な標識を示す。それは、MFN2エピトープが原因自体との相互作用、または他の結合パートナーまたは翻訳後修飾を投稿する予定利用できなかった可能性もある。注目すべきは、この研究における抗体は、N末端（アミノ酸38-55）の合成ペプチドを使用して生成された。この変異体はまだ実験的に確認（UniProtのデータベース）されるが、最初の302個のアミノ酸を欠くMFN2の予測されたスプライス変異体がある。したがって、このアッセイは、使用される抗体与え、N末端配列を欠く選択的スプライシングされたMFN2を検出できない。

ミトコンドリア膜電位_（ΔΨm）およびスーパーオキシド産生は、このアッセイで評価することができる。ミトコンドリア内膜を横切る電荷のwhの分離があるICHは、酸化的リン酸化によるATP産生を駆動します。 TMRMは、膜電位依存的に⁵にミトコンドリア内に蓄積カチオン染料であるため、ミトコンドリアの膜電位のレポーターとして使用することができる。ミトコンドリアの大部分（95％）は、非染色コントロール（ 図3A）と比較して、染色した後TMRM陽性である。しかしながら、脱共役剤のCCCPを添加する場合TMRM（ 図3A）を保持することができるミトコンドリア数の有意な減少がある。 CCCPは、基本的に電荷の分離を破壊し、膜脱分極、ミトコンドリア内膜を横切るイオンの自由な通過を可能にする。

複合体I電子伝達鎖のIIIからの酸化的リン酸化の正常な副産物としてミトコンドリア放出スーパーオキシド。ミトコンドリアスーパーオキシドは、ミトコンドリアを標的とし、蛍光Folloのとなっている膜透過性色素を介して測定することができるウイングスーパー⁷との反応。機能性ミトコンドリアは染色していないサンプル（ 図3B）と比較したスーパーオキシドの基底量を生産する。複合体III阻害剤アンチマイシンAを添加すると、蛍光における右方向シフト、およびミトコンドリアの数が多いことによって示されるように、スーパーオキシドの増加をもたらす（典型的には〜10％）、このミトコンドリアのスーパーオキシド指示薬色素（ 図3B）を有する蛍光である。

ミトコンドリアの単離、免疫標識および分析の図1の回路図。手順1：組織を収集し、均質化するステップ2：単離手順8の遠心分離工程が含まれています。ミエリンは、中枢神経系組織の主要な封じ込めは、イオジキサノール（密度勾配培地）及びセントリミトコンドリアを希釈することによって除去されるミトコンドリアをペレット化しつつ、チューブの頂部に浮遊ミエリンをもたらすfugingは、 工程3：続いて単離及び定量化、ミトコンドリアは、ブロックされた一次抗体で標識し、洗浄する。フルオロフォアにコンジュゲート二次抗体を添加する。未結合抗体を洗い流すステップ4：この時点で、ミトコンドリアの純度を報告する蛍光色素、またはミトコンドリア機能を付加することができるステップ5：ミトコンドリアは、現在フローサイトメトリーによって分析される準備ができている。

フローサイトメトリーによる単離されたミトコンドリアを分析するための図2の戦略。前方散乱（FSC）および側方散乱（SSC）の電圧は、対数モードで両方のパラメータを使用して、小規模なイベントのために調整しなければならない。 FSC幅（FSC-W）のデータがなければなりませんダブレットを排除するために集めた。注意、ほとんどのフローサイトメーター上で、FSCおよびSSCのデフォルト設定はリニアモードでは、（B）ダブレット、。ドットプロット上で収集されたすべてのイベントを可視化する（A）。であると同時に、レーザーによって渡す2ミトコンドリアは、区別することができるFSC-W（リニアモード）対FSCをプロットすることによって、一重。 FSC-W値はイベント、 すなわち、濃い雲の一部であるものの大多数の2倍以上の平均FSC-W値の場合、イベントが除外されます。で染色し、このしきい値の下でイベントシングレットとしてゲートされる。（C）繰り返しますが、残りのイベント上のドットプロットでのイベント、およびゲートを可視化する。（D）は染色されていないサンプル（固体、灰色、黒）のヒストグラムをプロットし、試料ミトコンドリア特異的色素（MSD：固体、緑）。アイソタイプコントロールの門MSD（MSD ^+）で陽性染色イベント。（E）ヒストグラム、ウサギのIgG（点線、黒）とMFN2標識された試料（固体、ピンク）。アイソタイプコントロールのピークに≤1％MFN2 ^+をもたらすとMFN2（MFN2 ^+）で陽性に標識事象の割合を決定するための実験サンプルにこの同じゲートを適用するようにゲートを設定します。 これの拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。フィギュア。

フローサイトメトリーにより単離されたミトコンドリアにミトコンドリア膜電位_（ΔΨm）およびスーパーオキシド産生のアッセイ図3。 （固体、灰色、黒）色素が膜電位とミトコンドリア内に蓄積するため、染色していない対照と比較して、すべてのアクティブなミトコンドリアは（固体、黒）TMRMでラベルします、基礎条件下では、（A）、。 ADDIプロトノフォアのCCCP（青破線）のンは、ミトコンドリアが脱分極の少ない基礎条件と比較して、色素を保持させる膜電位を消費します。データは、デルタは、基礎条件下では、サンプルの平均蛍光強度から減算染色していない対照の平均蛍光強度である蛍光強度（ΔMFI）、（B）を意味するように、ミトコンドリアは、酸化の副産物として、スーパーオキシドを生成すると報告されているリン酸化。 （塗りつぶされた、固体灰色）染色していない対照と比較して：スーパーオキシドのこのミトコンドリア源は、ミトコンドリアのスーパーオキシドインジケータ、（固体、黒MitoO ^{2 - ）}でアッセイすることができる。複合体III阻害剤、アンチマイシンAの添加は、増加したスーパーオキシド産生における（破線、オレンジ）の結果は、基礎レベルと比較した。データはMitoO ^2-インジケータ用染色陽性細胞のパーセントとして報告されている。K ">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

これは、ミトコンドリアが正常な生理と病気の両方で重要なプレーヤーであることがますます明らかである。免疫ブロッティングながら全人口の平均で、この方法のレポートは、特定の条件でミトコンドリア内またはミトコンドリア表面で見出されるタンパク質を決定することができます。この方法は、ミトコンドリアの亜集団またはサブセットの相対存在量についての情報を得ることはできません。それは以前に全てのミトコンドリアが等しく作成されると仮定されているが、フィールドがますます細胞内のミトコンドリアは、形態学の観点から大規模な変動性を有し、および/ ​​または^10を機能することを認識している。

蛍光顕微鏡のアプローチを考慮にミトコンドリアの不均一性を取るか。しかし、この種のデータの定量化は労働集約的である。さらに、このアプローチは、/ in situで起因excesに困難であり、インビボでミトコンドリアを標識として、培養細胞を用いた研究に適してい現在、ミトコンドリアのSIVE数、個別の細胞小器官の分化が本質的に困難になる。ほとんどの免疫細胞化学プロトコールでは、同時にミトコンドリア外膜のタンパク質を標識し、抗体による標識のために必要な細胞の透過化工程にミトコンドリア機能を評価することも不可能である。現在の方法は、単離されたミトコンドリアで動作し、したがって、透過処理工程を必要としない。また、個別のミトコンドリアの可視化は、ミトコンドリア機能の分析に適していない電子顕微鏡を介してのみ可能である。言われていること、私たちは組織からのミトコンドリアの単離は、ミトコンドリアのネットワークの崩壊につながり、これはミトコンドリア機能のいくつかの要素に影響を与える可能性があることを認識している。しかし、同様に処理されている組織から単離されたミトコンドリアの機能的な側面の比較は有効なままです。

組織由来isolatの免疫標識のこの方法フローサイトメトリーによる編ミトコンドリアおよびその後の分析は、外膜に位置するタンパク質の存在を検出し、監視するための迅速かつ定量化可能な方法を可能にする。 （MFN2のように）非常に豊富なミトコンドリアタンパク質の検出は、この技術で可能である。同様に、このメソッドは、筋萎縮性側索硬化症^（ALS）11の文脈におけるミスフォールドSOD1のような疾患におけるミトコンドリア膜上に堆積された少量のタンパク質を検出することができます。さらに、この方法は、一過性にそれらの通常の機能の一部として、ミトコンドリアの表面と会合するタンパク質をモニターするために有用であり得る。例としては、ダイナミン関連タンパク質-1（DRP1）としてミトコンドリアの活性酸素種を強化するミトコンドリアに移行し、ミトコンドリア分裂¹²及び腫瘍壊死因子受容体関連因子6（TRAF6）を促進するためにミトコンドリアに動員される細胞質タンパク質自然免疫応答¹³の一部。

細胞内標識化のための標準的な透過化プロトコルは、ミトコンドリアの構造的完全性を破壊する界面活性剤を必要とする現在、この技術は、唯一のミトコンドリアの表面に位置するタンパク質の影響を受けやすい。可能な試薬の数は（未発表）試されてきたが、免疫標識プロトコルのさらなる最適化は、依然としてミトコンドリア内成分を検出に適し、このプロトコルを行うために必要とされる。

この技術は、広範な用途を有しており、異なる実験パラダイムの下でミトコンドリアへの1つ以上のタンパク質の存在または動員を検出するために用いることができる。さらに、ミトコンドリアは、二つの異なった抗体と、ならびに蛍光指示薬¹¹と共標識することができる。他の蛍光プローブはまた、ミトコンドリア機能の追加の態様を特徴づけるために組み込むことができる。例えば、市販の染料は、ミトコンドリアのpHが^14を監視する、カルシウムグリーン-5N ^15、およびATPレベル¹⁶とカルシウム取り込みが可能です。

著者らは、開示することは何もない。

私たちは、フローサイトメーターにアクセスするためのローリー·Destroismaisonsと卓越した技術サポートのためのサラPeyrardとDr.Alexandreプラットに感謝します。また、調製物からのミエリンの除去に関する彼の貢献のために博士ティモシー·ミラーを承認したいと思います。この作品は、ヘルスリサーチ（CIHR）神経筋研究パートナーシップ、革新のためのカナダの財団、カナダのALS協会、ALS研究フリック財団、CHUM財団とフォン·ド·ラ·ルシェルシュエンサンテ·デュ·ケベック（CVV）のカナダの研究所によってサポートされていました。 CVVおよびNAの両方がフォン·ド·ラ·ルシェルシュエンサンテ·デュ·ケベック州とCIHR新しい研究者の研究学​​者である。 SPはカナダのALS協会からティム·ノエル学生の身分によってサポートされています。