ADSC fogli trapianto per prevenire stenosi dopo esteso esofagea endoscopica della sottomucosa dissezione

Questo studio riporta un metodo efficace di endoscopico cellule stromali derivate dal tessuto adiposo (ADSC) -sheet trapianto per la prevenzione stenosi esofagea dopo una dissezione endoscopica della sottomucosa prolungato (ESD) in un modello suina.

Negli anni passati, il costrutto cellule-foglio ha stimolato grande interesse nella medicina rigenerativa, in particolare per le procedure di chirurgia ricostruttiva. Lo sviluppo di tecnologie diversificate, che conciliano cellule stromali derivate dal tessuto adiposo (ADSCs) con vari biomateriali ha portato alla costruzione di numerosi tipi di sostituti tissutale, come le ossa, cartilagine e tessuto adiposo da roditore, suina o ADSCs umane. Esteso esofageo dissezione sottomucosa endoscopica (ESD) è responsabile della formazione di stenosi esofagea. prevenzione della stenosi rimane impegnativo, con trattamenti efficaci disponibili. Precedenti studi hanno riportato l'efficacia del trapianto di cellule fogli mucosa in un modello canino e nell'uomo. ADSCs vengono attribuite proprietà anti-infiammatorie, effetti di modulazione immunitaria locale, induzione neovascolarizzazione, e capacità di differenziazione in mesenchimali e lignaggi non mesenchimali. Questo studio originale descrive TRA endoscopicansplantation di un costrutto tissutale ADSC per evitare stenosi esofagea in un modello suina. Il costrutto ADSC era composto da due fogli ADSC allogeniche a strati l'uno sull'altro su una membrana di supporto cartaceo. Le ADSCs sono stati etichettati con il fluoroforo PKH67 per consentire sonda-based endomicroscopy laser confocale monitoraggio (PCle). Il giorno del trapianto, è stata effettuata una 5-cm e ESD emi-circonferenziale noti per indurre stenosi esofagea. Gli animali sono stati subito endoscopicamente trapiantati con 4 costrutti ADSC. L'adesione completa dei costrutti ADSC stato ottenuto dopo 10 min di applicazione delicata. Gli animali sono stati sacrificati al giorno 28. Tutti gli animali sono stati trapiantati con successo. Il trapianto è stato confermato il giorno 3 con una valutazione PCle positivo. Rispetto agli animali trapiantati, gli animali di controllo hanno sviluppato gravi stenosi, con grande sviluppo del tessuto fibrotico, più frequenti problemi alimentari, e aumento di peso ridotto. Nel nostro modello, il trapianto di allogenic ADSCs, organizzati in fogli doppi cellulari, dopo ESD prolungato ha avuto successo e fortemente associata con un tasso di stenosi esofageo inferiore.

La gestione dei tumori esofagei superficiali è cambiato con lo sviluppo di nuove tecniche endoscopiche. Al giorno d'oggi, la resezione endoscopica è il trattamento di prima linea. Infatti, è associata a tassi di morbilità e mortalità inferiori rispetto a un intervento chirurgico con risultati uguali oncologici ^{1, 2, 3.} resezione endoscopica della mucosa (EMR) e la resezione endoscopica della sottomucosa (ESD) sono le tecniche più utilizzati. Nel caso di un tumore superficiale esteso, ESD è preferito. Rispetto a EMR, ESD permette resezione in blocco, indipendentemente dalle dimensioni della lesione e la forma ^{4, 5, 6.} La principale complicazione ritardata di ESD è formazione di stenosi esofagea, che si verifica in genere tra una e due settimane dopo la resezione. studi pubblicati recenti hanno dimostrato che la formazione di stenosi è correlatodimensioni della resezione. Il giapponese endoscopica Society raccomanda di evitare ESD di dimensioni superiori a ¾ della circonferenza esofageo perché sono associati con lo sviluppo stenosi in più del 90% dei casi e sono responsabili di problemi di alimentazione severe e maggiore deterioramento della qualità della vita.

La prevenzione della stenosi esofagea rimane difficile. Meccanismi coinvolti nella formazione di stenosi sono solo parzialmente noti. Stenosi formazioni sembra derivare dalla associazione di due diversi meccanismi: (1) pro-infiammatorie reclutamento cellulare e (2) un eccessivo sviluppo della fibrosi ^7. Sono stati proposti diversi trattamenti preventivi. Tuttavia, i risultati non sono stati soddisfacenti, con pochi benefici e gli effetti collaterali gravi ^{8, 9.} Recentemente, un team giapponese, Ohki et al. , Proposto trapiantare un strato di cellule monostrato di cellule della mucosa orale autologhe nella esophcicatrice ageal. Il trapianto è stato effettuato immediatamente dopo ESD ^{10, 11.} Essi hanno dimostrato l'efficacia di questo approccio innovativo, prima in un modello canino e poi nei pazienti.

le cellule derivate dal tessuto adiposo stromali (ADSCs) sono promettenti nella medicina rigenerativa. La loro applicazione in diversi settori ha mostrato risultati interessanti, soprattutto nel processo di guarigione. Terapia ADSC offre diversi vantaggi, in quanto le cellule sono facilmente isolati e sono associati con proprietà anti-infiammatorie, effetti immunomodulanti locali, induzione neovascolarizzazione, e capacità di differenziazione in mesenchimali e linee non mesenchimali ^{12, 13, 14.}

In uno studio precedente, la nostra squadra ha dimostrato l'efficacia del doppio trapianto endoscopica ADSC fogli per prev stenosi esofageaenzione dopo ESD prolungato in un modello di suini ^15. In questo articolo, vengono presentati i rapporti di costruzione ADSC fogli e la tecnica di trapianto endoscopico.

Tutti gli animali sono stati trattati secondo il comitato etico Animal Research (linee guida del Ministero dell'Agricoltura francese). Il protocollo ha ricevuto l'approvazione del comitato etico locale autorizzato per sperimentazioni animali al Paris Descartes University (numero di registrazione MESR 2.035,02; Facoltà di Medicina Paris Descartes, Parigi, Francia).

1. ADSC cultura e etichettatura

1. Ottenere ADSCs confermati da un istituto privato. Culture ADSCs allogeniche a 37 ° C e 5% di CO ₂ con un minimo di alpha mezzo essenziale di cui 10% di siero di vitello fetale e 1% di antibiotici (penicillina e streptomicina).
2. Ottenere circa 24 x 10 ⁶ ADSCs per animale utilizzando le procedure di espansione delle cellule normali (37 ° C e 5% di CO _2). Raccogliere le ADSCs utilizzando una soluzione di tripsina standard (10 ml per un piatto T150). Effettuare il conteggio delle cellule con un emocitometro.
3. Eseguire cellule etichettatura il giorno prima del trapianto con il pr PKH67 colorazioneocedure descritto di seguito.
   NOTA: L'obiettivo della procedura di colorazione è quello di consentire il monitoraggio delle cellule dopo il trapianto.
   1. Al fine di etichettare 2 x 10 ⁶ ADSCs, preparare Soluzione A (2 x 10 ⁶ cellule con 100 ml di diluente C) e Soluzione B (4 ml di PKH67 con 1 ml di diluente C).
   2. Incubare soluzioni A e B per 2 min. Quindi, aggiungere 100 ml di siero di vitello fetale per 1 min.
   3. Lavare la soluzione con 300 ml di citrato RPMI (298,5 ml di RPMI e 1,5 ml di citrato) e centrifugare a 1500 xg per 5 min. Ripetere questa operazione 2 volte. Mantenere le cellule marcate e proteggerli dalla luce fino alla costruzione foglio.

2. Fare doppio ADSC fogli Construct

1. Il giorno prima del trapianto, preparare un sensibile alla temperatura piatto di coltura cellulare 12 pozzetti con 4 ml per pozzetto di mezzo di coltura cellulare, sopra descritti, prima PKH-etichettatura. Seme il piatto con 1,5 x 10 ⁶ PKH-labeled cellule per pozzetto e incubare per 12 ore (37 ° C e 5% _di CO _2).
2. Il giorno del trapianto, staccare il foglio di cellule confluenti incubando il piatto a temperatura ambiente per 30 min.
3. Aspirare delicatamente un foglio ADSC con una pipetta e strato su un foglio idrofoba (1,5 cm di diametro). Utilizzare questo documento come una membrana di supporto.
4. Afferrare un altro foglio ADSC e delicatamente depositarlo sopra l'altro per ottenere un costrutto doppio strato.
5. Ripetere queste procedure per ottenere il maggior numero di costrutti ADSC fogli, se necessario (4 per animale).

3. esofagea endoscopica della sottomucosa dissezione (ESD)

1. Il giorno del trapianto, pre-medicare animali con 10 mg / kg di ketamina intramuscolare e indurli con 8 mg / kg di propofol endovenosa. Quindi, eseguire l'intubazione endotracheale e mantenere l'anestesia con isoflurano 2,5% inalazione.
2. Una volta che l'animale è sotto anestesia generale, eseguire ESD con gastroscOPE, un videoscope, e un elettrobisturi.
   1. Utilizzare un coltello endoscopica e coagulazione morbido per ottenere i marchi dorsali emi-circonferenziale che vanno da 40 cm a 45 cm dal arcata dentale.
   2. Iniettare una soluzione di glicerolo contenente indaco carminio colorante nello strato sottomucosa per la separazione dello strato mucoso dallo strato muscolare.
   3. Utilizzare un coltello endoscopica con modalità endocut ho per ottenere incisioni circonferenziali.
   4. Utilizzare un coltello endoscopica con modalità di coagulazione costretto ad eseguire la dissezione sottomucosa, spostando dall'incisione prossimale all'incisione distale.
3. Al termine della procedura ESD, osservare l'emi-circonferenziale, 5 cm-lunga cicatrice esofageo esponendo lo strato muscolare.

4. endoscopica Trapianto

1. Subito dopo la ESD, per via endoscopica trapianto di animali con 4 costrutti doppio ADSC fogli.
   1. Afferrare un costrutto ADSC fogli con una pinza endoscopica eproteggerlo durante il trasporto al sito della ferita utilizzando un grande tappo endoscopica trasparente,.
   2. Applicare l'intera superficie del costrutto ADSC fogli al letto dell'ulcera.
   3. Applicare delicatamente il costrutto ADSC fogli per 10 minuti per ottenere un attecchimento completo e stabile. Per l'applicazione, utilizzare una pinza endoscopica o un tappo endoscopica e applicare tutta la superficie del ADSC costruire sullo strato sottomucosa esofagea.
2. Ripetere questa procedura quattro volte per ogni animale in modo da ottenere quattro doppi costrutti cellule fogli trapiantati ed aderenti.
   NOTA: L'obiettivo è quello di coprire approssimativamente la metà della superficie feriti.

5. postoperatoria valutazione e di follow-up

1. Per ciascun animale, garantire post-ESD analgesia con l'iniezione intramuscolare di 0,2 mg / kg di morfina tre volte al giorno per il primo giorno e con 28 giorni di trattamento anti-acido di esomeprazolo (40 mg / die). Eseguire la profilassi antibiotica con amoxicillin (1 g / giorno) per 7 giorni. Autorizzare liquidi al giorno 1 e solidi il giorno successivo.
2. Follow-up con gli animali per 28 giorni. Ottenere valutazioni cliniche quotidiane utilizzando Mellow Pinkas punteggi disfagia ¹⁶ e le misure di variazione di peso.
3. Valutazione stenosi multimodale: in anestesia generale, nei giorni programmati 3, 14, e 28, effettuare una valutazione multimodale di stenosi occorrenza.
   1. Eseguire una valutazione endoscopica utilizzando descrizione cicatrice, la misurazione stenosi, e la rilevazione della membrana supporto cartaceo. Misurare la stenosi utilizzando il gastroscopio per attraversare attraverso la stenosi (il diametro del gastroscopio è di 8 mm). Osservare la cicatrice, prestando attenzione all'aspetto infiammatoria (eritema della mucosa, edema della mucosa e della mucosa emorragie spontanee) e l'assenza o la presenza della membrana supporto cartaceo all'interno della cicatrice.
   2. Applicare PCle sonda verde attraverso il canale operatore gastroscopio direttamente nel letto cicatrice. Cerca una spontaneae il segnale verde compatibile con PKH67 marcato ADSC fogli costrutto attecchimento organizzata.
   3. Eseguire 2 incidenza ortogonali di barite esophagography con un cerchio radiologico (anteriore e incidenze lato sinistro). Mantenere l'incidenza più stretto per la valutazione stenosi (grado di stenosi (%) = [1- (lunghezza dell'asse breve sotto stenosi / lunghezza dell'asse normale sotto stenosi) x 100)]) ^{17, 18.}
4. sacrificio animale.
   1. Il giorno 28, al termine del periodo di follow-up, eseguire il sacrificio di animali. Mentre l'animale è ancora in anestesia generale, iniettare 100 mg / kg di fenobarbital endovenosa. Assicurarsi che la morte degli animali mediante esame clinico per l'assenza di un battito cardiaco e la respirazione di movimento.
   2. Dopo un'esposizione sternotomia e organo, rimuovere l'esofago di ogni sacrificati animali (con il 10% di fissaggio in formalina tamponata, paraffina, e le sezioni 4 micron di spessore). Colorare le diapositivecon ematossilina e Zafferano ^15. Digitalizzare i vetrini per l'analisi computerizzata e confrontare i gruppi di animali ^15.

La cultura ADSCs e la procedura per ottenere il foglio ADSC è mostrato in Figura 1. La Figura 2 mostra la costruzione del trapianto, composto da due fogli ADSC livelli reciprocamente sulla loro membrana supporto cartaceo. ADSCs erano stati precedentemente etichettati con il fluoroforo PKH67 per consentire il monitoraggio del trapianto in vivo con PCle. La Figura 3 mostra le varie fasi estesa esofageo dissezione sottomucosa endoscopica, risultante in una cicatrice esofagea 5 cm e emi-circonferenziale. La Figura 4 mostra la procedura di trapianto endoscopica. Il trapianto ha avuto successo per tutti gli animali dopo 10 min di applicazione delicata. La Figura 5 mostra la valutazione PCLE positivo il giorno 3, confermando il successo della procedura di trapianto.

Il periodo di follow-up ha permesso analys stenosi multimodali è. Le diverse valutazioni sono mostrati nelle seguenti figure e tavolo. Rispetto agli animali di controllo, il gruppo di animali trapiantato ha mostrato meno frequenti problemi alimentari ed una maggiore aumento di peso al giorno 28. Un animale dal gruppo trapiantato ha sviluppato una grave stenosi esofagea rispetto a tutti gli animali del gruppo di controllo. Rispetto agli animali trapiantati, gli animali di controllo hanno sviluppato significativo tessuto fibrotico. La tabella 1 mostra i risultati clinici e endoscopiche durante il periodo di follow-up. Figura 6 mostra l'endoscopica e reperti radiologici alla fine del periodo di follow-up in animali trapiantati e non trapiantati. La Figura 7 mostra i diversi risultati istologici tra animali trapiantati e controllo. Questi dati confermano l'efficacia del trapianto ADSC fogli per la prevenzione stenosi esofagea.

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Figura 1. ADSC scheda Costruisci. A e B. Early-passaggio ADSCs in piastre di coltura standard con diversi ingrandimenti. fogli ADSC sono stati ottenuti coltivando ADSCs PKH-etichettati in piatti della cultura sensibile alla temperatura commerciali. C. Quando la temperatura di incubazione è stata ridotta a 20 ° C (temperatura ambiente), tutte le cellule spontaneamente staccate dalle superfici piatto come fogli ADSC intatte, senza la necessità di un trattamento enzimatico. Foglio D. Un ADSC raccolte prima della costruzione del trapianto utilizzando una membrana di trasferimento. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 2. Fare doppio ADSC scheda Costruisci. A, B, e C. Il giorno prima transplantazione, ADSCs PKH-marcate sono state raccolte al numero precoce passaggio (P4 - P5), testa di serie su una coltura cellulare sensibile alla temperatura 12-bene, e colto a 37 ° C e 5% di CO ₂ con un minimo di alpha mezzo essenziale di cui 10% del feto siero di vitello e 1% di antibiotici (penicillina e streptomicina). Ogni pozzetto è stato rivestito con una membrana poli-N-isopropilacrilammide (sul fondo di ciascun pozzetto) e inseminata con 1,5 x 10 ⁶ cellule. Quando la temperatura di incubazione è stata ridotta a 20 ° C (temperatura ambiente), tutte le cellule spontaneamente monofamiliare come fogli ADSC intatte, senza la necessità di trattamento enzimatico. D. schema teorico del doppio costrutto cellule-strato composto da due fogli ADSC livelli reciprocamente e applicato ad una membrana supporto cartaceo. E. vista macroscopica di un doppio costrutto cellule-scheda completata. Modificato da riferimento 15. Si prega di cliccare qui t o vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 3. Procedura endoscopica dissezione sottomucosa. Segni A. endoscopica sono stati creati per delimitare il campo di resezione, che vanno da 40 a 45 cm dal arcata dentale e coinvolgente metà della circonferenza. B. La sottomucosa iniezione di una soluzione di glicerolo contenente indaco carminio. L'obiettivo di questa iniezione era di separare lo strato mucoso dallo strato muscolare per esporre lo strato sottomucosa. Incisioni C. periferici sono stati effettuati esternamente ai marchi endoscopiche, rivelando lo strato sottomucosa iniettato. D. La vista endoscopica alla fine della dissezione sottomucosa mostra un 5 cm di lunghezza e emi-circonferenziale scar esofagea.et = "_ blank"> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 4. Fare doppio ADSC scheda endoscopica procedura di trapianto. A. Quattro ADSC costruisce pronte per essere trapiantate. B. Protezione della ADSC costruire sotto un grande tappo endoscopica prima del trapianto. Vista C. endoscopica della traversata della faringe animali, mostrando il costrutto ADSC protetta sotto il cappuccio endoscopico. D. 10 min di applicazione è stato sufficiente per ottenere foglio di aderenza. L'applicazione è stata eseguita utilizzando il tappo endoscopica o pinze endoscopiche. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 5. Risultati PCle. PCLE il giorno 3 mostra segnali spontanei e intensi simili a quelli ottenuti in vitro, compatibile con un trapianto di cellule fogli successo. Nessun segnale è stato trovato nei giorni 14 e 28. A. Il vitro segnale PCle di ADSCs in sospensione. B. Il segnale in vitro PCle di ADSCs organizzati in un strato di cellule. C. L'applicazione in vivo PCle sonda per la cicatrice esofageo. D. Il segnale in vivo PCle di ADSCs visualizzato il giorno 3 dopo il trapianto. Modificato da riferimento 15. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 6. Risultatidella analisi morfologica il giorno 28. Rispetto al gruppo di controllo, il endoscopica e reperti radiologici il giorno 28 hanno mostrato una stenosi breve e leggera, senza la dilatazione a monte e una mucosa completamente ri-epitelizzata. Modificato da riferimento 15. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Figura 7. istologica valutazione delle aree stenosi. L'analisi istologica è stata eseguita dopo HES-etichettatura e la presentazione digitalizzazione. Negli animali trapiantati (A), il processo di guarigione è stato migliorato, con maggiore riepitelizzazione e diminuita sviluppo della fibrosi, rispetto ai animali non-trapiantati (B). lo sviluppo del tessuto fibrotico intenso eraosservato a causa di muscolaris distruzione mucose, fibrotica interno invasione strato muscolare, e grandi difetti della mucosa. Modificato da riferimento 15. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Tabella 1. Le valutazioni clinico durante il periodo di follow-up. valutazioni cliniche sono state eseguite utilizzando una valutazione clinica quotidiana secondo il punteggio Mellow Pinkas e con variazione di peso. (*) Mellow Pinkas punteggio ^16. Modificato da riferimento 15.

In questo modello di maiale, il trapianto di ADSC fogli era tecnicamente riuscita, e il vivo di valutazione PCle in permesso per il monitoraggio attecchimento delle cellule. valutazioni cliniche, endoscopici, radiologici e istologici hanno dimostrato l'efficacia del foglio ADSC endoscopica alla prevenzione stenosi esofagea dopo ESD prolungato.

Il trapianto endoscopica di una soluzione di glicerolo ADSC contenente un foglio di tintura indaco carminio è un approccio innovativo nel campo della medicina rigenerativa. Ohki et al. prima descritta la procedura di trapianto endoscopica. Nei loro studi, costrutti cellule fogli erano composti da fogli mucosa orale epiteliali cellule stratificate su un sottile foglio di polivinildenfluoruro, utilizzato come una membrana di supporto ^{10, 11, 19.} La membrana supporto è stato afferrato con una pinza endoscopica e con attenzione posto sul letto dell'ulcera. Cell fogli adesione è stata ottenuta dopo 10 min di applicazione delicata. Questa procedura non è ancora stato riprodotto. In questo studio, doppi costrutti ADSC fogli sono stati trapiantati per diverse ragioni. La scelta di ADSC è basata su diversi studi che hanno dimostrato le loro capacità anti-infiammatorie, in particolare nel processo di guarigione della pelle. ADSCs sono noti per modulare cheratinociti e fibroblasti interazioni ^7. Il meccanismo di sviluppo della fibrosi è complesso e solo parzialmente compreso. L'effetto paracrino sembra giocare un ruolo importante nell'azione ADSC, compresa la produzione di fattori anti-infiammatori, come ad esempio TGFβ e fattori pro-angiogenici ^20.

Il trapianto ADSC fogli endoscopica ha diversi limiti. Innanzitutto, i fogli di cellule sono stati applicati per 10 minuti per la cicatrice esofagea per ottenere una stabile adesione. Questa parte della procedura è stato impegnativo, tecnicamente difficile, e doveva essere eseguita da un endoscopista esperto. Tuttavia, tutti gli animali sono stati trapiantati con successo, confermando la fattibilità della procedura endoscopica. Recentemente, l'uso di un dispositivo 3D-stampati per migliorare il successo del trapianto di cellule fogli è stato segnalato ^21. In secondo luogo, questa tecnica è associato ad un tasso di sopravvivenza sconosciuta. Una cicatrice esofagea è un ambiente aggressivo per le cellule. Un piatto sensibile alla temperatura consente la produzione della cellula fogli costrutto attraverso la matrice extracellulare e per la formazione di connessioni cellulari. Pertanto, per migliorare il tasso di sopravvivenza e le interazioni ADSC, un doppio costrutto ADSC fogli è stata scelta ^{22, 23.} Questo studio non è stato progettato per valutare il tasso di sopravvivenza delle cellule o l'effetto dose del trapianto sulla prevenzione stenosi esofagea, che sono entrambe le domande importanti. Terzo, come in Ohki et al. , L'uso di una membrana di supporto era necessario effettuare il costrutto ADSC fogli. A poppaer il trapianto, la membrana supporto della carta non può essere rimosso senza distruzione costrutto. Questo materiale estraneo intra-esofageo è stato responsabile per la maggiore infiammazione. Una tecnica ottimizzata consentirebbe la rimozione della membrana supporto carta.

monitoraggio trapianto con PCle era anche una sfida. Questa nuova tecnica di imaging endoscopica consente l'analisi istologica vivo, compresa la visualizzazione del pattern ghiandolare, micro-vascolarizzazione e l'alterazione cellulare. PCle è stata valutata in molte malattie dell'apparato digerente, come la malattia infiammatoria intestinale, esofago di Barrett, e le cisti del pancreas mucinosi ^{24, 25.} Il fluoroforo PKH67 PCle-compatibile è stato utilizzato per l'etichettatura delle cellule. Un segnale fluorescente compatibile con la presenza del foglio ADSC è stata osservata in 4 animali il giorno 3. Tale risultato positivo riflette il successo del trapianto di ADSC fogli. Tuttavia, becauso PKH67 ha un segnale è diminuito nel corso del tempo e, dopo la divisione cellulare, la valutazione PCle era possibile solo pochi giorni dopo il trapianto ^26. Ohki et al. e Kanai et al. monitorato trapianto di strato di cellule attraverso immunostaining, e hanno confermato la presenza di cellule fino al giorno 8 dopo il trapianto. cellule mature sono stati utilizzati in questo studio, che hanno il vantaggio di specifici immunocolorazione.

stenosi esofagea è uno dei più gravi eventi avversi seguenti ESD, limitando così lo sviluppo tecnica. tecniche ottimali per prevenire la formazione di stenosi sono ancora carente. Nella pratica clinica, i pazienti con estesa ESD esofageo sono prescritti diversi trattamenti preventivi, quali i corticosteroidi, dilatazioni endoscopiche palloncino o stenting esofageo ^27. È stata condotta l'applicazione locale di biomateriale, con risultati diversi ^{28, 29} . Lo scopo della medicina rigenerativa è ricostruire un tessuto o organo utilizzando vari approcci, come sostituzione di tessuti o di immunomodulazione locale. Per la sostituzione del tessuto, l'utilizzo di scaffold biologici con o senza cellule epiteliali è stata valutata in letteratura ^{30, 31.} A riepitelizzazione precoce e maggiore è stata osservata nel cicatriziale esofagea. Per immunomodulazione locali, pochi dati sono disponibili in letteratura circa iniezione ADSC o applicazione membrana amniotica ^{32, 33.} Sono stati osservati una formazione di stenosi in ritardo e un tasso di stenosi diminuito.

In questo modello di maiale, la procedura di trapianto di cellule fogli endoscopica è stata eseguita con successo. ADSCs trapiantati organizzati in fogli doppi cellulari hanno dimostrato la loro capacità di prevenire la formazione di stenosi esofagea dopo ESD prolungato. I meccanismi coinvolti nella guarigione ADSCprocesso sono poco conosciute e deve essere ulteriormente analizzato in studi futuri. Pertanto, alla luce di questi risultati promettenti, una sperimentazione clinica deve essere condotta per valutare l'efficacia del costrutto ADSC fogli dopo prolungato ESD nei pazienti.

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

This study was supported and funded by the Avenir Foundation (Fondation de l'Avenir, 255 rue de Vaugirard, 75719 Paris cedex 15, Paris, France). This study would never have been conducted without the precious help of the veterinary team of the Laboratory of Biosurgical Research from the Alain Carpentier Foundation.