Sign In

הטיות: שיטה להעברת עמידות אמפיצ'ין מתורם לנמען E. coli

Overview

מקור: אלכסנדר ס. גולד1, טוניה מ. קולפיטס1
1 המחלקה למיקרוביולוגיה, בית הספר לרפואה של אוניברסיטת בוסטון, המעבדות הלאומיות למחלות זיהומים מתעוררות, בוסטון, תואר שני

ההטיה, שהתגלתה לראשונה על ידי לדרברג וטאטום בשנת 1946, היא צורה של העברת גנים אופקית בין חיידקים הנשענת על מגע פיזי ישיר בין שני תאים חיידקיים (1). שלא כמו צורות אחרות של העברת גנים, כגון טרנספורמציה או טרנסדוקציה, הטיות הוא תהליך טבעי שבו דנ"א מופרש מתא תורם לתא נמען באופן חד-כיווני. כיווניות זו והיכולת של תהליך זה להגדיל את המגוון הגנטי של חיידקים העניקו להטיה את המוניטין כצורה של "הזדווגות" חיידקית, אשר ככל הנראה תרמה רבות לעלייה האחרונה בחיידקים עמידים לאנטיביוטיקה (2, 3). על ידי שימוש בלחצים סלקטיביים, למשל השימוש באנטיביוטיקה, ההטיה עברה מניפולציה לשימוש בסביבת המעבדה, מה שהופך אותה לכלי רב עוצמה להעברת גנים אופקית בין חיידקים, ובמקרים מסוימים מחיידקים ועד שמרים, צמחים ותאי בעלי חיים (4). מלבד יישומים במעבדה, העברת גנים חיידק-אאוקריוטה על ידי הטיות היא שדרה מרגשת של העברת DNA עם שפע של יישומים ביוטכנולוגיה אפשריים והשלכות טבעיות (5).

ההטיות נחשבות לפעולה על ידי "מנגנון דו-שלבי" (6). ראשית, לפני שניתן יהיה להעביר דנ"א כלשהו, על התא התורם ליצור קשר ישיר בין התא לתא עם הנמען. תהליך זה מאופיין בצורה הטובה ביותר בחיידקים גרם שלילי, הנחקר ביותר שבהם הוא Escherichia coli. קשר בין תא לתא נוצר על ידי נוכחות של רשת מורכבת של חוטים חוץ תאיים על התורם המכונה pilus המין, אלמנט הצמדי מקודד על ידי הגן להעברה המכונה F (פוריות) גורם (7, 8). בנוסף ליצירת קשר בין התורם לנמען, מספר חלבונים מועברים באמצעות פילוס המין לציטופלזמה של הנמען, ויוצרים צינור הפרשת סוג IV (T4SS) בין שני התאים, מבנה הכרחי לשלב השני של ההטיה, העברת DNA (6). על ידי שילוב פונקציה זו של פילוס המין עם שכפול מעגל מתגלגל של DNA, התא התורם מסוגל להעביר DNA בצורה של אלמנט ניתן להעברה, כגון plasmid או transposon, לנמען על ידי מודל "לירות ולשאוב" (6). במקרה זה, "הירי" הוא הובלת חלבון הפיילוט, עם DNA מקושר, על ידי T4SS לתא הנמען, ואת "שאיבה" הוא ההובלה הפעילה של DNA לנמען, תהליך הנשען על T4SS ומזרז על ידי חלבוני צימוד (6). המכונות המשמשות בתהליך זה מורכבות ממקור של רצף העברה (oriT), אשר חייב להיות מסופק על ידי ה- DNA בגנים cis ו trans, אשר מקודדים relaxase, קומפלקס היווצרות זוג בן זוג, סוג חלבון צימוד IV, והוא יכול להיות נוכח cis או טרנס (9). רגיעה זו מצמידה את אתר ה-nic בתוך רצף ה-OriT ומתחברת באופן קוולנטי לקצה ה-5' של הגדיל המועבר כדי לייצר את ה-relaxosome, קומפלקס דנ"א-relaxase חד-גדילי עם חלבוני עזר אחרים (9). לאחר שנוצר, relaxosome מתחבר קומפלקס היווצרות זוג הזדווגות, באמצעות סוג חלבון צימוד IV, המאפשר העברה של קומפלקס ssDNA-relaxase לתאי הנמען על ידי T4SS (10). פעם אחת בציטופלסמה של הנמען, ה- DNA יכול להשתלב בגנום המטופל או להתקיים בנפרד בצורה של פלסמיד, שכל אחד מהם מאפשר ביטוי של הגנים שלה.

בניסוי זה, זן תורם ההטיה הנפוץ E. coli WM3064 שימש להעברת קידוד הגן להתנגדות אמפיצלין לזן הנמען E. coli J53. בעוד ששני הזנים של החיידקים גרם שלילי היו עמידים טטרציקלין, רק זן התורם WM3064 היה הגן להתנגדות אמפיצלין, מקודד בווקטור המעבורת pWD2-oriT, והיה auxotrophic לחומצה diaminopimelic (DAP) (11-13). ניסוי זה כלל שני שלבים עיקריים, הכנת זנים של תורמים ומקבלים, ולאחר מכן העברת הגן עמידות אמפיצלין מתורם למקבל על ידי הטיות (איור 1).

Figure 1
איור 1: שרטוט ההטיה. סכמטי זה מציג את ההעברה המוצלחת של פלסמיד, רק דוגמה אחת של רכיב DNA הניתן להעברה, מתא תורם לתא נמען באמצעות הטיות. לאחר מגע עם תא הנמען על ידי תא התורם באמצעות פילוס המין, הפלסמיד משכפל על ידי שכפול מעגל מתגלגל, עובר דרך קומפלקס הרב-פרוטיין המצטרף לשני התאים ויוצר פלסמיד חדש באורך מלא בתא הנמען.

על ידי דגירה של תאים תורמים ונמענים, ולאחר מכן ברצף ציפוי תאים אלה בנוכחות טטרציקלין ו- DAP, זה איפשר העברה מוצלחת של הגן עמידות אמפיצלין. תאי ציפוי רצופים שגדלו מתערובת זו בנוכחות טטרציקלין ואמפצילין, הסירו את כל התאים התורמים בשל היעדר DAP וכל תאי הנמען שאולי לא השיגו את הגן עמידות אמפיצלין, הניבו חיידקי זן J53 שקיבלו עמידות בפני אמפיצ'ין (איור 2). לאחר ביצוע, ההעברה המוצלחת של הגן עמידות אמפצילין אושרה על ידי PCR. מאז ההטיה הצליחה, זן J53 של E. coli הכיל pWD2-oriT והיה עמיד בפני אמפיצלין, ואת קידוד הגן עבור התנגדות זו ניתן לזהות על ידי PCR. עם זאת, אם לא הצליח לא היה זיהוי של הגן עמידות אמפצילין אמפצילין עדיין לתפקד כאנטיביוטיקה יעילה נגד זן J53.

Figure 2
איור 2: שרטוט פרוטוקול. סכמטי זה מציג מבט כולל על הפרוטוקול המוצג.

Figure 3A
איור 3א: אישור ההטיות המוצלחות על ידי PCR. א) מלאי המקפיא של דגימות השליטה הצומדות והשליליות הושלכו על לוחות אגר ונבחרה מושבה (אדומה) לבידוד DNA.

Procedure

1. הגדרת

  1. Autoclave כ 1L של לוריא-ברטאני בינוני (LB). זה סטרילי LB ישמש כדי להפוך כ 5 מ"ל של LB המכיל 0.3 mM חומצה diaminopimelic (DAP).
  2. לאסוף את הצלחות הבאות: צלחות אגר LB עם 1X טט ו 0.3 mM DAP, צלחות אגר LB עם 1X טט בלבד, ו צלחות אגר LB עם 1X Amp / Tet בלבד.
  3. ודא כי כמה גליצרל וקופסה של טיפים פיפטה פלסטיק מעוקר מראש נמצאים בהישג יד.
  4. לפני תחילת כל עבודה מעורבים חיידקים, לחטא את סביבת העבודה עם 70% אתנול. תמיד ללבוש את ציוד המגן האישי הדרוש, כולל חלוק מעבדה וכפפות.
  5. לאחר סיום, לחטא את כל המשטחים והכפפות עם 70% אתנול ולשטוף ידיים.

2. הכנת מאמץ תורם ומקבל

  1. הכן תרביות חיידקיות 5 מ"ל של זנים התורם והנמען ולגדל אותם לילה ב 37 °C עם aeration ורעד ב 220 סל"ד. זן התורם צריך להיות גדל LB עם 0.3 mM DAP.
  2. ספין למטה 1 מ"ל של שתי תרביות (~ 3000 סל"ד במשך 5 דקות) ולשטוף את התאים עם PBS.
  3. resuspend התאים 500 μL של תמיסת מלח חוצץ פוספט (PBS).

3. הטיות

  1. שלב 50 μL של תאים נמענים עם 50 μL של תאים תורמים בצינור microcentrifuge לערבב על ידי pipetting.
  2. לדגור על תערובת התא במשך 1 שעה ב 37 °C (50 °F). זה ישפר את היעילות של הטיות לפני ובמהלכו של שלב ה ציפוי הבא.
  3. Pipet 100 μL של תערובת התא על צלחת אגר עם 1X טט ו 0.3 mM DAP. אין למרוח על הצלחת.
  4. Pipet 100 μL של תרבית תא הנמען על צלחת אגר עם 1X טט ו 0.3 mM DAP. אין למרוח על הצלחת.
  5. לדגור על שתי הצלחות בלילה ב 37 °C (50 °F).
  6. לגרד את תערובת תא ההטיות ואת תרבית התא הנמען עם מגרד תאים סטרילי. העבר את התאים לצינור microcentrifuge סטרילי ו resuspend התאים ב 1 מ"ל של PBS.
  7. מערבולת את התאים בעדינות לסובב אותם למטה (~ 3000 סל"ד במשך 5 דקות).
  8. resuspend התאים ב 1 מ"ל של PBS.
  9. צלחת תערובת תא תגובת ההטיה על צלחת אגר LB עם 1X Amp / Tet בלבד. על צלחת זו, רק החיידקים הנמענים שהצליחו להשיג את הגן התנגדות אמפר באמצעות הטיות צפויים לגדול.
  10. צלחת התאים הנמען על צלחת אגר LB עם 1X טט בלבד. על צלחת זו, רק חיידקי נמען ללא מנונים, שאין להם את הגן התנגדות אמפר, צפויים לגדול.
  11. לדגור על הצלחות לילה ב 37 °C (50 °F).
  12. בחר מושבות בודדות משתי הצלחות והשתמש בהן כדי לגדל תרביות לילה ב-5 מ"ל מדיה (37 מעלות צלזיוס עם אוויר ב-220 סל"ד).

4. בידוד דנ"א

  1. לבודד DNA מן התרבויות שהוכנו בעבר באמצעות 4.5 מ"ל של נפח התרבות הכולל על ידי מיניכנה DNA.
  2. כדי לעשות זאת, לחמוק DNA באמצעות 35 μL של מים ללא נוקלאז.
  3. DNA טהור ייצור יחס ספיגה (A260/280) של כ 1.8.
  4. השתמש 0.5 מ"ל הנותרים של כל תרבית כדי להכין מניות גליצרול על ידי ביצוע תערובת 1:1 של תרבית חיידקים 100% גליצל.
  5. לאחסן את מלאי המקפיא ב -80 מעלות צלזיוס.

5. אישור הטיות העברת פלסמיד על ידי PCR

  1. הכן שני תערובות מאסטר PCR, כל אחד עם קבוצה שונה של פריימרים קדימה והפוך, אחד מיקוד קטע 500 זוג בסיס בתוך הגן התנגדות אמפיצלין והשני מיקוד קטע בתוך גן משק בית.
    1. פריימרים של גנים משק בית נועדו להגביר קטע של DNA בתוך קידוד הגן החיידקי עבור DNA gyrase B (14).
    2. אמצעי האחסון המחודשים הבאים שימשו להכנת 90 μL של כל תערובת ראשית:
      7.5 μL של פריימר קדמי של 10 מיקרומטר
      7.5 μL של פריימר הפוך 10 מיקרומטר
      75 μL של 2X PCR מאסטר מיקס
  2. הכן את שש תגובות ה- PCR הבאות באמצעות תערובת מאסטר של 15 μL, 10 ננוגרם של DNA תבנית ומים ללא נוקלאז עד לנפח סופי של 25 μL.
    DNA תגובת הטיות פריימרים אמפיצלין
    DNA תגובת הטיות וראשי משק בית
    פריימרים של שליטה שלילית בדנ"א ובאמפיצילין
    דנ"א שליטה שלילית וראשי תוצאות משק בית
    אין פריימרים DNA ואמפיצילין
    אין פריימרים לדנ"א ולניקיון הבית
  3. העבר תגובות אלה למכונת PCR עם הבלוק שחומם מראש ל- 98 C והתחל לבצע תרמוגמה בתנאים הבאים:
    98 °C (70°F) למשך 30 שניות
    25-35 מחזורים של 98 °C (5-10 שניות), 45-72 °C למשך 10 עד 30 שניות ו- 72 °C למשך 15-30 שניות לק"ג
    72 °C (5-10 דקות)
    החזק ב- 4 °C (70 °F)
  4. לטעון את כל שש תגובות PCR על ג'ל אגרוז 1% ולהפעיל ב ~ 150V במשך כ 20 דקות.
  5. דמיינו את מוצר המחשב באמצעות תאורת UV.

Results

אם ההטיה הצליחה, מוצר PCR בגודל 500 בסיסים של הלהקה ייבחן בבאר שבה נטען תגובת PCR 1 (ובכן #2 באיור 3B), בעוד שלא יתבונן רצועות בבאר שבה נטען תגובת PCR 3 (ובכן #4 באיור 3B). נוכחותה של להקה זו מאשרת את ההעברה המוצלחת של הגן עמידות אמפיצלין, ובכך מעניקה עמידות אמפיצלין לזן J53 של E. coli.

Figure 3B
איור 3B: אישור הטיות מוצלחות על ידי PCR. ב) ניתוח PCR נעשה באמצעות DNA מבודד מהמושבה הנבחרת. התוכן של כל באר הוא כדלקמן: 1) סולם DNA, 2) פריימרים DNA הטיות ואמפצילין, 3) DNA הטיות פריימרים משק בית, 4) פריימרים DNA ושליטה שלילית, 5) DNA שליטה שלילית פריימרים משק בית, 6) אין פריימרים DNA ואמפצילין, ו 7) אין DNA פריימרים שליטה שלילית. נוכחותו של מוצר PCR של רצועת בסיס ~ 500 מתגובה PCR 1 (טוב 2), והיעדר מוצר זה מתגובת PCR 3 (טוב 4), מאשרת הטיות מוצלחות.

Application and Summary

הטיות הוא תהליך טבעי של העברת גנים אופקית הנשען על קשר ישיר בין תא לתא של תא תורם ותא נמען. תהליך זה משותף בין כל סוגי החיידקים והיה אינסטרומנטלי באבולוציה חיידקית, בעיקר עמידות לאנטיביוטיקה. במעבדה, הטיות יכולות לשמש כשיטה יעילה להעברת גנים שהיא הרבה פחות מפריעה בהשוואה לטכניקות אחרות. מחוץ למעבדה, היכולת להעביר דנ"א מחיידקים לאאוקריוטים באמצעות הטיות מציעה שדרה חדשה ומרגשת של טיפול גנטי והבנת ההשלכות של העברות גנים טבעיות אלה, למשל הקשר בין זיהום חיידקי לסרטן, הוא תחום מחקר המתהווה במהירות.

References

  1. Lederberg J, Tatum, E.L. Gene recombination in Escherichia coli Nature. 1946;158:558.
  2. Holmes R.K. J, M.G. Genetics: Exchange of Genetic Information. 4th Edition ed. Baron S, editor. Galveston, TX: University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996.
  3. Cruz F, Davies, J. Horizontal gene transfer and the origin of species: lessons from bacteria. Trends in Microbiology. 2000;8:128-33.
  4. Llosa M, Cruz, F. Bacterial conjugation: a potential tool for genomic engineering. Ressearch in Microbiology. 2005;156:1-6.
  5. Lacroix B, Citovsky, V. Transfer of DNA from Bacteria to Eukaryotes. mBio. 2016;7(4):1-9.
  6. Llosa M, et al. Bacterial conjugation: a two-step mechanism for
  7. DNA transport. Molecular Microbiology. 2002;45:1-8.
  8. Grohmann E, Muth, G., Espinosa, M. Conjugative Plasmid Transfer in Gram-Positive Bacteria. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 2003;67:277-301.
  9. Firth N, Ippen-Ihler, K, Skurray, RA. Structure and function of the F factor and mechanism of conjugation. Escherichia coli and salmonella: cellular and molecular biology. 1996;2:2377-401.
  10. Smillie C, Garcillan-Barcia MP, Francia MV, Rocha EPC, De La Cruz F. Mobility of Plasmids. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 2010;74(3):434-52.
  11. Cascales E. Definition of a Bacterial Type IV Secretion Pathway for a DNA Substrate. 2004;304(5674):1170-3.
  12. Wang P, Yu Z, Li B, Cai X, Zeng Z, Chen X, et al. Development of an efficient conjugation-based genetic manipulation system for Pseudoalteromonas. Microbial Cell Factories. 2015;14(1):11.
  13. Yi H, Cho YJ, Yong D, Chun J. Genome Sequence of Escherichia coli J53, a Reference Strain for Genetic Studies. Journal of Bacteriology. 2012;194(14):3742-3.
  14. Baumann RLB, E. H.; Wiseman, J. S.; Vaal, M.; Nichols, J. S. Inhibition of Escherichia coli Growth and Diaminopimelic Acid Epimerase by 3-Chlorodiaminopimelic Acid. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 1988;32:1119-23.
  15. Rocha D, Santos, CS, Pacheco LG. Bacterial reference genes for gene expression studies by RT-qPCR: survey and analysis. Antonie Van Leeuwenhoek. 2015;108:685-93.

Tags

Skip to...

0:01

Concepts

3:53

Preparation of Donor and Recipient Strains

6:01

Conjugation

9:27

Data Analysis by Polymerase Chain Reaction (PCR)

11:29

Results

Videos from this collection:

article

Now Playing

הטיות: שיטה להעברת עמידות אמפיצ'ין מתורם לנמען E. coli

Microbiology

38.1K Views

article

שיבוט מולקולרי

Microbiology

376.4K Views

article

סקירה כללית של הנדסה גנטית

Microbiology

38.6K Views

article

רקומבינרינג ומיקוד גנים

Microbiology

28.6K Views

article

טרנספורמציה חיידקית: שיטת הלם החום

Microbiology

736.0K Views

article

טרנספורמציה חיידקית: אלקטרופורציה

Microbiology

115.1K Views

article

מבוא לתעתיק

Microbiology

169.9K Views

article

טרנספורמציה של תאי E. coli באמצעות הליך סידן כלוריד מותאם

Microbiology

86.4K Views

article

הטיות: שיטה להעברת עמידות אמפיצ'ין מתורם לנמען E. coli

Microbiology

38.1K Views

article

טרנסדוקציה של פאג': שיטה להעברת עמידות לאמפיצ'ילין מתורם לנמען E. coli

Microbiology

29.0K Views

article

קריספר

Microbiology

15.0K Views

article

טרנספורמציה חיידקית

Microbiology

65.0K Views

article

טרנספורמציה חיידקית

Microbiology

12.1K Views

article

טרנספורמציה חיידקית

Microbiology

25.1K Views

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved