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Nous décrivons un protocole utilisant l'hybridation in situ de fluorescence (FISH) pour visualiser les ARN herpèsvirs multiples dans les cellules humaines lytically infectées, en suspension ou adhérentes. Ce protocole comprend la quantification de la fluorescence produisant un rapport nucléocytoplasmique et peut être étendu pour la visualisation simultanée des protéines hôtes et virales avec immunofluorescence (IF).
La perspicacité mécanique provient d'une étude minutieuse et d'une quantification d'ARN et de protéines spécifiques. Les emplacements relatifs de ces biomolécules dans toute la cellule à des moments précis peuvent être capturés avec la fluorescence in situ hybridation (FISH) et l'immunofluorescence (IF). Pendant l'infection par l'herpèsvirus lytique, le virus détourne la cellule hôte pour exprimer de préférence les gènes viraux, provoquant des changements dans la morphologie cellulaire et le comportement des biomolécules. Les activités lytiques sont centrées dans les usines nucléaires, appelées compartiments de réplication virale, qui ne sont discernables qu'avec FISH et IF. Ici nous décrivons un protocole adaptable des techniques de FISH d'ARN et de IF pour kaposi' s sarcoma-associé à l'herpèsvirus (KSHV)-infecté cellules, adhérentes et en suspension. La méthode comprend des étapes pour le développement d'oligonucléotides anti-sens spécifiques, DOUBLE ARN FISH, ARN FISH avec IF, et des calculs quantitatifs des intensités de fluorescence. Ce protocole a été appliqué avec succès à plusieurs types de cellules, cellules non infectées, cellules latentes, cellules lytiques, cours temporels, et cellules traitées avec des inhibiteurs pour analyser les activités spatiotemporal esdedeuses de RNA et de protéines spécifiques de l'hôte humain et Le KSHV.
Dans leur phase lytique (active), les herpèsvirus détournent la cellule hôte, provoquant des changements dans la morphologie cellulaire et la localisation des molécules biologiques, pour produire des virions. La base des opérations est le noyau, où le génome viral de l'ADN à double brin est reproduit et emballé dans une coquille de protéine, appelée capside1. Pour commencer, le virus exprime ses propres protéines, détournant les machines hôtes et empêchant l'expression de gènes hôtes non essentiels, un processus appelé l'effet d'arrêt de l'hôte. La majorité de cette activité est localisée dans des régions nucléaires spécifiques, exemptes de réplication virale, composées de protéines hôtes et virales, d'ARNet d'ADN viral 2. La cellule est révisée pour fournir de l'espace et des ressources pour les compartiments de réplication et donc l'assemblage de capsides virales. Une fois que la capsite sort du noyau, la façon dont la capside est enveloppée dans le cytoplasme pour produire une particule virale liée à la membrane, également connue sous le nom de virion, n'est pas claire. La compréhension de la localisation et des changements spatiaux des biomolécules hôtes et virales pendant la phase lytique fournit un aperçu mécaniste plus profond de l'arrangement du compartiment de réplication, de l'effet d'arrêt de l'hôte, de la voie d'évacuation des virions et d'autres processus liés à l'infection et à la réplication de l'herpèsviral.
Actuellement, la meilleure méthode pour détecter et étudier ces changements est la visualisation des protéines et des ARN dans les cellules infectées avec immunofluorescence (IF) et l'hybridation in situ fluorescente (FISH), respectivement. L'utilisation d'un cours de temps avec ces techniques révèle la localisation des biomolécules à des points clés de la phase lytique ou tout simplement, des données spatiotemporales. FISH et IF complètent d'autres techniques biochimiques, telles que l'inhibition d'un processus cellulaire (p. ex., inhibition de la réplication virale de l'ADN), RT-qPCR (réaction en chaîne de polymérase en temps réel), séquençage de l'ARN, taches nordiques, spectrométrie de masse, ballonnements occidentaux et l'analyse de la production d'ADN viral, qui peut fournir une image plus globale des activités cellulaires.
Nous avons développé des stratégies RNA FISH pour examiner les produits à base d'ARN à partir de gènes spécifiques et une analyse computationnelle qui calcule quantitativement le rapport nucléocytoplasmique d'un produit génétique spécifique. La préparation de l'échantillon, modifiée à partir de publications antérieures par Steitz et ses collègues3,4, est relativement facile et peut être utilisé pour les cellules adhérentes et suspendues. Le protocole est également adaptable pour l'utilisation simultanée de plusieurs stratégies ARN FISH (double ARN FISH) ou RNA FISH avec des stratégies IF. L'élaboration d'une stratégie FISH spécifique est difficile, mais des suggestions pour améliorer le succès sont esquissées. L'analyse des données décrite ici est quantitative si des perles fluorescentes et des marqueurs solides des limites des compartiments sont utilisés et offre un aperçu supplémentaire des micrographes, un aperçu qui élimine les biais d'observation. Le protocole détaillé est conçu pour les cellules latentes et lytiques infectées par l'herpèsvirus associé au sarcome de Kaposi (KSHV) et peut être utilisé avec des cellules non infectées ou des cellules infectées par d'autres herpèsvirus5. Les méthodes de quantitation s'appliquent aux études sur les décalages nucléocytoplasmiques ou la relocalisation entre les compartiments subcellulaires dans la plupart des cellules.
1. Conception de la fluorescence in situ (FISH) oligonucléotides anti-sens pour détecter une transcription herpèsviral spécifique
2. Oligonucléotide et préparation cellulaire
3. Fixation, immunofluorescence (facultatif), hybridation et visualisation des ARN virales
4. Quantification des images FISH et IF pour mettre en évidence la localisation subcellulaire et pour déterminer le rapport nucléocytoplasmique de fluorescence
Les méthodes FISH et IF détaillées dans ce manuscrit sont présentées à la figure 1 ainsi que la quantification des résultats par ligne des traces d'intensité fluorescente. Les résultats présentés ici sont semi-quantitatifs et offrent un aperçu de la localisation, plutôt que dans les comparaisons entre les intensités de différentes taches fluorescentes parce que les expériences n'ont pas inclus une perle fluorescente dans la préparation de diapositives. La figure 1 révèle également que les zones cytoplasmiques et nucléaires et leurs ratios sont différents pour les cellules infectées par le KSHV latente et lytique. Ainsi, la zone est contrôlée dans le rapport nucléocytoplasmique présenté à la figure 2. La figure 2 valide le calcul détaillé dans ce manuscrit pour un rapport nucléocytoplasmique avec l'utilisation d'un contrôle nucléaire, de l'ARN nucléaire polyadenylated viral (PAN) et d'un contrôle cytoplasmique, l'ARNm GAPDH hôte. La figure 3 révèle que lorsque la réplication de l'ADN de KSHV est inhibée dans la phase lytique par l'utilisation de l'acide phosphonoacétique (Doxy et PAA) ou du cidofovir (Doxy et Cido), la transcription orF59-58 précoce passe à une localisation principalement cytoplasmique. Les micrographes et les deux méthodes de quantification de la figure 3 appuient ce résultat et révèlent que l'ARN PAN se localise à des sites nucléaires spécifiques malgré l'inhibition de la réplication virale de l'ADN et le changement observé pour la transcription ORF59-58 précoce.
Figure 1: Les traces d'intensité fluorescente révèlent des subtilités dans l'hybridation in situ de fluorescence (FISH) des transcriptions du KSHV et l'immunofluorescence (IF) des compartiments de réplication KSHV. (A-B) Images confocales de TREx RTA (protéine d'activateur viral inductible de tétracycline (tétracycline inductible) cellules BCBL-1qui ont été induites dans la phase lytique pendant 24 h avec la doxycycline (Doxy). La barre d'échelle indique 10 m. (A) Fluorescence in situ hybridization (FISH) pour les ARN viraux (vert) et immunofluorescence (IF) pour la protéine virale liant l'ADN à brin unique (ORF6/SSB) (rouge), un composant des compartiments de réplications KSHV, révèlent que Les transcriptions virales se localisent dans le cytoplasme, le noyau, et dans les foyers nucléaires en dehors des secteurs enrichis d'ORF6/SSB, également connus sous le nom de compartiments de réplication. L'anticorps anti-SSB10 a été dilué à 1:200 dans 0,4% BSA/1x PBS et détecté avec 1:500 anti-lapin Alexa Fluor 594 anticorps secondaires dans 0,4% BSA/1x PBS. Tous les oligonucléotides antisens utilisés tout au long de cette étude sont fournis dans le tableau 1. La détection de l'ARNm ORF59-58 comprend à la fois les transcriptions bicistroniques et moncistroniques. Cependant, dans les cellules JSC-1 infectées par le KSHV, l'ARNm monocistronique est au moins 18 fois moins abondant que la transcription bicistronique et ne contribue probablement qu'à une petite partie du signal fluorescent total observé13. En outre, l'un des oligonucléotides PAN ARN (SB88) peut également détecter la transcription virale pour K7. Le signal d'une détection de K7 ne sera pas aussi significatif par rapport au signal de détection de l'ARN KSHV PAN, qui est présent à près de 80% de tout l'ARN polyadenylated dans une cellule lytique KSHV-infecté14. En outre, l'un des quatre oligonucléotides anti-sens (tkv13) dans la détection de l'ARNm K8.1 est capable de se lier à plusieurs isoformes de K8.1 et d'autres isoformes des cadres de lecture ouverts à proximité (ORF). Le signal FISH de seulement oligonucléotide tkv13 est insuffisant (données non affichées). L'hybridation combinée des quatre oligonucléotides et leur liaison sur la même transcription fournissent probablement le signal fort observé. Les lignes blanches qui bordent les cellules dans (A) représentent le chemin de ligne des intensités de fluorescence pour les signaux FISH et IF, tracés dans (C). (B) Images zoomées numériquement de cellules en (A) flanquées de lignes blanches. Pour plus de simplicité, le canal DAPI bleu est omis. (C) Les parcelles montrent les intensités fluorescentes relatives pour chaque tache le long de la même ligne : 'SSB (rouge), transcriptions virales (vert ; transcription indiquée sur l'intrigue), et DAPI (bleu). Les zones ombragées indiquent les régions réduites par d'APID qui correspondent aux compartiments de réplication virale ou aux zones enrichies de SSB/ORF6. (D) Le rapport entre la surface nucléaire et la zone cellulaire change et, par conséquent, le rapport d'intensité de fluorescence utilisé dans l'ensemble a été normalisé pour la zone. (E) Zones nucléaires et cellulaires mesurées pour les cellules TREx RTA BCBL-1 avec et sans subir l'activation lytique. Des changements statistiquement significatifs sont observés par rapport aux cellules non induites. Les parcelles de boîte et de moustaches représentent les 10 et 90 percentiles. Figure réimprimée avec de légères modifications de Vallery, Withers, et collègues15 sous une licence Creative Commons Attribution. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 2 : Les stratégies de contrôle du FISH nucléaire et cytoplasmique valident la méthode de calcul du rapport nucléocytoplasmique. (A) FISH pour l'ARNm GAPDH hôte (rouge) et pour le virus polyadenylated nucléaire (PAN) lncRNA (vert) et DAPI coloration nucléaire (bleu) sont des contrôles positifs FISH pour la méthode de calcul déterminant le rapport nucléocytoplasmique. L'ARNm GAPDH hôte est une cible canonique de l'effet d'arrêt hôte du KSHV et est dégradé e lors de l'induction lytique comme indiqué ici. (B) Intensités de fluorescence le long d'une ligne indiquée par des lignes blanches flanquant les cellules lytiques en (A). DAPI (bleu), ARN PAN (vert) et ARNm GAPDH (rouge). Les zones ombragées sont définies à la figure 1. (C) La quantification des intensités de fluorescence des cellules représentées par (A) (n - 150 pour chaque échantillon GAPDH, n - 75 pour les échantillons ORF59-58 ou K8.1) a été réalisée pour trois répliques biologiques de cellules présentées à la figure 2 et à la figure 3. . P-valeurs: 'gt;0.05 (ns), 'lt;0.05 () ( lt;0.005 () et 'lt;0.0005 (' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' (D) Représentant la tache nordique de l'ARN des cellules TREx RTA BCBL-1 24 h après Doxy. Les parcelles de boîte et de moustaches représentent les 10 et 90 percentile. Figure réimprimée avec de légères modifications de Vallery, Withers, et collègues15 sous une licence Creative Commons Attribution. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 3: Les traces de ligne et le calcul des rapports nucléocytoplasmiques révèlent un changement fort au cytoplasme pour la transcription lytique tôt d'ORF59-58 sur l'inhibition de la réplication virale d'ADN. Les cellules TREx RTA BCBL-1 ont été traitées pendant 24 h sans médicament (Unind), doxycycline seulement (Doxy), ou avec de la doxycycline et un inhibiteur de la réplication de l'ADN herpèsviral, de l'acide phosphonoacétique (Doxy et PAA) ou du cidofovir (Doxy et Cido). Les panneaux (A-C) montrent les données d'échantillons prélevés à partir de trois répliques biologiques. (A) les valeurs qPCR pour l'ADN intracellulaire viral pendant l'inhibition de la réplication virale d'ADN ont été normalisées à la quantité de l'ADN de promoteur du gène DEGAPDH de cellule hôte. (B) La tache nordique (à gauche) et la quantification (à droite) montrent des niveaux totaux d'ARN pendant l'inhibition de la réplication virale de l'ADN. Les niveaux non induits de tous les ARN étaient indétectables. (C) Images représentatives FISH pour les transcriptions virales ORF59-58 (vert) et PAN ARN (rouge) sur l'inhibition de la réplication virale de l'ADN. DAPI (bleu) était la tache nucléaire. (D) La quantification des intensités de fluorescence des cellules représentées par (C) (n - 75 chacune) a été faite sur des triplicates biologiques. (E) Les intensités de fluorescence le long des lignes tracées à travers les cellules indiquées par des lignes blanches dans (C) sont montrées : DAPI (bleu), ARN DE PAN (rouge), et ARNm ORF59-58 (vert). P-valeurs: 'gt;0.05 (ns), 'lt;0.05 () ( lt;0.005 () et 'lt;0.0005 (' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' ' Les séquences de tous les oligonucléotides de cette étude sont fournies dans le tableau 1. Les parcelles de boîte et de moustaches représentent les 10 et 90 percentiles. Figure réimprimée à partir de Vallery, Withers et ses collègues15 sous une licence Creative Commons Attribution. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Oligos du Nord | |||||||
Oligo No. | gène | ordre | Position dans le gène | Position avec le génome de référence NC009333.1 (Les nombres ne reflètent pas la direction ou le brin) | |||
KORF50 (en) | KSHV RTA/ORF50 | CGCATTGCGGTTGAAATTGCTGGTGG | 1284 à 1309 | 73936 à 73961 | |||
JBW249 JBW249 | SOX KSHV/ORF37 | TAACCTGACACCACCAACaCACGGTCCAC | 262 à 291 | 57633 à 57662 | |||
tkv379 (en) | KSHV ORF59-58 | TGGAGTCCGGTATAATCGGGAACCT | 941 à 967 (ORF59 ORF) | 95879 à 95905 | |||
tkv13 (en) | KSHV K8.1 | AAGGCATAGGATTAGGAGCACAGGGATTTTGTGCGAAT | 16 à 57 ans | 76029 à 76070 | |||
SB2 (en) | ARN KSHV PAN | ACAAATGCCACCTCACTTTGTCGC | 664 à 687 | 29496 à 29519 | |||
Arnse P | RNase Humain P | TGGGCGGAGGAGGTAGTCTGTG TG TG | 319 à 339 | ne s'applique pas | |||
Sondes FISH | |||||||
Oligo No. | gène | ordre | |||||
SB2 (en) | ARN KSHV PAN | ACAAATGCCACCTCACTTTGTCGC | 664 à 687 | 29496 à 29519 | |||
SB85 (en) | ARN KSHV PAN | CGCTGCTTTCCTTTCACATT | 373 à 392 | 29205 à 29224 | |||
SB88 (en) | ARN KSHV PAN | GTGAAGCGGCAGCCAGGTGACTGG | 1 à 22 ans | 28830 à 28854 | |||
tkv13 (en) | KSHV K8.1 | AAGGCATAGGATTAGGAGCACAGGGATTTTGTGCGAAT | 16 à 57 ans | 76029 à 76070 | |||
tkv14 (en) | KSHV K8.1 | TGATATTAAGGCATGTGTTTCTGTGGTGGCCTGG | 377 à 414 | 76390 à 76427 | |||
tkv15 (en) | KSHV K8.1 | GTAAGGTTACGCTTTATCCCTACACACCGACGGTTTACCC | 461 à 500 | 76474 à 76513 | |||
tkv16 (en) | KSHV K8.1 | GGACAAGTCCCAGCAATAACACAGCCCATAGTATG | 688 à 725 | 76701 à 76738 | |||
tkv376 (en) | KSHV ORF59-58 | TAATGTGTTCATTGACCCTCCTGATT | 54 à 79 ans | 96767 à 96792 | |||
tkv377 (en) | KSHV ORF59-58 | GCCGATCCGTGCACTTGCACTACTACTCMGGTT | 93 à 122 | 96724 à 96753 | |||
tkv378 (en) | KSHV ORF59-58 | AAGGCTATGCCAGCGTCcGAGTACATTCGCA | 300 à 329 | 96517 à 96546 | |||
tkv379 (en) | KSHV ORF59-58 | TGGAGTCCGGTATAATCGGGAACCT | 941 à 967 | 95879 à 95905 | |||
tkv380 (en) | KSHV ORF59-58 | AAAGAGTGTGAACGAGTACAGGGCCTT | 1289 à 1315 | 95531 à 95557 | |||
tkv381 (en) | KSHV ORF59-58 | AAACACTGCTGACGCGCGCAGATCCATTCC | 1423 à 1450 | 95396 à 95423 | |||
tkv382 (en) | KSHV ORF59-58 | TACCTGTGTACTATTGGCGGCGCCTGATACAC | 1571 à 1602 | 95244 à 95275 | |||
tkv383 (en) | KSHV ORF59-58 | GGGTCGAGATTCAGCTAATTAGGCGAAAACTCCACAGG GGGTCGAGATTCAGCTAATTAGGCGAAAACTCCACAGG | 2136 à 2173 | 94673 à 94710 | |||
Stellaris | GAPDH (EN) | Préfabriqué par Stellaris | ne s'applique pas | ne s'applique pas | |||
qPCR Amorces | |||||||
tkv458 (en) | Promoteur GAPDH | CTGCACCACCACTGCTTAG | ne s'applique pas | ne s'applique pas | |||
tkv459 (en) | Promoteur GAPDH | GTCTTCTGGGTGGCAGTGATGTGAT | ne s'applique pas | ne s'applique pas | |||
tkv319 (en) | KSHV ORF39 (gM) | GTGAGGTGCTTCGCTGAGTTTGTGTGTGTTGTGTT | ne s'applique pas | 60075 à 60094 | |||
tkv320 (en) | KSHV ORF39 (gM) | CCTGGGTCAAGCTGTTGTTTT | ne s'applique pas | 60218 à 60237 | |||
Amorces RT-qPCR | |||||||
tkv 455 | K8/K-bZIP Forward RT qPCR Amorce | CGAAgCAAGGCAGATACG | 655 à 673 | 75603 à 75621 | |||
tkv 456 | K8/K-bZIP Reverse RT qPCR Primer pour non épissé | GCCATTGTTCCCATTTGAGT | 755 à 774 | 75703 à 75722 | |||
tkv 457 (en) | K8/K-bZIP Reverse RT qPCR Primer pour épissé | CATCAGCATGTCGCGAAGAG | 871 à 888 | 75819 à 75836 | |||
JBW479 JBW479 | RNase humain P En avant | AGCTTGGAAAAAGACTCACGG | 238 à 257 | ne s'applique pas | |||
JBW480 JBW480 JBW480 | RNase humain P Revers | GCGGAGGAGAGTAGTTGAA GCGGAGGAGGAGAGTAGTTGAA GCGGAGGAGGAGAGTAGTTGAA GCGGAG | 317 à 336 | ne s'applique pas |
Tableau 1 : Tous les oligonucléotides utilisés dans les analyses de cette publication. Le tableau 1 a été reproduit avec la permission de l'American Society for Microbiology en vertu d'une licence Creative Commons Attribution de Vallery et coll.15.
Le protocole décrit dans ce rapport peut être adapté à différents types de cellules et inclut des étapes pour le FISH et le FISH d'ARN doubles avec IF utilisant les anticorps primaires monoclonaux et polyclonal. Bien que les diapositives préparées soient généralement représentées à l'effile avec un microscope confocal, l'imagerie peut être réalisée avec un microscope STED (épuisement des émissions stimulées) après des modifications de la concentration accrue des anticorps et d'un milieu de montage différent. Pour une analyse améliorée des cellules individuelles, les échantillons préparés avec ce protocole peuvent également être triés, imaged, et analysés par un trieur cellulaire ou un cytomètre de flux avec des changements modestes, comme le montrent Borah et ses collègues16. Ce protocole, cependant, ne peut pas être adopté pour l'imagerie cellulaire vivante.
Les méthodes de quantification détaillées éliminent le biais d'observation et servent à valider un changement nucléocytoplasmique potentiel. Le rapport nucléocytoplasmique identifie également quand une biomolécule s'ajuste d'être uniformément dispersée à localiser dans un compartiment subcellulaire spécifique. Les résultats présentés ici sont semi-quantitatifs tandis que le protocole décrit les moyens de renforcer la quantification. La force du rapport nucléocytoplasmique et des traces de ligne (étape 4) dépend de l'utilisation de perles fluorescentes comme contrôles d'intensité (étape 3.13) et de l'utilisation de marqueurs sous-cellulaires clairs, comme un pour la lamin a/C nucléaire. À l'heure actuelle, il n'existe pas de marqueur de limite clair pour les compartiments de réplication virale KSHV. Quoi qu'il en soit, ce calcul peut être étendu à d'autres compartiments subcellulaires avec l'utilisation de marqueurs appropriés.
Le principal obstacle au protocole détaillé dans le présent rapport est l'élaboration de stratégies FISH pour des transcriptions spécifiques (étape 1). Le succès repose sur l'abondance et la force contraignante des oligonucléotides anti-sens. La spécificité de certaines transcriptions est rendue encore plus difficile par la présence de cadres de lecture ouverts (ORF) qui se chevauchent dans les génomes viraux. Ainsi, les transcriptions virales ont souvent la similitude de séquence17 avec d'autres transcriptions virales de la même région génomique, particulièrement dans le cas des herpèsvirus. Souvent, l'élaboration d'une stratégie FISH doit tirer parti de transcriptions plus abondantes. Pour dépanner l'absence d'un signal FISH, les utilisateurs doivent effectuer le protocole FISH avec la stratégie U2 snRNA FISH pour confirmer que les techniques dans les cellules humaines et la préparation des réactifs sont adéquates. De même, la stratégie KSHV PAN RNA FISH peut confirmer l'activation lytique dans les cellules infectées par le KSHV. Pour dépanner la liaison par les oligonucléotides anti-sens, les auteurs recommandent de développer plusieurs oligonucléotides anti-sens. En cas d'échec, une option commerciale est disponible, comme le démontre l'utilisation de la stratégie GAPDH FISH à la figure 2 et par Vallery, Withers et ses collègues15.
Des algorithmes plus solides pour définir les limites cellulaires et subcellulaires élimineraient davantage les biais de quantification. Certains logiciels analytiques de traitement d'images peuvent définir des limites pour la cellule, le noyau, et plus encore, mais nécessitent des marqueurs définitifs. Les morphologies cellulaires inhabituelles telles que les compartiments de réplication virale sont difficiles pour un tel logiciel, un défi pour le développement futur. En outre, les méthodes de quantification décrites ici sont limitées à une tranche optique d'une cellule (analyse d'image 2D). Tandis que l'acquisition 3D d'image est possible18,le développement futur d'une analyse 3D quantitative d'image peut fournir davantage d'aperçu dans la régulation spatiotemporaldes des compartiments de réplication virale.
Les auteurs n'ont aucun conflit d'intérêts à divulguer.
Nous remercions Jonathan Rodenfels, Kazimierz Tycowski et Johanna B. Withers pour leurs conseils sur l'analyse des données. Nous remercions également G. Hayward pour l'anticorps anti-SSB. Ce travail a été soutenu par des subventions T32GM007223 et T32AI055403 des National Institutes of Health (to TKV) et des NIH (CA16038) (à JAS). JAS est un chercheur du Howard Hughes Medical Institute. Les figures 1-3 et le tableau 1 ont été reproduits avec la permission de l'American Society for Microbiology sous une licence Creative Commons Attribution de la publication suivante : Vallery, T. K., Withers, J. B., Andoh, J. A., Steitz, J. A. Kaposi's Sarcoma-Associated L'accumulation d'ARNm d'herpèsvirus dans le foci nucléaire est influencée par la réplication virale d'ADN et l'ARN nucléaire polyadenylated de non-codage viral. Journal of Virology. 92 (13), doi:10.1128/JVI.00220-18, (2018).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
AlexaFluor594-5-dUTP | Life Technologies | C1100 | |
anti-DIG FITC | Jackson Lab Immunologicals | 200-092-156 | |
Anti-Rabbit Secondary AlexaFluor594 Monoclonal Antibody | Invitrogen | A-11037 | Goat |
Anti-SSB Antibody | N/A | N/A | Ref. Chiou et al. 2002 |
BLASTn | NIH NCBI | N/A | Free Sequence Alignment Software |
Dextran Sulfate | Sigma Aldrich | D8906 | Molecular Biology Grade |
DIG-Oligonucleotide Tailing Kit | Sigma Roche | #03353583910 | 2nd Gen |
Eight-Chamber Slides | Nunc Lab Tek II | #154453 | Blue seal promotes surface tension but separation by clear gel is also available. |
Formamide | Sigma Aldrich | F9037 | Molecular Biology Grade |
GAPDH Probes | Stellaris | SMF-2019-1 | Compatible with protocol, Quasar 670 |
ImageJ | NIH, Bethesda, MD | N/A | Free Image Analysis Software, [http:rsb.info.nih.gov/ij/] |
OligoAnalyzer | IDT | N/A | Free Oligonucleotide Analyzer |
pcDNA3 | Invitrogen | A-150228 | |
pmaxGFP | Amaxa | VDF-1012 | |
Poly L-Lysine | Sigma Aldrich | P8920 | |
Terminal Transferase | Sigma Roche | #003333574001 | |
Vanadyl Ribonucleoside Complexes | NEB | S1402S | |
Vectashield | Vector Laboratories, Inc. | H-1000 | DAPI within the mounting media scatters the light and reduces contrast. |
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