在小鼠胚胎干细胞结构功能研究使用重组酶介导的盒式交换

蛋白质常含有可发挥不同的细胞功能多个域。基因敲除（KO）不考虑这个功能的多样性。这里，我们报告在KO胚胎干细胞的重组介导的盒式交换（RMCE）系的结构 - 功能的方法，其允许各种功能结构域或蛋白质的变体的分子清扫。

在小鼠胚胎或胚胎干细胞（mESCs）基因工程允许对于给定的蛋白质的功能的研究。蛋白质是细胞的工作母机和经常由多个功能性结构域，其可以通过翻译后修饰的影响的。整个蛋白在有条件的或组成型敲除（KO）小鼠的耗尽不考虑这一功能多样性和调节。先前报道的mESC的线和衍生的小鼠模型，其中停靠位点FLPE重组介导的盒式交换（RMCE）插入所述ROSA26（R26）基因座内，被。在这里，我们在结构与功能的办法，允许多域蛋白质的不同功能的分子解剖报告。为此，RMCE兼容小鼠必须用基因敲除小鼠杂交，然后RMCE兼容KO mESCs必须隔离。接着，推定救援构建体的面板可以被引入到经由RMCE targeti的R26轨迹NG。所述救援候选的cDNA可以使用重组克隆的靶向载体的RMCE位点之间很容易地插入。接着，KO mESCs被转染的化合物，连同FLPE重组酶表达质粒靶向载体。 RMCE重新激活在ROSA26停放地点的启动子的新霉素抗性基因，并允许正确的靶向事件的选择。以这种方式，获得接近100％的高效率的定位，从而允许在一个半高通量的方式多个推定的救援构建体的插入。最后，R26驱动救援构建体的多个可以针对其营救在亲本KO mESCs观察到表型的能力进行测试。我们目前在P120连环蛋白（p120ctn各）使用内胚层分化的胚状体（EB）的表型读数KO mESCs一个验证的原理结构与功能的研究。这种方法使重要领域的确定，假定下游途径，与疾病相关的点背后对于给定的蛋白质KO表型的突变。

据估计，哺乳动物的基因组包含约20000个蛋白质编码基因。选择性剪接和翻译后修饰进一步增加蛋白质的剧目。蛋白具有模块化结构¹和通常包含多个相互作用结构域，其允许其招募不同的蛋白质复合物以及它们在多种细胞过程²的参与。一个例子是所谓的p120ctn各多功能蛋白。 p120ctn各由Ctnnd1基因编码，并且由通过N端和C端区域侧接的大型中央犰狳重复结构域。的p120ctn各犰狳域结合经典钙黏着蛋白，其参与细胞 - 细胞粘着的高度保守的近膜结构域，但它也结合所述转录阻遏Kaiso。 p120ctn各的N-末端结构域具有不同的激酶，磷酸酶，小RhoGTPases，和微管相关p相互作用roteins ^3。有趣的是，作为选择性剪接的结果，可以从四个备选起始密码子⁴产生同种型p120ctn各。亚型p120ctn各1A是最长的，因为它是从最-5' 翻译起始密码子，并含有全长N-末端片段。在同种型中p120ctn各3和4所示，该N端片段部分和完全，分别删除。了解蛋白质（或蛋白质亚型）和他们的域名在不同的细胞功能的确切作用仍然是一个挑战。

基因靶向mESCs使蛋白质功能的研究，通过相应基因的基因缺失和发育的重要疾病相关的基因和通路的识别已经广泛贡献。这一突破在反向遗传学在mESC的分离和基因靶向的领域的发展的结果，由于同源重组⁵ 。同源重组是在其中的DNA片段的双链（DS）DNA断裂后两个相似或相同的核酸部分之间交换的过程。通常情况下，HR是低效的，因为双链DNA断裂是罕见的。最近，同源定向基因靶向的效率可以使用位点特异性核酸酶^6,7被增加，但不幸的是，这些都是容易脱靶效应^8。一个更可靠的技术，以使基因靶向是RMCE，这是基于位点特异性重组系统，如酶Cre / loxP位或FLPE / FRT。 loxP和FRT序列在噬菌体P1被发现和酿酒酵母 ，分别和由34个碱基对，包括确定该网站的取向的不对称8bp的序列。在另一方面，中，定向例如，DNA拉伸内的两个loxP位将决定两侧装接loxP DNA是否变得切除或I在的Cre介导的重组⁹ nversed。此外，Cre重组酶也可以诱导易位如果两个站点位于不同染色体上。 RMCE采用异种重组位不交叉反应和嵌入在一个基因位点的优势。在包含由相同的异种位点侧翼的DNA片段的供体质粒的存在，重组酶将插入该DNA片段成因为双同时易位（ 图1）的RMCE兼容基因组基因座。在这里，只有正确RMCE靶向克隆可以使药物抗性由于对传入向量的启动子，恢复了"俘获"无启动子的新霉素抗性基因（neo ^R）存在于所述对接单元的R26基因组（ 图1） ^10，11。这导致了非常高的靶向效率，通常接近^100％11，</ SUP> ^12。总之，基于RMCE靶向效率高，可用于结构 - 功能研究;但是，它需要一个预先设计的基因组位点。

图1. RMCE介导的靶向示意图。 RMCE允许DNA片段从进入靶向载体至限定基因组基因座的交换如果两个怀有2个异种FRT位点（由白色和红色三角形描绘）。此外，工程化基因组基因座包含一个启动子和截短的新霉素抗性（NEO ^R）基因。通过在进入的DNA片段提供启动子和起始密码子，只有正确的重组事件恢复新霉素抗性，从而导致高的定位效率。 请点击此处查看T的放大版他的身影。

在mESCs基因组工程允许RMCE兼容小鼠的产生。在1981年，两组成功地从胚泡的内细胞团（ICM）捕获多能细胞，并且在培养^{13 和 14}保持它们。 mESCs是能够自我更新和分化成所有类型的胚胎和成年细胞，包括生殖细胞谱系。因此，在基因靶向mESCs通过组成型或条件（使用酶Cre / loxP系统）KO小鼠的发展，使反向遗传学研究。然而，分离的小鼠ES细胞中的经典方法是非常低效的。几个重大的改进已大大增加成功率，用于导出mESC的线，包括使用限定的血清替代（SR）培养基中¹⁵的，含有SR和胎牛血清^（FBS）16 mESC的介质之间交替，并且使用药理的逻辑化合物如pluripotin或2I ^17。 Pluripotin，小合成分子，允许mESCs的未分化状态在不存在白血病抑制因子（LIF）和小鼠胚胎成纤维细胞（MEF中^）18传播。最后，已经显示，mESCs可以以非常高的效率（接近100％）时的SR / FBS培养基交替协议与LIF和pluripotin ^19,20组合来分离。这些协议使能随后用于结构 - 功能研究RMCE兼容KO mESCs的有效隔离。

本文描述了使一个以确定负责特定细胞过程的蛋白中的关键的结构域或残基的方法。为此，先进的技术，实现高效mESC的隔离，靶向载体组件和mESC的目标管道是创建天。与蛋白同种型，结构域突变体，和下游效应物，例如，大板可以在KO mESCs被引入并可以针对其营救体外 KO表型的能力进行评估。

在老鼠身上所有的实验都按照制度，国家和欧洲法规的动物进行。

1. RMCE兼容KO mESCs的分离

1. 繁殖与RMCE兼容的小鼠，如ROSALUC小鼠¹⁰或ROSA26-iPSC集小鼠²¹杂合敲除小鼠。既RMCE兼容小鼠维持混合129 / C57BL6 /瑞士背景。
   注:杂合子基因敲除小鼠穿越建议克服纯合子基因敲除小鼠胚胎致死。
2. 使用PCR以选择包含在R26轨迹¹²的RMCE盒杂合敲除小鼠。
3. 品种杂合子基因敲除小鼠RMCE兼容，杂合子基因敲除小鼠和隔离RMCE兼容，纯合KO囊胚。
   1. 成立时间交配在傍晚和检查交配第二天早上插头。
      注:插头由从男性的凝结和水疱腺体分泌物凝固的。这些插头填补了女性的阴道，并持续8 - 繁殖后24小时。堵塞的女性被认为是携带0.5 DPC（天交配后）的胚胎。
      1. 要检查插头，她的尾巴根部提起女性，并通过检查她的白色大众阴道口。传播外阴的嘴唇与斜角探头稍当插头是很难看到的。从她们的男性单独插入女性。
   2. 在3.5 DPC收集囊胚。
      1. 经批准的方法（ 例如，颈椎脱位）安乐死怀孕的女性。做一个切口midventral和解剖子宫输卵管和使用细剪刀和镊子（仍然彼此连接）。
      2. 弯曲26号针成45°角。附加的1毫升注射器填充有M2培养基到该弯曲针并使用它来从子宫胚泡冲入10-cm培养皿的盖子。
         1. 针插入子宫结束最接近输卵管。把握在用细镊子地方针，同时推动柱塞;子宫肿胀指示成功冲洗。
      3. 使用吸管口（直径为100 - 200微米），收集所有的胚胎和新鲜的M2介质液滴洗两次。洗过后，立即转移到胚泡的培养板（见下文）。
         注意:应在空气层流进行囊胚的解剖和处理。
4. 隔离RMCE兼容KO mESCs
   1. 准备与丝裂霉素C处理的DR4的MEF一个12孔板（参见材料的表 ）的胚泡分离的前一天。
      注意:这些MEF中从包含四个药物选择基因和赋予对新霉素，嘌呤霉素，潮霉素抗性的Tg（DR4）1Jae / J小鼠中分离的，和6-硫鸟嘌呤^22。
      1. 外套有0.1％明胶的所有培养板中。添加0.1％的明胶到培养板，在5％CO ₂孵育5分钟，在37℃，并吸出明胶溶液。种子P2的MEF的在12孔板的小瓶的四分之一和在2mL MEF培养基的生长（请参阅表1， 材料的表 ），以汇合单层^19。
      2. 用丝裂霉素-C（10微克/毫升）使其失活3小时，并用磷酸盐缓冲盐水^（PBS）19把它们洗干净的两倍。
   2. 使用口移液管，镀胚泡到糊化12孔板（1个孔/胚）中，用在SR-ES细胞培养基的丝裂霉素C处理的MEF中（2毫升/孔）补充有2μMpluripotin或与2I （1μMERK抑制剂PD0325901和3μMGSK3抑制剂CHIR99021）。在5％CO ₂孵育在37℃下。
   3. 刷新SR-ES细胞培养基（补充有pluripotin或2I）每2 - 3天。
   4. 检查一个stereomicro下的每个囊胚范围在4.0X倍率并检查孵化和附接至MEF层。
      注:当囊胚孵化，他们失去的是它们封装的透明带。与独立的囊胚井需要用口吸液被刷新。
   5. 使用一次性的提示P10吸管培养12天 - 10后（使用立体显微镜）挑选个别ICM长出。转移在约10介质的μL向外生长至含有30微升/孔的PBS（在室温下）的V形，96孔板。
   6. 添加0.25％胰蛋白酶的50μL，每孔用多道移液器，并在5％CO ₂在37℃下孵育3分钟。
   7. 添加100μL含有FBS的介质mESC的的;吹打10-15倍解离ICM长出成单细胞;和离解的细胞转移到丝裂霉素C处理，96孔的是制备一天ICM集落挑选之前MEF平板上。
   8. 从这一步开始，OMI吨pluripotin或2I从mESC的平台。第二天，从FBS的培养基改变为含SR-mESC的培养基（100μL/孔）。
   9. 展开成立mESC的线从96到24孔格式^19。
      1. 清洗细胞，用PBS的200μL，添加胰蛋白酶的50μL，并在5％CO在37℃下孵育5分钟添加基于FBS-mESC的介质的100μL。通过吸取10离解 - 使用多道移液器15倍;和转移解离的细胞，以丝裂霉素C处理，24孔板MEF。
      2. 更改为基于SR-介质上的第二天。展开mESCs以类似的方式从24到6孔格式。从汇合6孔板¹⁹ 4寒冻-使3。
   10. 识别用PCR引物对R26轨迹²³和选择的KO等位基因（在这种情况中p120ctn RMCE兼容，纯合KO mESCs;的PCR为空p120ctn各前和进行了描述两侧装接loxP的等位基因小姑娘= "外部参照"> 12）。

表1.培养基。所有的培养基保存于4℃下并在使用前温热至37℃30分钟。

2.生成一个RMCE兼容打靶载体的使用重组克隆

1. 克隆救援构建体导入用限制性内切酶（RE）重组兼容载体为基础的或基于PCR的^24种克隆技术。确保的cDNA包含一个终止密码子。
   1. 设计AttB位标记的引物^24。确保正向引物包含以下元素:一个GGGG伸展，一个AttB1位点，连接子，Kozak序列，以及约25救援cDNA的核苷酸（从它的ATG）。确保反向引物也有类似的组成:一个GGGG舒展，一个AttB2位的网站，链接器和大约25 NUC救援的cDNA（反向互补）的leotides。
   2. 放大经由 PCR救援的cDNA，以获得AttB位侧翼的cDNA。
   3. 执行用100ng AttB位侧翼的cDNA的重组和兼容供体载体，其包含卡那霉素抗性基因的150毫微克10-μLBP反应。
   4. 变换在热休克感受态MC1061 大肠杆菌 （ 大肠杆菌 ）的细菌（类似于在步骤2.3中所述）5μL的BP混合物。
   5. 鉴定含有正确的救援含有的cDNA的载体的菌落（类似于上述步骤2.4）
2. 执行使用100ng的救援含有cDNA的载体的10-μLLR反应; Cre的切除pRMCE-DV1矢量^11（LMBP 8195）的150毫微克;和2μL重组酶混合物，其包含噬菌体编码的整合和切除酶和细菌整合宿主因子。在25℃下孵育2小时。
   注意:一个LR反应是重组反应离子，其中含有的attL位点和含有attR位点的目的载体一起进入克隆通过LR克隆酶酶混合物复合。这导致含有attB位点侧翼的目的基因的表达克隆。
3. 在热休克感受态MC1061 大肠杆菌变换LR混合物的5μL。
   1. 加入5个LR的μL混合物至肋状，掠过，2毫升螺旋盖管与热休克感受态大肠杆菌细菌的40μL并孵育在冰上20分钟。在37℃下孵育5分钟。
   2. 加1的Luria肉汤（LB）培养基中，并在37℃下孵育1个小时。板在氨苄青霉素50μL（安培; 100微克/ ml）的琼脂平板上并在37℃下生长过夜。
4. 确定殖民地，用正确的靶向载体。
   1. 挑5个菌落，随机使用P200尖端。转移尖端含有2玻璃试管 - 5 LB培养基中并在37℃下生长过夜。
   2. 防爆道从所述细菌培养物使用市售试剂盒的质粒DNA。
   3. 使用RE消化和测序验证它们。切0.5 - 2微克使用RE 0.2μL（20单位/μL）对应的10x缓冲液的1μL的质粒和在10-μL反应。孵育在37℃和至少1小时单独在1％琼脂糖凝胶上。选择用于与DNA片段的预测模式的菌落。
      1. 分析使用Sanger测序确认的载体（50纳克/微升）用Tlox F（ATC ATG TCT GGA TCC CCA TC）和IRES R（GGG GCG GAA TTC GAT ATC AAG）引物（5皮摩尔/微升）。

3. RMCE介导的靶向mESC的救援的构造到R26轨迹

1. 在基于FBS-mESC的媒体的MEF开始RMCE兼容KO mESCs和通道他们的文化至少两次。分裂上的糊化6孔板的mESCs。
2. 第二天，刷新细胞，在50％左右汇合，有1.5基于FBS-mESC的介质中，并转染用的Cre切除pRMCE-DV1靶向含有救援的cDNA载体的mESCs。
   1. 做一个DNA混合物。添加靶向载体的1微克和1μgFLPE表达质粒²⁵的纯DMEM培养基中的250μL。
   2. 使脂质体转染组合。添加基于脂转染转染试剂（ 例如，脂质转染胺2000），以纯DMEM培养基中的250μL的孵育在室温下（RT）5分钟的7μL。
      使用其它基于脂质体转染的试剂（ 例如，脂质体LTX和的Effectene）获得了类似的RMCE靶向效率:注意。
   3. 混合与脂转染混合物中的DNA混合，并在室温下孵育20分钟。移液管将转染混合物到刷新mESCs。漩涡轻轻地离开过夜。
3. 转染后一天，分割从6孔板所有mESCs到10cm的培养皿与DR4的MEF的汇合层和基于FBS-10毫升的米ESC培养基。
4. 转染后两天，通过加入0.2毫克/毫升G418（100倍）到介质选择具有正确FLPE介导的盒式交换mESC的克隆。
   注意:请击杀曲线G418的每批识别G418杀死所有mESCs的最低浓度。
5. 含G418-mESC的媒体每日刷新mESCs。殖民地后，应该出现7 - 10天，所以挑选和扩大这些为每步1.4。
6. 请通过 PCR ¹¹正确的克隆。

4.分化胚体mESCs的（EBS）

1. 在基于FBS-mESC的媒体的MEF开始KO mESCs与R26驱动的救援结构和通道他们培养至少两次。通道一旦糊化6孔板的mESCs摆脱的MEF。
2. 用PBS洗涤和胰蛋白酶化近汇合mESC的培养。板分离在不同的稀释到非粘附，细菌级PET mESCs（1/20 1/40和）RI-菜分化培养基。
3. 允许EB的形成在这些菜30天。的EB悬浮液转移到一个50毫升的管中，让将EB定居通过重力，除去上清液，加入新鲜培养基，并转移EB悬浮液回细菌级:使用以下程序3天 - 刷新介质每2碟。
4. 通过使用先前描述的¹²免疫荧光协议和透射电子显微镜分析靶向mESCs和EBS。

以分离RMCE兼容KO mESC的线的过程在图2中被描绘。连续两个育种需要获得RMCE兼容KO囊胚。首先，杂合基因敲除小鼠与RMCE兼容小鼠杂交获得RMCE兼容，杂合子基因敲除小鼠。然后将这些小鼠用于与其它杂合敲除小鼠交配定时以获得3.5-DPC，RMCE兼容，纯合KO胚泡。获得这样的胚的机会是八分之一的，由孟德尔遗传所预测。因此，需要一种有效的隔离mESC的协议。使用pluripotin基或21-基于协议，我们分别是能够分离mESCs线，包括RMCE兼容p120ctn各KO mESCs，具有约94％（N = 114个胚泡）和64％（N = 22个胚泡）的效率， ^12，19。典型地，胚泡舱口之间后3和6天在vi卓（DIV）培养;这之后是ICM长出的至MEF中或到明胶包被的培养皿附件。在第12天，大ICM长出形成忠实地产生mESC的线（ 图2）。由于这种高效率的mESC的分离过程中，可行的是从一个或两个插入雌性获得RMCE兼容KO mESCs。

图2.隔离RMCE兼容KO mESCs的。 （A）育种策略，以获得纯合，RMCE兼容KO mESCs。 pluripotin-或2I基于mESC的分离程序（B）方案。白比例尺:25微米。黑色比例尺:100微米。 请点击此处查看该图的放大版本。

要映射域或AM伊诺是为特定的细胞功能的重要蛋白质中的氨基酸，一个现在可以重新引入，通过RMCE，全长或KO mESCs突变构建体并测试他们对还原的KO表型的能力。对于许多不同的结构域突变体和点突变体靶向载体可以通过重组克隆（ 图3A）有效地产生。重组克隆是基于由重组酶混合物，其介导不同质粒之间ATT-侧翼的DNA片段的交换识别特定附件（ATT）的DNA序列的。重组克隆系统选择由包含不同抗生素抗性基因的载体之间的切换，并通过插入一个反可选择标记，将"细胞死亡B的控制"仅正确地重组载体（ccdB的）基因，到目标载体（ 图3A） 。我们已经产生超过25 Cre的切除pRMCE-DV1靶向载体具有接近100％的效率（一些实例中重新在表2中示出）。

表2.定位概述载体装配和RMCE介导的靶向mESC的的。

嵌入在CRE-切除pRMCE-DV1靶向载体不同救援构建体可以很容易地定位到一个使用RMCE（ 图3B）KO mESCs。我们以前报道的上经由 RMCE ^93％12平均效率引入KO p120ctn各mESCs的R26基因座133个定位的mESC的克隆为19个不同的救援构建体的产生。在这里，我们的与类似的高效率的附加构建体，包括一个CAAX标记p120ctn各如图1A所示，定位报告上皮 - 间充质转换（EMT）的SNAI和ZEB家族的诱导剂，和N-钙粘蛋白，在p120ctn各KO mESCs（ 表2）。

图3. RMCE为基础的KO mESCs定位。 （A）RMCE兼容靶向载体的重组酶介导的装配。 （B）定位推定的救援构建体经由RMCE纯合KO mESCs的R26轨迹。基于PCR的（C）RMCE靶向mESC的克隆的验证。 DNA从RMCE靶向mESC的克隆中提取，并使用嵌入在所述内源基因座R26和位于在输入pRMCE-DV1构建体的反向引物，正向引物，通过PCR进行扩增。 A 560-bp条带被观察到正确靶向克隆。未确认的克隆显示为红色。 M1:1 kb的DNA梯。 M2:1kb的DNA加梯。 请点击此处查看该图的放大版本。

一旦获得救援mESCs的面板，它需要被筛选其扭转KO诱导的表型的能力。它最近表明KO p120ctn各失败mESCs分化成囊性的EB为有缺陷的内胚层极化¹²的结果。囊性EB形态可被用作一个读出表型来筛选不同的救援构建体（ 图4A）。作为概念验证，我们发现，R26驱动亚型p120ctn各1A（R_p120_1A）可以挽救的KO p120ctn各表型 （ 图^{4B，4C）12。}此外，该屏幕确定的E-钙粘蛋白，但不RhoA的，是内胚层规范（ 图4B和^C）12中的p120ctn各一个关键伙伴。引入救援的轻松构建以KO p120ctn各让mESCs我们测试的其他假设。首先，将E-cadherin的独立的p120ctn各膜锚定能囊性EB形成的？去测试这一点，我们的稠合的K-ras的膜靶向基序（CAAX）至p120ctn各的羧基末端，通过引入RMCE它KO p120ctn各mESCs，并且由它们制成的EB。然而，这种结构提供一个显性负不允许绑定和E-cadherin（ 图4D）的稳定和作为结果，没有抢救KO p120ctn各表型（ 图4C）。其次，是参与EMT的诱导？ EMT是一个重要的发育过程，mESC的分化过程中也会发生，并且由SNAI和ZEB家族的转录因子，其直接抑制各种上皮标记基因如E-钙粘蛋白^26，27编排。与这些发现线，EMT诱导ZEB2的表达控制的EB被发现，而不是在p120ctn各空的EB（ 图4E）。尽管如此中p120ctn KO mESCs与EMT诱导ZEB1，ZEB2，或Snail的基于ROSA26-表达未能恢复囊肿IC EB形成（ 图4C）。第三，可以将其他经典钙黏着蛋白，如N-钙粘蛋白，功能性内胚层规范中替换E-钙粘蛋白？为了解决这个问题，产生了N-钙粘蛋白的救援线。以前，已经显示，在KO p120ctn各的EB E-钙粘蛋白的异位表达部分拯救囊性的EB ¹²的形成。有趣的是，在类似的设置，迫使N-钙粘蛋白的表达不能拯救（ 图4C和F），这表明E-钙粘蛋白为EB粘附所需的主要钙粘蛋白亚型，并且不能由N-钙粘蛋白代替。这些例子上述突出与生物学问题可以通过系统来解决的难易程度。

图4. RMCE针对性的救援mESCs的表型筛选。 （A）的EB囊性（通过光学显微镜拍摄的形成;顶部窗格LS）和EB中适当内胚层偏振（通过透射电子显微镜拍摄的;底部面板）用作表型读出，以测试靶向mESCs的营救KO p120ctn各表型的能力。白比例尺:25微米。黑色比例尺:200微米。救援p120ctn各构建体（B）概述。 p120ctn各包含中央犰狳域，由九个犰狳重复（蓝色框），其由N-末端结构域（NTD）和C-末端结构域（CTD）侧接。亚型p120ctn各含有四分之一的备选起始密码子（箭头），这可能由功能替代地使用外显子A和C（黑色框）编码序列，和包括或排除的Rho 2个GTP酶结合结构域（其中，RBD）。亚型p120ctn各1A和4A分别使用第一和第四翻译起始位点。的重要AA和人工加入膜靶向基序（CAAX）的突变的位置被示出。 EBD:E-cadherin的结合结构域。 （C）图描述基本或囊性EB形态在表达不同的R26驱动的救援结构KO p120ctn各细胞的百分比。 （D）用于p120ctn各（小鼠单克隆抗p120ctn各）和E-钙粘蛋白的免疫荧光染色（小鼠单克隆抗E-钙粘蛋白）上控制G4 mESCs或p120ctn各KO mESCs用的CAAX标记p120ctn各亚型1A中的R26驱动的表达。中的插图显示整个mESC的殖民地。比例尺:10μm左右。 （E）用于免疫组织化学ZEB2（小鼠单克隆抗ZEB2; 7F7;在内部作出）上两侧装接loxP（对照）和KO p120ctn各的EB。一个3.5倍的倍率显示在底部面板。比例尺:200μm的（上部），100微米（底部）。 （F）透射电子DIV12 EB的从启动子R26表示E-或N-钙粘蛋白KO p120ctn各细胞显微术。比例尺:10μm左右。 请点击此处查看THI放大版的身影。

最后，我们在强大的技术的管道结合在mESC的隔离近100％的效率目标载体装配和mESC的目标报告。这条管道使我们能够在mESCs结构功能研究的手段来解开蛋白质的多功能性。

我们mESC的隔离方法是用户友好，不需要高深的技能或设备，如囊胚显微外科。因此，这种技术是相当大的比重，科学界的访问。任何人只要有基本的细胞培养经验可以传播ICM长出，并建立mESCs线。然而，囊胚的冲洗和处理需要一些练习。甲口移液管用于传递胚泡，由微量移，微量吸管保持器，管道和抽吸嘴件²⁸的。微量可以通过加热巴斯德吸管的部分最好为几秒钟，从火焰中除去移液管，并拉动两端定制。 （ - 200微米100），其直径大于胚泡稍大选择针。针可以用蒸馏水（3×）和EtOH（3×）洗涤后可重复使用。根据我们的经验，基于pluripotin-mESC的隔离效率相比更高至2I-基于协议^12。然而，在高浓度下使用的pluripotin已显示诱导基因组不稳定^19。

基于RMCE-R26靶向在mESCs通常产生20 - G418选择后40菌落。如果观察到更多的殖民地，这意味着G418浓度不是最佳的，并且允许非目标mESCs生存，影响整体目标的效率。因此，建议，对于每个mESC的线路和每个新的G418批次，一杀曲线是由识别，杀死所有非目标mESCs最低G418浓度。如果发现没有殖民地，这是指示转染效率低下的。在这种情况下，这是值得优化使用报道质粒，其允许EGFP或LacZ的表达的转染方法。如果转协议的工作，但仍然没有菌落观察，检查RMCE兼容和CRE-切除pRMCE-DV1载体和FLPEËXPRESSION质粒与RE消化和测序。最好是做一批家长mESCs和FLPE载体，并冻结他们的几等份，以减少实验之间的变化。

此结构 - 功能策略的一个缺点是，救援构建体不与内源基因座表达的，而是从ROSA26基因座内，具有普遍存在的，中等活性的启动子。与其他技术相比，在超生理表达水平通常看到的，该系统能够使生理的转基因表达，其在体外分化实验和跨各种细胞谱系是稳定的。据观察，杂合子，ROSA26介导的转基因表达导致蛋白质p120ctn各表达式，为约一半野生型对照mESCs的内源性水平p120ctn各的但是足以拯救观察KO p120ctn各表型^12。同样，它已被取消先前monstrated一个杂合子，ROSA26介导ZEB2的转基因表达水平足以拯救在体外和在各种细胞谱系²⁹ 体内观察到的敲除ZEB2表型。另一个潜在的缺陷是，基因是mESC的自我更新必不可少的是不适合这样的结构与功能的研究。为了排除这种情况，建议以表征为以下条件刚成立KO mESCs:增殖，菌落形态，和干性基因的表达。此外，还建议检查的目的基因的表达，无论是在mESCs和谱系定型细胞。

除了在组成KO mESCs进行结构与功能的研究中，人们也可以采取利用酶Cre / loxP系统有条件的途径。后一种方法允许谱系特异性KO而不影响周围和支持细胞。此外，有条件的KO mESCs异体W代表结构功能研究的性能，如果没有在构成KO mESCs的表型。为了产生RMCE兼容，有条件-KO mESCs，与细胞类型特异性的Cre驱动纯合两侧装接loxP小鼠繁殖与RMCE兼容的小鼠; mESC的是从他们的后代中分离。该系统的优点在于，Cre重组酶不表达mESCs并且仅当mESCs在相应的细胞谱系分化变为有效。在RMCE兼容，有条件-KO mESCs，酶Cre重组将通过使用条件pRMCE-DV1靶向载体（LMBP ^08870）11诱导的内源基因和救援构建体的R26驱动的表达的同时失活。

此外，结构与功能的系统允许那些在人类疾病中发现，使我们能够测试这些突变对蛋白质功能的影响突变的研究。作为一个例子，我们已经确定ZEB2 mutat患者骨髓增殖性疾病的离子，由含有这些突变体ZEB2靶向载体，通过RMCE他们穿梭到ZEB2 KO mESCs的R26-轨迹，并检测所述蛋白质本身³⁰的稳定性突变的效果。该技术给出了这样的突变体在mESCs生物化学，以及在任何给定的血统更深入的了解，因为mESCs具有多能性。

总之，这种基于mESC的结构 - 功能的方法依赖于有效的mESC的隔离和定位技术，并允许在定义的生物范围内的识别的重要结构域和一个给定的蛋白质的功能。通过共享小鼠（冷冻精子可应要求提供）和质粒（从BCCM / LMBP和Addgene公司经销）我们要打开这个技术对整个科学界。

作者什么都没有透露。

我们感谢金科D'HONT，康斯登范Rockeghem，娜塔莉Farla，凯利·莱米尔和RIET德Rycke的出色的技术支持。我们也感谢EEF Parthoens，Evelien凡Hamme的，和阿曼达·戈卡尔弗斯从炎症研究中心的生物成像核心设施为他们提供专家援助。我们承认为有价值的讨论我们的研究小组的成员。这项工作是由比利时科学政策支持（Belspo校际景点虫眼 - 奖IAPⅦ-07 DevRepair; https://devrepair.be），由伊丽莎白女王医学基金会，比利时（GSKE 2008年至2010年; HTTP:// WWW .fmre-gske.be），以及比利时根特大学（http://www.ugent.be/en/ghentuniv）的协同研究行动（GOA 01G01908）。 SG是法兰德斯研究基金（FWO-V）的博士后研究员。