وقد تم تمويل البحث من قبل المعاهد الوطنية للصحة 1R15GM094770.

<html> 1. عزل مستعمرة والتثبيت <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> احتضان 300 المستعمرات على وسط آغار للمرة أشارت (مستعمرة معزولة ينبغي 1-2 مم في القطر). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة مستعمرة (حتى الوجه) والمتوسطة الكامنة باستخدام ملعقة الضيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المكان عدة قطرات من 2 ٪ آغار 42 درجة مئوية على شريحة المجهر باستخدام 1 مل pipetman طرف ومستعمرة على الفور مكان على وجه آغار حتى قبل أن يتصلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المكان عدة قطرات من 2 ٪ آغار 42 درجة مئوية على مستعمرة والسماح ليصلب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ارتداء قفازات لجميع الخطوات خلال الفترة المتبقية من هذا البروتوكول </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تقليم كتلة مع شفرة حلاقة ووضعها في قارورة سعة 3،5 المسمار الحد الأقصى البورسليكات بارافورمالدهيد تحتوي على 2 ٪ / 2 ٪ تثبيتي غلوتارالدهيد لمدة 7 أيام في 4 درجات مئوية. </li></ol> 2. يغسل والمعاملة الأزميوم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد حوالي 1 أسبوع ، وغسل كتل أغار على الجليد تحت غطاء الدخان الكيميائية التي تفرخ مرتين لمدة 15 دقيقة مع ما يكفي من الصوديوم كاكوديلات 0.15M (7.2 درجة الحموضة) لتغطية كامل مستعمرة (حوالي 1،5 مل) ثم مرتين لمدة 5 دقائق مع نفس الحجم من العازلة OS 1X (100 ملي KH 2 PO 4 10 ملي MgCl 2 ، ودرجة الحموضة 6.0). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة نفس الحجم من أوسو 1 4 ٪ [2 مل أوسو 4 (2 ٪) + 2 مل 2X OS مخزن] لقوارير (على الجليد) لتغطية كتل آغار تحت غطاء الدخان الكيميائي لمدة 1 ساعة ثم يغسل مرتين مع نفس المبلغ من العازلة OS 1X لمدة 10 دقيقة لكل منهما. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ترك قنينة بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية في المخزن المؤقت OS 1X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم التخلص من جميع تثبيتي ، ويغسل في هذه الخطوة على أنها نفايات خطرة. وكانت تحتوي على شطف جميع ماصات أوسو 4 3X مع الزيت النباتي. </li></ol> 3. غسل وتجفيف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> غسل القطع الصباحية أغار مرتين المقبل على الجليد مع نفس الحجم على النحو الوارد أعلاه من الماء البارد لمدة 10 دقيقة كل باستخدام ماصة باستور. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> غسل بالتتابع مع نفس الحجم من 25 ٪ و 50 ٪ و 75 ٪ ، 95 ٪ من الإيثانول لمدة 10 دقيقة كل تليها 2 يغسل مع الإيثانول بنسبة 100 ٪ لمدة 10 دقيقة. ترك المبيت في 4 درجات مئوية في الإيثانول بنسبة 100 ٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يتم التخلص من جميع يغسل في هذه الخطوة على أنها نفايات خطرة. </li></ol> 4. Spurr في التحضير <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في صباح اليوم التالي (في أقرب وقت ممكن) تزن الحلول التالية (EM العلوم) في كوب من البلاستيك القابل للتصرف تحت غطاء الدخان للتحضير كاشف Spurr ل. بالنسبة لجميع الأعمال اللاحقة باستخدام هذا الكاشف ، الاستمرار في استخدام غطاء الدخان. (ERL 4221 محلول 5 جرام) (4 حل DER 736 غراما) (NSA حل 13 غراما) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مزيج هذه الحلول (ببطء) لمدة 20 دقيقة في غطاء محرك السيارة باستخدام بقضيب </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة DMAE حل 0،15 غراما ويقلب 20 دقيقة على النحو الوارد أعلاه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ديغا الخليط لمدة 1-2 ساعات أعلاه في غطاء محرك السيارة. </li></ol> 5. Spurr في التسلل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حالما يتم Spurr لغسل كتل آغار 5 مرات مع نفس الحجم على النحو الوارد أعلاه 100 ٪ غرفة الايثانول مؤقت لمدة 10 دقيقة لكل منهما. بعد غسل الايثانول مشاركة إزالة الإيثانول باستخدام ماصة باستير بحيث يغطي الإيثانول المتبقية مجرد كتل آغار. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة ما يقرب من مبلغ مساو من كاشف لSpurr (حوالي 0،5 مل) وتدوير القوارير على عجلة لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة ثم السماح للوقوف لمدة 30 دقيقة. بعد 30 دقيقة إزالة حل به تماما ماصة باستور ، إضافة إلى تغطية Spurr كتلة آغار (حوالي 1،5 مل) ، وتناوب على عجلة قوارير لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة والسماح للوقوف لمدة 30 دقيقة. وكرر استبدال Spurr ، والتناوب ، وحضانة 3 مرات أكثر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد 30 دقيقة النهائي ، وإزالة كاشف Spurr وإضافة جديدة لتغطية Spurr القطع. السماح للكتل آغار لتصل إلى درجة حرارة الغرفة لمدة 4 ساعات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استبدال لSpurr وتناوب بين عشية وضحاها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في الصباح ، واستبدال Spurr مغادرة الدورية حتى اليوم التالي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المكان صباح اليوم التالي Spurr في قوالب السيليكون مرقمة (فيشر العلمية) فقط لتغطية الجزء السفلي من قوالب ثم إضافة إلى كتل آغار قوالب. في احتضان 60 درجة مئوية لمدة 4 ساعات </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد 4 ساعات ، وأعلى قبالة العفن ، مع أكثر من Spurr واحتضان عند 60 درجة مئوية خلال الليل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا كان بعد إزالة الكتل من قوالب الكتل لا تزال مرنة قليلا ، والعودة إلى القوالب واحتضان إضافي 2 أيام </li></ol> 6. Sectioning <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وكان يستخدم مشراح Ultracut ايكا S لقطع المقاطع μ 0.5 سميكة لالمجهر الضوئي و 0.1 μ المقاطع رقيقة لEM الإرسال. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المجهري للضوء ، كما تم خفض أقسام ، وضعوا على قطرة درهم 2 O ، والمجففة على حرارة 52 درجة مئوية كتلة. وكانت ملطخة ثم المقاطع المجففة مع انخفاض 1.0 ٪ طولويدين الزرقاء ، 1 ٪ البورات الصوديوم ل15/05 ثانية. بعد التلوين ، وغسلها فورا المقاطع تحت تيار من الماء ، والمجففة ، وغطت وسائل الاعلام في تركيب (KPL) ، وزلة تغطية مختومة على العينة. </li></ol>&gt; 7. ممثل النتائج : وقد جرى استعراض واسع النطاق على أهمية تشكيل لقياس النمط في الخميرة وغيرها من الكائنات الحية الدقيقة في السابق 1. وتجدر الإشارة بوجه خاص هو زيادة وظائف للمستعمرات الجرثومية المنظمة النسبية للمجتمعات غير منظم. وصف الأسلوب هو تعديل لطريقة لدمج أكبر المستعمرات المتخصصة 2 ، ولقد تم نشر وصفا موجزا للتعديلات لدينا 3. مثال على صورة مجهرية ضوء مقطع من خلال مركز مستعمرة S. البرية ويرد خميرة مستعمرة الخميرة في الشكل 1. زقاق ، الخيطان الكاذبة والخميرة بيضوي الشكل يمكن تمييزها بسهولة ، ومنطقة مستعمرة غزو آغار وراء ذلك هو أيضا واضح. ويرد مثال لصورة مجهرية الإلكترون من سلالة من الخميرة مختبر (W303 الخلفية) في الشكل 2. كانت الصورة من منطقة المستعمرة تحتوي على وتيرة عالية من الخلايا sporulated. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig1.jpg" alt="الشكل 1" /> الشكل 1. المجهري ضوء مستعمرة الخميرة البرية. تم عزل هذه الخميرة (YPS133) مؤخرا من الإفرازات الشجرة 4. وقد حضنت المستعمرة لمدة 6 أيام في المتوسط ​​5 YNA قبل sectioning. السهام تشير ممثل فتح زقاق والسهام تملأ تشير ممثل الخلايا الخضرية بيضوي الشكل ، السهام تملأ تشير سلاسل من الخلايا ممدود (الخيطان الكاذبة) ، وزقاق. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig2.jpg" alt="الشكل 2" /> الشكل 2. الكترون المجهري مختبر سلالة الخميرة. وقد حضنت مستعمرة SH1020 (W303 الخلفية) لمدة 6 أيام في المتوسط ​​قبل YNA sectioning 3. الصورة تظهر منطقة المقطع مع ارتفاع وتيرة زقاق. سهم يشير إلى بنية ثنائية الطبقة الجدار بوغ. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig3.jpg" alt="الشكل 3" /> الشكل 3. الكمي لتوزيع الخلايا في مستعمرات sporulated : أ) تم تركيب شبكة تحتوي على 15 المستطيلات المجاورة مكدسة جنبا الى جنب مع الطويلة في المنطقة الوسطى من صورة مقطع مستعمرة. يتم تحجيم الشبكة ، مع الحفاظ على نسب المستمر ، لتغطي فقط الجزء العلوي والسفلي من مستعمرة. (B &amp; C) ويتم تحديد جزء من الخلايا في كل مستطيل sporulated النسبي لمجموع الخلايا في هذا المستطيل عن طريق التفتيش البصري للصور في الفترة من 4 ايام القديمة (B) و 8 ايام المستعمرات القديمة (C). على سبيل المثال ، مستطيل في الجزء العلوي من مستعمرة (المسمى &quot;1&quot;) يتوافق مع الجانب الأيسر من الرسم البياني. ويبين متوسط ​​4 المستعمرات ، وأشرطة الخطأ عرض الأمراض المنقولة جنسيا. خطأ.

<ol>
	<li>Kimmel, A. R., Firtel, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breaking+symmetries:+regulation+of+Dictyostelium+development+through+chemoattractant+and+morphogen+signal-response.">Breaking symmetries: regulation of Dictyostelium development through chemoattractant and morphogen signal-response.</a> Curr Opin Genet Dev. 14, 540-540 (2004).</li><li>Palkova, Z., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Life+within+a+community:+benefit+to+yeast+long-term+survival.">Life within a community: benefit to yeast long-term survival.</a> FEMS Microbiol Rev. 30, 806-806 (2006).</li><li>Shapiro, J., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+significances+of+bacterial+colony+patterns.">The significances of bacterial colony patterns.</a> Bioessays. 17, 597-597 (1995).</li><li>Shapiro, J., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thinking+about+bacterial+populations+as+multicellular+organisms.">Thinking about bacterial populations as multicellular organisms.</a> Annu Rev Microbiol. 52, 81-81 (1998).</li><li>Engelberg, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multicellular+stalk-like+structures+in+Saccharomyces+cerevisiae.">Multicellular stalk-like structures in Saccharomyces cerevisiae.</a> J Bacteriol. 180, 3992-3992 (1998).</li><li>Scherz, R., Shinder, V., Engelberg, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+analysis+of+Saccharomyces+cerevisiae+stalk-like+structures+reveals+spatial+organization+and+cell+specialization.">Anatomical analysis of Saccharomyces cerevisiae stalk-like structures reveals spatial organization and cell specialization.</a> J Bacteriol. 183, 5402-5402 (2001).</li><li>Piccirillo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rim101p/PacC+pathway+and+alkaline+pH+regulate+pattern+formation+in+yeast+colonies.">The Rim101p/PacC pathway and alkaline pH regulate pattern formation in yeast colonies.</a> Genetics. 184, 707-707 (2010).</li><li>Sniegowski, P. D., Dombrowski, P. G., Fingerman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saccharomyces+cerevisiae+and+Saccharomyces+paradoxus+coexist+in+a+natural+woodland+site+in+North+America+and+display+different+levels+of+reproductive+isolation+from+European+conspecifics.">Saccharomyces cerevisiae and Saccharomyces paradoxus coexist in a natural woodland site in North America and display different levels of reproductive isolation from European conspecifics.</a> FEMS Yeast Res. 1, 299-299 (2002).</li><li>Piccirillo, S., Honigberg, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sporulation+patterning+and+invasive+growth+in+wild+and+domesticated+yeast+colonies.">Sporulation patterning and invasive growth in wild and domesticated yeast colonies.</a> Res Microbiol. 161, 390-390 (2002).</li><li>Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Architecture+of+developing+multicellular+yeast+colony:+spatio-temporal+expression+of+Ato1p+ammonium+exporter.">Architecture of developing multicellular yeast colony: spatio-temporal expression of Ato1p ammonium exporter.</a> Environ Microbiol. , (2009).</li></ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

طريقة عرض يكشف عن الهياكل الداخلية للمستعمرات. لأن الطريقة فعالة في تحديد أنماط من أنواع الخلايا في مجموعة س. سلالات خميرة مع morphologies مستعمرة مختلفة ، وأيضا في الأنواع متناقض S. ذات الصلة 5 ، الأسلوب ومن المرجح أيضا أن تعمل على نطاق واسع من الفطريات والك?...

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Osmium tetroxide</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 19152</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Silicone embedding molds</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>NC 9975029</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cycloaliphatic epoxide resin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 15004</td>
<td>ERL 4221</td>
</tr>
<tr>
<td>Epoxy resin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 13000</td>
<td>DER 736</td>
</tr>
<tr>
<td>Nonenyl Succinic Anhydride</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 19050</td>
<td>NSA</td>
</tr>
<tr>
<td>2-Dimethyl aminoethanol	</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 13300</td>
<td>DMAE</td>
</tr>
<tr>
<td>Mounting media</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>KPL</td>
<td>71-00-16</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Rotating wheel</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Ted Pella</td>
<td>Pelco 1055</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Microtome</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Leica</td>
<td>Ultracut S</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

yeast colony embedding method

الزخرفة من أنواع مختلفة من الخلايا في الأجنة هي الآلية الرئيسية في عملية التنمية metazoan. مجتمعات الكائنات الدقيقة ، مثل المستعمرات والأغشية الحيوية أيضا عرض نماذج من أنواع الخلايا. على سبيل المثال ، في الخميرة س. البيرة ، لا الخلايا والخلايا sporulated الكاذبة موزعة بشكل متجانس في المستعمرات. لا تزال على أهمية وظيفية من الزخرفة والآليات الجزيئية التي تكمن وراء هذه الأنماط غير مفهومة. أحد التحديات فيما يتعلق بالتحقيق في أنماط من أنواع الخلايا في مستعمرات الفطرية هو أنه على عكس الأنسجة metazoan ، ونسبيا في مستعمرات الخلايا ضعيفة المرفقة مع بعضها البعض. بصفة خاصة ، مستعمرات فطرية لا تحتوي على نفس المستوى واسعة من المصفوفة خارج الخلية الموجودة في معظم الأنسجة. نحن هنا التقرير على طريقة لدمج وsectioning مستعمرات الخميرة التي تكشف عن أنماط الداخلية من أنواع الخلايا في هذه المستعمرات. ويمكن استخدام هذه الطريقة لتحضير المقاطع سميكة (0.5 μ) مفيدة للفحص المجهري والمقاطع الخفيفة رقيقة (0،1 μ) مناسبة لانتقال المجهر الإلكتروني. ويمكن بسهولة زقاق الكاذبة خلايا يمكن تمييزها عن خلايا الخميرة بيضوي الشكل بواسطة المجهر الضوئي ، في حين أن بنية الداخلية لهذه الخلايا التي يمكن تصور EM. يستند هذا الأسلوب على المستعمرات المحيطة بها مع آغار ، تسلل لهم Spurr المتوسطة ، ثم sectioning. المستعمرات التي يبلغ قطرها في حدود 1-2 مم هي مناسبة لهذا البروتوكول. بالإضافة إلى الرؤية والداخلية من المستعمرات ، وطريقة تسمح برؤية منطقة مستعمرة أن يغزو آغار الكامنة.

Watch this Scientific Journal Video about Yeast Colony Embedding Method at JoVE.com

Yeast Colony Embedding Method

وهناك طريقة لتضمين مستعمرات الخميرة السماح لsectioning المجهر الضوئي والإلكترون. هذا البروتوكول يسمح بتحديد توزيع الخلايا والخلايا sporulated الكاذبة داخل المستعمرات توفير أداة جديدة لفهم تنظيم أنواع الخلايا داخل المجتمع الفطرية.

أسلوب الخميرة مستعمرة التضمين

Patterning of  different cell types in embryos is a key mechanism in metazoan development. Communities of microorganisms, such as colonies and biofilms ...

Microsoft Bing

Research

JoVE Journal

Biology

11.4K Views.  University of Missouri - Kansas City. وهناك طريقة لتضمين مستعمرات الخميرة السماح لsectioning المجهر الضوئي والإلكترون. هذا البروتوكول يسمح بتحديد توزيع الخلايا والخلايا sporulated الكاذبة داخل المستعمرات توفير أداة جديدة لفهم تنظيم أنواع الخلايا داخل المجتمع الفطرية.

Video: Yeast Colony Embedding Method

Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos

Plastic sections maintain true tissue morphology in thin sections of tissue that can be immunostained with fluorescent secondary antibodies, making this method more useful than paraffin-embedded or frozen sections for many types of tissue. The method for staining, plastic embedding, and sectioning is demonstrated in this video.

البلاستيك وتضمينها Sectioning الجنين المورق القيطم

Measuring Replicative Life Span in the Budding Yeast

Aging is a degenerative process characterized by a progressive deterioration of cellular components and organelles resulting in mortality. The budding yeast Saccharomyces cerevisiae has been used extensively to study the biology of aging, and several determinants of yeast longevity have been shown to be conserved in multicellular eukaryotes, including worms, flies, and mice 1. Due to the lack of easily quantified age-associated phenotypes, aging in yeast has been assayed almost exclusively by measuring the life span of cells in different contexts, with two different life span paradigms in common usage 2. Chronological life span refers to the length of time that a mother cell can survive in a non-dividing, quiescence-like state, and is proposed to serve as a model for aging of post-mitotic cells in multicellular eukaryotes. Replicative life span, in contrast, refers the number of daughter cells produced by a mother cell prior to senescence, and is thought to provide a model of aging in mitotically active cells. Here we present a generalized protocol for measuring the replicative life span of budding yeast mother cells. The goal of the replicative life span assay is to determine how many times each mother cell buds. The mother and daughter cells can be easily differentiated by an experienced researcher using a standard light microscope (total magnification 160X), such as the Zeiss Axioscope 40 or another comparable model. Physical separation of daughter cells from mother cells is achieved using a manual micromanipulator equipped with a fiber-optic needle. Typical laboratory yeast strains produce 20-30 daughter cells per mother and one life span experiment requires 2-3 weeks.

In this article we present a general protocol for measuring the replicative life span of yeast mother cells.

قياس تنسخي سبان الحياة في الخميرة الناشيء.

Aging is a degenerative process characterized by a progressive deterioration of cellular components and organelles resulting in mortality. The budding ...

Purification of Mitochondria from Yeast Cells

Mitochondria are the main site of ATP production during aerobic metabolism in eukaryotic non-photosynthetic cells1. These complex organelles also play essential roles in apoptotic cell death2, cell survival3, mammalian development4, neuronal development and function4, intracellular signalling5, and longevity regulation6. Our understanding of these complex biological processes controlled by mitochondria relies on robust methods for assessing their morphology, their protein and lipid composition, the integrity of their DNA, and their numerous vital functions. The budding yeast Saccharomyces cerevisiae, a genetically and biochemically manipulable unicellular eukaryote with annotated genome and well-defined proteome, is a valuable model for studying the molecular and cellular mechanisms underlying essential biological functions of mitochondria. For these types of studies, it is crucial to have highly pure mitochondria. Here we present a detailed description of a rapid and effective method for purification of yeast mitochondria. This method enables the isolation of highly pure mitochondria that are essentially free of contamination by other organelles and retain their structural and functional integrity after their purification. Mitochondria purified by this method are suitable for cell-free reconstitution of essential mitochondrial processes and can be used for the analysis of mitochondrial structure and functions, mitochondrial proteome and lipidome, and mitochondrial DNA.

We describe a rapid and effective method for purification of mitochondria from the yeast Saccharomyces cerevisiae. This method enables the high-yield isolation of pure mitochondria that are essentially free of contamination by other organelles and retain their structural and functional integrity after their purification.

تنقية الميتوكوندريا من خلايا الخميرة

Mitochondria are the main site of ATP production during aerobic metabolism in eukaryotic non-photosynthetic cells1. These complex organelles also play ...

High-throughput Yeast Plasmid Overexpression Screen

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, including those with direct relevance to human disease. Because of its short generation time and well-characterized genome, a major experimental advantage of the yeast model system is the ability to perform genetic screens to identify genes and pathways that are involved in a given process. Over the last thirty years such genetic screens have been used to elucidate the cell cycle, secretory pathway, and many more highly conserved aspects of eukaryotic cell biology 1-5. In the last few years, several genomewide libraries of yeast strains and plasmids have been generated 6-10. These collections now allow for the systematic interrogation of gene function using gain- and loss-of-function approaches 11-16. Here we provide a detailed protocol for the use of a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot to perform a plasmid overexpression screen, using an arrayed library of 5,500 yeast plasmids. We have been using these screens to identify genetic modifiers of toxicity associated with the accumulation of aggregation-prone human neurodegenerative disease proteins. The methods presented here are readily adaptable to the study of other cellular phenotypes of interest.

Here we describe a plasmid overexpression screen in Saccharomyces cerevisiae, using an arrayed plasmid library and a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot.

شاشة عالية الإنتاجية الخميرة Overexpression البلازميد

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, ...

Chromatographic Purification of Highly Active Yeast Ribosomes

Eukaryotic ribosomes are much more labile as compared to their eubacterial and archael counterparts, thus posing a significant challenge to researchers. Particularly troublesome is the fact that lysis of cells releases a large number of proteases and nucleases which can degrade ribosomes. Thus, it is important to separate ribosomes from these enzymes as quickly as possible. Unfortunately, conventional differential ultracentrifugation methods leaves ribosomes exposed to these enzymes for unacceptably long periods of time, impacting their structural integrity and functionality. To address this problem, we utilize a chromatographic method using a cysteine charged Sulfolink resin. This simple and rapid application significantly reduces co-purifying proteolytic and nucleolytic activities, producing high yields of intact, highly biochemically active yeast ribosomes. We suggest that this method should also be applicable to mammalian ribosomes. The simplicity of the method, and the enhanced purity and activity of chromatographically purified ribosome represents a significant technical advancement for the study of eukaryotic ribosomes.

Contamination of preparations of eukaryotic ribosomes purified by traditional methods by co-purifying nucleases and proteases negatively impacts on downstream biochemical and structural analyses. A rapid and simple chromatographic purification method is used to solve this problem using yeast ribosomes as a model system.

الكروماتوغرافي تنقية ريبوسوم الخميرة نشطة للغاية

Eukaryotic ribosomes are much more labile as compared to their eubacterial and archael counterparts, thus posing a significant challenge to researchers.  ...

Cryosectioning Yeast Communities for Examining Fluorescence Patterns

Microbes typically live in communities. The spatial organization of cells within a community is believed to impact the survival and function of the community1. Optical sectioning techniques, including confocal and two-photon microscopy, have proven useful for observing spatial organization of bacterial and archaeal communities2,3. A combination of confocal imaging and physical sectioning of yeast colonies has revealed internal organization of cells4. However, direct optical sectioning using confocal or two-photon microscopy has been only able to reach a few cell layers deep into yeast colonies. This limitation is likely because of strong scattering of light from yeast cells4.
Here, we present a method based on fixing and cryosectioning to obtain spatial distribution of fluorescent cells within Saccharomyces cerevisiae communities. We use methanol as the fixative agent to preserve the spatial distribution of cells. Fixed communities are infiltrated with OCT compound, frozen, and cryosectioned in a cryostat. Fluorescence imaging of the sections reveals the internal organization of fluorescent cells within the community.
Examples of yeast communities consisting of strains expressing red and green fluorescent proteins demonstrate the potentials of the cryosectioning method to reveal the spatial distribution of fluorescent cells as well as that of gene expression within yeast colonies2,3. Even though our focus has been on Saccharomyces cerevisiae communities, the same method can potentially be applied to examine other microbial communities.

We present a protocol for freezing and cryosectioning yeast communities to observe internal patterns of fluorescent cells. The method relies on methanol-fixing and OCT-embedding to preserve the spatial distribution of cells without inactivating fluorescent proteins within a community.

Cryosectioning المجتمعات الخميرة لفحص أنماط الإسفار

Microbes typically live  in communities. The spatial organization  of cells within a community is believed to impact the survival and function of the  ...

The Soft Agar Colony Formation Assay

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft agar colony formation assay is a well-established method for characterizing this capability in vitro and is considered to be one of the most stringent tests for malignant transformation in cells. This assay also allows for semi-quantitative evaluation of this capability in response to various treatment conditions. Here, we will demonstrate the soft agar colony formation assay using a murine lung carcinoma cell line, CMT167, to demonstrate the tumor suppressive effects of two members of the Wnt signaling pathway, Wnt7A and Frizzled-9 (Fzd-9). Concurrent overexpression of Wnt7a and Fzd-9 caused an inhibition of colony formation in CMT167 cells. This shows that expression of Wnt7a ligand and its Frizzled-9 receptor is sufficient to suppress tumor growth in a murine lung carcinoma model.

The soft agar colony formation assay is a method used to confirm cellular anchorage-independent growth in vitro. The goal of this protocol is to illustrate a stringent method for the detection of the tumorigenic potential of transformed cells and the tumor suppressive effects of proteins on transformed cells.

تشكيل مستعمرة الفحص لينة آجار

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft ...

Microscopy of Fission Yeast Sexual Lifecycle

The fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been an invaluable model system in studying the regulation of the mitotic cell cycle progression, the mechanics of cell division and cell polarity. Furthermore, classical experiments on its sexual reproduction have yielded results pivotal to current understanding of DNA recombination and meiosis. More recent analysis of fission yeast mating has raised interesting questions on extrinsic stimuli response mechanisms, polarized cell growth and cell-cell fusion. To study these topics in detail we have developed a simple protocol for microscopy of the entire sexual lifecycle. The method described here is easily adjusted to study specific mating stages. Briefly, after being grown to exponential phase in a nitrogen-rich medium, cell cultures are shifted to a nitrogen-deprived medium for periods of time suited to the stage of the sexual lifecycle that will be explored. Cells are then mounted on custom, easily built agarose pad chambers for imaging. This approach allows cells to be monitored from the onset of mating to the final formation of spores.

We provide a reproducible basic method for the long-term microscopy of the fission yeast sexual lifecycle. With minor adjustments described, the presented protocol allows research focus on different steps of the reproductive process.

المجهر من دورة حياة الجنسية الانشطار الخميرة

The fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been an invaluable model system in studying the regulation of the mitotic cell cycle progression, the ...

ODELAY: A Large-scale Method for Multi-parameter Quantification of Yeast Growth

Growth phenotypes of microorganisms are a strong indicator of their underlying genetic fitness and can be segregated into 3 growth regimes: lag-phase, log-phase, and stationary-phase. Each growth phase can reveal different aspects of fitness that are related to various environmental and genetic conditions. High-resolution and quantitative measurements of all 3 phases of growth are generally difficult to obtain. Here we present a detailed method to characterize all 3 growth phases on solid media using an assay called One-cell Doubling Evaluation of Living Arrays of Yeast (ODELAY). ODELAY quantifies growth phenotypes of individual cells growing into colonies on solid media using time-lapse microscopy. This method can directly observe population heterogeneity with each growth parameter in genetically identical cells growing into colonies. This population heterogeneity offers a unique perspective for understanding genetic and epigenetic regulation, and responses to genetic and environmental perturbations. While the ODELAY method is demonstrated using yeast, it can be utilized on any colony forming microorganism that is visible by bright field microscopy.

We present a method for quantifying growth phenotypes of individual yeast cells as they grow into colonies on solid media using time-lapse microscopy termed, One-cell Doubling Evaluation of Living Arrays of Yeast (ODELAY). Population heterogeneity of genetically identical cells growing into colonies can be directly observed and quantified.

أوديلاي: طريقة على نطاق واسع لالمعلمات المتعددة الكمي للنمو الخميرة

Growth phenotypes of microorganisms are a strong indicator of their underlying genetic fitness and can be segregated into 3 growth regimes: lag-phase, ...

Pancreatic Islet Embedding for Paraffin Sections

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a mixed cell population in a structured architecture that impacts function, and human islets are widely variable in cell type composition. Current frequently used methods to study cultured islets include molecular studies performed on whole islets, lumping disparate islet cell types together, or microscopy or molecular studies on dispersed islet cells, disrupting islet architecture. For in vivo islet studies, paraffin-embedded pancreas sectioning is a powerful technique to assess cell-specific outcomes in the native pancreatic environment. Studying post-culture islets by paraffin sectioning would offer several advantages: detection of multiple outcomes on the same islets (potentially even the exact-same islets, using serial sections), cell-type-specific measurements, and maintaining native islet cell-cell and cell-substratum interactions both during experimental exposure and for analysis. However, existing techniques for embedding isolated islets post-culture are inefficient, time consuming, prone to loss of material, and generally produce sections with inadequate islet numbers to be useful for quantifying outcomes. Clinical pathology laboratory cell block preparation facilities are inaccessible and impractical for basic research laboratories. We have developed an improved, simplified bench-top method that generates sections with robust yield and distribution of islets. Fixed islets are resuspended in warm histological agarose gel and pipetted into a flat disc on a standard glass slide, such that the islets are distributed in a plane. After standard dehydration and embedding, multiple (10+) 4 - 5 &#181;m sections can be cut from the same islet block. Using this method, histological&#160;and immunofluorescent analyses can be performed on mouse, rat, and human islets. This is an effective, inexpensive, time-saving approach to assess cell-type-specific, intact-architecture outcomes from cultured islets.

Ex vivo pancreatic islet studies are important for diabetes research. Existing techniques to study cultured islets in their native 3-dimensional architecture are time consuming, inefficient, and infrequently used. This work describes a new, simple, and efficient method for generating high-quality paraffin sections of whole cultured islets.

جزيرة البنكرياس التضمين لمقاطع البارافين

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a ...