המחקר מומן על ידי NIH 1R15GM094770.

<html> 1. במושבה בידוד קיבוע <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה 300 מושבות על אגר בינוני בפעם המצוין (מושבה מבודדת צריך להיות 1-2 מ&quot;מ קוטר). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר המושבה (את הפנים) ובינוניים הבסיסית בעזרת מרית צרה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים מספר טיפות של אגר 2% 42 ° C בשקופית באמצעות מיקרוסקופ 1 מ&quot;ל pipetman קצה ומיד המושבה מקום על פני אגר לפני שזה מתמצק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים מספר טיפות של אגר 2% 42 ° C על המושבה ולאפשר לגבש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבשו כפפות על צעדים במשך כל שארית של פרוטוקול זה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחסום חתוך עם סכין גילוח ומכניסים אותם בקבוקון 3.5 מ&quot;ל בורג מכסה בורוסיליקט paraformaldehyde המכיל 2% / מקבע glutaraldehyde 2% למשך 7 ימים בבית 4 ° C. </li></ol> 2. רוחצת וטיפול אוסמיום <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחרי שבוע בערך 1, לשטוף בלוקים אגר על הקרח מתחת למכסה המנוע כימי קטר ידי דוגרים פעמיים במשך 15 דקות עם cacodylate 0.15M מספיק נתרן (pH 7.2) כדי לכסות לחלוטין את המושבה (כ 1.5 מ&quot;ל) ולאחר מכן עוד פעמיים במשך 5 דקות עם אותו נפח של 1X OS חיץ (100 מ&quot;מ KH 2 PO 4 10 mM MgCl 2, pH 6.0). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיפים את נפח זהה של OSO 1% 4 [2 מ&quot;ל OSO 4 (2%) + 2 מ&quot;ל 2x OS הצפת] כדי בקבוקונים (על הקרח) כדי לכסות את קוביות אגר מתחת למכסה המנוע כימי לרתוח במשך שעה 1 ואז לשטוף פעמיים עם אותו סכום של 1X OS חיץ במשך 10 דקות כל אחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השאר מבחנות לילה ב 4 ° C במאגר OS 1X. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקבע וכל שוטף בשלב זה הם נפטרים כמו פסולת מסוכנת. Pipettes כל המכיל OSO 4 היו שטופים 3X עם שמן צמחי. </li></ol> 3. לשטוף והתייבשות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף למחרת בבוקר אגר חוסם פעמיים על קרח עם נפח זהה מעל מים קרים במשך 10 דקות כל אחד באמצעות פיפטה פסטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף ברצף עם נפח זהה של 25%, 50%, 75%, אתנול 95% במשך 10 דקות כל אחד ואחריו 2 שוטף עם אתנול 100% במשך 10 דקות. השאירו לילה בשעה 4 ° C באתנול 100%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שוטף כל בשלב זה הם נפטרים כמו פסולת מסוכנת. </li></ol> 4. Spurr של הכנה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למחרת בבוקר (מוקדם ככל האפשר) לשקול את הפתרונות הבאים (EM למדעים) לתוך כוס פלסטיק חד פעמיות מתחת למכסה המנוע קטר להכין ריאגנט של Spurr. במשך כל העבודה שלאחר מכן באמצעות מגיב, להמשיך להשתמש ברדס קטר. (ERL 4221 פתרון 5 גרם) (DER 736 פתרון 4 גרם) (פתרון NSA 13 גרם) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שילוב פתרונות אלה (לאט) במשך 20 דקות במנדף באמצעות בר ומערבבים </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף פתרון DMAE 0.15 גרם ומערבבים 20 דקות לעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגה התערובת מעל ל 1-2 שעות במנדף. </li></ol> 5. Spurr של הסתננות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע של Spurr עשוי לשטוף את רחובות אגר 5 פעמים עם נפח זהה של מעל 100 אתנול חדר temp% במשך 10 דקות כל אחד. לאחר לשטוף את אתנול האחרון להסיר את אתנול באמצעות פיפטה פסטר כך אתנול שנותרו רק מכסה את אבני אגר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף כ כמות זהה של מגיב של Spurr (כ 0.5 מ&quot;ל) ולסובב צלוחיות על ההגה במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר ולאחר מכן לאפשר לעמוד במשך 30 דקות. לאחר 30 דקות להסיר את הפתרון לחלוטין בעזרת פיפטה פסטר, להוסיף Spurr של לכסות לחסום אגר (כ 1.5 מ&quot;ל), לסובב צלוחיות על ההגה במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר ולאפשר לעמוד במשך 30 דקות. חזור על החלפה של Spurr, סיבוב הדגירה 3 פעמים יותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 30 הדקות האחרונות, להסיר מגיב של Spurr ולהוסיף טרי Spurr של לכסות את רחובות. אפשר בלוקים אגר לעמוד טמפ החדר למשך 4 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החלף את Spurr של ולסובב לילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בבוקר להחליף Spurr של ולהשאיר מסתובב עד יום המחרת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Spurr הבא במקום בבוקר של בתבניות סיליקון ממוספרים (פישר סיינטיפיק) רק כדי לכסות את החלק התחתון של תבניות ולאחר מכן להוסיף קוביות אגר עם תבניות. לדגור על 60 מעלות צלזיוס למשך 4 שעות </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 4 שעות, מעל גבי תבניות, עם יותר Spurr ושל דגירה ב 60 ° C במשך הלילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם לאחר הסרת אבני מתבניות בלוקים עדיין גמיש מעט, לחזור אל תבניות דגירה נוסף 2 ימים </li></ol> 6. חתך <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Microtome Ultracut S לייקה שימש לקצץ בסעיפים 0.5 μ עבה של מיקרוסקופ אור 0.1 μ סעיפים דק עבור EM השידור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור במיקרוסקופ אור, כמו החלקים נחתכו, הם הונחו על ירידה של DH 2 O, מיובשים על בלוק 52 מעלות צלזיוס חום. קטעים יבשים היו מוכתמים אז עם ירידה של 1.0% toluidine כחול, borate סודיום 1% עבור 5-15 שניות. לאחר מכתים, הסעיפים נשטפו מיד תחת זרם של מים, יבשים, מכוסה התקשורת הרכבה (KPL), וכן תלוש cover חתום על המדגם. </li></ol>&gt; 7. נציג תוצאות: הרלוונטיות רחב למדידת היווצרות דפוס בשמרים ומיקרואורגניזמים אחרים נבדקו בעבר 1. שים לב במיוחד הוא פונקציונליות מוגברת של מושבות מיקרוביאלי מאורגן היחסית לקהילות מאורגן. השיטה המתוארת הוא שינוי של שיטה להטבעת מושבות התמחה גדול 2 ו תיאור קצר של שינויים שלנו פורסמה 3. דוגמה מיקרוסקופ אור קטע דרך מרכז במושבה של פרא S. שמרים המושבה cerevisiae מוצג באיור 1. Asci, pseudohyphae ושמרים אובאלית וניתן להבחין בקלות, והאזור המושבה פולשים agar שבבסיס ניכרת גם. דוגמה מיקרוסקופ אלקטרון של זן מעבדה של שמרים (W303 רקע) הוא שמוצג באיור 2. התמונה מאזור המושבה המכיל בתדירות גבוהה של תאים sporulated. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig1.jpg" alt="איור 1" /> באיור 1. מיקרוסקופיה Light של מושבה שמרים פרא. שמרים זו (YPS133) היה מבודד לאחרונה מן ולפליטות עץ 4. המושבה הודגר עבור 6 ימים על YNA בינוני 5 לפני חתך. חיצים פתח מצביעים נציג asci, חיצים מילאו מצביעים נציג תאים וגטטיבי אובאלית, ראשי חץ מילאו מצביעים שרשראות של תאים מאורכים (pseudohyphae) ו asci. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig2.jpg" alt="איור 2" /> באיור 2. אלקטרונים מיקרוסקופית של זן שמרים מעבדה. המושבה של SH1020 (W303 רקע) הודגר עבור 6 ימים על בינוני YNA לפני חתך 3. Image מראה האזור הסעיף עם תדירות גבוהה של asci. החץ מציין את מבנה דו שכבת הקיר נבג. <img src="/files/ftp_upload/2510/2510fig3.jpg" alt="איור 3" /> איור 3. כימות בחלוקת תאים sporulated במושבות: A) רשת המכיל 15 מלבנים הסמוך מוערמים לאורך הצד ארוך שלהם הוא גבי האזור מרכזי של דימוי סעיף קולוניה. רשת היא scaled, תוך שמירה הפרופורציות שלה מתמדת, פשוט מכסה את העליון והתחתון המושבה. (B &amp; C) שבריר תאים sporulated במלבן כל היחסית לתאי סך במלבן כי נקבעת לפי בדיקה חזותית הדימויים מן 4-יום הישן (B) 8-יום הישן (C) מושבות. לדוגמה, את המלבן בחלקו העליון של המושבה (שכותרתו &quot;1&quot;) המתאים בצד שמאל של הגרף. Mean של 4 מושבות מוצג; הסורגים שגיאה התצוגה std. שגיאה.

<ol>
	<li>Kimmel, A. R., Firtel, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breaking+symmetries:+regulation+of+Dictyostelium+development+through+chemoattractant+and+morphogen+signal-response.">Breaking symmetries: regulation of Dictyostelium development through chemoattractant and morphogen signal-response.</a> Curr Opin Genet Dev. 14, 540-540 (2004).</li><li>Palkova, Z., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Life+within+a+community:+benefit+to+yeast+long-term+survival.">Life within a community: benefit to yeast long-term survival.</a> FEMS Microbiol Rev. 30, 806-806 (2006).</li><li>Shapiro, J., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+significances+of+bacterial+colony+patterns.">The significances of bacterial colony patterns.</a> Bioessays. 17, 597-597 (1995).</li><li>Shapiro, J., Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thinking+about+bacterial+populations+as+multicellular+organisms.">Thinking about bacterial populations as multicellular organisms.</a> Annu Rev Microbiol. 52, 81-81 (1998).</li><li>Engelberg, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multicellular+stalk-like+structures+in+Saccharomyces+cerevisiae.">Multicellular stalk-like structures in Saccharomyces cerevisiae.</a> J Bacteriol. 180, 3992-3992 (1998).</li><li>Scherz, R., Shinder, V., Engelberg, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+analysis+of+Saccharomyces+cerevisiae+stalk-like+structures+reveals+spatial+organization+and+cell+specialization.">Anatomical analysis of Saccharomyces cerevisiae stalk-like structures reveals spatial organization and cell specialization.</a> J Bacteriol. 183, 5402-5402 (2001).</li><li>Piccirillo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rim101p/PacC+pathway+and+alkaline+pH+regulate+pattern+formation+in+yeast+colonies.">The Rim101p/PacC pathway and alkaline pH regulate pattern formation in yeast colonies.</a> Genetics. 184, 707-707 (2010).</li><li>Sniegowski, P. D., Dombrowski, P. G., Fingerman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saccharomyces+cerevisiae+and+Saccharomyces+paradoxus+coexist+in+a+natural+woodland+site+in+North+America+and+display+different+levels+of+reproductive+isolation+from+European+conspecifics.">Saccharomyces cerevisiae and Saccharomyces paradoxus coexist in a natural woodland site in North America and display different levels of reproductive isolation from European conspecifics.</a> FEMS Yeast Res. 1, 299-299 (2002).</li><li>Piccirillo, S., Honigberg, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sporulation+patterning+and+invasive+growth+in+wild+and+domesticated+yeast+colonies.">Sporulation patterning and invasive growth in wild and domesticated yeast colonies.</a> Res Microbiol. 161, 390-390 (2002).</li><li>Vachova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Architecture+of+developing+multicellular+yeast+colony:+spatio-temporal+expression+of+Ato1p+ammonium+exporter.">Architecture of developing multicellular yeast colony: spatio-temporal expression of Ato1p ammonium exporter.</a> Environ Microbiol. , (2009).</li></ol>

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

השיטה הציג חושף את המבנים הפנימיים של המושבות. בגלל השיטה יעילה בקביעת הדפוסים של סוגי תאים בטווח של ס זנים cerevisiae עם מורפולוגיות מושבה שונה, גם מינים הקשורים ס paradoxus 5, השיטה היא גם נוטים לעבוד על מגוון רחב של פטריות ומיקרואורגניזמים אחרים. צעד קריטי להצלחה של השיטה היא להבטיח את המושבה כולה, כולל החלק העליון של המושבה, הוא עטוף בכל פרוטוקול אגר. אם המושבות נארזים לחלוטין אגר ניתן לקבוע לאחר חתך עבור מיקרוסקופיה מכתים אור עם toluidine כחול. כאשר הסעיפים מוכתם נתפסים על ידי מיקרוסקופ אור, המדיום אגר הוא מוכתם מעט כהה יותר המדיום הטבעה. מכיוון מתכווץ אגר במהלך השלבים dehydrations, על מנת לשחזר את המושבה כולה כדי להיות בטוח: 1) להוסיף 4-5 טיפות של אגר באופן מהימן לכסות את המושבה בשלב 1.2, ו - 2) לקצץ את אגר רק בצדדים, לא על את החלק העליון והתחתון, ורק לקצץ מספיק כדי לאפשר לו להשתלב בתוך תבניות בשלב 1.5. השלב השני של פרוטוקול זה הוא קריטי עבור חלקים אופטימלי כרוכה קשיות של הבלוק של הטבעה בינוני. בדרך כלל אבני נבחנים לאחר דגירה בין לילה, על ידי הסרת אותם תבניות. אם חוסם את עדיין גמישה כאשר החזיק בשתי ידיו מתוחות, הם כנראה לא מספיק חזק עבור חתך. במקרה הזה הם חזרו בחממה בטמפרטורה זהה עבור 48 שעות נוספות להערכה מחדש כאמור לעיל. המשמעות של להיות מסוגלים לזהות דפוסים של סוגי תאים בתוך מושבות חיידקים היא כי דפוסים אלה עשוי לשקף ארגון פונקציונלי של תאים לתוך קהילות. ואכן, דפוסים של חיידקים עשויים לשקף מנגנונים עתיקים בסיסי שבאמצעותו אורגניזמים מאותו המין אינטראקציה. יחד עם שיטות ניטור דפוסי ביטוי גנים במושבות 3,6, את היכולת לזהות דפוסים של התמיינות תאים ביישובים אלה יכולים לסייע לבחון מנגנונים פוטנציאל של היווצרות דפוס מיקרוביאלי.

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Osmium tetroxide</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 19152</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Silicone embedding molds</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>NC 9975029</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cycloaliphatic epoxide resin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 15004</td>
<td>ERL 4221</td>
</tr>
<tr>
<td>Epoxy resin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 13000</td>
<td>DER 736</td>
</tr>
<tr>
<td>Nonenyl Succinic Anhydride</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 19050</td>
<td>NSA</td>
</tr>
<tr>
<td>2-Dimethyl aminoethanol	</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>RT 13300</td>
<td>DMAE</td>
</tr>
<tr>
<td>Mounting media</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>KPL</td>
<td>71-00-16</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Rotating wheel</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Ted Pella</td>
<td>Pelco 1055</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Microtome</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Leica</td>
<td>Ultracut S</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

yeast colony embedding method

דפוסים של סוגי תאים שונים העוברים הוא מנגנון מרכזי בפיתוח מטזואניים. הקהילות של מיקרואורגניזמים, כגון מושבות biofilms גם להציג דפוסים של סוגי תאים. לדוגמה, שמרים ס cerevisiae, תאים sporulated ותאי pseudohyphal אינם מפוזרים באופן אחיד במושבות. החשיבות התפקודית של דפוסים המנגנונים המולקולריים העומדים בבסיס הדפוסים הללו הם עדיין ממעטים להבין. אתגר אחד ביחס לחקור דפוסים של סוגי תאים במושבות פטרייתי היא שבניגוד מטזואניים רקמות, תאים במושבות יחסית מצורף חלושות אחד לשני. בפרט, מושבות פטריות אינם מכילים את רמת נרחב זהה של תאי מטריקס נמצא ברוב הרקמות. כאן אנו מדווחים על שיטה להטבעת ו חתך מושבות שמרים החושף את דפוסי הפנים של סוגי תאים במושבות אלה. השיטה יכולה לשמש כדי להכין חלקים עבים (0.5 μ) שימושי במיקרוסקופ אור וחתכים דקים (0.1 μ) מתאים במיקרוסקופ אלקטרונים השידור. תאים Asci ו pseudohyphal ניתן בקלות להבחין בין תאים שמרים דמוי ביצה על ידי מיקרוסקופ אור, ואילו המבנה הפנימי של תאים אלה ניתן דמיינו ידי EM. השיטה מבוססת על הסובבים מושבות עם אגר, שחדר אותם עם המדיום של Spurr ולאחר מכן חתך. מושבות בקוטר בטווח של 1-2 מ&quot;מ מתאימים פרוטוקול זה. בנוסף לדמיין את הפנים של מושבות, השיטה מאפשרת הדמיה של האזור של המושבה כי פולש אגר הבסיסית.

Watch this Scientific Journal Video about Yeast Colony Embedding Method at JoVE.com

Yeast Colony Embedding Method

שיטה להטבעת מושבות שמרים המאפשר חתך של מיקרוסקופ אור אלקטרונים. פרוטוקול זה מאפשר קביעה של חלוקת תאים sporulated ותאי pseudohyphal בתוך מושבות מתן כלי חדש לקראת הבנת הארגון של סוגי תאים בתוך קהילה פטרייתי.

במושבה שמרים והטבעה שיטה

Patterning of  different cell types in embryos is a key mechanism in metazoan development. Communities of microorganisms, such as colonies and biofilms ...

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biology

11.4K Views.  University of Missouri - Kansas City. שיטה להטבעת מושבות שמרים המאפשר חתך של מיקרוסקופ אור אלקטרונים. פרוטוקול זה מאפשר קביעה של חלוקת תאים sporulated ותאי pseudohyphal בתוך מושבות מתן כלי חדש לקראת הבנת הארגון של סוגי תאים בתוך קהילה פטרייתי.

Video: Yeast Colony Embedding Method

Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos

Plastic sections maintain true tissue morphology in thin sections of tissue that can be immunostained with fluorescent secondary antibodies, making this method more useful than paraffin-embedded or frozen sections for many types of tissue. The method for staining, plastic embedding, and sectioning is demonstrated in this video.

פלסטיק הטבעת ואת חתך של עוברים Xenopus laevis

Measuring Replicative Life Span in the Budding Yeast

Aging is a degenerative process characterized by a progressive deterioration of cellular components and organelles resulting in mortality. The budding yeast Saccharomyces cerevisiae has been used extensively to study the biology of aging, and several determinants of yeast longevity have been shown to be conserved in multicellular eukaryotes, including worms, flies, and mice 1. Due to the lack of easily quantified age-associated phenotypes, aging in yeast has been assayed almost exclusively by measuring the life span of cells in different contexts, with two different life span paradigms in common usage 2. Chronological life span refers to the length of time that a mother cell can survive in a non-dividing, quiescence-like state, and is proposed to serve as a model for aging of post-mitotic cells in multicellular eukaryotes. Replicative life span, in contrast, refers the number of daughter cells produced by a mother cell prior to senescence, and is thought to provide a model of aging in mitotically active cells. Here we present a generalized protocol for measuring the replicative life span of budding yeast mother cells. The goal of the replicative life span assay is to determine how many times each mother cell buds. The mother and daughter cells can be easily differentiated by an experienced researcher using a standard light microscope (total magnification 160X), such as the Zeiss Axioscope 40 or another comparable model. Physical separation of daughter cells from mother cells is achieved using a manual micromanipulator equipped with a fiber-optic needle. Typical laboratory yeast strains produce 20-30 daughter cells per mother and one life span experiment requires 2-3 weeks.

In this article we present a general protocol for measuring the replicative life span of yeast mother cells.

מדידת תוחלת החיים בשמרים replicative הנצה

Aging is a degenerative process characterized by a progressive deterioration of cellular components and organelles resulting in mortality. The budding ...

Purification of Mitochondria from Yeast Cells

Mitochondria are the main site of ATP production during aerobic metabolism in eukaryotic non-photosynthetic cells1. These complex organelles also play essential roles in apoptotic cell death2, cell survival3, mammalian development4, neuronal development and function4, intracellular signalling5, and longevity regulation6. Our understanding of these complex biological processes controlled by mitochondria relies on robust methods for assessing their morphology, their protein and lipid composition, the integrity of their DNA, and their numerous vital functions. The budding yeast Saccharomyces cerevisiae, a genetically and biochemically manipulable unicellular eukaryote with annotated genome and well-defined proteome, is a valuable model for studying the molecular and cellular mechanisms underlying essential biological functions of mitochondria. For these types of studies, it is crucial to have highly pure mitochondria. Here we present a detailed description of a rapid and effective method for purification of yeast mitochondria. This method enables the isolation of highly pure mitochondria that are essentially free of contamination by other organelles and retain their structural and functional integrity after their purification. Mitochondria purified by this method are suitable for cell-free reconstitution of essential mitochondrial processes and can be used for the analysis of mitochondrial structure and functions, mitochondrial proteome and lipidome, and mitochondrial DNA.

We describe a rapid and effective method for purification of mitochondria from the yeast Saccharomyces cerevisiae. This method enables the high-yield isolation of pure mitochondria that are essentially free of contamination by other organelles and retain their structural and functional integrity after their purification.

טיהור של המיטוכונדריה מתאי שמרים

Mitochondria are the main site of ATP production during aerobic metabolism in eukaryotic non-photosynthetic cells1. These complex organelles also play ...

High-throughput Yeast Plasmid Overexpression Screen

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, including those with direct relevance to human disease. Because of its short generation time and well-characterized genome, a major experimental advantage of the yeast model system is the ability to perform genetic screens to identify genes and pathways that are involved in a given process. Over the last thirty years such genetic screens have been used to elucidate the cell cycle, secretory pathway, and many more highly conserved aspects of eukaryotic cell biology 1-5. In the last few years, several genomewide libraries of yeast strains and plasmids have been generated 6-10. These collections now allow for the systematic interrogation of gene function using gain- and loss-of-function approaches 11-16. Here we provide a detailed protocol for the use of a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot to perform a plasmid overexpression screen, using an arrayed library of 5,500 yeast plasmids. We have been using these screens to identify genetic modifiers of toxicity associated with the accumulation of aggregation-prone human neurodegenerative disease proteins. The methods presented here are readily adaptable to the study of other cellular phenotypes of interest.

Here we describe a plasmid overexpression screen in Saccharomyces cerevisiae, using an arrayed plasmid library and a high-throughput yeast transformation protocol with a liquid handling robot.

תפוקה גבוהה Overexpression פלסמיד שמרים מסך

The budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, is a powerful model system for defining fundamental mechanisms of many important cellular processes, ...

Competitive Genomic Screens of Barcoded Yeast Libraries

By virtue of advances in next generation sequencing technologies, we have access to new genome sequences almost daily. The tempo of these advances is accelerating, promising greater depth and breadth. In light of these extraordinary advances, the need for fast, parallel methods to define gene function becomes ever more important. Collections of genome-wide deletion mutants in yeasts and E. coli have served as workhorses for functional characterization of gene function, but this approach is not scalable, current gene-deletion approaches require each of the thousands of genes that comprise a genome to be deleted and verified. Only after this work is complete can we pursue high-throughput phenotyping. Over the past decade, our laboratory has refined a portfolio of competitive, miniaturized, high-throughput genome-wide assays that can be performed in parallel. This parallelization is possible because of the inclusion of DNA 'tags', or 'barcodes,' into each mutant, with the barcode serving as a proxy for the mutation and one can measure the barcode abundance to assess mutant fitness. In this study, we seek to fill the gap between DNA sequence and barcoded mutant collections. To accomplish this we introduce a combined transposon disruption-barcoding approach that opens up parallel barcode assays to newly sequenced, but poorly characterized microbes. To illustrate this approach we present a new Candida albicans barcoded disruption collection and describe how both microarray-based and next generation sequencing-based platforms can be used to collect 10,000 - 1,000,000 gene-gene and drug-gene interactions in a single experiment.

We have developed comprehensive, unbiased genome-wide screens to understand gene-drug and gene-environment interactions. Methods for screening these mutant collections are presented.

מסכי הגנום תחרותי של ספריות שמרים המבורקדים

By virtue of advances in next generation sequencing technologies, we have access to new genome sequences almost daily.  The tempo of these advances is ...

Cryosectioning Yeast Communities for Examining Fluorescence Patterns

Microbes typically live in communities. The spatial organization of cells within a community is believed to impact the survival and function of the community1. Optical sectioning techniques, including confocal and two-photon microscopy, have proven useful for observing spatial organization of bacterial and archaeal communities2,3. A combination of confocal imaging and physical sectioning of yeast colonies has revealed internal organization of cells4. However, direct optical sectioning using confocal or two-photon microscopy has been only able to reach a few cell layers deep into yeast colonies. This limitation is likely because of strong scattering of light from yeast cells4.
Here, we present a method based on fixing and cryosectioning to obtain spatial distribution of fluorescent cells within Saccharomyces cerevisiae communities. We use methanol as the fixative agent to preserve the spatial distribution of cells. Fixed communities are infiltrated with OCT compound, frozen, and cryosectioned in a cryostat. Fluorescence imaging of the sections reveals the internal organization of fluorescent cells within the community.
Examples of yeast communities consisting of strains expressing red and green fluorescent proteins demonstrate the potentials of the cryosectioning method to reveal the spatial distribution of fluorescent cells as well as that of gene expression within yeast colonies2,3. Even though our focus has been on Saccharomyces cerevisiae communities, the same method can potentially be applied to examine other microbial communities.

We present a protocol for freezing and cryosectioning yeast communities to observe internal patterns of fluorescent cells. The method relies on methanol-fixing and OCT-embedding to preserve the spatial distribution of cells without inactivating fluorescent proteins within a community.

Cryosectioning קהילות שמרים לבחינת דפוסי פלואורסצנטי

Microbes typically live  in communities. The spatial organization  of cells within a community is believed to impact the survival and function of the  ...

The Soft Agar Colony Formation Assay

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft agar colony formation assay is a well-established method for characterizing this capability in vitro and is considered to be one of the most stringent tests for malignant transformation in cells. This assay also allows for semi-quantitative evaluation of this capability in response to various treatment conditions. Here, we will demonstrate the soft agar colony formation assay using a murine lung carcinoma cell line, CMT167, to demonstrate the tumor suppressive effects of two members of the Wnt signaling pathway, Wnt7A and Frizzled-9 (Fzd-9). Concurrent overexpression of Wnt7a and Fzd-9 caused an inhibition of colony formation in CMT167 cells. This shows that expression of Wnt7a ligand and its Frizzled-9 receptor is sufficient to suppress tumor growth in a murine lung carcinoma model.

The soft agar colony formation assay is a method used to confirm cellular anchorage-independent growth in vitro. The goal of this protocol is to illustrate a stringent method for the detection of the tumorigenic potential of transformed cells and the tumor suppressive effects of proteins on transformed cells.

Assay גיבוש רך אגר המושבה

Anchorage-independent growth is the ability of transformed cells to grow independently of a solid surface, and is a hallmark of carcinogenesis. The soft ...

Microscopy of Fission Yeast Sexual Lifecycle

The fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been an invaluable model system in studying the regulation of the mitotic cell cycle progression, the mechanics of cell division and cell polarity. Furthermore, classical experiments on its sexual reproduction have yielded results pivotal to current understanding of DNA recombination and meiosis. More recent analysis of fission yeast mating has raised interesting questions on extrinsic stimuli response mechanisms, polarized cell growth and cell-cell fusion. To study these topics in detail we have developed a simple protocol for microscopy of the entire sexual lifecycle. The method described here is easily adjusted to study specific mating stages. Briefly, after being grown to exponential phase in a nitrogen-rich medium, cell cultures are shifted to a nitrogen-deprived medium for periods of time suited to the stage of the sexual lifecycle that will be explored. Cells are then mounted on custom, easily built agarose pad chambers for imaging. This approach allows cells to be monitored from the onset of mating to the final formation of spores.

We provide a reproducible basic method for the long-term microscopy of the fission yeast sexual lifecycle. With minor adjustments described, the presented protocol allows research focus on different steps of the reproductive process.

מיקרוסקופי של שמרי ביקוע Lifecycle המיני

The fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been an invaluable model system in studying the regulation of the mitotic cell cycle progression, the ...

ODELAY: A Large-scale Method for Multi-parameter Quantification of Yeast Growth

Growth phenotypes of microorganisms are a strong indicator of their underlying genetic fitness and can be segregated into 3 growth regimes: lag-phase, log-phase, and stationary-phase. Each growth phase can reveal different aspects of fitness that are related to various environmental and genetic conditions. High-resolution and quantitative measurements of all 3 phases of growth are generally difficult to obtain. Here we present a detailed method to characterize all 3 growth phases on solid media using an assay called One-cell Doubling Evaluation of Living Arrays of Yeast (ODELAY). ODELAY quantifies growth phenotypes of individual cells growing into colonies on solid media using time-lapse microscopy. This method can directly observe population heterogeneity with each growth parameter in genetically identical cells growing into colonies. This population heterogeneity offers a unique perspective for understanding genetic and epigenetic regulation, and responses to genetic and environmental perturbations. While the ODELAY method is demonstrated using yeast, it can be utilized on any colony forming microorganism that is visible by bright field microscopy.

We present a method for quantifying growth phenotypes of individual yeast cells as they grow into colonies on solid media using time-lapse microscopy termed, One-cell Doubling Evaluation of Living Arrays of Yeast (ODELAY). Population heterogeneity of genetically identical cells growing into colonies can be directly observed and quantified.

ODLAY: שיטה בקנה מידה גדול עבור כימות רב פרמטר של גידול שמרים

Growth phenotypes of microorganisms are a strong indicator of their underlying genetic fitness and can be segregated into 3 growth regimes: lag-phase, ...

Pancreatic Islet Embedding for Paraffin Sections

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a mixed cell population in a structured architecture that impacts function, and human islets are widely variable in cell type composition. Current frequently used methods to study cultured islets include molecular studies performed on whole islets, lumping disparate islet cell types together, or microscopy or molecular studies on dispersed islet cells, disrupting islet architecture. For in vivo islet studies, paraffin-embedded pancreas sectioning is a powerful technique to assess cell-specific outcomes in the native pancreatic environment. Studying post-culture islets by paraffin sectioning would offer several advantages: detection of multiple outcomes on the same islets (potentially even the exact-same islets, using serial sections), cell-type-specific measurements, and maintaining native islet cell-cell and cell-substratum interactions both during experimental exposure and for analysis. However, existing techniques for embedding isolated islets post-culture are inefficient, time consuming, prone to loss of material, and generally produce sections with inadequate islet numbers to be useful for quantifying outcomes. Clinical pathology laboratory cell block preparation facilities are inaccessible and impractical for basic research laboratories. We have developed an improved, simplified bench-top method that generates sections with robust yield and distribution of islets. Fixed islets are resuspended in warm histological agarose gel and pipetted into a flat disc on a standard glass slide, such that the islets are distributed in a plane. After standard dehydration and embedding, multiple (10+) 4 - 5 &#181;m sections can be cut from the same islet block. Using this method, histological&#160;and immunofluorescent analyses can be performed on mouse, rat, and human islets. This is an effective, inexpensive, time-saving approach to assess cell-type-specific, intact-architecture outcomes from cultured islets.

Ex vivo pancreatic islet studies are important for diabetes research. Existing techniques to study cultured islets in their native 3-dimensional architecture are time consuming, inefficient, and infrequently used. This work describes a new, simple, and efficient method for generating high-quality paraffin sections of whole cultured islets.

הלבלב איון הטבעה למקטעי פרפין

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a ...