Method Article
Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.
Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.
التصاقات في البطن هي شكل من أشكال ندبا التي تشكل في البطن ردا على الالتهابات، عادة بعد الجراحة أو العدوى داخل البطن. الالتصاقات هي سبب رئيسي من آلام في البطن المزمن والعقم، وهي السبب الأكثر شيوعا لانسداد الأمعاء الدقيقة 1. وجود التصاقات يجعل تنفيذ عملية في البطن الثانية أكثر صعوبة ويزيد من احتمال حدوث مضاعفات 2.
وعلى الرغم من سنوات من البحث، والآليات الكامنة وراء تشكيل الالتصاقات لا تزال غير مفهومة. ومن المعروف أن إصابة الأولية لسطح البريتوني يؤدي إلى نضح السوائل الليفين الغني، الذي ثم تشكل الجلطة التي تربط أسطح الأمعاء وجدار البطن معا 3. وفي وقت لاحق، الخلايا الليفية والخلايا الأخرى تهاجر في الفضاء لاصقة وتفرز النسيج الضام 4. وعلى مدى أشهر إلى سنوات التصاق ينضج من خلال تطوير الأوعية الدموية والأعصاب 5.
وتوجد العديد من المنتجات التجارية التي تم تصميمها للحد من تشكيل الالتصاقات بعد عملية جراحية في البطن (على سبيل المثال، Seprafilm). جميع هذه المنتجات تعمل كحواجز الميكانيكية ووقف تشكيل التصاق عن طريق منع الاتصال الجسدي بين حلقات من الأمعاء وجدار البطن 6،7. رغم وجود أدلة من المحاكمة للرقابة التي حاجزا التصاق الجراحية يقلل من تشكيل الالتصاقات 8، العديد من الجراحين الروايات المتناقلة قد أصيب بخيبة أمل مع فعالية المنتجات حاجز الميكانيكية.
حاليا لا توجد علاجات مضادة للالتصاق القائم على المخدرات، وهو ما يعكس حقيقة أن العمليات الدقيقة التي تدخل في تشكيل التصاق وغير مفهومة. تطوير العلاج الذي يستهدف على وجه التحديد وكلاء الخلوية أو الجزيئية تشارك في تشكيل الالتصاقات سوف تحتاج إلى فهم أفضل للأحداث التي تشارك في تشكيل الالتصاق. عدة مجموعةحددت الصورة المسارات الجزيئية التي قد تكون مهمة لتكوين الالتصاق 9-11. توفر النماذج الحيوانية بيئة رائعة لدراسة تشكيل الالتصاقات. وقد نشرت العديد من الدراسات التي تصف خلق الجراحي من التصاق في العديد من الحيوانات، ولا سيما في الجرذان والفئران 6،12-14. نظرا تجربتنا مع دراسة تليف في الماوس وتوافر واسعة من الفئران المعدلة وراثيا والأجسام المضادة القائمة على الماوس، اخترنا الماوس كما نموذجنا لدراسة التصاقات. هنا، نحن تقرير تقنية أننا قد وضعت لإنشاء بتكاثر وموثوق التصاقات في البطن في الماوس.
تمت الموافقة على بروتوكول التالية من قبل لجنة جامعة ستانفورد المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (IACUC) ويتوافق مع جميع المبادئ التوجيهية الأخلاقية المؤسسية فيما يتعلق باستخدام حيوانات التجارب.
1. إنشاء البطن الالتصاقات
2. حصاد التصاق الأنسجة
في سبعة أيام بعد الجراحة، والأعور وربما القولون الصاعد، والكبد، وحلقات من الأمعاء الدقيقة ينبغي أن تكون ملتصقة إلى اليمين من جانب وجدار البطن. (الشكل 8) الأنسجة رفعه يمكن أن تكون جزءا لا يتجزأ ومقطوع وسوف تسفر عن الشرائح النسيجية ممتازة. (الشكل 11، 12)
عندما يتم تنفيذ الإجراء بشكل صحيح، يجب أن يكون 100٪ من الفئران التصاقات كبيرة في سبعة أيام. وينبغي أن يكون معدل وفيات أقل من 5٪.
الشكل 1: التحضير للجراحة (أ) وقد تم تأمين هذا الحيوان مع الشريط والبطن هيأهم مع betadine (ب) تم مسح betadine مع مسحة الكحول وتم وضع الستارة العقيمة..ام / ملفات / ftp_upload / 54450 / 54450fig1large.jpg "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2:.. شق يجب شق تمتد من مستوى المثانة إلى سيفي الشكل الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل (3): كشط من الأعور (أ) اللف الأعور على السبابة اليسرى مع طرف لافتا إلى اليمين يتيح للقاعدة من الأعور إلى أن يستقر بواسطة الإبهام الأيسر (ب) المستوى المناسب من الرملي يترك. الأعور مع سطح خشن أن أقل لامعة من قبل، ومع عدة نقاط دموية صغيرة من النزيف. ينبغي اتخاذ الحذر في حين الرملي قرب الجانب المساريقي، والأوعية هنا سوف تنزف أكثر بخفة. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الرقم 4: كشط جدار البطن والأحشاء اجتاحت جانبا وغطى بالرمل السطح البريتوني في الجدار العضلي حتى يظهر الخام. الأوعية الدموية ينظر فقط فوق الصنفرة في كثيرا ما واجهت جدار البطن ولكن لن تنزف بشكل كبير. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الرقم 6: تطبيق لصناعة النشا ورش طبقة خفيفة من النشا خلال جدار البطن والأمعاء. اثنين من الرقم ثمانية وتعتبر الغرز في الجدار العضلي. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الرقم 7: شق لجراحة الثانية (أ) بدأ شق فقط إلى يسار شق الأصلي (ب) يجب أن يمتد الشق الجديد من مستوى المثانة إلى القفص الصدري.. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الرقم 8: والتصاق حلقات من الأمعاء الدقيقة (SB) هي ملتصقة على جدار الصحيح ولبعضها البعض. شق الأصلي خط الوسط، وشفى الآن، وينظر (المؤتمر الوطني العراقي). الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
ترونج> الشكل 9: استئصال التصاق الأنسجة. (أ) و (ب) يتم تحرير أحد "الجزيرة" من الجلد والبطن ملتصقة الجدار إلى الأمعاء الأساسي عن طريق قطع في دائرة كاملة في جميع أنحاء المنطقة ملتصقة. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل (10): عينة قطع في الأمعاء سوف تسفر عن شطيرة من الأنسجة مع الأمعاء على جانب واحد (أ) والجلد على الجانب الآخر (ب). يجب إزالة قطعة من الخيط مرئية إذا العينة هي لاستخدامها في الأنسجة. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الرقم 12: التصوير مناعي مقطع من التصاق في سبعة أيام بعد الجراحة الملون immunofluorescently ل-α السلس ميلان العضلات.القصدير، والتي تبين تلطيخ الحقيقي للبصيلات الشعر الجلد (يسار) والجدار العضلي الأعور (وسط)، وتلطيخ غير محددة من سطح اللمعية الأعور (يمين). الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الخطوات الحاسمة في هذا الإجراء هي: الكشط بدقة الأعور دون التسبب في ثقب، وضع خيوط في جدار البطن، وتطبيق كمية مناسبة من النشا. تنطبق إلا الصنفرة لالأعور، أو لجزء معين صغير من الأمعاء. استخدام واسع من الصنفرة على كميات كبيرة من الأمعاء الدقيقة يميل إلى أن يسبب الشلل اللفائفي كبير. الحرص على كشط الأعور مع ما يكفي من القوة أن يصبح سطح خشن، ولكن ليس لدرجة أن الدموع الجدار. يمكن العثور على هذا التوازن سوف تستغرق بعض الوقت. التعامل دائما الأمعاء بعناية وتجنب استخدام الملقط حادة أو مسننة للتلاعب الأمعاء. فمن السهل أن تتسبب عن طريق الخطأ النزيف عن طريق الاستيلاء مساريق الأمعاء الدقيقة مع ملقط أو من خلال سحب على الأمعاء بقوة مفرطة.
في حالة حدوث تمزق في جدار الأعور، يجب إنهاء الإجراءات والموت الرحيم للحيوان. في تجربتنا، والنتائج المسيل للدموع الأعور في موت الحيوان بعد أيام قليلة، حتى لو المسيل للدموع هو تصليح هياكلIRED جيدا. وبالإضافة إلى ذلك، سوف المسيل للدموع من الجدار الأعور يسبب تسرب البراز من شأنها أن تؤثر على الاستجابة الالتهابية بطريقة لا يمكن التنبؤ بها.
يجب أن يكون الارقاء الكامل في نهاية هذا الإجراء. وبعض السفن نزيف إعادة فتح ويبدأ ينزف بعد ظهوره قد توقف. عندما تكون في شك، وضع حيدة الرقم ثمانية وخياطة للامتصاص حول نقطة النزيف. هذا النوع من خياطة أفضل من الحرير أو مضفر خياطة للامتصاص لأنه يمكن سحبها على الرغم من أن الأنسجة مع الحد الأدنى من المقاومة. ومع ذلك فقد وجدنا أن الحرير أو مضفر خياطة للامتصاص هو الأكثر فعالية في جدار البطن لإحداث الالتصاقات، وحيدة هي أقل حدة.
تطبيق النشا في نهاية الإجراء يساعد على زيادة تشكيل الالتصاقات، ولكن اكتشفنا أن كمية زائدة من النشا سوف يسبب رد فعل للالتهابات التي تسبب الموت. يجب رش نشا على lightlذ. لا ينبغي أن يكون هناك الكثير بحيث تشكل طبقة صلبة.
عندما تعلم لأول مرة هذا الإجراء، فإنه من الشائع أن يخسر عدة الفئران. في تجربتنا الأسباب الأكثر شيوعا للوفاة هي الجفاف يرجع إلى العلوص الناجم عن تآكل قوية أكثر من اللازم من الأمعاء، وتعفن الدم بسبب انثقاب الأمعاء. يمكن أن تحدث الوفاة الناتجة عن النزيف إذا لم يتم تحقيق الإرقاء الكامل في نهاية عملية جراحية.
إذا تشكيل التصاق غير كاف، النظر في استخدام تآكل أكثر عدوانية من الأعور وجدار الصحيح، وترك المزيد من النشا، أو وضع المزيد من الغرز على جدار البطن. في تجربتنا، والانتظار لمدة تقل عن أسبوع قبل إعادة فتح نتائج البطن في أقل من تشكيل التصاق كاف. من ناحية أخرى، إذا كان معدل وفيات الفئران بعد الجراحة عالية، والنظر في استخدام تآكل أقل عدوانية من الأعور، وتفتيش عن كثب لالارقاء، وتطبيق أقل النشا. ومن المهم أيضا أن ترصد بدقةمعدل التنفس من الفأرة أثناء الجراحة. وبمجرد أن يحصل على مكاسب الجراح مع هذا الإجراء، يجب أن يكون معدل وفيات أقل من 10٪.
تم تصميم هذه التقنية لتشكيل المقام الأول التصاقات بين الأعور والحق في جدار البطن. والتصاقات أيضا غالبا ما تشكل بين الأمعاء الدقيقة والكبد، وشق خط الوسط. باستخدام هذه التقنية عادة لا يسبب التصاقات على الجانب الأيسر من البطن. وجود قيود على هذا الأسلوب هو أن التصاقات بين الأمعاء وجدار البطن هم أكثر عرضة للتشكيل من التصاقات بين حلقات من الأمعاء. وبالإضافة إلى ذلك، فإنه ليس من المحتمل أن يؤدي في كامل البطن المجمدة تماما من نسيج لاصق، والتي غالبا ما ينظر في البشر الذين لديهم عمليات جراحية متعددة.
كما نوقش في المقدمة، العديد من التقنيات لإنتاج التصاقات في البطن لدى الفئران وغيرها من الأنواع، وخاصة الفئران، وقد وصفت في الأدب 6،12-14. هناك عدد أقل بكثير من protoco المنشورة ليرة سورية لإنشاء التصاقات في الفئران. نحن التكهن بأن لأنه خلق من التصاقات في الفئران أكثر صعوبة مما كان عليه في الفئران، واختار معظم الباحثين على تطوير تقنيتهم في الفئران. ومع ذلك، نظرا لتوافر قدر أكبر من الفئران المعدلة وراثيا والأجسام المضادة لمكافحة فأر، ونحن نعتقد أنه من المفيد أن نموذج قوي لخلق التصاق في الفئران، على الرغم من صعوبة فنية أكبر. وضعنا هذا البروتوكول بعد محاولة العديد من البروتوكولات الفئران التي تم نشرها. لقد وجدنا أن وسائل لخلق التصاقات في الفئران، مثل استخدام كهربي على الأعور، وغالبا ما تسبب الفئران أن يموت. لم نكن راضين عن كثافة الالتصاقات التي تنتجها التقنيات التي تستخدم تدخل واحد، مثل وضع جدار أزرار الدماغية وحده، أو فقط الكشط الأعور. تقنية نقدم هنا تمثل مجموعة من التدخلات التي وجدنا من خلال التجربة والخطأ، لإنتاج التصاقات باستمرار مع التقليل من الوفيات.
محتوى "> لأن هذا الأسلوب يسبب باستمرار الأنسجة لاصقة لتشكيل بين الأعور وجدار، ونحن نعتقد أنه من المثالي لتدخلات اختبار مصممة للحد من تشكيل الالتصاق. أيضا هذه التقنية يمكن استخدامها لاستكشاف المسارات الجزيئية وأنواع الخلايا التي هي تشارك في تشكيل الالتصاق. الأنسجة التصاق يمكن بسهولة أن يستأصل وعلى استعداد لالأنسجة، وعوائد الصور النسيجية ممتازة (أرقام 11، 12).بعض الباحثين قد يرغب نموذج الذي التصاقات تشكل أقل من 100٪ من الوقت. وإهمال تطبيق النشا خفض معدل التصاق إلى ما يقرب من 80٪. سوف يقلل من عدد من الخيوط الحريرية وضعها في جدار البطن الأيمن خفض معدل التصاق أبعد من ذلك.
في تجربتنا، اليوم السابع بعد الجراحة هو نقطة لأول مرة حيث الأمعاء هو تمسكا باستمرار لجدار البطن. ومع ذلك، قد يكون نقطة زمنية أخرى أكثر أهمية اعتماداعلى تركيز المشروع. على سبيل المثال، والباحثين المهتمين هجرة العدلات والضامة في الفضاء التصاق قد ترغب في حصاد الأنسجة في الأيام الخمسة الأولى بعد الجراحة. من ناحية أخرى، وترسب الكولاجين الليفية يحدث لعدة أسابيع بعد الإصابة الأولية، ولهذا سيكون أكثر ملاءمة لفحص الأنسجة في نقاط زمنية متباعدة لعدة أسابيع بعد الجراحة.
loupes لالجراحية هي مفيدة جدا للتضخم الجراحي الميداني أثناء أداء هذا الإجراء. ويمكن أيضا المجهر الجراحي استخدامها ولكن يحد من قدرة الجراح لتفقد مجال الجراحة من زوايا مختلفة. ويمكن أيضا أن يتم ذلك الإجراء مع أي التكبير على الإطلاق.
الكتاب تعلن أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.
وأيد آلية التنمية النظيفة من قبل الكلية الأمريكية للجراحين (ACS) منحة بحثية المقيم. وأيد MSH من معهد كاليفورنيا للطب التجديدي (CIRM) التدريب زميل السريرية منحة TG2-01159. ودعمت MSH، هبل، وMTL من قبل الجمعية الأمريكية لجراحي الوجه والفكين (ASMS) / مؤسسة جراحي الوجه والفكين (أطباء بلا حدود) جائزة منحة بحثية. وأيد هبل من قبل منحة المعاهد الوطنية للصحة R01 GM087609 وهدية من إنغريد لاي وبيل شو تكريما لأنتوني شو. ودعمت هبل وMTL من قبل مختبر Hagey للأطفال الطب التجديدي، ومؤسسة أوك. وأيد MTL من الصندوق غن / أوليفييه.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" | Fisher Scientific | 14-206-62 | |
Polylined Sterile Field, 18" x 24" | Busse Hospital Disposables | 696 | Cut a rectangular hole of the appropriate size |
Isothesia isoflurane | Henry Schein | 050033 | |
Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube | Dechra Veterinary Products | NDC 17033-211-38 | |
Nair depilatory cream | Church & Dwight Co. | 22339-05 | |
Buprenex buprenorphine 0.3 mg/ml | Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc. | NDC 12496-0757-5 | |
1 cc insulin syringe, 27 G | Becton Dickinson | 329412 | |
Povidone Iodine Prep Solution | Medline | MDS093944H | |
Webcol alcohol prep swabs | Covidien | 6818 | |
General-Purpose Labarotory Labeling tape | VWR | 89097-912 | |
BioGel PI surgical gloves | Mölnlycke Health Care | ALA42675Z | |
Micro Forceps with teeth | Roboz | RS-5150 | |
Fine scissors- sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | |
Straight serrated forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | |
Castro-Viejo needle driver | Fine Science Tools | 12565-14 | |
100 grit 1/4 sheet sandpaper | ACE Hardware | 1010446 | Cut into strips |
4-0 silk suture, 30", SH needle | Ethicon | K831 | |
7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30", BV-1 needle | Ethicon | Z135 | Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures. |
Rice starch | MP Biomedicals | 102955 | |
0.9% Sodium Chloride Irrigation | Baxter | BHL2F7121 | Warm to 37 °C prior to use |
10 ml syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", RB-1 taper needle | Ethicon | J212H | |
6-0 Ethilon nylon monofilament suture, 18", P-3 needle, | Ethicon | 1698G | |
Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm | 3M | 1624W | Cut in half lengthwise |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved