Bu eser Garland Initiative tarafından desteklenmiştir görme, California Enstitüsü için rejeneratif tıp (CIRM; hibe DR1-01444, CL1-00521, TB1-01177, FA1-00616 ve TG2-01151), Vermont Toplum Vakfı, Breaux Vakfı ve Körlük Wynn-Gund translasyonel araştırma hızlandırma programını mücadele Vakfı.

1. hazırlık reaktifler gün 0 gün 14 iletişim kuralı için <ol><li>Aşağıdaki orta bileşenleri hazırlamak: 100 x N2 ek, 2 mL 1 mL ekleyerek <ol><li>yapmak 100 mL retina farklılaşma orta (RDM) 50 x B27 ek ve 100 gerekli olmayan amino asit (NEAA) Dulbecco 96 mL x 1 mL &#39; s değişikliğin gerekli orta/besin karışımı F12 9 (DMEM/F12).</li>
		1 M Nikotinamid (NIC) NIC eriterek 1.221 g 8 ml steril su, vortexing ve 10 mL steril su ile ses getiren <li>olun 10 mL. Steril filtre çözümü.</li>
	</ol></li> <li>Aşağıdaki büyüme faktörleri ve küçük moleküller hazırlamak: <ol><li>rekombinant fare kafa sulandırmak, insan dickkopf WNT sinyal yolu inhibitörü 1 (DKK-1) ve IGF-1'e 100 µg/mL her %0.1 sığır serum albümin (BSA) fosfat tamponlu çözüm (PBS). Gerektiği gibi aliquot ve mağaza-20 ° c ilâ 3 ay için.</li>
		<li>Temel FGF-10 µg/mL ve rekombinant insan/mouse/fare aktivin A 100 µg/mL her PBS % 0,1 BSA için yeniden oluşturma. Gerektiği gibi aliquot ve-80 ° c ilâ 1 yıl için mağaza.</li>
		<li>Yeniden oluşturma SU 5402 (FGF reseptör özgü tirozin kinaz inhibitörü) ve CHIR99021 (glikojen sentaz kinaz 3, GSK-3β, engelleyici) 10 mm her Dimetil sülfoksit (DMSO). Aliquot ve mağaza-20 ° c ilâ 1 yıl ya da 6 ay için sırasıyla.</li>
	</ol></li> <li>Gün 0 ve/veya gün 14: 1 x ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) çözüm (0.2 g EDTA PBS 1 litre başına), 1 X PBS- / - için aşağıdakileri elde olmadan kalsiyum veya magnezyum, pH 7,4 (PBS), 1 x tripsin benzeri ayrılma enzim (TDE), DPBS (Dulbecco &#39; s PBS), RPE destekleyen orta (RSM) ve Y-27632 dihydrochloride (kullanımı 10 µM).</li>
</ol> 2. Gün 0: Pluripotent kök hücre geçiş farklılaşma için günün <ol><li>Grow kök hücre kolonilerde Besleyici, serum boş koşulları için passaging önce yaklaşık % 80'i izdiham. 
	Not: Bu adım optimize üzerinde tartışma ayrıntılı bilgi için bkz:.</li>
	<li>12-şey plaka ekstraselüler matriks tabanlı hidrojel (ECMH) göre üretici önerileri ile kat. 1s için oda sıcaklığında veya gecede 4 ayarlamak için izin ver ° C.</li>
	<li>Aliquot RDM ve gün için gerekli büyüme faktörleri eklemeden önce 0 ve sıcak su banyosu 37 ° C için PBS- / - hacmi. EDTA oda sıcaklığına getirmek.</li>
	<li>10 mM NIC, 50 ng/mL kafa, 10 ng/mL DKK-1 ve 10 ng/mL IGF-1 ile ısıtılan RDM 0 gün için gerekli büyüme faktörleri ekleyin. 1.2. adımda anlatılan hisse senetleri 100 µL NIC, kafa 5 µl, DKK-1'in 1 µL ve IGF-1'in 1 µL eklemek RDM için 10 mL.</li>
	Morfoloji farklılaşma için passaged kök hücreleri temel alan tüm farklı koloniler kaldırmak için <li>seçin. P10 damlalıklı ipucu farklılaşmış hücreler el ile kaldırmak için kullanın. 
	Not: Fibroblastic hücreler arasında kolonileri hem de opak hücrelerin kolonileri içinde kaldırılacak farklılaşmış hücreler gösterir. Farklılaşmış hücreler hakkında ayrıntılı bilgi için bkz.</li>
	<li>6-şey plaka tek iyi bir 12-şey plaka (1:4) 4 kuyu geçiş. 
	Not: Bu aşamada kök hücre passaging Ayrıntılar için tartışma bakın.
	<ol><li>Kök hücre kök hücre ortamından Aspire edin ve wells Önceden ısıtılmış PBS- / - 2 mL ile bir kez yıkayın.</li>
		<li>Aspire PBS- / - ve durulama her EDTA 1 mL 6-şey plaka kuyu başı ile de üç kez.</li>
		<li>Yavaşça plaka eğilme ve EDTA Aspire edin. Plaka zamanından önce hücreleri kaldırma önlemek için herhangi bir şekilde tahrik değil.</li>
		<li>Sonra üçüncü yıkama 1 mL EDTA ekleyin ve mahalle için 3-5 dk içinde oda sıcaklığında kuluçkaya. Plaka bu kuluçka sırasında rahatsız etmeyin.</li>
		<li>EDTA Aspire edin ve RDM 0.5 mL ilave orta ile 1 mL numaralı seribaşı şey başına ekleyin. Örneğin, 1 de 6-şey plaka ile RDM 4.5 mL 12-şey plaka 4 kuyu plaka için yıkayın.</li>
		<li>Hücre kazıyıcı yavaşça hücreleri ayırmak için kullanın. Konik tüp içinde tüm hücreleri toplamak ve RDM hücrelerde yukarı ve aşağı 5 kere pipetting tarafından triturate. Hücre büyük kümeleri ayırmak, ama tek hücre süspansiyon için triturate değil. Damlalıklı hücrelerde eşit olarak dağıtın. Hızlı bir şekilde yatıştırıldı plaka engellemek için bu adımı tamamlamak.</li>
		<li>Tohum hücreleri (hücre süspansiyon iyi başına 1 mL) ECM kaplı 12-şey plakaları.</li>
		<li>İleri geri hücreleri kuyuları boyunca eşit olarak dağıtmak için plaka eğ. Yavaşça bir hücre kültür kuluçka 37 ° C ve % 5 CO 2 orta değiştirmek kadar yerleştirin.</li>
		<li>Tam olarak ne zaman unutmayın. Her gün aynı anda değişiklik orta.</li>
	</ol></li></ol> 3. Gün 1-14: büyüme faktörleri ek <ol><li>gün 1: Bütün wells (iyi başına 1 mL) medyada değiştirmek gün 0 (bkz. Adım 2.4) büyüme faktörü bileşimi ile RDM kullanarak.</li>
	<li>Gün 2: Orta RDM (iyi başına 1 mL) 10 mM NIC ile 5 ng/mL FGF-temel, 10 ng/mL kafa, 10 ng/mL DKK-1 ve 10 ng/mL IGF-1 kullanarak değiştirin. 1.2. adımda anlatılan hisse senetleri, NIC, FGF-Basic 5 µL, kafa 1 µL, DKK1 1 µL ve IGF1 1 µL 100 µL RDM için 10 mL ekleyin.</li>
	<li>Gün 4: RDM (iyi başına 1 mL) kullanarak orta 100 ng/mL aktivin A, 10 ng/mL DKK-1 ve 10 ng/mL IGF-1 ile değiştirin. 1.2. adımda anlatılan hisse senetleri, aktivin A, DKK1 1 µL ve IGF-1'in 1 µL olan 10 µL RDM için 10 mL ekleyin. 
	Not: Bu aşamada hücreleri Konfluent gözlemlemek.</li>
	<li>Gün 6: 5402 RDM (iyi başına 1 mL) kullanarak orta 100 ng/mL aktivin A ve 10 µM SU ile değiştirin. 1.2. adımda anlatılan hisse senetleri, aktivin a 10 µL ekleyip 10 µL SÜ RDM 5402-10 mL.</li>
	<li>Gün 8, 10 ve 12: RDM (iyi başına 1 mL) kullanarak orta 100 ng/mL aktivin A, 10 µM SU 5402 ve 3 µM ile değiştirin CHIR99021. 1.2. adımda anlatılan hisse senetleri, aktivin A, SU 5402 10 µL ve CHIR99021 3 µL olan 10 µL RDM için 10 mL ekleyin.</li>
</ol> 4. Gün zenginleştirme RPE 0 geçirilmesi için <ol><li>kat büyüme faktörü ile 6-şey plaka azaltılmış ECMH üretici öneriler göre. 1s için oda sıcaklığında veya gecede 4 ayarlamak için izin ver ° C.</li>
	<li>Aliquot gerekli DPBS hacmi ve RDM 1 mL zenginleştirme ve sıcak su banyosu 37 kuyu başına ° C. Bring TDE oda sıcaklığında ve sıcak gerekli hacmiyle RSM, antimikrobiyal reaktif ve Y-27632 37 ° c</li>
	<li>Ekle antimikrobiyal reaktif ve 0.5 x ve 10 µM besteleri sırasıyla için RSM alma Y-27632. Bu orta eki geliştirmek için ilk 4-7 gün boyunca kullanın.</li>
	<li>Tüm aspiratı harcanan orta Kuyu yapımı ve Önceden ısıtılmış RDM (hiçbir büyüme gerekli faktörleri) kuyu başına 1 mL ekleyin.</li>
	<li>Bir diseksiyon mikroskop kullanarak, el ile incelemek ve uzak bir P10 damlalıklı ucu kullanarak tüm RPE olmayan hücreleri kazımak. 
	Not: temsilcisi sonuçları örnekler için bkz:.</li>
	<li>Sonra diseksiyon, RDM Aspire edin ve tüm enkaz cep. Önceden ısıtılmış DPBS iyi başına 1 mL ile iki kez yıkayın.</li>
	<li>TDE 0.5 mL 12-şey plaka kuyu başına ekleyin ve 5 dk. yavaşça hücreleri plaka kaldırmak için hücre kazıyıcı kullanım için 37 ° C'de kuluçkaya. P1000 damlalıklı yavaşça aşağı yukarı 3 - 4 kez için pipetting tarafından hücre/TDE süspansiyon triturate kullanmak tek tip süspansiyon oluşturmak.</li>
	<li>Hücre/TDE süspansiyon 1:10 ' Y-27632 olmadan Önceden ısıtılmış RSM oranında seyreltin. Santrifüj kapasitesi 173 x g oda sıcaklığında 5 min için de hücre süspansiyon.</li>
	<li>Hücre Pelet ortamından Aspire edin ve RSM hücrelerde 10 µM ile resuspend Y-27632 (başına 1 mL zenginleştirilmiş iyi).</li>
	<li>Bir naylon mesh hücre süzgeç ile 40 µm gözenekleri kullanarak hücreleri süzün. Bir hemasitometre kullanarak belirtilen birim hücreleri saymak ve gergin çözüm hücrelerde konsantrasyonu hesaplayın.</li>
	<li>Tohum hücre büyüme faktörü üzerinde azaltılmış ECM / galvanizleme levhalar 1 x 10 5 hücreleri/cm 2 ' RSM 4 mL 10 µM ile de Y-27632.</li>
	<li>Yerine RSM ile 10 µM Y-27632 hücre tohum sonra 48 h ve medya yerine 3-4 günde (örneğin Pazartesi ve Perşembe günleri) devam ediyor. 10 µM yerine yapmak 4-7 gün sonra Y-27632.</li>
	<li>28-35 gün 37 ° C ve % 5 CO 2 olgun hücrelere izin. RSM yerine 3-4 günde (örneğin Pazartesi ve Perşembe günleri) devam.</li>
</ol> 5. Olgunlaşma: Geçiş 1 ve 2 RPE / Not: parantez içinde gösterilir gibi birimler için de, bir 6-şey tabak ya da bir T75 şişesi 1 belirtilen.
<ol><li>Arasındaki gün 28-35 geçit 0, bir 6-şey plaka (T75 şişesi) ECMH ile üretici öneriler göre kat.</li>
	<li>Aliquot hacmi DPBS ve RSM gerekli ve sıcak su banyosu 37 ° C. getirmek TDE oda sıcaklığına.</li>
	<li>Aspiratı harcanan orta kuyulardan ve yıkama de iki kez 2 mL (10 mL) Önceden ısıtılmış DPBS. 
	Not: 10 µM kullanmayın Y-27632.</li>
	<li>Aspire DPBS ve 1 mL (5 mL) TDE ekleyin. 5 min için 37 ° C ve % 5 CO 2 kuluçka yerleştirin. Kuluçka sonra hücreleri onaylamak için ters bir mikroskop görünüm hücrelerdeyse müteahhitlik ve ayırma.</li>
	<li>Bir uygun boyutlu hücre kazıyıcı kullanarak yavaşça çıkarın hücreleri iyi veya cep şişesi derinliklerinden.</li>
	<li>P1000 ipucu (10 mL serolojik damlalıklı) hafifçe hücre/TDE süspansiyon yukarı ve aşağı için 3 - 4 kez triturate için kullanın bir tek tip süspansiyon oluşturmak.</li>
	<li>Hücre süspansiyon 1:10 RSM sulandırmak. RSM iyi/şişeye durulayın ve seyreltilmiş hücre süspansiyon eklemek için 2 mL (5 mL) rezerv. 
	Not: enzim çekim hızı 25 dk. aşmasına izin vermez</li>
	<li>Hücre süspansiyon 173 x g oda sıcaklığında 5 min için de santrifüj kapasitesi.</li>
	<li>Hücre Pelet ortamından Aspire edin ve 1 mL (5 mL) RSM hücrelerde resuspend</li>
	<li>Bir naylon mesh hücre süzgeç ile 40 µm gözenekleri kullanarak hücreleri süzün. Bir hemasitometre kullanarak belirtilen birim hücreleri saymak ve gergin çözüm hücrelerde konsantrasyonu hesaplayın.</li>
	<li>Tohum hücreleri 1 x 10 5 hücreleri/cm 2 4 mL (15 mL) RSM'de ECMH kaplı Tabaklarda.</li>
	<li>30 gün boyunca olgun hücrelere izin. Her 3-4 gün RSM değiştirmeye devam.</li>
	<li>Geçiş 1-2 hücreleri geçiş ile 30 gün (Adım 5.2-5.11) Yukarıdaki yordamı yineleyin.</li>
</ol> 6. Bir ara hücre Bankası oluşturma: dondurma, geçiş 2 gün 3-5 RPE Not: onlar (~ %50) subconfluent ve pigment kavuştular değil iken hücreleri Cryopreserve.
<ol><li>Hücre sayısına göre 3 x 10 6 hücre/mL bir konsantrasyon hücreleri resuspend için gerekli %10 DMSO ile dondurma orta hacmi hesaplamak.</li>
	<li>5.2-5,8 adımları izlemeniz. 3 x 10 6 hücre/ml % 10 DMSO ile dondurma ortamda hücre Pelet resuspend ve hücre süspansiyon 1 mL 1.2 mL kriyojenik şişeleri için transfer.</li>
	<li>Kriyojenik şişeleri-1 ° C/dak serin ve-80 ° C'de gecede yerleştirmek için tasarlanmış bir dondurucu kapsayıcısına getirin. Uzun süreli depolama için sıvı azot transfer. 
	Not: Bu hücreler çözdürme üzerine geçiş 3 olacaktır. 30 gün önce karakterizasyonu için hücreleri kültür. Tohum geçiş 3 RPE 1.5 x 10 cm 2 çözme üzerine 5. 2 , 4 , 6 , 7</li></ol>

<ol>
	<li>Strauss, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+retinal+pigment+epithelium+in+visual+function.">The retinal pigment epithelium in visual function.</a> Physiol. Rev. 85 (3), 845-881 (2005).</li><li>Leach, L. L., Clegg, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concise+Review:+Making+Stem+Cells+Retinal:+Methods+for+Deriving+Retinal+Pigment+Epithelium+and+Implications+for+Patients+With+Ocular+Disease.">Concise Review: Making Stem Cells Retinal: Methods for Deriving Retinal Pigment Epithelium and Implications for Patients With Ocular Disease.</a> Stem Cells. 33 (8), 2363-2373 (2015).</li><li>Pennington, B. O., Clegg, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pluripotent+Stem+Cell-Based+Therapies+in+Combination+with+Substrate+for+the+Treatment+of+Age-Related+Macular+Degeneration.">Pluripotent Stem Cell-Based Therapies in Combination with Substrate for the Treatment of Age-Related Macular Degeneration.</a> J. Ocul. Pharmacol. Ther. 32 (5), 261-271 (2016).</li><li>Buchholz, D. E., Pennington, B. O., Croze, R. H., Hinman, C. R., Coffey, P. J., Clegg, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+and+efficient+directed+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells+into+retinal+pigmented+epithelium.">Rapid and efficient directed differentiation of human pluripotent stem cells into retinal pigmented epithelium.</a> Stem Cells Transl. Med. 2 (5), 384-393 (2013).</li><li>Clegg, D. O., Buchholz, D., Hikita, S., Rowland, T., Hu, Q., Johnson, L. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+Pigment+Epithelial+Cells:+Development+In+Vivo+and+Derivation+from+Human+Embryonic+Stem+Cells+In+Vitro+for+Treatment+of+Age-Related+Macular+Degeneration.">Retinal Pigment Epithelial Cells: Development In Vivo and Derivation from Human Embryonic Stem Cells In Vitro for Treatment of Age-Related Macular Degeneration.</a> Stem Cell Res. Ther. (Chapter 1), 1-24 (2008).</li><li>Leach, L. L., Buchholz, D. E., Nadar, V. P., Lowenstein, S. E., Clegg, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Canonical/&#946;-catenin+Wnt+pathway+activation+improves+retinal+pigmented+epithelium+derivation+from+human+embryonic+stem+cells.">Canonical/&#946;-catenin Wnt pathway activation improves retinal pigmented epithelium derivation from human embryonic stem cells.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 56 (2), 1002-1013 (2015).</li><li>Pennington, B. O., Clegg, D. O., Melkoumian, Z. K., Hikita, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defined+culture+of+human+embryonic+stem+cells+and+xeno-free+derivation+of+retinal+pigmented+epithelial+cells+on+a+novel,+synthetic+substrate.">Defined culture of human embryonic stem cells and xeno-free derivation of retinal pigmented epithelial cells on a novel, synthetic substrate.</a> Stem Cells Transl. Med. 4 (2), 165-177 (2015).</li><li>Leach, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+Pluripotent+Stem+Cell-Derived+Retinal+Pigmented+Epithelium:+A+Comparative+Study+Between+Cell+Lines+and+Differentiation+Methods.">Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Retinal Pigmented Epithelium: A Comparative Study Between Cell Lines and Differentiation Methods.</a> J. Ocul. Pharmacol. Ther. 32 (5), 317-330 (2016).</li><li>Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+photoreceptor+outer+segment+phagocytosis:+use+and+utility+of+RPE+cells+in+culture.">Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: use and utility of RPE cells in culture.</a> Exp. Eye Res. 126, 51-60 (2014).</li><li>Sonoda, S., Spee, C., Barron, E., Ryan, S. J., Kannan, R., Hinton, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+the+culture+and+differentiation+of+highly+polarized+human+retinal+pigment+epithelial+cells.">A protocol for the culture and differentiation of highly polarized human retinal pigment epithelial cells.</a> Nat. Protoc. 4 (5), 662-673 (2009).</li><li>Choudhary, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Directing+Differentiation+of+Pluripotent+Stem+Cells+Toward+Retinal+Pigment+Epithelium+Lineage.">Directing Differentiation of Pluripotent Stem Cells Toward Retinal Pigment Epithelium Lineage.</a> Stem Cells Transl. Med. 6 (2), 490-501 (2017).</li><li>Maruotti, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small-molecule-directed,+efficient+generation+of+retinal+pigment+epithelium+from+human+pluripotent+stem+cells.">Small-molecule-directed, efficient generation of retinal pigment epithelium from human pluripotent stem cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 112 (35), 10950-10955 (2015).</li><li>Lane, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+efficient+retinal+pigment+epithelium+differentiation+from+human+pluripotent+stem+cells.">Engineering efficient retinal pigment epithelium differentiation from human pluripotent stem cells.</a> Stem Cells Transl. Med. 3 (11), 1295-1304 (2014).</li><li>Thomson, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts.">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).</li><li>Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells.">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).</li><li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors.">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li><li>Amit, M., Itskovitz-Eldor, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Derivation+and+spontaneous+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells.">Derivation and spontaneous differentiation of human embryonic stem cells.</a> J. Anat. 200 (Pt 3), 225-232 (2002).</li><li>Kent, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+and+Maintenance+of+Human+Embryonic+Stem+Cells.">Culture and Maintenance of Human Embryonic Stem Cells.</a> J. Vis. Exp. (34), e1427-e1427 (2009).</li><li>Croze, R. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ROCK+Inhibition+Extends+Passage+of+Pluripotent+Stem+Cell-Derived+Retinal+Pigmented+Epithelium.">ROCK Inhibition Extends Passage of Pluripotent Stem Cell-Derived Retinal Pigmented Epithelium.</a> Stem Cells Transl. Med. 3 (9), 1066-1078 (2014).</li></ol>

Dr. Clegg rejeneratif yama Technologies LLC ortak kurucusudur.

Bu iletişim kuralı, retina pigment epitel hücrelerinden pluripotent kök hücre üretmek açıklar. Yöntem her iki insan embriyonik ve İndüklenmiş pluripotent kök hücrelerden bir besleyici, serum boş kültür yöntemi kullanarak optimize edildi. İnsan embriyonik kök hücreleri 1998 yılında ilk yalıtım ve İndüklenmiş pluripotent kök hücreler (IPSC) türetme 2007 yılından bu yana çok sayıda kök hücre kültür yöntemleri olmuştur14,15,16geliştirilen, 17. Bu yöntemler bu farklılaşma duyarlı kök hücre kolonileri üretmek için yeterli olmalıdır. Düzgün türetilmiş ve bakımlı pluripotent kök hücreler için bu yöntemin uygulanabilirliği için bilinen hiçbir sınırlamalar vardır.
Gün 0 farklılaşma (Adım 2.5) kök hücrelere ve işleminin (Adım 4.5) el ile diseksiyon gün 14, potansiyel ihtiyacını passaging en önemli adımlardır. Farklılaştırılmış hücrelerin kök hücre kolonileri kaldırmak için seçilmesinde Kent18Albümdeki bakın. Belirtildiği gibi bu iletişim kuralı18başlamadan önce kaldırılması gerekir farklılaşmış hücreler fibroblastic hücreler arasında kolonileri ve opak hücrelerin kolonileri içinde gösterir. Sadece farklılaşmamış, sıkıca paketlenmiş kolonileri tanımlı kenarları ile farklılaşma için passaged.
Kök hücreleri iyi (Adım 2.6.7) tohumlari kök hücreleri tek hücre süspansiyon üzerine geçiş içine triturated değil ve doğru bir hemasitometre kullanarak sayılır olamaz karmaşıklaşır. Yaklaşık % 80'i Konfluent kök hücrelerin passaging 1 de 6-şey plaka için 12-şey plaka 4 kuyu belirtilir. Büyüme hızı gibi kök hücre hatları arasındaki farklar ne kadar hızlı olgunlaşmamış RPE ulaşmak izdiham gün 0 ile 4 arasında etkileyebilir. Kök hücre RPE ne olursa olsun kesin izdiham üretecek, ama bu aşamada hücreleri çok seyrek olan hücre verim olumsuz etkilenecektir. Olgunlaşmamış RPE hücrelerinin yaklaşık % 40-50 birleşmesi gün 4 gün 1 ve neredeyse % 100 birleşmesi olmalıdır. Hücreleri Konfluent monolayer gün 4 veya 6 üreten değil, protokol daha yüksek bir tohumlama yoğunluğu gün 0 saat yinelenmelidir. Örneğin, 1 de 6-şey plaka / 12-şey plaka 4 kuyu için gün 0 pasajlı ve olgunlaşmamış RPE % 100 birleşmesi gün 4 değilseniz, bir 1:3 veya 1:2 geçit gün 0 tohum azaltmak veya kök hücreler daha Konfluent olmak izin passaging önce. Ne zaman birden fazla hücre satır karşılaştırma tutarlı bir tohumlama yoğunluğu kurmak için önemlidir.
Gün 14 Manuel diseksiyon adımda yalnızca sigara RPE hücrelerinin kültürü (şekil 2C) mevcut olduğunda gereklidir. İletişim kuralına CHIR99021 ek beri birçok pluripotent kök hücre hatları küçük hiçbir manuel diseksiyon gerektirir. Bazı hazırlıklar sinirsel yamalar daha yüksek insidansı olması ve bu hücreleri kaldırmak için önemlidir. RPE passage 3 0 geçitle, uygun değilseniz, tüm sigara RPE hücrelerinin kaldırmak için yeterli zaman ayırdığınız farklılaşma Protokolü tekrar mümkündür. Bu kez olmaz, ama burada gün 14 diseksiyon basamakta gerektiğinde iyileştirilebilecek Not belirtilir.
Farklı maliyet yanı sıra kültür yöntemleri, verimliliği, miktar RPE farklılaşma protokolleri çeşitli ve işlevsel değerlendirme, ikincisi olan oldu iyice2gözden. Biz burada onun etkinlik, adaptasyon ve hücre hatları4,7,8geniş bir yelpazesi için Uygulanabilirlik nedeniyle detaylı 14 günlük yöntemi tercih ederler. Bu iletişim kuralı dondurma adımda da çok çok değişkenlik deneylerde kaçınarak ileride kullanmak üzere bir ara cep banka oluşturmanın önemli bir avantaj sağlar. 12-şey plaka sadece 4 wells ile başlayarak, geçit 0, 6-şey plakaları ve geçiş 1 ve 2, T75 şişe içine genişletmek mümkündür. Hücreler hala subconfluent ve pigment, kavuştular değil zaman geçit 2 gün 3-5, onlarca milyon hücre cryopreserve ve geçiş belirlenen 3 günü 30 olgun RPE çözülme, RNA ifade, protein ifade, büyüme faktörü kontrol etmek mümkündür salgılanması, fagositoz, vb. Biz de protokolleri RPE en fazla 13 pasajlar 19için genişletmek için kurduk.
Dört gözle, bu yöntem IPSC oküler hastalik modelleme ve RPE nesil hücresel tedavi için faydalı olacaktır. IPSC hastalığı modelleme açısından bu iletişim kuralı şu anda laboratuarda aynı hastanın sigara düzeltilmiş denetimleriyle CRISPR düzeltilmiş satırlarından RPE üretmek için kullanılıyor. Ayrıca, bu iletişim kuralını sentetik yüzeylerde ve bir hücresel tedavi için gerekli en iyi üretim uygulamaları yapıştırma için yararlı xeno-Alerjik koşulları için uyarlanabilir.

Retina pigment epiteli photoreceptors için çok önemli destek sağlayan bir monolayer Pigmentli hücreleri olduğunu. Retina pigment epitel hücreleri (RPE)-si olmak çok sayıda görev ışık emilimi, besin ve iyon taşıma, Bisiklete binme, retinoid dahil vizyon, photoreceptor dış segment fagositoz ve büyüme faktörü salgı1. RPE ve yaşa bağlı makula dejenerasyonu ve retinitis pigmentosa gibi görme, bir kaybı sonucu işlevi etkiler retina dystrophies çeşitli vardır. RPE nesil pluripotent kök hücrelerden bu göz hastalıkları anlamak için araştırma kolaylaştırabilir ve RPE sınırsız bir kaynağı hücre terapileri2için sağlar. Aslında, birden fazla klinik çalışmalar devam pluripotent kök hücreler3den türetilmiş RPE kullanıyorsunuz.
Bu farklılaşma protokolü ilk Buchholz4 tarafından tanımlanmıştır ve Clegg5önceden yayınlanmış yöntemine dayalı. Yordamı farklılaşmamış pluripotent kök hücreler RPE kader manipülasyon insülin büyüme faktörleri (IGF), temel fibroblast büyüme faktörü (FGF-2 puanı ile doğru yönlendirmek için normal vivo içinde gelişim sürecinin taklit eder. FGF-basic), dönüştürme büyüme faktörü beta (TGF-β) ve WNT yolları4,5. Protokol önemli ölçüde geç %97.77 ± %0,1 pre-melanosome protein (PMEL) pozitif hücrelerinin vermiştir ve koşullar xeno-Alerjik6,7' ye adapte protokolünde, WNT yolu agonist eklenmesi tarafından geliştirildi. Elde edilen RPE gösterilmiştir RPE işaretleri bilinen RPE büyüme faktörleri ile uygun polarite salgılar ve photoreceptor dış segmentleri8fagositoz taşımak için transkript ve protein düzeyleri, ifade etmek için. Bu, daha hızlı ve güvenilir--dan temel fibroblast büyüme faktörü8basit kaldırma dahil "kendiliğinden" iletişim kuralları farklılaşma protokolüdür. Ayrıca, RNA sıralama RPE bu iletişim kuralını kullanan elde edilen verileri göstermek için elde edilen daha yaygın spontan yaklaşım8kullanarak çok benzer. 14 günlük yöntem Mazzoni9 (Pigmentli, polarize, fagositik, sonrası Mitotik, çokgen)9tarafından bahsedilen "5 P'ın" uygun RPE oluşturur. Bu yordam birden çok Labs'de tekrarlanabilir kanıtlanmıştır iken, son yıllarda10,11,12 ' yayınlanmış birkaç ek yönlendirilmiş farklılaşma yöntem kabul etmek istiyorum , 13.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>SterilGARD III laminar flow biosafety cabinet</td>
			<td>Baker</td>
			<td>model: SG603A-HE, type: A2, class: 2</td>
			<td>6&#39; Baker laminar flow biosafety cabinet</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissection Hood</td>
			<td>Labconco</td>
			<td>Model 3970405</td>
			<td>laminar flow bench top</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dissecting microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ 1500</td>
			<td>heated stage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>air-jacketed CO2 incubator</td>
			<td>Sanyo</td>
			<td>MCO-17AIC</td>
			<td>37 oC and 5% CO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>inverted phase contrast microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>IX53</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Media Components</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/F12</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10565042</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N2 Supplement</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17502048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>B27 Supplement</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17504044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NEAA</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11140050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Growth Factors and Reagents</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nicotinamide</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>N0636</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant mouse noggin</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>1967-NG-025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant human DKK-1</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>5439-DK-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant IGF-1</td>
			<td>R&#38;D systems</td>
			<td>291-G1-200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FGF-basic</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>100-18B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant human/mouse/rat Activin A</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>120-14E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SU5402 FGF inhibitor</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td>sc-204308</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Substrates</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matrigel Basement Membrane Matrix, Phenol Red-Free, LDEV-Free</td>
			<td>Corning</td>
			<td>356237</td>
			<td>extracellular matrix-based hydrogel (ECMH)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matrigel hESC-Qualified Matrix, LDEV-Free</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354277</td>
			<td>growth factor reduced ECMH</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Other reagents</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1X Versene (EDTA)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15040066</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14190250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1X PBS (no calcium, no magnesium)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TrypLE (trypsin-like dissociation enzyme, TDE)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12563011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>X-VIVO 10 (RPE supporting medium)</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BW04-743Q</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Y-27632</td>
			<td>Tocris</td>
			<td>12-541-0 (1254)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CryoStor CS10</td>
			<td>BioLife Solutions</td>
			<td>210102</td>
			<td>cryopreservation medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.2 mL Cryogenic Vial</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430487</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mr. Frosty (freezing container)</td>
			<td>Nalgene</td>
			<td>5100-0001</td>
			<td>freezing container</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normocin</td>
			<td>Invivogen</td>
			<td>ant-nr-2</td>
			<td>antimicrobial reagent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Other Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipet-aid</td>
			<td>Drummond</td>
			<td>4-000-101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>12-well culture plate</td>
			<td>Corning</td>
			<td>CLS3516</td>
			<td>Used during differentiation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T75 flask</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430641</td>
			<td>Used during RPE maturation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well culture plate</td>
			<td>Corning</td>
			<td>CLS3513</td>
			<td>Used during RPE maturation.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cell scraper</td>
			<td>Corning</td>
			<td>08-771-1A</td>
			<td>Used during passages.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cell strainer</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>352340</td>
			<td>Used during passages before cell count.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

rapid, directed differentiation of retinal pigment epithelial cells from human embryonic or induced pluripotent stem cells

Pluripotent kök hücre farklılaşma içine retina pigment epitel hücreleri (RPE) yönlendirmek için sağlam bir yöntem açıklanmaktadır. Bir detaylı ve kapsamlı protokol sağlama amaçlı açıkça her adım göstermek için ve bu alanındaki araştırmacılar için hazır olmak için var. Bu iletişim kuralı RPE homojen bir katmanda gerekli en küçük veya Hayır manuel diseksiyon ile sonuçlanır. Burada sunulan yöntem için etkili olduğu gösterilmiştir indüklenen pluripotent kök hücreler (IPSC) ve insan embriyonik kök hücreleri. Ayrıca, uzun süreli depolama izin ara cep bankaların dondurma için yöntemleri açıklanmaktadır. Bu iletişim kuralı kullanılarak oluşturulan RPE IPSC çanak içinde hastalık modelleme veya klinik uygulama için yararlı olabilir.

Bu yöntem bir homojen, Pigmente ve tetrahedron monolayer RPE, üretimde sonuçlanır. Zaman Çizelgesi'Resim 1 Resim 2' tasvir görüntüleri karşılık gelir. Şekil 2Agösterildiği gibi kök hücre kolonileri sıkı bir şekilde tanımlanmış kenarlar ve hiçbir fibroblastic hücreler arasında kolonileri ya da opak hücrelerin kolonileri içinde paketlenmiştir. Şekil 2B subconfluent olgunlaşmamış RPE bir gösterimini sağlar. Hücreleri zaten bu aşamada Konfluent ise, farklılaşma süreci için kritik olan projeksiyonlar genişletemezsiniz. Ağır subconfluent olan hücrelere bir monolayer kurmak ve sıkı kavşaklar, epitel ile karakteristik oluşturmak mümkün olmayacaktır. Bu izdiham en iyi duruma getirmek hakkında ayrıntılı bilgi tartışma bölümünde özetlenen. Şekil 2C gösterir Sigara-Bu farklılaşma işlem sırasında ortaya çıkabilecek RPE en yaygın iki tür morfolojisi: sinirsel ya da fibroblastic yamalar. Tanımlanan, fibroblastic benzeri yamalar üzerinde diseksiyon mikroskop neredeyse yarı saydam ise sinir bu yamaları diseksiyon mikroskop üzerinde özellikle opak görünür unutmamak gerekir. Bu alanlarda bir doku kültürü plaka üzerinde bir bileşik ışık mikroskobu ve diseksiyon mikroskop üzerinde daha kolay tanımak için bir etanol geçirmez laboratuvar kalemle işaretlemek yararlı olabilir. Rakamlar 2D-F karakteristik parlak sınırları, Arnavut kaldırımı morfoloji ve RPE sağlıklı, olgunlaşan kültürünün belirtmek pigmentasyon gösterir. Şekil 3 tam olgun RPE faz kontrast ve aydınlık alan mikroskobu tarafından tasvir farklı görünümünü göstermek için daha yüksek bir büyütme görüntüdür. Geçit 3 gün 30, hücrelerin RNA ifade, protein ifade, büyüme faktörü salgı ve fagositoz2,4,6 dahil olmak üzere önceki yayınlarda açıklanan karakterizasyonu için hazır ,7. Bu karakterizasyonu bu Albümdeki temsil hücreleri sadece Pigmente ve tetrahedron, ama aynı zamanda fagositik, sonrası Mitotik ve polarize olduğunu göstermektedir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56274/56274fig1.jpg"> 
Şekil 1:. Zaman çizelgesi büyüme faktörleri eklenmesi ve RPE olgunlaşma için. Büyüme faktörleri 12-şey plakaları için 0-14 günden eklenir. RPE olgunlaşması kültürlü 6-şey plakaları veya zenginleştirme günden itibaren T75 Şişeler için 30 gün sonrası tezcan (passage 3 gün 30). Oklar, enzimatik hücre passaging gösterir. (A-E) aşağıda Şekil 2Albümdeki zaman çizelgeleri karşılık gelir. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56274/56274fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56274/56274fig2.jpg"> 
Şekil 2: temsilcisi morfoloji ve RPE olgunlaşması izdiham. İndüklenmiş pluripotent kök hücreler hemen önce farklılaşma(a)passaging. Olgunlaşmamış RPE hücrelerinin subconfluent günde 2 (B) ve çekme Kaldır zenginleştirme 14 gün önce; RPE yamalar (beyaz oklarla gösterilen) yamalar veya opak "kurdele" (C) olarak görünür. Geçit 0, 1 ve 3 gün 30, RPE (D, E ve F). Ölçek çubuğu 200 µm. = <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56274/56274fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56274/56274fig3.jpg"> 
Şekil 3: olgun RPE passage 3: gün 30 Faz kontrast(a)tasvir tetrahedron morfoloji ve pigmentasyon parlak-alanında (B) tasvir. Ölçek çubuğu 50 µm. = <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56274/56274fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Rapid, Directed Differentiation of Retinal Pigment Epithelial Cells from Human Embryonic or Induced Pluripotent Stem Cells at JoVE.com

Rapid, Directed Differentiation of Retinal Pigment Epithelial Cells from Human Embryonic or Induced Pluripotent Stem Cells

Bu iletişim kuralı, retina pigment epitel hücreleri (RPE) pluripotent kök hücre üretmek açıklar. Yöntem farklılaşma kök hücre içine olgunlaşmamış RPE on dört gün ve olgun, fonksiyonel RPE üç ay sonra büyüme faktörleri ve küçük moleküller bir arada kullanır.

Hızlı, yönlendirilmiş farklılaşma insan embriyonik veya İndüklenmiş Pluripotent kök hücrelerinden retina Pigment epitel hücrelerinin

We describe a robust method to direct the differentiation of pluripotent stem cells into retinal pigment epithelial cells (RPE). The purpose of providing ...

rapid-directed-differentiation-retinal-pigment-epithelial-cells-from

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

13.2K Görüntüleme.  University of California, Santa Barbara. Bu iletişim kuralı, retina pigment epitel hücreleri (RPE) pluripotent kök hücre üretmek açıklar. Yöntem farklılaşma kök hücre içine olgunlaşmamış RPE on dört gün ve olgun, fonksiyonel RPE üç ay sonra büyüme faktörleri ve küçük moleküller bir arada kullanır.

Video: Rapid, Directed Differentiation of Retinal Pigment Epithelial Cells from Human Embryonic or Induced Pluripotent Stem Cells

Efficient Derivation of Retinal Pigment Epithelium Cells from Stem Cells

No cure has been discovered for age-related macular degeneration (AMD), the leading cause of vision loss in people over the age of 55. AMD is complex multifactorial disease with an unknown etiology, although it is largely thought to occur due to death or dysfunction of the retinal pigment epithelium (RPE), a monolayer of cells that underlies the retina and provides critical support for photoreceptors. RPE cell replacement strategies may hold great promise for providing therapeutic relief for a large subset of AMD patients, and RPE cells that strongly resemble primary human cells (hRPE) have been generated in multiple independent labs, including our own. In addition, the uses for iPS-RPE are not limited to cell-based therapies, but also have been used to model RPE diseases. These types of studies may not only elucidate the molecular bases of the diseases, but also serve as invaluable tools for developing and testing novel drugs. We present here an optimized protocol for directed differentiation of RPE from stem cells. Adding nicotinamide and either Activin A or IDE-1, a small molecule that mimics its effects, at specific time points, greatly enhances the yield of RPE cells. Using this technique we can derive large numbers of low passage RPE in as early as three months.

Stem cell-derived retinal pigment epithelium (RPE) cells may be used for multiple applications including cell-based therapies for retinal degeneration, disease modeling, and drug studies. Here we present a simple protocol for reproducibly deriving RPE from stem cells.

Kök Hücreleri Retina pigment epiteli hücrelerinin Verimli türetilmesi

No cure has been discovered for age-related macular degeneration  (AMD), the leading cause of vision loss in people over the age of 55. AMD is complex ...

Gelişim Biyolojisi

Deriving Retinal Pigment Epithelium (RPE) from Induced Pluripotent Stem (iPS) Cells by Different Sizes of Embryoid Bodies

Pluripotent stem cells possess the ability to proliferate indefinitely and to differentiate into almost any cell type. Additionally, the development of techniques to reprogram somatic cells into induced pluripotent stem (iPS) cells has generated interest and excitement towards the possibility of customized personal regenerative medicine. However, the efficiency of stem cell differentiation towards a desired lineage remains low. The purpose of this study is to describe a protocol to derive retinal pigment epithelium (RPE) from iPS cells (iPS-RPE) by applying a tissue engineering approach to generate homogenous populations of embryoid bodies (EBs), a common intermediate during in vitro differentiation. The protocol applies the formation of specific size of EBs using microwell plate technology. The methods for identifying protein and gene markers of RPE by immunocytochemistry and reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) are also explained. Finally, the efficiency of differentiation in different sizes of EBs monitored by fluorescence-activated cell sorting (FACS) analysis of RPE markers is described. These techniques will facilitate the differentiation of iPS cells into RPE for future applications.

Deriving Retinal Pigment Epithelium RPE from Induced Pluripotent Stem iPS Cells by Different Sizes of Embryoid Bodies

The objective of this report is to describe the protocols to derive the retinal pigment epithelium (RPE) from induced pluripotent stem (iPS) cells using different sizes of embryoid bodies.

Embriyoid Kuruluşlarının Farklı Boyutları tarafından uyarılmış pluripotent kök gelen Retina pigment epiteli (RPE) türetilmesi (iPS) Hücreler

Pluripotent stem cells possess the ability to proliferate indefinitely and to differentiate into almost any cell type. Additionally, the development of ...

Cultivate Primary Nasal Epithelial Cells from Children and Reprogram into Induced Pluripotent Stem Cells

Nasal epithelial cells (NECs) are the part of the airways that respond to air pollutants and are the first cells infected with respiratory viruses. They are also involved in many airway diseases through their innate immune response and interaction with immune and airway stromal cells. NECs are of particular interest for studies in children due to their accessibility during clinical visits. Human induced pluripotent stem cells (iPSCs) have been generated from multiple cell types and are a powerful tool for modeling human development and disease, as well as for their potential applications in regenerative medicine. This is the first protocol to lay out methods for successful generation of iPSCs from NECs derived from pediatric participants for research purposes. It describes how to obtain nasal epithelial cells from children, how to generate primary NEC cultures from these samples, and how to reprogram primary NECs into well-characterized iPSCs. Nasal mucosa samples are useful in epidemiological studies related to the effects of air pollution in children, and provide an important tool for studying airway disease. Primary nasal cells and iPSCs derived from them can be a tool for providing unlimited material for patient-specific research in diverse areas of airway epithelial biology, including asthma and COPD research.

This publication demonstrates methods for successful sampling and culture of nasal epithelial mucosa from children, and reprogramming these cells to induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs).

Çocuklar Primary Burun Epitel Hücreleri yetiştirmek ve uyarılmış pluripotent kök hücrelerin içine programlayın

Nasal epithelial cells (NECs) are the part of the airways that respond to air pollutants and are the first cells infected with respiratory viruses. They ...

Rapid Neuronal Differentiation of Induced Pluripotent Stem Cells for Measuring Network Activity on Micro-electrode Arrays

Neurons derived from human induced Pluripotent Stem Cells (hiPSCs) provide a promising new tool for studying neurological disorders. In the past decade, many protocols for differentiating hiPSCs into neurons have been developed. However, these protocols are often slow with high variability, low reproducibility, and low efficiency. In addition, the neurons obtained with these protocols are often immature and lack adequate functional activity both at the single-cell and network levels unless the neurons are cultured for several months. Partially due to these limitations, the functional properties of hiPSC-derived neuronal networks are still not well characterized. Here, we adapt a recently published protocol that describes production of human neurons from hiPSCs by forced expression of the transcription factor neurogenin-212. This protocol is rapid (yielding mature neurons within 3 weeks) and efficient, with nearly 100% conversion efficiency of transduced cells (&#62;95% of DAPI-positive cells are MAP2 positive). Furthermore, the protocol yields a homogeneous population of excitatory neurons that would allow the investigation of cell-type specific contributions to neurological disorders. We modified the original protocol by generating stably transduced hiPSC cells, giving us explicit control over the total number of neurons. These cells are then used to generate hiPSC-derived neuronal networks on micro-electrode arrays. In this way, the spontaneous electrophysiological activity of hiPSC-derived neuronal networks can be measured and characterized, while retaining interexperimental consistency in terms of cell density. The presented protocol is broadly applicable, especially for mechanistic and pharmacological studies on human neuronal networks.

We modify and implement a previously published protocol describing the rapid, reproducible, and efficient differentiation of human&#160;induced&#160;Pluripotent Stem Cells (hiPSCs) into excitatory cortical neurons12. Specifically, our modification allows for control of neuronal cell density and use on micro-electrode arrays to measure electrophysiological properties at the network level.

Mikro-elektrot dizileri Ağ Aktivite Ölçüm uyarılmış pluripotent kök hücrelerin Rapid Nöronal Farklılaşma

Neurons derived from human induced Pluripotent Stem Cells (hiPSCs) provide a promising new tool for studying neurological disorders. In the past decade, ...

Directed Differentiation of Primitive and Definitive Hematopoietic Progenitors from Human Pluripotent Stem Cells

One of the major goals for regenerative medicine is the generation and maintenance of hematopoietic stem cells (HSCs) derived from human pluripotent stem cells (hPSCs). Until recently, efforts to differentiate hPSCs into HSCs have predominantly generated hematopoietic progenitors that lack HSC potential, and instead resemble yolk sac hematopoiesis.&#160;These resulting hematopoietic progenitors may have limited utility for in vitro disease modeling of various adult hematopoietic disorders, particularly those of the lymphoid lineages. However, we have recently described methods to generate erythro-myelo-lymphoid multilineage definitive hematopoietic progenitors from hPSCs using a stage-specific directed differentiation protocol, which we outline here. Through enzymatic dissociation of hPSCs on basement membrane matrix-coated plasticware, embryoid bodies (EBs) are formed. EBs are differentiated to mesoderm by recombinant BMP4, which is subsequently specified to the definitive hematopoietic program by the GSK3&#946; inhibitor, CHIR99021. Alternatively, primitive hematopoiesis is specified by the PORCN inhibitor, IWP2. Hematopoiesis is further driven through the addition of recombinant VEGF and supportive hematopoietic cytokines. The resulting hematopoietic progenitors generated using this method have the potential to be used for disease and developmental modeling, in vitro.

Here, we present human pluripotent stem cell (hPSC) culture protocols, used to differentiate hPSCs into CD34+ hematopoietic progenitors. This method uses stage-specific manipulation of canonical WNT signaling to specify cells exclusively to either the definitive or primitive hematopoietic program.

İlkel ve kesin hematopoetik ataları insan Pluripotent kök hücrelerden farklılaşma yönetmen

One of the major goals for regenerative medicine is the generation and maintenance of hematopoietic stem cells (HSCs) derived from human pluripotent stem ...

In Vitro Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Trophoblastic Cells

The placenta is the first organ to develop during embryogenesis and is required for the survival of the developing embryo. The placenta is comprised of various trophoblastic cells that differentiate from the extra-embryonic trophectoderm cells of the preimplantation blastocyst. As such, our understanding of the early differentiation events of the human placenta is limited because of ethical and legal restrictions on the isolation and manipulation of human embryogenesis. Human pluripotent stem cells (hPSCs) are a robust model system for investigating human development and can also be differentiated in vitro into trophoblastic cells that express markers of the various trophoblast cell types. Here, we present a detailed protocol for differentiating hPSCs into trophoblastic cells using bone morphogenic protein 4 and inhibitors of the Activin/Nodal signaling pathways. This protocol generates various trophoblast cell types that can be transfected with siRNAs for investigating loss-of-function phenotypes or can be infected with pathogens. Additionally, hPSCs can be genetically modified and then differentiated into trophoblast progenitors for gain-of-function analyses. This in vitro differentiation method for generating human trophoblasts starting from hPSCs overcomes the ethical and legal restrictions of working with early human embryos, and this system can be used for a variety of applications, including drug discovery and stem cell research.

In Vitro Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Trophoblastic Cells

Here, we present a protocol to efficiently generate human trophoblastic cells from human pluripotent stem cells using bone morphogenic protein 4 and inhibitors of the Activin/Nodal pathways. This method is suitable for the efficient differentiation of human pluripotent stem cells and can generate large quantities of cells for genetic manipulation.

Insan pluripotent İn Vitro Farklılaşma Trofoblastik Hücreleri içine Kök Hücreler

The placenta is the first organ to develop during embryogenesis and is required for the survival of the developing embryo. The placenta is comprised of ...

Engineering Transplantation-suitable Retinal Pigment Epithelium Tissue Derived from Human Embryonic Stem Cells

Several pathological conditions of the eye affect the functionality and/or the survival of the retinal pigment epithelium (RPE). These include some forms of retinitis pigmentosa (RP) and age-related macular degeneration (AMD). Cell therapy is one of the most promising therapeutic strategies proposed to cure these diseases, with already encouraging preliminary results in humans. However, the method of preparation of the graft has a significant impact on its functional outcomes in vivo. Indeed, RPE cells grafted as a cell suspension are less functional than the same cells transplanted as a retinal tissue. Herein, we describe a simple and reproducible method to engineer RPE tissue and its preparation for an in vivo implantation. RPE cells derived from human pluripotent stem cells are seeded on a biological support, the human amniotic membrane (hAM). Compared to artificial scaffolds, this support has the advantage of having a basement membrane that is close to the Bruch&#39;s membrane where endogenous RPE cells are attached. However, its manipulation is not easy, and we developed several strategies for its proper culturing and preparation for grafting in vivo.

We describe a method to engineer a retinal tissue composed of retinal pigment epithelial cells derived from human pluripotent stem cells cultured on top of human amniotic membranes and its preparation for grafting in animal models.

Transplantasyonu uygun Retina Pigment epitel doku mühendisliği insan embriyonik kök hücrelerden türetilmiş

Several pathological conditions of the eye affect the functionality and/or the survival of the retinal pigment epithelium (RPE). These include some forms ...

Efficient and Scalable Directed Differentiation of Clinically Compatible Corneal Limbal Epithelial Stem Cells from Human Pluripotent Stem Cells

Corneal limbal epithelial stem cells (LESCs) are responsible for continuously renewing the corneal epithelium, and thus maintaining corneal homeostasis and visual clarity. Human pluripotent stem cell (hPSC)-derived LESCs provide a promising cell source for corneal cell replacement therapy. Undefined, xenogeneic culture and differentiation conditions cause variation in research results and impede the clinical translation of hPSC-derived therapeutics. This protocol provides a reproducible and efficient method for hPSC-LESC differentiation under xeno- and feeder cell-free conditions. Firstly, monolayer culture of undifferentiated hPSC on recombinant laminin-521 (LN-521) and defined hPSC medium serves as a foundation for robust production of high-quality starting material for differentiations. Secondly, a rapid and simple hPSC-LESC differentiation method yields LESC populations in only 24 days. This method includes a four-day surface ectodermal induction in suspension with small molecules, followed by adherent culture phase on LN-521/collagen IV combination matrix in defined corneal epithelial differentiation medium. Cryostoring and extended differentiation further purifies the cell population and enables banking of the cells in large quantities for cell therapy products. The resulting high-quality hPSC-LESCs provide a potential novel treatment strategy for corneal surface reconstruction to treat limbal stem cell deficiency (LSCD).

This protocol introduces a simple two-step method for differentiating corneal limbal epithelial stem cells from human pluripotent stem cells under xeno- and feeder cell-free culture conditions. The cell culture methods presented here enable cost-efficient, large-scale production of clinical quality cells applicable to corneal cell therapy use.

Verimli ve ölçeklenebilir yönlendirilmiş farklılaşma klinik olarak uyumlu kornea Limbal epitel kök hücrelerden insan Pluripotent kök hücreler

Corneal limbal epithelial stem cells (LESCs) are responsible for continuously renewing the corneal epithelium, and thus maintaining corneal homeostasis ...

Efficient Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Liver Cells

The liver detoxifies harmful substances, secretes vital proteins, and executes key metabolic activities, thus sustaining life. Consequently, liver failure&#8212;which can be caused by chronic alcohol intake, hepatitis, acute poisoning, or other insults&#8212;is a severe condition that can culminate in bleeding, jaundice, coma, and eventually death. However, approaches to treat liver failure, as well as studies of liver function and disease, have been stymied in part by the lack of a plentiful supply of human liver cells. To this end, this protocol details the efficient differentiation of human pluripotent stem cells (hPSCs) into hepatocyte-like cells, guided by a developmental roadmap that describes how liver fate is specified across six consecutive differentiation steps. By manipulating developmental signaling pathways to promote liver differentiation and to explicitly suppress the formation of unwanted cell fates, this method efficiently generates populations of human liver bud progenitors and hepatocyte-like cells by days 6 and 18 of PSC differentiation, respectively. This is achieved through the temporally-precise control of developmental signaling pathways, exerted by small molecules and growth factors in a serum-free culture medium. Differentiation in this system occurs in monolayers and yields hepatocyte-like cells that express characteristic hepatocyte enzymes and have the ability to engraft a mouse model of chronic liver failure. The ability to efficiently generate large numbers of human liver cells in vitro has ramifications for treatment of liver failure, for drug screening, and for mechanistic studies of liver disease.

This protocol details a monolayer, serum-free method to efficiently generate hepatocyte-like cells from human pluripotent stem cells (hPSCs) in 18 days. This entails six steps as hPSCs sequentially differentiate into intermediate cell-types such as the primitive streak, definitive endoderm, posterior foregut and liver bud progenitors before forming hepatocyte-like cells.

Insan pluripotent kök hücrelerinin karaciğer hücrelerine verimli farklılaşma

The liver detoxifies harmful substances, secretes vital proteins, and executes key metabolic activities, thus sustaining life. Consequently, liver ...

Generation of 3D Skin Organoid from Cord Blood-derived Induced Pluripotent Stem Cells

The skin is the body&#8217;s largest organ and has many functions. The skin acts as a physical barrier and protector of the body and regulates bodily functions. Biomimetics is the imitation of the models, systems, and elements of nature for the purpose of solving complex human problems1. Skin biomimetics is a useful tool for in vitro disease research and in vivo regenerative medicine. Human induced pluripotent stem cells (iPSCs) have the characteristic of unlimited proliferation and the ability of differentiation to three germ layers. Human iPSCs are generated from various primary cells, such as blood cells, keratinocytes, fibroblasts, and more. Among them, cord blood mononuclear cells (CBMCs) have emerged as an alternative cell source from the perspective of allogeneic regenerative medicine. CBMCs are useful in regenerative medicine because human leukocyte antigen (HLA) typing is essential to the cell banking system. We provide a method for the differentiation of CBMC-iPSCs into keratinocytes and fibroblasts and for generation of a 3D skin organoid. CBMC-iPSC-derived keratinocytes and fibroblasts have characteristics similar to a primary cell line. The 3D skin organoids are generated by overlaying an epidermal layer onto a dermal layer. By transplanting this 3D skin organoid, a humanized mice model is generated. This study shows that a 3D human iPSC-derived skin organoid may be a novel, alternative tool for dermatologic research in vitro and in vivo.

We propose a protocol that shows how to differentiate induced pluripotent stem cell-derived keratinocytes and fibroblasts and generate a 3D skin organoid, using these keratinocytes and fibroblasts. This protocol contains an additional step of generating a humanized mice model. The technique presented here will improve dermatologic research.

3B cilt Organoid kablosu kan kaynaklı nesil Pluripotent kök hücreler indüklenen

The skin is the body&#8217;s largest organ and has many functions. The skin acts as a physical barrier and protector of the body and regulates bodily ...