Bu çalışma Microsearch Avustralya Vakfı ve Myee Codrington Tıbbi Araştırma Vakfı tarafından tarafından, Avustralya Proje Grant 1029205 Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (NHMRC) tarafından desteklenmiştir.

Önceki deneyler başlamadan, planlanan deneyler için ilgili kurum Hayvan Bakım Etik Kurul onayı almak. Kurumunuzun gereklerine uygun olarak fareler koruyun. Aşağıdaki protokol Sydney Üniversitesi ve Kraliyet Prens Alfred Hastanesi komiteleri tarafından onaylandı. Önce ameliyat başlamadan, tüm araçlar iyice temizlenmeli ve% 80 etanol içinde iliklerine tarafından sterilize. Bazı kurumlar ancak bu uzun vadede ince mikrocerrahi aletleri zarar verebilir otoklavlanmayı şart. Mümkün kullanımlık steril tek kullanımlık ekipman. 1.. Anestezi <ol><li> Kapalı bir kapta izofluran ile fare anestezisi sonra hızlı anestezi burun konisi bağlayan bir işletim gemide onu sırtüstü yerleştirin. Hiçbir refleks olmadığından emin olmak için arka ayak kısma anestezi testi yeterliliği. </li><li> Bir cerrahi bıçak ile cilt ve tıraş% 80 etanol ile sterilize. Buna ek olarak,% 70 izopropil alkol içerisinde% 2 klorheksidin cilt sterilizasyon için kullanılabilir. Anestezi indüksiyonu sırasında izofluran konsantrasyonu% 3 olduğunu, ancak bakım için% 1-1,5 &#39;bu azaltabilir. Düzenli nefes alma ve kalp hızını korumak için bu konsantrasyon için küçük ayarlamalar yapın. Bir ısıtma pedi üzerinde hayvanın ısısını korumak. </li></ol> 2.. Donör Operasyonu <ol><li> Bir göğüs duvarı kanat oluşturması için xiphisternum seviyesinde enine bir kesik ile ve ardından koltuk altına nervür kenarından göğüs kafesinin her iki göğsü ile keserek ve kalp damarları ortaya çıkarmak için bir torakotomi yapın. Başın yanında bu kapağını kaldırın ve işletme kuruluna için pin. Kalp ve damarları maruz perikard yırttınız. </li><li> Bir elinde ve IVC&#39;da yoluyla kalbe diğer inject 1 ml soğuk heparinize tuzlu proksimal ile forseps ile inferior vena kava kaldırın, sonra önleme için IVC&#39;da küçük arter kelepçe koymakgeri iğne deliğinden perfüzyon çözümü t akışı. </li><li> Gazlı bez ve pamuk kullanarak, aorta ve pulmoner arter maruz aşağı kalp çekin. Aorta ve pulmoner arter demetine kanalı (enine sinüs) posterior aracılığıyla microscissors bir çiftin bir bıçak geçmek ve anastomoz için yeterli uzunluğa sağlayacak kadar distale mümkün olduğunca bir araya aorta ve pulmoner arter kesti. </li><li> Kravat ve IVC, sağ superior vena kava (SVK) bölün, 6-0 ipek iplik kullanılarak SVC ve pulmoner venlerin sol. Ayrı ayrı IVC ve sağ SVC kravat sonra pulmoner venler ile birlikte sol SVC kuşatmak ve onu bağlamak için kalbine bir tek iplik posterior yerleştirin. Transplantasyon kadar 4 ° C &#39;de soğuk bir steril tuzlu su içinde saklayın, sonra bağları uzak damarları keserek verici sitesinden kalp hasat. Bu kesilmesi ile donör ölümü ile sonuçlanır. </li></ol> 3.. Alıcı Operasyonu <ol><li> Uyutmak(Bölüm 1) yukarıdaki gibi alıcı. Dikkatle Ekartörleri şeklinde bükülmüş xiphisternum ve ataç kullanarak geri çekilmesi için pubis orta hat kesi ile laparotomi yapmak sonra, tahrişi önlemek için karın tıraş. Sıcak steril serum fizyolojik emdirilmiş gazlı bez bağırsak sarın ve karın sağ üst çekin. </li><li> Infra-renal aorta ve IVC göstermek için, koter cihazı kullanılarak lomber gemilerin onları bölerek iliak bifurkasyon sol renal arter ve ven aorta ve IVC birlikte kesimleri özgür. Koter doğru sıcaklıkta ve damar uçları bölmek ve mühür yeterli bir süre için kullanılan ilgilenir. </li><li> Aorta ve proksimalde VKİ bölümlerine küçük atravmatik damar kelepçeleri uygulayın. Önce bir 30 G iğne ile bir delik delinmesi ile aort ön duvarında bir insizyon yapın; sonra donör aort boyutuna uyacak microscissors dikey bir kesi kesti. Herhangi bir bl kaldırmak için heparinli serum fizyolojik ile aorta lümen yıkayınood pıhtıları. </li><li> Soğuk tuzlu su ile ıslatılmış gazlı bez ile kaplı alıcı siteye donör kalbi getirin ve karnın sağ tarafına yerleştirin. Donör aort alıcı aort ve sonraki alıcıya IVC konumlandırılmış donör pulmoner arter üzerinde yanındaki kesi yerleştirildiğinden emin olun. </li><li> Hayvan 180 ° döndürülür sahne hangi uzak köşesine ulaşarak kadar önce sol tarafında yakın köşe ve sütür başlayarak 10-0 naylon sütürlerinin kullanarak alıcı aorta donör aorta uç-yan anastomoz. Yavaşça aort sağ tarafını ortaya çıkarmak ve yakın ucuna en uzak ucundan itibaren aort çeperinin sağ tarafı boyunca dikilmesi devam karnın sol tarafına donör kalbi hareket ettirin. Aort anastomoz kapatmadan önce, yavaşça herhangi bir pıhtı ve havayı çıkarmak için heparinli serum fizyolojik ile lümen yıkayın. </li><li> Alıcı IVC ile donör pulmoner arter (PA) uç-yan anastomoz. Bir kesi ver olunolarak yanmalıdır arter anastomoz uygun bir yerinde IVC ön duvarında microscissors. IVC lümeni içinde sol duvarının uzak ucundan başlayarak 10-0 naylon dikiş çalışan alıcı IVC için donör PA anastomoz. Proksimal ucu ulaştıktan sonra, anastomoz tamamlamak için uzak ucuna kadar ön sağ yan duvar boyunca dikiş devam etmektedir. Anastomoz kapatmadan önce, yavaşça pıhtılar ve havayı çıkarmak için lümen yıkayın. </li><li> Hemostaz elde edilene kadar bir pamuk aplikatör ile gemi kelepçeler, anastomoz siteleri etrafında Gelfoam yeri parçaları ve uygulamak hafif bir baskı bırakmadan önce. Revaskülarizasyon zamanda, yakın kelepçe ardından, ilk olarak uzak kelepçe bırakın. </li><li> Revaskülarizasyon sonra da iyileşme yardımcı olmak için harici olarak greft 37 ° C&#39;de sıcak bir tuzlu su uygulanır. Greft genellikle hemen fibrilasyon başlar ve birkaç dakika içinde sinüs ritmine kendiliğinden döner. Sıcak 0.6 ml enjektealıcının hidrasyon korumak için tuzlu su deri altından. Ameliyat öncesinde tamamlanması için analjezi için buprenorfin deri altına enjekte </li><li> Her iki tabaka için, bir 5-0 emilebilen sütür ile çalışan karın yara kapatın. Iç tabaka tamamlayarak başlatın ve cilt boyunca devam eder. </li></ol> 4.. Kurtarma ve Greft İzleme <ol><li> Enfeksiyonun önlenmesi için ampisilin enjekte edilir ve geri kazanılması için 37 ° C &#39;de bir ısıtma pedi üzerine alıcı yerleştirin. Çoğu hayvanlar hızla kurtarmak ve genellikle içme ve genellikle 3 saat içinde yiyorsun. Fare sıkıntı belirtileri gösteriyorsa, nedenini belirlemek için yakından inceleyin. Hiçbir belirgin nedeni ise, buprenorfin ile tedavi ve yakından izlenmesi. Belirtiler şiddetli ya da 8 saatten fazla devam ederse bir veteriner hekimin ve ötenazi düşünün. Gerekirse, belirtileri gidermek kadar Buprenorfinin 12 saatlik enjeksiyonları devam verir. Fare sıkıntı belirtileri gösteriyorsa 8 saat sonra, devam eden 12 verBuprenorfinin saatlik enjeksiyonları onlar çözene kadar. Belirtiler fazla 48 saat boyunca devam eder ve gerekirse euthanize eğer veteriner danışın. </li><li> Direkt batın palpasyonla greft kalp atışlarını izlemek ve + + + + gibi sağlıklı nedeniyle ileri reddedilmesine zayıf dövmek için + &#39;ya greft ve için beat gücünü kaydetmek - greft reddini tamamlanması nedeniyle sigara dayak gibi. Deneyin süresi boyunca haftada 3x daha sonra ilk 10 gün için, günde fareler izleyin. </li></ol>

<ol>
	<li>Aramaki, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin-10+but+not+transforming+growth+factor-beta+is+essential+for+generation+and+suppressor+function+of+regulatory+cells+induced+by+intratracheal+delivery+of+alloantigen.">Interleukin-10 but not transforming growth factor-beta is essential for generation and suppressor function of regulatory cells induced by intratracheal delivery of alloantigen.</a> Transplantation. 79, 568-576 (2005).</li><li>Chen, R. H., Bushell, A., Fuggle, S. V., Wood, K. J., Morris, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+granzyme+A+and+perforin+in+mouse+heart+transplants+immunosuppressed+with+donor-specific+transfusion+and+anti-CD4+monoclonal+antibody.">Expression of granzyme A and perforin in mouse heart transplants immunosuppressed with donor-specific transfusion and anti-CD4 monoclonal antibody.</a> Transplantation. 61, 625-629 (1996).</li><li>Poulin, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin-9+promotes+eosinophilic+rejection+of+mouse+heart+allografts.">Interleukin-9 promotes eosinophilic rejection of mouse heart allografts.</a> Transplantation. 76, 572-577 (2003).</li><li>Ono, K., Lindsey, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+technique+of+heart+transplantation+in+rats.">Improved technique of heart transplantation in rats.</a> J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 57, 225-229 (1969).</li><li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primarily+vascularized+allografts+of+heart+in+mice.">Primarily vascularized allografts of heart in mice.</a> Transplantation. 16, 343-350 (1973).</li><li>Larsen, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD40-gp39+interactions+play+a+critical+role+during+allograft+rejection.+Suppression+of+allograft+rejection+by+blockade+of+the+CD40-gp39+pathway.">CD40-gp39 interactions play a critical role during allograft rejection. Suppression of allograft rejection by blockade of the CD40-gp39 pathway.</a> Transplantation. 61, 4-9 (1996).</li><li>Saitovitch, D., Bushell, A., Mabbs, D. W., Morris, P. J., Wood, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kinetics+of+induction+of+transplantation+tolerance+with+a+nondepleting+anti-Cd4+monoclonal+antibody+and+donor-specific+transfusion+before+transplantation.+A+critical+period+of+time+is+required+for+development+of+immunological+unresponsiveness.">Kinetics of induction of transplantation tolerance with a nondepleting anti-Cd4 monoclonal antibody and donor-specific transfusion before transplantation. A critical period of time is required for development of immunological unresponsiveness.</a> Transplantation. 61, 1642-1647 (1996).</li><li>Callaghan, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+allograft+survival+by+inhibitory+FcgammaRIIb+signaling.">Regulation of allograft survival by inhibitory FcgammaRIIb signaling.</a> J. Immunol. 189, 5694-5702 (2012).</li><li>Qian, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+donor+MHC+Class+I+or+Class+II+antigen+deficiency+on+first-+and+second-set+rejection+of+mouse+heart+or+liver+allografts.">Impact of donor MHC Class I or Class II antigen deficiency on first- and second-set rejection of mouse heart or liver allografts.</a> Immunology. 88, 124-129 (1996).</li><li>Wang, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spontaneous+acceptance+of+mouse+kidney+allografts+is+associated+with+increased+Foxp3+expression+and+differences+in+the+B+and+T+cell+compartments.">Spontaneous acceptance of mouse kidney allografts is associated with increased Foxp3 expression and differences in the B and T cell compartments.</a> Transpl. Immunol. 24, 149-156 (2011).</li><li>Liu, F., Kang, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterotopic+Heart+Transplantation+in+Mice.">Heterotopic Heart Transplantation in Mice.</a> J. Vis. Exp. , (2007).</li><li>Mottram, P. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrocardiographic+monitoring+of+cardiac+transplants+in+mice.">Electrocardiographic monitoring of cardiac transplants in mice.</a> Cardiovasc. Res. 22, 315-321 (1988).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Fare kalp nakli master önemli cerrahi beceri gerektiren zorlu bir mikrocerrahi yöntemidir. En zor özelliği, kapların küçük çapıdır. Buna ek olarak, bu işlem zaman alıcı ve kanama sınırlamak için gereklidir. Fare kalp nakli için teknik ilk Corry ve diğerleri tarafından tarif edilmiştir. 1973 içinde ve daha sonra Mottram ve ark 12 ile. Bizim modifikasyonlar aşağıdaki noktaları içerir. Öncelikle, kısa bir süre sonra perfüzyon aort ve pulmoner arter demetinin torakotomi ve kesisi sonrası soğuk heparinli serum fizyolojik ile donör kalbin hemen perfüzyon hasat sırasında sıcak iskemi önler. İkinci olarak, bunun yerine daha önce vericinin alıcı hazırlanması için yakında verici hasat tamamlandıktan sonra alıcı hazırlama, başlangıç, hayatta kalma sonucu olarak iyileşme ile alıcıda karın maruz kalma süresini azaltır. Son olarak, küçük atravmatik kabının kullanımı b kelepçeleriAlıcı aort / VKİ paket için yerine bağlar kan akışını, kilit, genellikle gemiler için daha az hasarla sonuçlanır ve arka bacak felç sıklığını azaltabilir. Buna ek olarak, aşağıdaki noktalar başarı için önemlidir. Donör ve alıcı optimal büyüklüğü 23-26 gr civarındadır ve optimum yaş 10 ila 12 haftadır. Yaşlı hayvanların daha büyük gemilerin yok ve artmış yağ aorta ve IVC poz daha zor hale getirir. , Ameliyat sırasında, alıcının Dehidrasyon ve hipotermi kaçınılmalıdır. Alıcı bağırsak iyi ılık tuzlu su batırılmış gazlı bez ile dehidratasyon korunmak gerekir ve alıcı 37 ° C&#39;de ısıtma mat korunabilir Gazlı bez işlem sırasında taze, sıcak salin normal bir uygulama ile nemli tutulması gerekir. Kan pıhtıları ve arka ekstremite felci neden olabilir hava emboli en aza indirmek için, damar anastomoz siteleri kapatmadan önce yıkanması gerekir. Bağırsak dikkatle sonuçlanmasından değiştirilmesi gerekirmezenterde herhangi bükülmesini önlemek için transplantasyon üzerine. Ameliyattan kısa bir süre sonra intravenöz sıvı daha büyük bir hacim anastomoz hipertansiyon ve kanamaya neden olabilir, oysa 0.6 ml ılık tuzlu deri altına enjeksiyon hayvan kurtarma yardımcı olur. Alıcı aorta ve IVC çapraz az 30 dakika kelepçelenir zaman sınırlandırılması başarı oranını artıracaktır.

Organ nakli hayvan modelleri klinik transplant hastalarının tedavisini geliştirmek için değerli bilgiler sağlayabilir. Fare Modelleri Genetik olarak modifiye edilmiş fareler ve diğer hayvan modelleri 1-3 için geçerli değildir fareler için özel reaktiflerin geniş organ nakli reddi veya kabul bağışıklık mekanizmasını çalışmak için özellikle yararlıdır. Transplantasyonu fare modelleri ile bir meydan okuma tatmin edici sonuçlara ulaşmak için önemli teknik beceri gerektirir donör ve alıcı küçük boyutudur. Bir teknik, ilk olarak daha sonra Corry ve arkadaşları tarafından 5 Fare kalp nakli için uyarlanmıştır sıçanlarda 4 kalplerin heterotopik nakli için tarif edilmiştir. Bu teknik, önce verici işlemi için alıcı ve transplante veya t hayatta tehlikeye sokabilecek her ikisi de donör kalbi, hiçbir perfüzyon hazırlanması dahilo alıcı. Ilk olarak transplant reddi ve tolerans 6-8 mekanizmalarını incelemek için anlatılan prosedür, yaygın olarak kullanılmaktadır. Diğerleri farelerde 9,10 kalp nakli için Ono ve Lindsey orijinal sıçan kalp nakli prosedürü adapte var. Daha yakın zamanlarda, bir teknik Corry et al 11&#39;in yöntemi ile ilişkili sorunların üstesinden bir fare kalp nakli için yayınlanmıştır. Protokol, burada tarif edilen dahil Mottram ve ark 12 yöntemine dayalı değişiklikler, içerir: in situ perfüzyon soğuk heparinize tuzlu su ile hemen torakotomi sonra alıcı işlem süresini en aza indirmek için, alıcı işlemi için önce verici işlemi yapılması. Buna ek olarak, biz küçük atravmatik damar kelepçeler yerine 6-0 ipek bağları kullanabilirsiniz. Damar kelepçeler daha fazla yer alma dezavantajı olmasına rağmen onlar çok sıkı veya gevşek olmamalı, hangi bağları daha kontrol etmek daha kolaydırve kelepçeler daha çıkarmak için daha az açıktır. İlk öğrenme alternatif bir sütür düzgünlüğü sağlamak ve böylece anastomoz açıklığı için yakın ve uzak köşelerinde kalmak sütür kullanmak için sahneliyor rağmen bizim yöntem, damar anastomoz için çalışan tek bir dikiş kullanır.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="831">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:293px;">Operating microscope&#160;</td>
			<td style="width:247px;">Leica, Heerbrugg, Switzerland</td>
			<td style="width:124px;">M651</td>
			<td style="width:167px;">10x - 25x magnification</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Anesthetic machine&#160;</td>
			<td>Vet Quip Pty Ltd, Sydney, Australia</td>
			<td style="width:124px;">Vett3</td>
			<td>Capable of delivering a mixture of isoflurane and oxygen in air&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:293px;">Operating board&#160;</td>
			<td style="width:247px;">Hardware store or office supplier</td>
			<td style="width:124px;"></td>
			<td>Dense cork or synthetic capable of taking pins</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:293px;">Heparinised saline (5 U/ml, 4oC)</td>
			<td>Pfizer, USA</td>
			<td style="width:124px;">FW25</td>
			<td>In 1ml syringe with 23 gauge needle on ice</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:293px;">Normal saline (37oC)</td>
			<td style="width:247px;">AstraZeneca Pty Ltd, Australia</td>
			<td style="width:124px;">4538</td>
			<td>In 1ml syringe with 23 gauge needle on warm pad</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:293px;">Sutures 10- nylon, 5-0 Vicryl</td>
			<td>Ethicon, Inc. NJ, USA</td>
			<td style="width:124px;">2870G/J421H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Buprenorphine (0.05mg/kg in 0.1ml saline)</td>
			<td>Reckitt Benckiser, Sydney, Australia</td>
			<td style="width:124px;"></td>
			<td>In 1ml syringe with 23 gauge needle on ice</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ampcillin (5mg/kg in 0.1 ml saline)&#160;</td>
			<td>Aspen, Sydney, Australia</td>
			<td style="width:124px;"></td>
			<td>In 1ml syringe with 23 gauge needle on ice</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Gel Foam&#160;</td>
			<td>Pharmacia &#38; Upjohn Co. USA</td>
			<td style="width:124px;">801289304</td>
			<td>Cut into small pieces</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">High temperature cautery device&#160;</td>
			<td>Medtronic, USA</td>
			<td style="width:124px;">8444000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Microsurgery instruments:</td>
			<td colspan="2">Shanghai Medical Instruments Co. Ltd.,&#160;&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro-needleholders</td>
			<td style="width:247px;">Shanghai, China</td>
			<td style="width:124px;">WT2020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro scissors</td>
			<td>&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;</td>
			<td style="width:124px;">WT1020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:293px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro-forceps (straight tip)</td>
			<td style="width:247px;">&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;</td>
			<td style="width:124px;">WA3010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro-forceps (curved tip)</td>
			<td>&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;</td>
			<td style="width:124px;">WA3020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro-mosquito clamps (1 pair)</td>
			<td style="width:247px;">&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;</td>
			<td style="width:124px;">W40350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; micro-vessel atraumatic clamps (1 pair)</td>
			<td>&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160; &#34;</td>
			<td style="width:124px;">W40130/W40150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:293px;">Heating Pad/Right Temp</td>
			<td style="width:247px;">Kent Scientific Corporation, Turrington, CT 06790</td>
			<td style="width:124px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a modified method for heterotopic mouse heart transplantion

Fareler nedeniyle sık sık mevcut transgenik fareler ve reaktiflerin geniş transplant immünoloji çalışmalarda kalp nakli verici ve alıcı olarak kullanılır. Bir zorluk nedeniyle hayvanın küçük boyutu ve kalp nakli dahil mikrocerrahi önemli teknik sorunlar sunulmaktadır. Özellikle, erken transplantasyon sonrası teknik başarısızlık oranının yüksek alıcı ve ölüm gibi arka ekstremite felci ya da olmayan bir kalpte post-operatif komplikasyonlar oluşabilir. Burada, heterotopik fare kalp nakli için tam teknik bir alıcı fare içine donör kalp ve sonraki implantasyonu hasat içeren gösterilmiştir. Donör kalp derhal çıkan aort ve pulmoner arter soğuk heparinli serum fizyolojik ve kesisi ile in situ perfüzyon takip hasat edilir. Alıcı işlemi takiben, abdominal aorta ve vena kava (IVC) hazırlanmasını gerektirirçalışan tek 10-0 mikrodikiş ve alıcı VKİ ile donör pulmoner arter benzer bir anastomoz kullanarak alıcı aort ile aort donör uç-yan anastomoz. Ameliyattan sonra hayvanlar, 0.6 ml normal tuzlu su, deri altından enjekte edildi ve 37 ° C bir ısıtma pedi üzerine geri bırakılır. 227 fare kalp nakli gelen sonuçlar% 86.8 48 saatte bir başarı oranı ile özetlenmiştir. 15 (% 6.6) 48 saat içinde ölürken, 48 saat içinde% 13.2 arızaları, 5 (% 2.2), iskemik yaralanma ve / veya trombozu greft nedeniyle olmayan bir dayak kalbi vardı arka bacak felci, 10 (% 4.4) deneyimli .

Ilk eğitim döneminden sonra, bizim grup fare heterotopik kalp nakli 227 olgu incelendi. Ilk 24 saat içinde başarı oranı% 90.3 idi ve 48 saat sonra% 86.8 idi. 48 saat içinde 30 (% 13.2) arızaları, 5 (% 2.2) arka bacak felci deneyimli ve ötenazi gerekiyordu, 10 (% 4.4) ise 15, nedeniyle greft iskemi yaralanma ve / veya tromboz olmayan bir dayak kalbi vardı (% 6.6) 48 saat içinde ölmüştür. Bazı deneysel greft sağkalım gerginlik kombinasyonlar çeşitli Tablo 1&#39;de gösterilmiştir. Özdeş olmayan suşları arasındaki nakiller reddedildi iken aynı donör ve alıcı arasındaki gerginlik kalp nakilleri uzun vadeli kabul edildi. Transplante kalplerin görünümü, Şekil 1 &#39;de gösterilmiştir. Kalp kalbin görünümü ile birlikte dayak durdu kalp nakli yetmezliğinin neden genel olarak nakilden sonra zaman ile tespit edilir. Gerekirse, nedenibeat bırakma kalbin histolojik analizi ile teyit edilmelidir. Örneğin, DBA / 2 donor kalp nakli bir C57BL / 6 streyn alıcıda, kalp, duyarlı duruma getirilmemiş alıcılarda ret genellikle en az bir hafta sürer olarak en ilginç olan, 2 gün dayak durduruldu. Şekil 1A, bu ikinci kalp gösterir tromboz ve kalp dokusunun enfarktüs delil ile alıcı. C57BL / 6 alıcıya C57BL / 6 donör gerginlik birlikte, kalp reddedildi değildi ve&gt; 100 gün (Şekil 1B) için hayatta. Bu durumda kalp nedeniyle hayat dışı sürdürme durumuna ikincil kas atrofiye boyutu biraz azalmıştı. Buna karşılık, C57BL / 6 alıcıya DBA / 2 donörün reddeden suşu birlikte, nakledilen kalp 7. günde yenmek için kesildiği tarih ve ret kanıt (Şekil 1C) gösterdi vardı. Bu gün 100 (Şekil 1D) tamamen fibrotik ve çekmiş oldu. Tromboze Şekil 1.. Görünüş, nakledilen kalpleri reddeden ve non-reddetme. (A) DBA / 2 kalp nakli sonra tromboze ve enfarktüse kalp 7 günlerini gösteren C57BL / 6 alıcıya nakledilen. (B) iyi perfüze ve 100 gün transplantasyon sonrası kalpte. (C gösteren C57BL / 6 alıcıya nakledilen C57BL / 6 kalp 100 gün transplantasyon sonrası reddedilen kalbi gösteren C57BL / 6 alıcıya nakledilen 7 gün naklinden sonra reddedilen kalbi gösteren C57BL / 6 alıcıya nakledilen) DBA / 2 kalp. (D) DBA / 2 kalp. Oklar nakledilen kalp göstermektedir. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="489"><tbody><tr><td style="width:138px;"> Birleşmeleri </td><td style="width:226px;"> Sağkalım (gün) </td><td style="width:31px;"> n </td><td style &quot;width: 95px;&quot; =&gt; MST (gün) </td></tr><tr><td style="width:138px;"> B10.BR → B10.BR </td><td style="width:226px;"> &gt; 200 x7 </td><td style="width:31px;"> 7 </td><td style="width:95px;"> &gt; 200 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> C57BL / 6 → C57BL / 6 </td><td style="width:226px;"> 40,&gt; 200 x2 </td><td style="width:31px;"> 3 </td><td style="width:95px;"> &gt; 200 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> F1 → B10.BR </td><td style="width:226px;"> X2 8, 9, 12 </td><td style="width:31px;"> 4 </td><td style="width:95px;"> 8.5 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> 178.3 → B10.BR </td><td style="width:226px;"> 7 x2, x2 8, 9, 10, 12, 13 </td><td style="width:31px;"> 8 </td><td style="width:95px;"> 8.5 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> C57BL / 6 → B10.BR </td><td style="width:226px;"> 8 x4, 9 x2, 10 x5, 11, 12, 14 x2, 15 </td><td style="width:31px;"> 16 </td><td style="width:95px;"> 10 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> BALB / c → C57BL / 6 </td><td style="width:226px;"> 7 x9 </td><td style="width:31px;"> 9 </td><td style="width:95px;"> 7 </td></tr><tr><td style="width:138px;"> DBA / 2 → C57BL / 6 </td><td style="width:226px;"> 6, 7 x10 </td><td style="width:31px;"> 11 </td><td style="width:95px;"> 7 </td></tr></tbody></table> Farklı donör / alıcı kombinasyonları Tablo 1.. Kalp greft sağkalım.

Watch this Scientific Journal Video about A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion at JoVE.com

A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion

A technique is demonstrated for the microsurgical procedure for heterotopic transplantation of hearts in mice, including simplified methods for donor harvesting and recipient vessel anastomosis.

Heterotopik Fare Kalp NAKLİ için Modifiye Yöntem

Mice are often used as heart transplant donors and recipients in studies of transplant immunology due to the wide range of transgenic mice and reagents ...

a-modified-method-for-heterotopic-mouse-heart-transplantion

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

12.0K Görüntüleme.  University of Sydney. A technique is demonstrated for the microsurgical procedure for heterotopic transplantation of hearts in mice, including simplified methods for donor harvesting and recipient vessel anastomosis.

Video: A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion

A Modified Heterotopic Swine Hind Limb Transplant Model for Translational Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) Research

Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) such as hand and face transplants represent a viable treatment option for complex musculoskeletal trauma and devastating tissue loss. Despite favorable and highly encouraging early and intermediate functional outcomes, rejection of the highly immunogenic skin component of a VCA and potential adverse effects of chronic multi-drug immunosuppression continue to hamper widespread clinical application of VCA. Therefore, research in this novel field needs to focus on translational studies related to unique immunologic features of VCA and to develop novel immunomodulatory strategies for immunomodulation and tolerance induction following VCA without the need for long term immunosuppression.
This article describes a reliable and reproducible translational large animal model of VCA that is comprised of an osteomyocutaneous flap in a MHC-defined swine heterotopic hind limb allotransplantation. Briefly, a well-vascularized skin paddle is identified in the anteromedial thigh region using near infrared laser angiography. The underlying muscles, knee joint, distal femur, and proximal tibia are harvested on a femoral vascular pedicle. This allograft can be considered both a VCA and a vascularized bone marrow transplant with its unique immune privileged features. The graft is transplanted to a subcutaneous abdominal pocket in the recipient animal with a skin component exteriorized to the dorsolateral region for immune monitoring.
Three surgical teams work simultaneously in a well-coordinated manner to reduce anesthesia and ischemia times, thereby improving efficiency of this model and reducing potential confounders in experimental protocols. This model serves as the groundwork for future therapeutic strategies aimed at reducing and potentially eliminating the need for chronic multi-drug immunosuppression in VCA.

A Modified Heterotopic Swine Hind Limb Transplant Model for Translational Vascularized Composite Allotransplantation VCA Research

Vascularized Composite Allotransplantations (VCA) have become a clinical reality. However, broad clinical application of VCA is limited by chronic multi-drug immunosuppression. The authors present a reliable and reproducible large animal model to translate novel immunomodulatory strategies that can minimize or potentially eliminate the need of immunosuppression in VCA.

Translational Vaskülarize Kompozit allotransplantasyon (VCA) Araştırma için Modifiye heterotopik Domuz Hind Ekstremite nakli Modeli

Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) such as hand and face transplants represent a viable treatment option for complex musculoskeletal trauma ...

Tıp

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are available to perform mechanistic in vivo studies. While heart transplantation models using a suture technique were first successfully developed in rats, the translation into an equally widespread used murine equivalent was never achieved due the technical complexity of the microsurgical procedure. In contrast, non-suture cuff techniques, also developed initially in rats, were successfully adapted for use in mice1-3. This technique for revascularization involves two major steps I) everting the recipient vessel over a polyethylene cuff; II) pulling the donor vessel over the formerly everted recipient vessel and holding it in place with a circumferential tie. This ensures a continuity of the endothelial layer, short operating time and very high patency rates4.
Using this technique for vascular anastomosis we performed more than 1,000 cervical heart transplants with an overall success rate of 95%. For arterial inflow the common carotid artery and the proximal aortic arch were anastomosed resulting in a retrograde perfusion of the transplanted heart. For venous drainage the pulmonary artery of the graft was anastomosed with the external jugular vein of the recipient5.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

The murine cervical heart transplantation model is well suited for immunological as well as ischemia reperfusion injury studies. We modified the procedure using a non-suture cuff technique and performed more than 1,000 successful transplants with this approach.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

Modifiye Manşet Tekniği Sıçangiller Servikal Kalp Nakli Modeli

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

Murine Heterotopic Heart Transplant Technique

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique was developed and reported in 2001 by Niimi. Described here are the techniques that have evolved over more than a decade in the hands of three surgeons (Plenter, Grazia, Pietra) in our center. These techniques are now being passed on to a younger generation of surgeons and researchers.
Based largely on the Niimi experience, the procedures used have evolved in the fine details - details which we will endeavor to relate here in such a way that others may be able to use this very useful model. Like Niimi, we have found that a video aid to learning is a priceless resource for the beginner.

The manuscript describes the steps required to perform the heterotopic heart transplant in the mouse.

Mürin Heterotopik Kalp Nakli Tekniği

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become ...

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed results. However, the cellular and molecular mechanisms of the neotissue development, valve thickening, and stenosis development are not researched extensively. To answer the above questions, we developed a murine heterotopic heart valve transplantation model. A heart valve was harvested from a valve donor mouse and transplanted to a heart donor mouse. The heart with a new valve was transplanted heterotopically to a recipient mouse. The transplanted heart showed its own heartbeat, independent of the recipient&#8217;s heartbeat. The blood flow was quantified using a high frequency ultrasound system with a pulsed wave Doppler. The flow through the implanted pulmonary valve showed forward flow with minimal regurgitation and the peak flow was close to 100 mm/sec. This murine model of heart valve transplantation is highly versatile, so it can be modified and adapted to provide different hemodynamic environments and/or can be used with various transgenic mice to study neotissue development in a tissue engineered heart valve.

In order to understand the cellular and molecular mechanisms underlying neotissue formation and stenosis development in tissue engineered heart valves, a murine model of heterotopic heart valve transplantation was developed. A pulmonary heart valve was transplanted to recipient using the heterotopic heart transplantation technique.

Heterotopik Kalp Nakli bir Fare Modeli Kullanarak Pulmoner Vana Nakli

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

Rat Heterotopic Abdominal Heart/Single-lung Transplantation in a Volume-loaded Configuration

Herein, we describe a novel technique for heterotopic abdominal heart-lung transplantation (HAHLT) in rats. The configuration of the transplant graft involves anastomosis of donor inferior vena cava (IVC) to recipient IVC, and donor ascending aorta (Ao) to recipient abdominal Ao. The right upper and middle lung lobes are preserved and function as conduits for blood flow from right heart to left heart.
There are several advantages to using this technique, and it lends itself to a broad range of applications. Because the graft is transplanted in a configuration that allows for dyamic volume-loading, cardiac function may be directly assessed in vivo. The use of pressure-volume conductance catheters permits characterization of load-dependent and load-independent hemodynamic parameters. The graft may be converted to a loaded configuration by applying a clamp to the recipient&#8217;s infra-hepatic IVC. We describe modified surgical techniques for both donor and recipient operations, and an ideal myocardial protection strategy. Depending on the experimental aim, this model may be adapted for use in both acute and chronic studies of graft function, immunologic status, and variable ventricular loading conditions. The conducting airways to the transplanted lung are preserved, and allow for acute lung re-ventilation. This facilitates analysis of the effects of the mixed venous and arterial blood providing coronary perfusion to the graft.
A limitation of this model is its technical complexity. There is a significant learning curve for new operators, who should ideally be mentored in the technique. A surgical training background is advantageous for those wishing to apply this model. Despite its complexity, we aim to present the model in a clear and easily applicable format. Because of the physiologic similarity of this model to orthotopic transplantation, and its broad range of study applications, the effort invested in learning the technique is likely to be worthwhile.

We describe a novel technique for heterotopic abdominal heart-lung transplantation (HAHLT) in rats. The transplant configuration results in a partially loaded graft circulation, allowing direct functional assessment. This model may be employed for acute or chronic studies of function and immunologic status of the transplanted graft.

Sıçan Heterotopik Abdominal Kalp / Bir Ses yüklenen Yapılandırması Tek akciğer transplantasyonu

Herein, we describe a novel technique for heterotopic abdominal heart-lung transplantation (HAHLT) in rats. The configuration of the transplant graft ...

Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies this model by avoiding challenging suture anastomoses of small vessels thereby reducing warm ischemia time. In comparison to abdominal graft implantation the cervical model is less invasive and the implanted graft is easily accessible for further follow-up examinations. Anastomoses are performed by pulling the ascending aorta of the graft over the cuff with the recipient&#8217;s common carotid artery and by pulling the main pulmonary artery over the cuff with the external jugular vein. Selection of appropriate cuff size and complete mobilization of the vessels are important for successful revascularization. Ischemia-reperfusion (I/R) injury can be minimized by perfusing the graft with a cardioplegic solution and by hypothermia. In this article, we provide technical details for a simplified and improved cuff technique, which should allow surgeons with basic microsurgical skills to perform the procedure with a high success rate.

The cuff technique shortens and facilitates the model of heterotopic cervical heart transplantation in mice by avoiding technically challenging suture anastomoses of small vessels. The technical details shown in this video paper should allow researches to establish this model in their laboratories.

Farelerde Heterotopik Servikal Kalp Nakli

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies ...

A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression must be pursued. Employing vascularized bone marrow transplantation and co-transplantation of the thymus have shown promise in this regard in various animal models.1-11 Vascularized bone marrow transplantation allows for the uninterrupted transfer of donor bone marrow cells within the preserved donor microenvironment, and the incorporation of thymus tissue with vascularized bone marrow transplantation has shown to increase T-cell chimerism ultimately playing a supportive role in the induction of immune regulation. The combination of solid organ and vascularized composite allotransplantation can uniquely combine these strategies in the form of a novel transplant model. Murine models serve as an excellent paradigm to explore the mechanisms of acute and chronic rejection, chimerism, and tolerance induction, thus providing the foundation to propagate superior allograft survival strategies for larger animal models and future clinical application. Herein, we developed a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique. The experience in syngeneic and allogeneic transplant settings is described for future broader immunological investigations via an instructional manuscript and video supplement.

To study combined solid organ and vascularized composite allotransplantation, we describe a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique.

Farelerde A Novel Mikrocerrahi Heterotopik Modeli, En Bloku Göğüs Duvarı, Thymus ve Kalp Nakli

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression ...

A Simplified Model for Heterotopic Heart Valve Transplantation in Rodents

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of transplant with the potential to deliver durable heart valves capable of somatic growth with no requirement for anticoagulation. However, the immunobiology of heart valve transplants remains unexplored, highlighting the need for animal models to study this new type of transplant. Previous rat models for heterotopic aortic valve transplantation into the abdominal aorta have been described, though they are technically challenging and costly. For addressing this challenge, a renal subcapsular transplant model was developed in rodents as a practical and more straightforward method for studying heart valve transplant immunobiology. In this model, a single aortic valve leaflet is harvested and inserted into the renal subcapsular space. The kidney is easily accessible, and the transplanted tissue is securely contained in a subcapsular space that is well vascularized and can accommodate a variety of tissue sizes. Furthermore, because a single rat can provide three donor aortic leaflets and a single kidney can provide multiple sites for transplanted tissue, fewer rats are required for a given study. Here, the transplantation technique is described, providing a significant step forward in studying the transplant immunology of heart valve transplantation.

This protocol describes a simple and efficient method for the transplantation of aortic valve leaflets under the renal capsule to allow for the study of alloreactivity of heart valves.

Kemirgenlerde Heterotopik Kalp Kapağı Transplantasyonu için Basitleştirilmiş Bir Model

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of ...

A Modified Simple Method for Induction of Myocardial Infarction in Mice

Myocardial infarction (MI) represents one of the leading causes of death. MI models are widely used for investigating the pathomechanisms of post-MI remodeling and evaluation of novel therapeutics. Different methods (e.g., isoproterenol treatment, cryoinjury, coronary artery ligation, etc.) have been used to induce MI. Compared with isoproterenol treatment and cryoinjury, coronary artery ligation may better reflect the ischemic response and chronic remodeling after MI. However, traditional methods for coronary ligation in mice are technically challenging. The current study describes a simple and efficient process for induction of MI in mice with readily available materials. The mouse chest skin was cut open under stable anesthesia. The heart was immediately externalized through the intercostal space after blunt separation of the pectoralis major and pectoralis minor. The left anterior descending branch (LAD) was ligated with a 6-0 suture 3 mm from its origin. Following LAD ligation, staining with 2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride (TTC) indicated successful induction of MI and temporal changes of post-MI scar size. Meanwhile, survival analysis results showed overt mortality within 7 days after MI, mainly due to cardiac rupture. Moreover, post-MI echocardiographic assessment demonstrated successful induction of contractile dysfunction and ventricular remodeling. Once mastered, an MI model can be established in mice within 2-3 min with readily available materials.

Under adequate anesthesia, the mouse heart was externalized through the intercostal space, and myocardial infarction was successfully induced by ligating the left anterior descending artery (LAD) using materials readily available in most laboratories.

Farelerde Miyokard Enfarktüsünün İndüksiyonu için Değiştirilmiş Basit Bir Yöntem

Myocardial infarction (MI) represents one of the leading causes of death. MI models are widely used for investigating the pathomechanisms of post-MI ...

A Porcine Heterotopic Heart Transplantation Protocol for Delivery of Therapeutics to a Cardiac Allograft

Cardiac transplantation is the gold standard treatment for end-stage heart failure. However, it remains limited by the number of available donor hearts and complications such as primary graft dysfunction and graft rejection. The recent clinical use of an ex vivo perfusion device in cardiac transplantation introduces a unique opportunity for treating cardiac allografts with therapeutic interventions to improve function and avoid deleterious recipient responses. Establishing a translational, large-animal model for therapeutic delivery to the entire allograft is essential for testing novel therapeutic approaches in cardiac transplantation. The porcine, heterotopic heart transplantation model in the intraabdominal position serves as an excellent model for assessing the effects of novel interventions and the immunopathology of graft rejection. This model additionally offers long-term survival for the pig, given that the graft is not required to maintain the recipient's circulation. The aim of this protocol is to provide a reproducible and robust approach for achieving ex vivo delivery of a therapeutic to the entire cardiac allograft prior to transplantation and provide technical details to perform a survival heterotopic transplant of the ex vivo perfused heart.

We present a protocol for utilizing a normothermic ex vivo sanguinous perfusion system for the delivery of therapeutics to an entire cardiac allograft in a porcine heterotopic heart transplant model.

Terapötiklerin Kardiyak Allogrefte Verilmesi için Domuz Heterotopik Kalp Transplantasyonu Protokolü

Cardiac transplantation is the gold standard treatment for end-stage heart failure. However, it remains limited by the number of available donor hearts ...