Method Article
Сочетание иммунопреципитации хроматина и сверхвысокой пропускной последовательности (чип-далее) может определять и белок-ДНК взаимодействия в данной линии ткани или клетки. Изложенные в том, как генерировать высокое качество щепы шаблон для последующего секвенирования, используя опыт с TCF7L2 транскрипционный фактор в качестве примера.
Обломок-последовательности (чип-далее) методы непосредственно предложить целого генома охвата, где объединение иммунопреципитации хроматина (чип) и массивных параллельных последовательностей могут быть использованы для идентификации репертуара млекопитающих ДНК связаны факторов транскрипции в естественных условиях. "Следующего поколения" секвенирование генома технологии обеспечивают 1-2 порядков увеличение количества последовательностей, которые могут быть экономически эффективно генерируются на старые технологии что позволяет чип-далее методы для непосредственного предоставления целого генома покрытия для эффективного профилированию млекопитающего белок-ДНК взаимодействий.
Для успешного чип-последующие подходы, необходимо генерировать высокое качество чип ДНК-матрицы для получения наилучших результатов секвенирования. Описание основано вокруг опыт работы с белкового продукта гена наиболее сильно вовлечены в патогенез сахарного диабета 2 типа, а именно транскрипции фактора транскрипции фактора 7-подобный 2 (TCF7L2). Этот фактор также вовлечен в различные виды рака.
Изложенные в том, как генерировать высокое качество щепы ДНК-матрице, полученные из клеточной линии колоректального рака, HCT116, в целях создания высокого разрешения карты по виртуализации, чтобы определить гены связаны TCF7L2, давая дальнейшее понимание в свою ключевую роль в патогенезе сложных признаков.
На протяжении многих лет наблюдается неудовлетворенная потребность определить набор генов связаны и регулируются геном данного белка широко, в частности, в классе фактора транскрипции.
Одом и соавт. 1 использован иммунопреципитацию хроматина (чип) в сочетании с промоутером микрочипов в систематическом выявлении генов занимают заранее оговоренное транскрипционных регуляторов в человеческой печени и панкреатических островков. Впоследствии Джонсон и др.. 2 разработана крупномасштабная хроматин иммунопреципитации на основе прямых ультра высокой пропускной секвенирования ДНК (чип-след), чтобы всесторонне карту белок-ДНК взаимодействия по всей геномах млекопитающих. В качестве теста случае, они отображаются в естественных условиях связывания нейронов-ограничительные глушителем фактора (NRSF) до 1946 мест в геноме человека. Отображаемые данные высоким разрешением связывания позиции (+ 50 пар оснований), что способствовало как яsolation мотивов и выявления NRSF-связывающих мотивов. Эти чипсеты-SEQ данных также была высокой чувствительностью и специфичностью и статистической достоверности (p <10 -4), свойств, которые важны для выведения новых взаимодействий кандидата.
Робертсон и др.. 3 также используется чип-SEQ с целью картирования STAT1 цели в γ-интерферона (IFN-γ) стимулировали и нестимулированных человека HeLa S3 клетки в живом организме. Чип-SEQ, используя 15,1 и 12,9 млн. однозначно отображается последовательность читает, и, по оценкам, ложных открытие менее 0,001, они определили 41 582 и 11 004 предполагаемых STAT1-связывающие области в стимулированных и стимулированных клеток соответственно. Из 34 локусов как известно, содержат STAT1-интерферона реагировать сайты связывания 4-8, чип-далее найдены 24 (71%). Обломок-SEQ цели были обогащены последовательности похожи на известные STAT1 связывающие мотивы. Сравнения с двумя существующими чип-PCR наборы данных предложеночто чип-сл чувствительность была между 70% и 92%, а специфичность была по крайней мере 95%. Кроме того, было ясно, что чип-SEQ предлагает как низкий аналитической сложности и чувствительности, которая увеличивается с глубиной секвенирования.
Таким образом, геном "следующего поколения" секвенирования технологии обеспечивают 1-2 порядков увеличение количества последовательностей, которые могут быть экономически эффективно генерируются на старых технологий 9. Обломок-SEQ методами таким образом, напрямую обеспечит целого генома для эффективного охвата профилирование млекопитающих белок-ДНК взаимодействия 3.
В 2006 году в сильной ассоциации из вариантов фактора транскрипции 7-подобный 2 (TCF7L2) гена с диабетом 2 типа был обнаружен 10. Другие исследователи уже самостоятельно реплицировать этот вывод в разных национальностей и, что интересно, с первого генома широкие исследования ассоциации диабета 2 типа опубликованы в Nature 11,12 , науки и в других местах 13-15 16,17, самая сильная связь была действительно с TCF7L2; этого в настоящее время считается наиболее значительные генетические нахождения в сахарный диабет 2 типа на сегодняшний день 18-20. Кроме того, TCF7L2 была связана с риском рака 21,22, более того, эта связь стала более очевидной, когда локус 8q24 выявленные геномом широкого исследования ассоциативного ряда злокачественных опухолей, включая колоректальный рак, было показано, что в связи с крайним вверх TCF7L2-связывающим элементом, вызывающим транскрипции MYC 23,24. Таким образом, существует огромный интерес в определении нижестоящих генов регулируется настоящим ключевым фактором транскрипции.
На основе опыта TCF7L2 как пример методологии, в настоящем документе описывается, как генерировать высокое качество чип ДНК. Чип проводили в толстой клеточной линии карциномы, НСТ116, для последующего секвенирования с целью создания высокого резольногоution карту генов связаны TCF7L2 25 в попытке получить дальнейшее понимание в свою ключевую роль в патогенезе сложных признаков.
1. Перекрестные ссылки хроматина
2. Подготовьте ядрами (перейдите к шагу 3.5 для клеточный лизат)
3. Ультразвуковая обработка *
* Для родных ChIP, microccocal нуклеазой качестве альтернативы может использоваться для сдвига ДНК.
4. Блок агарозы *
5. Предварительно ясно хроматина
6. Иммунопреципитация
7. Элюирование
8. Обратные сшивки
9. Очистки ДНК
* Кроме того, чип класса магнитных гранул может быть использован вместо агарозном для иммунопреципитации части.
10. ПЦР проверки
Шаг 1: 94 ° C 3 мин
Шаг 2: 94 ° С 20 сек
59 ° C 30 сек
72 ° С 30 сек
(Повторите шаг 2 для по крайней мере 30 CYCLES)
Шаг 3: 72 ° С 2 мин
После того, хроматин был ультразвуком и были обработаны РНКазой и протеиназы, образцы подвергали электрофорезу на 2% агарозном геле должна представлять мазка с основной массой ДНК в нужный размер. Если несколько различных циклов тестирования, постепенное снижение размера следует рассматривать как с увеличением числа циклов (рис. 2).
После завершения иммунопреципитации часть протокола обогащение может либо быть проверены с помощью ПЦР или ПЦР в реальном времени. Для ПЦР образцы работают на агарозном геле должно быть полос в Входные и чип (с использованием антител для белок, который TCF7L2 в данном случае) образца переулков и ничего или в крайнем случае, очень слабая полоса (фоновый шум) в IgG (отрицательный) контрольной полосе для положительного связывающей области. Для отрицательной области связывания должно быть очень слабым или вообще не группа для контроля IgG и чип переулков. Там должна быть полосы в полосу входного (рис. 3).
На рисунке 4 показаны же образцов рассмотрены ПЦР в реальном времени. Как и на предыдущем рисунке, не должно быть значительным кратное обогащение положительной области связывания для чипа образца по сравнению с контрольным IgG. Кроме того, должно быть очень мало обогащения, если таковые имеются, рассматривается в отрицательной области связывания.
Рисунок 1. Технологическая схема чипа процесса. Нажмите здесь, чтобы увеличить рисунок .
Рисунок 2. Гель проверить ДНК ультразвуком.
Рисунок 4. ПЦР в реальном времени из TCF7L2 чип.
Реагент | Объем |
Из гранул | 300 мкл |
BSA (50 мг / мл) | 30 мкл |
100X ингибитор протеиназ | 10 мкл |
ChIP буфером для разведения | 660 мкл |
Общий | 1000 мкл |
Таблица 1. Рецепт для блокирования агарозы.
Буфер | Компоненты |
Низким содержанием соли иммунных комплексов промывочного буфера | 0,1% SDS 1% Тритон Х-100 2 мМ ЭДТА 20 мМ Трис-HCl, рН 8,1 150 мМ NaCl |
Высоким содержанием соли иммунных комплексов промывочного буфера | 0,1% SDS 1% Тритон Х-100 2 мМ ЭДТА 20 мМ Трис-HCl, рН 8,1 500 мМ NaCl |
LiCl иммунных комплексов промывочного буфера | 0,25 М LiCl 1% NP-40 1% Deoxycholate 1 мМ ЭДТА 10 мМ Трис-HCl, рН 8,1 |
ТЕ-буфера | 10 мМ Трис-HCl, рН 8,1 1 мМ ЭДТА, рН 8,0 |
Таблица 2. Буферы ChIP стирки.
Реагент | Объем |
20% SDS буфера | 10 мкл |
1 М NaHCO 3 | 20 мкл |
H 2 O | 170 мкл |
Таблица 3. Элюирующий буфер для одного IP.
Реагент | 50 мкл реакции | 20 мкл реакции |
Воды | 27 мкл | 10,8 мкл |
5X реакции ПЦР-буфер | 10 мкл | 4 мкл |
MgCl 2 | 4 мкл | 1,6 мкл |
дНТФ (10 мМ) | 1 мкл | 0,4 мкл |
Грунтовка смеси (5 мкм каждый) | 2 мкл | 0,8 мкл |
Taq (Promega горячего старта) | 1 мкл | 0,4 мкл |
ChIP ДНК | 5 мкл | 2 мкл |
Таблица 4. Объемы реакции ПЦР.
Это теперь возможно проводить генома профиля белок-ДНК взаимодействия ассоциации с помощью чип-далее, как было недавно продемонстрировано с другими факторами транскрипции 2,3. Ключ к успешным результатам секвенирования поколения высокого качества шаблона хроматина ДНК иммунопреципитацией.
Как только ДНК-матрицы была сформирована и установлено быть должным образом обогащается, то можно взять его в библиотеке для подготовки к последующему секвенирования. Например, можно использовать протокол секвенирование библиотеки предоставляемых поставщиком, Illumina. Выбор размера этой библиотеки могут быть выполнены с помощью электрофореза в геле и последующее удаление и очистку ДНК в ~ 200 - 700 п.н. диапазона. Уменьшение размера и сужению диапазона размеров ДНК, собранных из очисткой на геле предназначен для улучшения позиционное разрешение Обломок-сл. По обогащения для небольших частей входных ДНК связан с коэффициентом десятичногоересть, можно было бы ожидать, что место расположения получит разрешение. Ужесточение выбор размера также улучшает равномерность размеров молекулярных колоний производится на платформе Illumina. Такая однородность размера колонии также увеличивает эффективное число чтение получены. Более короткие размер входного ДНК также производит более надежные колонии на платформе Illumina, и это может означать, что более короткие части ДНК в любом заданном распределении входной выборки будут представлены более эффективно в выходной последовательности, чем больше входной части из того же распределения.
Биоинформатики подходы к "следующего поколения" Анализ последовательности продолжают развиваться, и многие производители делает их программного обеспечения с открытым исходным кодом для дальнейшей доработки. Можно преобразовать говорится, что карта уникальных местах в геномной ДНК профиль фрагмента перекрытия. Значительные пики могут быть идентифицированы по threshholding профилей на высоте, эквивалентной примерно ложного обнаружения. Положение SPecific матрицы частот, полученных из этой работы могут быть использованы для идентификации и локализации ДНК-связывающих сайтов в человеческом геноме для данного фактора.
Но нужно быть осторожными в отношении того, какие факторы одна хочет учиться с чипом-след. Прежде чем приступать к такого исследования необходимо оценить, если антитела на рынке, который будет доступен в чипе установку в качестве бедных антитело может иметь весьма пагубные последствия для своих экспериментальных результатов. Кроме того, следует учитывать, если есть сращивание изоформы белка в исследовании, более того, TCF7L2 как известно, имеет множество изоформ поэтому мы особенно осторожным при выборе антитела, которые связаны с аминокислотами постоянно присутствует во всех основных изоформ этого фактора транскрипции 25.
Таким образом, сочетание иммунопреципитации хроматина и сверхвысокой пропускной последовательности (чип-далее) может определять и белок-ДНК взаимодействия в данной ткани или СELL линии. Мы наметили, как генерировать высокие качества щепы шаблон для последующего секвенирования.
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.
Работа выполнена при поддержке Института развития премию из Детской больницы Филадельфии.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen | 28104 | |
EZ-ChIP Kit | Millipore | 17-371 | |
GoTaq Hot Start Polymerase | Promega | M5001 | |
Misonix Sonicator | Qsonica | XL-2000 | |
NanoDrop 1000 Spectrophotometer | Thermo-Scientific | ||
Positive control primer sequences (TCF7L2-1) Forward- 5'-TCGCCCTGTCAATAATCTCC-3' Reverse- 5'-GCTCACCTCCTGTATCTTCG-3' Negative control primer sequences (CTRL-1) Forward-5'-ATGTGGTGTGGCTGTGATGGGAAC-3' Reverse- 5'-CGAGCAATCGGTAAATAGGTCTGG-3' |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены